李東明,劉恒,朱蘭玉,方玲,吳華裕,潘尚領,林有坤,舒?zhèn)?/p>
(1廣西醫(yī)科大學基礎醫(yī)學院,南寧530021;2廣西醫(yī)科大學第一附屬醫(yī)院)
LMNA基因主要編碼LaminA/C蛋白與LaminB蛋白共同構(gòu)成細胞核膜內(nèi)層的網(wǎng)狀核纖層結(jié)構(gòu),維持細胞核結(jié)構(gòu)穩(wěn)定,參與對外界機械力的轉(zhuǎn)導,固定染色質(zhì)和基因轉(zhuǎn)錄調(diào)控作用[1~3]。LaminA/C還存在細胞核質(zhì)中,對細胞增殖分化、染色質(zhì)重組和DNA復制具有調(diào)控功能。LMNA第527位氨基酸(LMNAR527)位于蛋白結(jié)構(gòu)域的表面,參與鹽橋的形成,精氨酸是堿性氨基酸,半胱氨酸是中性氨基酸。因此,R527C的取代會破壞蛋白質(zhì)的表面結(jié)構(gòu),對核纖層結(jié)構(gòu)產(chǎn)生影響[4]。LMNAR527是引起核纖層蛋白病的熱點突變區(qū)域。LMNA基因突變導致十幾種退行性疾病的發(fā)生,包括Emery-Dreyfus肌營養(yǎng)不良、外周神經(jīng)病變、脂肪營養(yǎng)不良和兒童早老癥等[5]。研究[6]發(fā)現(xiàn),LMNAR527C基因突變會導致兒童早老癥,但在LMNAR527C基因突變導致的早老癥患者細胞中,并未發(fā)現(xiàn)有prelamin A的堆積和早老蛋白progerin的積累[7]。目前,LMNAR527C基因突變在衰老中的作用仍不清楚, LMNA基因突變與疾病的發(fā)生發(fā)展呈現(xiàn)復雜和多樣性,LMNA基因型與疾病表型的關系并不明確[8]。2016年9月~2019年3月,本研究通過構(gòu)建LMNAR527C突變基因小鼠模型,觀察了LMNAR527C基因突變純合型小鼠的表型特征及細胞衰老標志物的變化,以探討LMNAR527C基因突變對衰老的影響。
1.1 動物、細胞、試劑、儀器 品系為 C57BL/6的LMNA雜合突變小鼠來源于上海南方模式生物科技有限公司。293T細胞,LMNA 基因敲除的293T細胞由本實驗室保存;pEGFP-N1質(zhì)粒購自北京全式金公司;LaminA抗體購于英國Abcam公司;γH2Ax抗體購于英國Abcam;DMEM培養(yǎng)基(Gibco公司);胎牛血清(FBS,Gibco);青霉素-鏈霉素(Hyclone公司);Lipofectamine2000(Invitrogen公司);PDVF膜購于Millipore(Kenilworth公司);EMD Millipore LμminataTMWestern HRP 化學反應發(fā)光液(WBLUR0500公司);DAPI(Beyotime公司);1%蛋白酶抑制劑(Thermoscientific公司);RIPA(Thermoscientific公司);細胞衰老相關β-半乳糖苷酶染色試劑盒(Beyotime公司);Adobe Photoshop軟件(Adobe公司),Image J 軟件(MD公司)
1.2 LMNAR527C基因突變純合型小鼠的獲得及表型觀察 LMNA雜合型小鼠南方模式動物中心構(gòu)建完成,構(gòu)建同源重組載體,利用胚胎細胞打靶技術(shù)通過顯微注射法轉(zhuǎn)入小鼠胚胎細胞中,將注射后的小鼠囊胚移植到假孕母鼠子宮內(nèi),陽性F0通過與野生型小鼠交配獲得LMNA基因雜合子突變小鼠。LMNA雜合型小鼠引進后在SPF動物房飼養(yǎng)和雜交繁殖,公母鼠合籠后生出的小鼠F1代剪尾提DNA進行PCR測序,雌雄鼠合籠后出生的F1 代小鼠有三種基因型:野生型(基因型LMNAWT/WT),雜合型(基因型LMNAWT/R527C),純合型(基因型LMNAR527C/R527C),將F1 代的純合型小鼠繼續(xù)公母鼠合籠,生出的F2 代全為純合型小鼠。選取LMNA野生型、LMNA雜合型、LMNAR527C型三種基因型小鼠各20只,雌雄各半,測量第4周到12周小鼠的體質(zhì)量和體長。小鼠雙耳連線的中點到尾體交接處代表體長,將放在籠子上面,當小鼠在抓緊籠子時,拉住它的尾巴使其自然伸直,然后進行測量。隨機選擇9籠小鼠,每籠一雌一雄,對其產(chǎn)的第二胎幼仔進行統(tǒng)計。同時選取三種基因型單一性別小鼠各20只,記錄生存周期。
