郭亮亮,靳寧寧,王瑩,張靜
(鄭州大學(xué) 化工與能源學(xué)院,河南 鄭州 450001)
殼聚糖價廉易得,止血性[1]、生物相容性良好[2-3],可廣譜抗菌[4]、促進(jìn)傷口愈合。殼聚糖經(jīng)N-烷基化改性后,既保留了其優(yōu)良活性,又增強(qiáng)了其止血性能[5-7]。白芨多糖是從傳統(tǒng)中藥白芨中提取出的水溶性多糖,可收斂止血、消腫生肌[8-10],具有多種生理活性[11-13]。離子交聯(lián)法在制備殼聚糖復(fù)合材料過程中,避免了有毒副作用的交聯(lián)劑的使用,是制備止血材料的理想方法[14]。
本文使用離子交聯(lián)法制備負(fù)載有白芨多糖的N-烷基化殼聚糖凍干粉,以期結(jié)合二者的止血性能,利用凍干粉的特性,在達(dá)到止血目的的基礎(chǔ)上同時起到一定的止痛作用[15]。
殼聚糖(CTS)、三聚磷酸鈉、硼氫化鈉、氫氧化鈉、冰乙酸、無水乙醇均為分析純;十二醛(95%),色譜純;白芨多糖(Bsp,多糖含量50%),由陜西森弗天然制品有限公司提供;牛肉膏、蛋白胨、瓊脂粉均為生物試劑。
SHZ-D(Ш)水循環(huán)式真空泵;PHS-25數(shù)字pH計;Φ130×60 ZNCL-GS智能磁力攪拌器;DZF-6020真空干燥箱;AB204-N電子分析天平;Nicolet IR300傅里葉變換紅外光譜儀;S-4700場發(fā)射掃描電鏡;Nanoplus3 Nanoplus納米粒度與Zeta電位分析儀。
1.2.1N-烷基化殼聚糖(N-CTS)制備 稱取CTS粉末2 g,配制質(zhì)量濃度1%的CTS醋酸溶液,靜置除泡備用。將0.55 mL十二醛逐滴加入殼聚糖溶液,攪拌12 h后調(diào)節(jié)pH=5。配制質(zhì)量濃度10%的硼氫化鈉水溶液,強(qiáng)攪拌下將硼氫化鈉水溶液逐滴加入反應(yīng)體系,2 h后調(diào)節(jié)反應(yīng)體系pH=7,用無水乙醇反復(fù)洗滌抽濾,真空干燥研磨可得N-CTS粉末。
1.2.2N-烷基化殼聚糖/白芨多糖復(fù)合材料(N-CTS/Bsp)制備 以質(zhì)量濃度3%的醋酸溶液為溶劑,配制一定濃度N-CTS醋酸溶液,靜置除泡備用。同樣地,配制一定濃度Bsp醋酸溶液,過濾以除去不溶性雜質(zhì)。配制1 mg/mL三聚磷酸鈉(TPP)溶液作為交聯(lián)劑備用。將N-烷基化殼聚糖溶液與白芨多糖溶液共混,并持續(xù)攪拌2 h。調(diào)節(jié)共混液pH=5,330 r/min轉(zhuǎn)速下,將TPP溶液逐滴加入到共混液,滴加完成后,保持該轉(zhuǎn)速一段時間,之后靜置沉淀。將絮狀沉淀離心,除去上層清液,沉淀層冷凍干燥即可得到N-CTS/Bsp。
1.3.1 紅外光譜分析 采用KBr壓片法,將N-CTS、CTS粉末與溴化鉀粉末混合研磨壓片,使用紅外分光光度計進(jìn)行掃描,將二者紅外光譜圖進(jìn)行對比分析。
1.3.2 元素分析 取N-CTS、CTS粉末,使用掃描電鏡所附帶的X射線能譜元素分析功能對其進(jìn)行元素分析。分別測量出N-CTS以及CTS中碳、氮兩種元素的分布以及元素百分比,進(jìn)而計算出N-CTS的取代度。
