李玉梅 楊波 劉秦川
口腔鱗狀細(xì)胞癌(oral squamous cell carcinoma,OSCC)是世界范圍內(nèi)常見(jiàn)的人類(lèi)惡性腫瘤之一,并且近年來(lái)其發(fā)病率呈現(xiàn)上升趨勢(shì)。據(jù)統(tǒng)計(jì),每年因口腔鱗癌而死亡的人數(shù)超過(guò)400 000人,其中80%的死亡人口來(lái)自發(fā)展中國(guó)家[1]。隨著對(duì)口腔鱗癌研究的深入,目前的觀(guān)點(diǎn)認(rèn)為口腔鱗癌是由致癌物引發(fā)的一個(gè)多因素、多步驟的復(fù)雜生物學(xué)過(guò)程,其中癌癥相關(guān)基因的改變?cè)谶@一過(guò)程中具有重要作用。研究者普遍認(rèn)為癌癥相關(guān)的基因變化來(lái)自于遺傳信息的丟失、突變或過(guò)表達(dá)[2]。microRNAs(miRNA)是一類(lèi)長(zhǎng)度約為22nt的非編碼RNA,通常在轉(zhuǎn)錄后水平調(diào)控靶基因表達(dá)[3]。許多miRNA參與了重要的生物學(xué)過(guò)程,例如細(xì)胞分化以及上皮細(xì)胞向間充質(zhì)細(xì)胞轉(zhuǎn)化(epithelial to mesenchymal transition,EMT)等。目前的研究發(fā)現(xiàn)在許多腫瘤組織中,均發(fā)生了miRNA的含量改變[4]。但目前對(duì)于口腔鱗狀細(xì)胞癌與miRNA表達(dá)改變的報(bào)道較少,目前已經(jīng)發(fā)現(xiàn)了一些與口腔鱗癌的發(fā)生和發(fā)展存在一定聯(lián)系的miRNA,其中包括miR-34b,miR-100,miR-125b miR-137,miR-193a和miR-203等。與正??谇火つそM織相比,這些miRNA的表達(dá)含量在口腔鱗癌中發(fā)生特異性的改變[5]。此外,多項(xiàng)研究證明miR-126的含量在結(jié)腸癌、胃癌以及惡性血液腫瘤中發(fā)生了顯著改變[6-8]。但是miR-126是否參與了口腔鱗癌細(xì)胞的生物學(xué)功能過(guò)程,目前尚未有文獻(xiàn)報(bào)道。本研究檢測(cè)miR-126在口腔鱗癌以及正??谇火つそM織中的表達(dá)水平差異,并改變口腔鱗癌細(xì)胞中miR-126的表達(dá)水平來(lái)觀(guān)察其在增值、遷移方面的變化,進(jìn)而探究miR-126在口腔鱗癌中可能的作用并為臨床診療提供新的思路。
自2010-08~2017-06共收集于漢川市人民醫(yī)院口腔科確診的18例口腔鱗癌患者的鱗癌標(biāo)本及周邊非癌變口腔黏膜組織,所有收集標(biāo)本均經(jīng)病理檢查明確診斷及腫瘤細(xì)胞惡性程度判定。8例正??谇火つ?biāo)本來(lái)自正常成年志愿者。詳細(xì)記錄納入標(biāo)本提供者的年齡、性別、吸煙史等資料。本研究經(jīng)過(guò)倫理委員會(huì)批準(zhǔn),所有標(biāo)本提供者均簽署知情同意書(shū)。口腔鱗狀細(xì)胞癌細(xì)胞系(SCC-4,SCC-9和SCC-15)購(gòu)于上海中科院細(xì)胞庫(kù)。
DMEM/F12完全培養(yǎng)基、Trizol提取試劑盒、逆轉(zhuǎn)錄試劑盒、Lipofectatmine 3000、PIK3R1抗體(Thermo Fisher Scientific公司,美國(guó));MTT細(xì)胞活力檢測(cè)試劑(Sigma公司,美國(guó));Matrigel基質(zhì)膠(BD公司,美國(guó));miR-126 agomir、miR-126 antagomir及陰性對(duì)照(negative control)(上海吉瑪制藥技術(shù)公司,美國(guó));Western bolt相關(guān)試劑、RIPA蛋白裂解液(上海碧云天生物技術(shù)公司);雙熒光素酶報(bào)告基因檢測(cè)試劑盒(Promega公司,美國(guó))。
使用Trizol法提取標(biāo)本總RNA,并用Nano-Drop2000紫外分光光度計(jì)檢測(cè)RNA 濃度和純度(A260:A280)。將miRNA 逆轉(zhuǎn)錄成cDNA,合成的cDNA產(chǎn)物直接用于PCR或保存于-20℃待用。采用SYBR GreenⅠ法進(jìn)行miR-126的實(shí)時(shí)熒光定量檢測(cè)。反應(yīng)體系如下:miR-127逆轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物2μl,SYBR Green Mix 9μl,上下游引物各1μl,加入DEPC水將反應(yīng)總體系配至20μl。PCR反應(yīng)程序如下:預(yù)變性:94℃5 min,變性:94℃30 s,退火:58℃30 s,延伸:72℃30 s,設(shè)置30個(gè)反應(yīng)循環(huán)。采用2-ΔΔCt法分析實(shí)驗(yàn)結(jié)果。U6為miR-126內(nèi)參。miR-126引物根據(jù)基因組數(shù)據(jù)庫(kù)設(shè)計(jì),由上海吉瑪公司合成。
