漆愛紅
【摘要】 目的 探討溶血、脂肪血及保存條件對乙型肝炎病毒脫氧核糖核酸(HBV DNA)、人類免疫缺陷病毒核糖核酸(HIV RNA)核酸檢測的影響。方法 回顧性分析30份行HBV DNA、HIV RNA核酸檢測標本的臨床資料, 應用羅氏MPX V2.0試劑, 分別于4℃、25℃、37℃及-30℃的條件下測定4 h、24 h、48 h、72 h、1周、4周HBV DNA、HIV RNA的Ct值, 并在不同溶血及脂肪血中測定HBV DNA、HIV RNA的Ct值。結果 -30℃、4℃、25℃溫度下保存HBV DNA、HIV RNA的Ct值比較, 差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。在37℃條件下, HBV DNA在72 h及1周的Ct值高于其他時間及溫度下的Ct值, 差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。高濃度TG并不影響核酸檢測(NAT), 差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。而Hb濃度在97 g/L時出現(xiàn)NAT檢測抑制, 其他濃度無明顯影響, 差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。結論 高血脂標本<7.93 mmol/L可以接收, 溶血標本>34 g/L時需重新留取樣本, 血液標本檢測時間不宜超過72 h, 保存溫度以-30℃最佳。
【關鍵詞】 HBV DNA;HIV RNA;溶血;脂肪血;Ct值
DOI:10.14163/j.cnki.11-5547/r.2019.33.111
目前臨床對血液制品的檢測均采用核酸檢測技術(NAT), 能有效檢出因病毒變異、隱匿性感染等因素, 導致的污染血液。但在實際工作中, 血液標本容易受到保存溫度、溶血、脂肪血等因素影響, 進而導致核酸檢測結果出現(xiàn)誤差[1]。羅氏MPX V2.0試劑說明書中也提出了相應的指導意見, 但各地區(qū)的實驗室對HBV DNA、HIV RNA檢測的影響因素不同。本研究進一步分析了溶血、脂肪血及保存條件對HBV DNA、HIV RNA核酸檢測的影響, 現(xiàn)報告如下。
1 材料與方法
1. 1 材料來源 回顧性分析2018年1~12月在本中心行HBV DNA、HIV RNA核酸檢測的30例標本的臨床資料。所有血液標本經血清學檢測HBV DNA、HIV RNA均為陰性, 同時收集HBV DNA、HIV RNA 檢測陽性的血漿, 經病毒濃度定量檢測后, 加入血清學及NAT 檢測均為陰性的透亮血漿, 制成12~30倍的核酸試劑檢測下限濃度的HBV DNA、HIV RNA標本。
1. 2 方法 使用羅氏Z480熒光定量PCR儀核酸檢測系統(tǒng)。分別將標本置于-30℃、4℃、25℃、37℃的環(huán)境中放置4 h、24 h、48 h、72 h、1周、4周, 采用熒光PCR法檢測。收集血液標本中的紅細胞懸液、嚴重乳糜血漿, 將紅細胞懸液制成全溶血樣本, 將兩個樣本離心制成溶血樣本及脂肪血樣本, 然后將溶血樣本、脂肪血樣本、血清學及NAT檢測均為陰性的血漿標本、12~30倍核酸試劑檢測下限濃度HBV DNA、HIV RNA標本, 保持這兩個樣本的HBV DNA、HIV RNA最終濃度約為2~5倍核酸試劑檢測下限濃度[2];采用6混樣模式, 在全自動STAR加樣儀中混勻制成血紅蛋白(Hb), 分為濃度97、34、17、8、5及3 g/L的溶血標準樣本, 以及TG濃度在7.93、3.80、2.63、1.83及1.49 mmol/L的脂肪血標準樣本, 分別行Hb濃度、TG濃度及NAT檢測。
1. 3 觀察指標 比較不同保存條件下HIV RNA、HBV DNA的Ct值;比較不同Hb、TG濃度下HIV RNA、HBV DNA的Ct值。
1. 4 統(tǒng)計學方法 采用SPSS19.0統(tǒng)計學軟件處理數(shù)據。計量資料以均數(shù)±標準差( x-±s)表示, 采用t檢驗。P<0.05表示差異有統(tǒng)計學意義。
2 結果
2. 1 不同保存條件下HIV RNA、HBV DNA的Ct值比較