其中,C/N為測量所得碳氮比,α為殼聚糖的脫乙酰度,SD為N-烷基化殼聚糖的取代度。
1.4.1 紫外光譜測定 取Bsp原料以及所制備的復(fù)合凍干粉分散溶于3%乙酸水溶液,形成2 mg/mL的Bsp醋酸溶液以及復(fù)合凍干粉醋酸溶液,使用紫外分光光度計研究其紫外吸收情況。
1.4.2 掃描電鏡測定 取所制備的復(fù)合凍干粉,首先放入50 ℃恒溫干燥箱進(jìn)行干燥處理,噴金后使用掃描電鏡對復(fù)合凍干粉的形貌進(jìn)行觀察。
1.4.3 凍干粉粒徑測定 取所制備的復(fù)合凍干粉,分散于無水乙醇中,超聲一段時間后靜置,取上清液用納米粒度分析儀對所制備復(fù)合凍干粉粒徑分布進(jìn)行測試分析。
1.5.1 吸水性測定 稱取一定質(zhì)量所制備的凍干粉,于70 ℃烘箱中干燥至恒重,稱重記為W1。將凍干粉置于生理鹽水中,待凍干粉吸水達(dá)到平衡,取出凍干粉,將吸水后的凍干粉置于一定坡度玻璃板瀝水,稱取瀝水后凍干粉的重量,記為W2,則凍干粉吸水性(%)可用以下公式計算:
1.5.2 降解性測定 用失重法測定凍干粉的降解性。配制磷酸鹽緩沖液(PBS),稱取溶菌酶,溶解到PBS溶液中形成降解液(溶菌酶4 mg/mL)。稱取復(fù)合凍干粉干燥至恒重,稱重記為M1。取西林瓶編號并稱重記為M2,將凍干粉置于盛有一定體積降解液的西林瓶中,緩慢搖動,使得凍干粉與降解液充分接觸。將西林瓶(含降解液及凍干粉)置于37 ℃恒溫培養(yǎng)箱降解,及時更新西林瓶內(nèi)的降解液。用去離子水重復(fù)洗滌幾次,烘干稱重記為M3。凍干粉的失重率(%)可用以下公式進(jìn)行計算:
1.5.3 抑菌性測定 采用擴(kuò)散法測定復(fù)合材料的抑菌性。配制復(fù)合材料原液,將滅菌后的紙片放入復(fù)合材料液,輕微振蕩,使紙片完全沒入材料液內(nèi),一段時間后將紙片取出,于超凈工作臺中風(fēng)干待用。
選取大腸桿菌作為革蘭氏陽性菌代表、金黃色葡萄球菌作為革蘭氏陰性菌代表,配制106CFU/mL的菌懸液,用移液槍轉(zhuǎn)移200 μL菌懸液到固體培養(yǎng)基,涂布均勻,將負(fù)載有復(fù)合材料的紙片貼于培養(yǎng)基表面,將培養(yǎng)基置于30 ℃恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng),一段時間后觀察材料周圍抑菌圈出現(xiàn)情況,對復(fù)合止血材料的抑菌性進(jìn)行評價。
圖1 殼聚糖和N-烷基化殼聚糖紅外光譜
圖2為原料CTS以及烷基化產(chǎn)物N-CTS分子中C、N元素的分布,圖3為每種樣品中C、N元素的占比情況。
圖2 殼聚糖和N-烷基化殼聚糖C、N元素分布
圖3 殼聚糖和N-烷基化殼聚糖C、N元素分析
表1列出了原料CTS以及N-CTS中碳、氮原子百分比,由元素分析,測定了N-烷基化殼聚糖的取代度,同時也進(jìn)一步證實了烷基醛與殼聚糖成功接枝。
表1 殼聚糖和N-烷基化殼聚糖參數(shù)
由圖4可知,白芨多糖原料醋酸溶液(a)在 259 nm 處取得最大吸光度,在233 nm處取得第二個吸收峰;樣品c(白芨多糖與N-烷基化殼聚糖投料質(zhì)量比分別為1∶4,b1w4,下同)與樣品b(b3w2)同樣在259 nm處取得最大吸光度,其中樣品b在 232 nm 處取得第二個吸收峰,樣品c在231 nm處取得第二個吸收峰,說明所制備的復(fù)合凍干粉成功負(fù)載了白芨多糖。此外,樣品中白芨多糖的負(fù)載量隨投料比增大而增大。