口腔鱗癌細(xì)胞系SCC-4細(xì)胞置于恒溫CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng),待匯合度達(dá)80%左右加入Lipofectamine試劑進(jìn)行轉(zhuǎn)染。將口腔鱗癌細(xì)胞分為3組,分別加入miR-126 agomir、miR-126 antagomir以及negative control。后將細(xì)胞置于5%CO2恒溫培養(yǎng)箱培育1~3 d以供檢測(cè)。
洗滌并收集SCC-4細(xì)胞,使用RIPA裂解液獲得蛋白,BCA法測(cè)定蛋白含量,后加入SDS-PAGE蛋白上樣緩沖液煮沸。配制10%SDS-聚丙烯酰胺凝膠,將蛋白樣品以20μl/孔上樣,設(shè)定70 V恒壓電泳,蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)印60 min,封閉1 h。后按照抗體說(shuō)明書(shū)稀釋一抗,加入PVDF膜4℃孵育過(guò)夜。次日TBST洗滌后加入二抗,室溫孵育1 h后顯色,獲得圖像使用Image J軟件分析。
分別將轉(zhuǎn)染miR-126 agomir、miR-126 antagomir以及negative control的SCC-4細(xì)胞消化為懸液后接種至96孔板,每種細(xì)胞每孔接種量為2×103個(gè),置于37℃5%CO2的恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)6 h,在每孔細(xì)胞中加入20μl MTT繼續(xù)培養(yǎng)4 h,將細(xì)胞培養(yǎng)液棄去,每孔加入DMSO 200μl,搖床混勻約10 min,用酶標(biāo)儀測(cè)定A570nm光吸收值繪制細(xì)胞生長(zhǎng)曲線(xiàn)。
收集不同轉(zhuǎn)染組的SCC-4細(xì)胞,加入DMEM基礎(chǔ)培養(yǎng)基,使用計(jì)數(shù)板將細(xì)胞懸液吸出滴入計(jì)數(shù)板,統(tǒng)計(jì)計(jì)數(shù)板中四大格細(xì)胞數(shù),調(diào)整細(xì)胞濃度,將1×103個(gè)細(xì)胞懸液加入transwell小室,并于24孔板下室加入500μl DMEM完全培養(yǎng)基;將24孔板置于恒溫培養(yǎng)箱中48 h,后取出小室移除培養(yǎng)基,將小室底膜進(jìn)行甲苯胺藍(lán)染色。
根據(jù)Promega雙熒光素酶報(bào)告基因檢測(cè)試劑盒說(shuō)明書(shū),將包含有與相應(yīng)miRNA-126互補(bǔ)結(jié)合的靶基因PIK3R1 3'-UTR序列片段和突變的3'-UTR序列片段克隆到pGL3-Luciferase基因下游的多克隆位點(diǎn)中。正常培養(yǎng)的Hela 493T細(xì)胞,以4×105個(gè)/ml接種于6孔培養(yǎng)板,每孔體積1 ml。轉(zhuǎn)染包含PIK3R1 3'-UTR或突變的PIK3R1 3'-UTR的熒光素酶質(zhì)粒,以及miRNA-126 agomir、miRNA-126 antagomir或negative control。轉(zhuǎn)染48 h后收集293T細(xì)胞,進(jìn)行雙熒光素酶活性檢測(cè)。
采用SPSS17.0進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,計(jì)量資料用±s表示,2組間比較采用t檢驗(yàn),多組間分析用單因素方差分析,當(dāng)P<0.05時(shí)表示差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
采用qRT-PCR檢測(cè)口腔鱗癌組織及正??谇火つそM織中miR-126的表達(dá)水平,結(jié)果顯示,miR-126在口腔鱗癌組織中表達(dá)降低,含量為正??谇火つそM織的0.64倍,具有顯著統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P<0.05)(圖1)。