-30℃、4℃、25℃溫度下保存HBV DNA、HIV RNA的Ct值比較, 差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。在37℃條件下, HBV DNA在72 h及1周的Ct值高于其他時間及溫度下的Ct值, 差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。見表1。
2. 2 不同Hb、TG濃度下HIV RNA、HBV DNA的Ct值比較 高濃度TG并不影響NAT檢測, 差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。而Hb濃度在97 g/L時出現(xiàn)NAT檢測抑制, 其他濃度無明顯影響, 差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。見表2。
3 討論
Hb對核酸檢測的影響主要是通過卟啉環(huán)與Taq酶的不可逆結合, 抑制Taq酶活性[3-6]。脂肪血對核酸檢測的影響主要通過乳糜微粒屏蔽和吸收熒光, 產生熒光淬滅作用, 降低了熒光信號強度, 減少擴增效率[7-10]。本研究結果顯示, -30℃、4℃、25℃溫度下保存HBV DNA、HIV RNA的Ct值比較, 差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。在37℃條件下, HBV DNA在72 h及1周的Ct值高于其他時間及溫度下的Ct值, 差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。說明HBV DNA在常溫下穩(wěn)定性較高, 在37℃中可能有核酸降解的趨勢。HIV RNA在各個不同溫度下均很穩(wěn)定。另外, 本研究中, 高濃度TG并不影響NAT檢測, 差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。而Hb濃度在97 g/L時出現(xiàn)NAT檢測抑制, 其他濃度無明顯影響, 差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。
綜上所述, 高血脂標本<7.93 mmol/L可以接收, 溶血標本>34 g/L時需重新留取樣本, 血液標本檢測時間不宜超過72 h, 保存溫度以-30℃最佳。
參考文獻
[1] 莊養(yǎng)林, 熊麗紅, 張鵬飛, 等. 溶血、脂肪血及保存條件對HBV DNA、HIV RNA核酸檢測的影響. 天津醫(yī)藥, 2017(10):
23-26.
[2] 陳雪, 王歡, 李萌, 等. 脂血、溶血標本對血液核酸檢測的影響評價. 云南醫(yī)藥, 2017(4):397-398.
[3] 劉小敏, 唐恒鋒, 李文郎, 等. 高脂血、溶血標本對熒光定量聚合酶鏈反應測定低水平HBV-DNA的影響. 檢驗醫(yī)學與臨床,
2015(21):3217-3218.
[4] 莊養(yǎng)林, 熊麗紅, 張鵬飛, 等. 標本因素及保存條件對HCVRNA
檢測的影響. 實驗與檢驗醫(yī)學, 2017, 35(2):228-230.
[5] 王德文, 師玲玲, 劉赴平, 等. 現(xiàn)行常規(guī)采血流程對HIV RNA篩查的影響評估. 中國熱帶醫(yī)學, 2007, 7(11):2100-2101.
[6] 康淑霞. 人為標本溶血及高脂肪血對重氮法檢測膽紅素結果的影響//中華醫(yī)學會第八次全國檢驗醫(yī)學學術會議暨中華醫(yī)學會檢驗分會成立30周年慶典大會資料匯編. 2009.
[7] 莊養(yǎng)林. 溶血、脂肪血及保存條件對血液病毒核酸篩查影響的研究. 南昌大學, 2017.
[8] 張永昌, 歐山海, 謝金鎮(zhèn), 等. 核酸檢測技術在血液檢測中的應用. 臨床輸血與檢驗, 2014, 16(4):399-400.
[9] 崔莉, 梁亦潔, 張金萍, 等. 羅氏核酸檢測系統(tǒng)性能驗證. 兵團醫(yī)學, 2017(4):38-43.
[10] 胡越, 高犁, 蔣瑞馨. 羅氏核酸檢測試劑在無錫血站的應用分析. 實驗與檢驗醫(yī)學, 2018, 36(1):127-128.
[收稿日期:2019-03-27]