1.3 LMNAR527C基因純合突變小鼠尾組織及腹部皮膚組織中γH2Ax蛋白檢測 ①采用Western blotting法。剪取純合型、雜合型、野生型小鼠尾巴,根據(jù)RIPA試劑說明書操作提取尾巴組織總蛋白,上樣25 μg總蛋白的裂解液于10% 的聚丙烯酰胺凝膠中進行電泳,300 mA恒定電流轉(zhuǎn)膜90 min使蛋白轉(zhuǎn)移至PDVF膜上。5% 脫脂牛奶覆蓋膜,搖床輕柔晃動1h封閉膜,加入適量抗體4 ℃搖床過夜,然后用含1% 吐溫20(Tween 20)的PBS清洗膜,加入辣根過氧化物酶-共軛二抗覆蓋住膜,搖床輕柔晃動1 h。EMD Millipore LμminataTMWestern HRP 化學反應發(fā)光液進行顯色反應。使用Adobe Photoshop軟件對蛋白條帶掃描,計算各蛋白條帶的灰度值,以目的蛋白與內(nèi)參β-actin蛋白條帶灰度值比值表示目的蛋白表達量。② 采用免疫組化法。取野生型、純合型小鼠腹部皮膚組織,皮膚標本冷凍切片,切片水化,然后放于微波爐煮沸后,放入0.01 mol/L pH 6.0的枸櫞酸鈉緩沖液中水浴20 min,進行抗原修復。根據(jù)SP試劑盒(9001,ZSGB-Bio)操作步驟進行試驗,最后二氨基聯(lián)苯胺底物試劑盒顯色,蘇木精復染,顯微鏡下觀察拍照。采用Image J 軟件分析統(tǒng)計圖片總細胞和陽性細胞數(shù),結(jié)果以陽性細胞占總細胞百分比表示γH2Ax蛋白的表達。
1.4 LMNA敲除的293T 細胞LMNAR527C突變基因轉(zhuǎn)染及其γH2Ax蛋白、LaminA蛋白檢測 根據(jù)TRIzol試劑說明書操作提取野生型和LMNA基因突變型小鼠尾組織的總RNA ,使用oligo(dT)和M-MLV反轉(zhuǎn)錄酶反轉(zhuǎn)錄為cDNA。根據(jù)PrimeSTAR?Max DNA Polymerase試劑說明書操作,使用LMNA基因特異引物(正向引物:5′GGTGAATTCAAATGGAGACCCCGTCACACG3′,反向引物:5′CTTGGTACCAACATGATACTGCAGTTCTGGG3′),PCR擴增小鼠LMNA和LMNAR527C突變基因。利用分子克隆技術(shù)獲得小鼠pEGFP-N1-LMNA和pEGFP-N1-LMNA R527C重組質(zhì)粒,然后轉(zhuǎn)染293T LMNA敲除細胞,轉(zhuǎn)染2 μg pEGFP-N1-LMNA R527C質(zhì)粒的細胞作為實驗組,轉(zhuǎn)染2 μg pEGFP-N1-LMNA質(zhì)粒的細胞作為對照組,轉(zhuǎn)染2 μg pEGFP-N1空質(zhì)粒的細胞作為空白組;采用Western blotting法檢測到實驗組及對照組中LaminA表達,提示質(zhì)粒轉(zhuǎn)染成功。各組細胞處理48 h后,收集細胞采用Western blotting法檢測γH2Ax蛋白。將293T細胞作為正常組,選取實驗組細胞采用細胞免疫熒光法檢測LaminA蛋白,熒光倒置顯微鏡觀察拍照,分析與正常組相比,實驗組LaminA蛋白的分布和定位。
1.5 LMNAR527C基因純合突變小鼠肺成纖維細胞β-半乳糖苷酶活性檢測 無菌操作取2~3周的純合型及野生型小鼠,處死后取肺葉置于PBS液中,PBS清洗2遍,剪碎肺葉組織,提取肺成纖維細胞。在六孔板中接種2×105/孔的小鼠肺成纖維細胞,根據(jù)細胞衰老相關β-半乳糖苷酶染色試劑盒(碧云天)說明書操作對細胞進行染色。顯微鏡下拍照,采用Image J 軟件分析,結(jié)果以β-半乳糖苷酶活性染色陽性細胞占總細胞百分比表示。