采用qRT-PCR檢測(cè)正常口腔黏膜上皮細(xì)胞、SCC-4,SCC-9和SCC-15中miR-126表達(dá)水平,結(jié)果顯示,3種口腔鱗癌細(xì)胞中miR-126表達(dá)水平均低于正??谇火つど掀ぜ?xì)胞,其中SCC-9中表達(dá)水平最低,具有顯著統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P<0.05;P<0.01)。因此使用SCC-9進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)(圖2)。
在口腔鱗癌細(xì)胞中分別轉(zhuǎn)染miR-126 agomir、miR-126 antagomir以及negative control,采用qRT-PCR檢測(cè)轉(zhuǎn)染后miR-126表達(dá)水平,結(jié)果顯示miR-126 agomir可以顯著上調(diào)細(xì)胞中miR-126的表達(dá)水平,反之,加入miR-126 antagomir后其表達(dá)水平受到抑制,表達(dá)差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)(圖3)。
圖1 口腔黏膜正常組織和鱗癌組織中miR-126表達(dá)水平Fig 1 miR-126 expression in normal and oral mucosa and OSCC
圖2 不同口腔鱗癌細(xì)胞系中miR-126表達(dá)水平Fig 2 miR-126 expression levels in different OSCCcell lines
圖3 不同轉(zhuǎn)染條件下miR-126的表達(dá)水平Fig 3 miR-126 expression levels under different transfection conditions
MTT法檢測(cè)不同處理組鱗癌細(xì)胞的增殖能力,顯示上調(diào)miR-126表達(dá)含量后,細(xì)胞增殖能力受到明顯抑制,反之,下調(diào)miR-126的表達(dá)后,細(xì)胞增殖能力明顯提高,結(jié)果具有顯著統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P<0.05)(圖4)。
使用transwell小室檢測(cè)不同處理組口腔鱗癌細(xì)胞的遷移能力,結(jié)果發(fā)現(xiàn)相較于對(duì)照組,上調(diào)miR-126后,細(xì)胞遷移能力受到抑制,反之,下調(diào)miR-126的表達(dá)后,細(xì)胞的增殖能力得到提高,結(jié)果具有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P<0.05)(圖5)。
圖4 不同轉(zhuǎn)染條件下對(duì)鱗癌細(xì)胞增殖能力的影響Fig 4 The effect of different transfection conditions on the proliferation of OSCCcells
圖5 不同轉(zhuǎn)染條件下對(duì)鱗癌細(xì)胞遷移能力的影響 (甲苯胺藍(lán)染色,×200)Fig 5 The effect of different transfection conditions on the migration ability of OSCC cells (Toluidine staining,×200)
為檢測(cè)miR-126可能的靶基因,搜索生物信息學(xué)網(wǎng)站miRanda和Targetscan,發(fā)現(xiàn)PIK3R1的3'UTR區(qū)存在miR-126的結(jié)合位點(diǎn),因此推測(cè)miR-126可能調(diào)節(jié)PIK3R1的表達(dá)。同時(shí),采用Western blot檢測(cè)不同轉(zhuǎn)染組中PIK3R1的表達(dá)水平,結(jié)果發(fā)現(xiàn)下調(diào)miR-126后PIK3R1的表達(dá)水平上升,反之,下調(diào)miR-126后PIK3R1的表達(dá)水平上升,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)(圖6)。為進(jìn)一步明確miR-126與PIK3R1存在直接結(jié)合,構(gòu)建含有PIK3R1 3'UTR結(jié)合位點(diǎn)的熒光素酶報(bào)告基因表達(dá)載體。結(jié)果顯示,在含有PIK3R1 3'UTR序列的細(xì)胞中,加入miR-126后,較之對(duì)照組其熒光素酶活性明顯降低(P<0.01),而在PIK3R1 3'UTR突變組中則無(wú)明顯改變(圖7)。
圖6 不同轉(zhuǎn)染條件下PIK3R1蛋白表達(dá)水平Fig 6 PIK3R1 protein expression under different transfection conditions