圖4 白芨多糖、凍干粉紫外光譜
圖5與圖6分別為復(fù)合凍干粉b1w4與b4w1的掃描電鏡的圖像。圖5中,A與B為b1w4凍干粉放大30 000倍后的形貌,可看出該凍干粉呈現(xiàn)出多孔網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu),具有較為豐富的孔道,這為其吸附血液提供了足量的場合及較大表面積;C與D為凍干粉放大10 000倍后的形貌,可以看出,凍干粉表面凸凹不平,這為其與血液中血小板以及血漿蛋白的相互作用提供便利。圖6中,從A到D分別為b4w1凍干粉從放大30 000倍到2 000倍后的形貌。可明顯看出,該凍干粉表面具有大量的突起,分布均勻,且該突起所形成的網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)較為豐富,這些突起可能是與N-烷基化殼聚糖復(fù)合后的大量白芨所形成。這些突起使得復(fù)合凍干粉在與血液接觸后,白芨多糖迅速溶解并參與到凝血過程中,從而加速凝血實現(xiàn)快速凝血成為了可能。此外,大量的突起與孔道結(jié)構(gòu),也有助于凍干粉可以更好地吸附紅細(xì)胞、血小板并與纖維蛋白作用,加速止血。
圖5 b1w4凍干粉掃描電鏡
圖6 b4w1凍干粉掃描電鏡
由圖7可知,兩種原料比例復(fù)合凍干粉的粒徑分布均較為集中,其中b1w4平均粒徑為14.79 μm,b4w1平均粒徑為10.18 μm。b1w4平均粒徑稍大于b4w1,即隨著凍干粉中N-烷基化殼聚糖占比增加,凍干粉粒徑隨之增大。這可能是由于在凍干粉中,N-烷基化殼聚糖比例越高,其與交聯(lián)劑交聯(lián)所形成的沉淀體積越大,沉淀負(fù)載的白芨多糖隨之增加,造成凍干粉粒徑增加。同時可得出,所制備凍干粉粒徑與紅細(xì)胞相近。
圖7 凍干粉粒徑分析
良好的吸水性,可一定程度上反映出復(fù)合材料的血液吸附能力。由圖8可知,隨著白芨多糖添加比例增加,復(fù)合凍干粉的吸水率先升高后降低,在w3b2時達(dá)到最大值340.2%。這可能是由于當(dāng)N-CTS占投料比例最高(w4b1)時,所形成沉淀所含N-CTS比例最高,N-CTS與交聯(lián)劑所形成的網(wǎng)絡(luò)多孔結(jié)構(gòu)具有一定強(qiáng)度,且占沉淀比重較大,凍干粉吸水溶脹受到一定限制,吸水率相對較高;當(dāng)N-CTS與Bsp的比例為3∶2時,沉淀中N-CTS占比適中,強(qiáng)度較w4b1稍低,該沉淀溶脹性能較高,所含Bsp比例適度,故此時沉淀吸水率最高;在w2b3及w1b4時,沉淀中N-CTS占比較低,沉淀結(jié)構(gòu)較為松散,Bsp雖有一定吸水能力,但此時所負(fù)載的Bsp量并未隨著其投料量的增加而明顯增加,所形成的沉淀未能吸附更多的液體,故此時沉淀的吸水性較低。
圖8 凍干粉吸水率隨原料比例變化