2.1 不同LMNA基因型小鼠表型比較 三種基因型小鼠體質(zhì)量、體長比較,P均>0.05,詳見表1、2。野生型小鼠籠號1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12繁殖幼仔個數(shù)分別為6、5、7、6、5、7、5、4、6、6、5、7個,雜合型小鼠籠號1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12繁殖幼仔個數(shù)分別為5、6、7、5、7、4、5、8、5、5、6、7個,純合型小鼠籠號1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12繁殖幼仔個數(shù)分別為6、4、5、6、7、5、6、7、5、6、4、5個;三種基因型小鼠繁殖幼仔個數(shù)比較,P>0.05。三種基因型小鼠生存率比較,P>0.05(見圖1)。
表1 不同周齡、不同LMNA基因型小鼠體質(zhì)量
表2 不同周齡、不同LMNA基因型小鼠體長
圖1 雜合型、純合型和野生型小鼠生存率比較
2.2 LMNAR527C基因突變小鼠尾組織、皮膚組織及細胞中衰老相關蛋白的表達 ①不同基因型小鼠尾組織、腹部皮膚組織中γH2Ax蛋白水平比較: 設野生型小鼠尾組織γH2Ax蛋白相對表達量為1,純合突變型、雜合突變型小鼠尾組織γH2Ax蛋白相對表達量分別為2.40±0.043 2、1.72±0.035 3 ,純合突變型、雜合突變型小鼠高于野生型(P均<0.05);野生型小鼠γH2Ax陽性細胞百分比為17%±1.68%,純合突變型小鼠γH2Ax陽性細胞百分比為38%±2.25% ,二者比較,P<0. 05。②各組LMNA敲除的293T 細胞中γH2Ax蛋白水平及 LaminA蛋白分布、定位:以空白組細胞中γH2Ax蛋白相對表達量為1,實驗組、對照組細胞γH2Ax蛋白相對表達量分別為2.72±0.233、2.9±0.035,對照組及實驗組高于空白組,P均<0. 05。實驗組細胞Lamin A蛋白發(fā)生聚集不連續(xù),容易在核膜聚集,且部分蛋白從核纖層轉(zhuǎn)移至核內(nèi)(圖2)。③純合型、野生型小鼠肺成纖維細胞中β-半乳糖苷酶活性:純合型、野生型小鼠肺成纖維細胞中衰老相關β-半乳糖苷酶活性染色細胞陽性率分別為11.0%±1.96%、2.5%±0.78%,二者比較,P<0.05。
圖2 LaminA蛋白的分布及定位(400×)
目前已經(jīng)建立了較多早老癥相關的小鼠模型,以研究LMNA基因突變導致早老癥產(chǎn)生的致病機制[9]。但LMNAR527C突變的小鼠模型未見報道,本研究通過購買LMNAR527C雜合型小鼠進行雜交的方式獲得LMNAR527C純合型小鼠。實驗中發(fā)現(xiàn),在動物整體水平上,與LMNA野生型小鼠相比,LMNAR527C突變基因型小鼠在體型,體質(zhì)量,繁殖能力和生存期上差異無統(tǒng)計學意義,說明LMNAR527C純合型小鼠沒有出現(xiàn)兒童早老病的相關臨床表型,這可能是因為不同物種間存在差別,LMNAR527C突變基因在衰老中的作用還有待進一步研究。