圖7 雙熒光素酶報(bào)告基因?qū)嶒?yàn)Fig 7 Dual luciferase reporter experiment
MicroRNA是一類(lèi)由內(nèi)源基因編碼的長(zhǎng)度約為22個(gè)核苷酸的非編碼單鏈RNA分子。第一個(gè)miRNA是在20世紀(jì)90年代初發(fā)現(xiàn)的。然而,直到21世紀(jì)初,miRNA才被認(rèn)為是具有獨(dú)特調(diào)節(jié)功能的一類(lèi)物質(zhì)。其自身通常不參與編碼合成mRNA,而是在轉(zhuǎn)錄后水平參與靶基因調(diào)控過(guò)程,其作用遍及生命體的發(fā)生、生長(zhǎng)、發(fā)育、分化和死亡的各個(gè)過(guò)程。如楊倩娟等[9]發(fā)現(xiàn)miR-20可參與人炎癥牙周膜干細(xì)胞成骨分化過(guò)程。其他研究也發(fā)現(xiàn)細(xì)胞在發(fā)生病理過(guò)程中其miRNAs表達(dá)也發(fā)生不同變化[10]。2009年的一項(xiàng)研究探討了miR-205的表達(dá)水平對(duì)乳腺癌轉(zhuǎn)移的影響[11]。一項(xiàng)針對(duì)小細(xì)胞肺癌樣本的研究發(fā)現(xiàn),miR-324a的水平可作為預(yù)測(cè)患者預(yù)后生存的指標(biāo)[12]。近年來(lái)的研究發(fā)現(xiàn)miRNAs與口腔鱗癌的發(fā)生發(fā)展以及預(yù)后也有著緊密的關(guān)聯(lián)。Shin等[13]證實(shí)miR-181a在口腔鱗癌細(xì)胞中的表達(dá)量降低,而提高miR-181a的表達(dá)含量可以抑制其靶基因K-ras的表達(dá)從而抑制了鱗癌細(xì)胞的增殖能力。近年的一項(xiàng)納入了29例口腔鱗癌患者與7例健康對(duì)照者進(jìn)行分析,通過(guò)檢測(cè)鱗癌細(xì)胞和正??谇火つぜ?xì)胞的基因譜發(fā)現(xiàn)在口腔鱗癌腫瘤組織中有12個(gè)microRNAs上調(diào)及11 microRNA下調(diào)[14]。這些異常表達(dá)的microRNA可能與細(xì)胞增殖分化、凋亡、血管形成、腫瘤浸潤(rùn)及轉(zhuǎn)移等多種功能相關(guān)。
MiR-126最初被發(fā)現(xiàn)在內(nèi)皮細(xì)胞中表達(dá),在血管新生中發(fā)揮著重要的作用[15]。最近的多項(xiàng)研究發(fā)現(xiàn)miR-126與腫瘤細(xì)胞的增殖與侵襲能力有關(guān)。如miR-126可通過(guò)RhoA/ROCK信號(hào)通路抑制結(jié)腸癌細(xì)胞的增殖和侵襲[16]。MiR-126還可靶向作用于PIK3R2介導(dǎo)的PI3K/Akt通過(guò)調(diào)節(jié)膽囊癌細(xì)胞的生物學(xué)功能[17]。然而,對(duì)于miR-126與口腔鱗癌的關(guān)系研究較少。Yang等[18]發(fā)現(xiàn)miR-126可以靶向于EGFL7來(lái)抑制口腔鱗癌細(xì)胞的細(xì)胞周期,此外,過(guò)表達(dá)miR-126可以抑制血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子(VEGF)和成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子(bFGF)的表達(dá)。本次研究通過(guò)生物信息學(xué)軟件預(yù)測(cè)miR-126可能的作用靶基因,并采用雙熒光素酶報(bào)告基因?qū)嶒?yàn)等方法進(jìn)一步驗(yàn)證了miR-126與靶基因PIK3R1存在相關(guān)關(guān)系,證明了miR-126對(duì)于口腔鱗癌細(xì)胞生物學(xué)功能調(diào)節(jié)的可能作用機(jī)制。與此同時(shí),采用miR-126的模擬物以及抑制物進(jìn)行細(xì)胞轉(zhuǎn)染,一系列的體外實(shí)驗(yàn)也均證實(shí)在口腔鱗癌細(xì)胞中改變miR-126的表達(dá)對(duì)于其生物學(xué)功能有著顯著的調(diào)節(jié)作用。
綜上所述,該研究發(fā)現(xiàn)口腔鱗癌細(xì)胞中,miR-126的表達(dá)水平顯著降低,同時(shí)改變miR-126的表達(dá)水平可以調(diào)節(jié)口腔鱗癌細(xì)胞的增殖和遷移能力,此外,miR-126可作用于PIK3R1發(fā)揮其調(diào)節(jié)作用;因此miR-126可能作為一個(gè)潛在的治療靶點(diǎn),對(duì)于口腔鱗癌的治療提供新的思路。