降解性對于生物材料至關(guān)重要。復(fù)合材料降解過快時,可能造成二次出血等癥狀;復(fù)合材料降解過慢則會影響創(chuàng)面的正常愈合。良好的復(fù)合材料應(yīng)具備適宜的降解速率。由圖9可知,各個樣品在第一周降解較為迅速,之后降解速度略微降低,但仍降解較快。其中凍干粉w1b4,即凍干粉中Bsp含量較高時,該凍干粉降解速率最高,四周可降解75%左右,與之相比,凍干粉 w4b1降解稍慢,4周降解近60%。凍干粉在第1周與其之后降解速率的差異,可能是凍干粉內(nèi)部Bsp易溶解且易降解引起。凍干粉內(nèi)的白芨多糖具有良好的水溶性,在降解第1周時,大量Bsp溶解進(jìn)入降解液,被快速降解,加之部分N-CTS同時被降解,故第1周降解速率較之后快。在第2周及之后,大部分Bsp已被降解,雖然N-CTS持續(xù)被降解,但其降解速率低于Bsp,故降解速率較之前低。
圖9 凍干粉降解隨原料比例變化
圖10中,A為復(fù)合材料對大腸桿菌生長的抑制情況,B為復(fù)合材料對金黃色葡萄球菌生長的抑制情況。圖中各紙片負(fù)載復(fù)合材料質(zhì)量均為0.1 mg,詳細(xì)情況見表2。
圖10 凍干粉抑菌性能
觀察兩種細(xì)菌生長情況,由圖10A可知,負(fù)載材料的各紙片邊緣處均出現(xiàn)環(huán)狀抑菌圈,且抑菌環(huán)的寬度(抑菌圈半徑與紙片半徑之差)從1~5逐漸減小,6處抑菌環(huán)寬度與3處大致相同;與A類似,B中抑菌環(huán)同樣從1~5依次減小,6處抑菌環(huán)寬度與3處大致相同。使用游標(biāo)卡尺量取各個抑菌環(huán)寬度,結(jié)果見表2。
表2 凍干粉抑菌環(huán)寬度
由表2可知,整體來看,復(fù)合材料對大腸桿菌的抑制作用強(qiáng)于對金黃色葡萄球菌,且在較高濃度下,復(fù)合材料對兩種細(xì)菌的抑制作用相差不大,較低濃度時,差異明細(xì)。此外,復(fù)合材料的抑菌性隨著N-烷基化殼聚糖的含量增加而增強(qiáng)。與大腸桿菌相比,復(fù)合材料對金黃色葡萄球菌的抑菌性受N-烷基化殼聚糖的負(fù)載量影響較大。復(fù)合材料具有與殼聚糖相當(dāng)?shù)囊志?,可為接觸部位持續(xù)提供無菌環(huán)境,可有效避免創(chuàng)面的感染,有利于傷口愈合。
以N-CTS、Bsp為原料,通過離子交聯(lián)法制備了不同Bsp含量的N-CTS/Bsp復(fù)合凍干粉,理化表征及性能表明,Bsp負(fù)載量與投料量呈正相關(guān),凍干粉呈三維多孔網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu),吸水性較強(qiáng),從側(cè)面顯示出其較強(qiáng)的血液吸收能力,降解速率隨著Bsp比例的增加而加快,抑菌性良好,且抑菌性隨著N-CTS比例增加而增強(qiáng)。綜合考慮各指標(biāo),確定凍干粉最佳制備條件為:N-烷基化殼聚糖與白芨多糖比例為4∶1,原料總濃度為2 g/L,N-CTS與交聯(lián)劑的正負(fù)電荷比為20∶1。在此條件下制備的復(fù)合凍干粉具有較高產(chǎn)率89%,良好的吸水性能327%,適宜的降解速率,4周降解59.4%,粒徑分布均勻,平均粒徑 14.79 μm,與血小板大小相近,且N-烷基化殼聚糖占比較高,具備良好的抑菌性,具備作為止血材料使用的巨大潛力。