Sullivan 和Kubben相繼在LMNA敲除的小鼠中發(fā)現(xiàn),小鼠出生后出現(xiàn)嚴重的生長遲緩、肌營養(yǎng)不良和核異常,Lamin A 蛋白缺失使小鼠的組織分化和器官生成能力下降,出生后的小鼠存活期僅為3周[10]。此外,LMNA基因敲除小鼠的PPAPγ和CEBP/α蛋白水平升高,調(diào)控其下游基因Wnt-10b、β-catenin蛋白水平下降,從而影響脂肪、肌肉和骨骼的組織分化[11]。研究報道,LMNAM371K突變基因?qū)е滦∈蟪錾屎蛪勖鼫p少,小鼠出現(xiàn)嗜酸性粒細胞增多、心肌纖維碎裂、核固縮和水腫的疾病表型。Bergo等[12]在小鼠敲除了參與prelaminA蛋白水解過程的Zmptse24金屬蛋白酶,Zmptse24敲除的小鼠具有類似兒童早老癥的臨床表型,發(fā)育遲緩,因心功能障礙、脫發(fā)和核異常而過早死亡。盡管這些小鼠建模的方式不同,但可發(fā)現(xiàn)LMNA基因突變造成的疾病機制普遍存在兩個特點,模型小鼠的細胞核結(jié)構(gòu)不完整,突變的LMNA基因造成基因表達異常[13]。根據(jù)文獻[14]報道,細胞核膜的完整跟基因組的穩(wěn)定性相關。LMNAR527C突變基因?qū)е潞死w層組裝發(fā)生異常,失去修復細胞核畸形能力。本研究結(jié)果顯示,LMNAR527C基因突變編碼的LaminA蛋白容易在核膜形成點狀聚集,部分蛋白定位從核纖層轉(zhuǎn)移至核內(nèi)。LaminA蛋白分布的改變,可能影響了細胞核膜的結(jié)構(gòu),導致細胞基因轉(zhuǎn)錄調(diào)控異常,基因組不穩(wěn)定[15]。
雖然本研究中的LMNAR527C突變基因小鼠未出現(xiàn)相關疾病臨床表型,但我們在對小鼠尾組織和皮膚組織進行γH2Ax蛋白的檢測結(jié)果顯示,LMNAR527C突變基因小鼠皮膚組織γH2Ax蛋白水平增加;同時,在原代培養(yǎng)小鼠的肺成纖維細胞衰老相關β-半乳糖苷酶染色實驗發(fā)現(xiàn),LMNAR527C突變基因小鼠成纖維衰老細胞數(shù)量百分比增加,實驗結(jié)果證明LMNAR527C突變基因?qū)е履P托∈蠼M織和原代培養(yǎng)的肺成纖維細胞DNA損傷增加,基因組不穩(wěn)定,衰老加速。細胞衰老與個體整體衰老不一致,我們推測,可能是由于體外細胞實驗與小鼠整體實驗存在環(huán)境差異,小鼠出現(xiàn)衰老表型可能需要其他條件,例如紫外照射、免疫系統(tǒng)缺陷的刺激,也有可能小鼠存在另外相關的信號通路修復了DNA損傷,或者LMNAR527C突變基因?qū)е戮幋a的Lamin A蛋白結(jié)構(gòu)功能改變影響其他信號通路的關鍵蛋白從而改善了LMNAR527C突變基因的不良影響。LMNAR527C突變基因?qū)λダ系挠绊戇€有待進一步研究。
本研究通過分子克隆技術(shù),把小鼠LMNAR527C突變基因重組到質(zhì)粒pEGFP-N1中,通過Lipo2000轉(zhuǎn)染重組質(zhì)粒到239T LMNA敲除細胞,結(jié)果顯示轉(zhuǎn)染LMNAR527C基因突變的細胞γH2Ax蛋白水平增加,但與轉(zhuǎn)染LMNA正?;虻募毎啾炔⑽从忻黠@差異,γH2Ax蛋白水平增加可能是由于轉(zhuǎn)染外源基因造成,并非基因突變導致。免疫熒光實驗結(jié)果表明,轉(zhuǎn)染野生型LMNA能修復LMNA敲除導致的細胞核畸形[16]。在典型兒童早老癥臨床樣本研究中發(fā)現(xiàn),患者成纖維細胞核形態(tài)異常、γH2Ax蛋白水平增加、異染色質(zhì)蛋白水平減少以及組蛋白表觀遺傳修飾發(fā)生改變[17]。LMNAR527C突變基因在LMNA基因敲除細胞中表達的實驗結(jié)果說明,LMNAR527C突變基因?qū)е录毎暮私Y(jié)構(gòu)和功能異常與典型兒童早老癥相似。
綜上所述,LMNAR527C基因突變小鼠表型無明顯改變。LMNAR527C突變基因編碼的Lamin A蛋白在細胞內(nèi)聚集不連續(xù),定位從核膜到核內(nèi),導致細胞DNA損傷增加,衰老細胞增加,但可能存在其他原因清除了LMNAR527C基因突變造成的不良影響,因此LMNAR527C突變基因模型小鼠整體并未出現(xiàn)相關疾病臨床表型。LMNAR527C基因突變小鼠模型為人們了解Lamin A蛋白在不同物種間的生物學功能以及在組織發(fā)育過程中的作用提供了寶貴材料。