朱璨 李堯鋒 彭芳 陳天琪 陸海 劉成 楊長福 王和生
摘 要 目的:探討二苯乙烯苷(TSG)的雌激素樣作用,以及其對性未成熟小鼠子宮雌激素受體(ER)表達(dá)的影響。方法:將60只性未成熟雌性昆明種小鼠隨機(jī)分為正常組,陽性對照組(戊酸雌二醇,0.18 mg/kg),TSG低、高劑量組(50、150 mg/kg),TSG低、高劑量+戊酸雌二醇組(劑量同單用組)。正常組小鼠灌胃等體積水,各給藥組小鼠灌胃相應(yīng)藥物溶液0.2 mL/10 g,早晚各1次,連續(xù)5 d。末次給藥次日,測定并計(jì)算各組小鼠子宮指數(shù)和體質(zhì)量增幅;采用酶聯(lián)免疫吸附測定法檢測其血清雌激素[雌二醇(E2)、黃體生成素(LH)、卵泡雌激素(FSH)]含量;采用蘇木精-伊紅染色法觀察其子宮組織形態(tài)學(xué)特征,并檢測子宮管徑和子宮內(nèi)膜厚度;采用免疫組織化學(xué)染色法檢測其子宮組織中ER(ER-α、ER-β)的表達(dá)水平。結(jié)果:正常組小鼠子宮肌層排列平行、緊密,子宮上皮呈單層柱狀,ER-α、ER-β表達(dá)較少;各給藥組小鼠子宮管徑、內(nèi)膜及上皮均不同程度地增大、增厚或增生,ER-α、ER-β表達(dá)有所變化。與正常組比較,各給藥組小鼠子宮指數(shù)(陽性對照組、TSG高劑量組、TSG各劑量+戊酸雌二醇組)、體質(zhì)量增幅(陽性對照組、TSG高劑量組、TSG低劑量+戊酸雌二醇組)、子宮管徑及內(nèi)膜厚度(陽性對照組、TSG低劑量組、TSG各劑量+戊酸雌二醇組)、ER-α的表達(dá)量(陽性對照組、TSG各劑量+戊酸雌二醇組)、ER-β的表達(dá)量(陽性對照組、TSG高劑量組+戊酸雌二醇聯(lián)用組)均顯著升高,血清LH(陽性對照組、TSG高劑量組)、FSH(TSG低劑量+戊酸雌二醇組)水平均顯著降低(P<0.05或P<0.01);TSG各劑量+戊酸雌二醇組小鼠子宮指數(shù)、子宮管徑及內(nèi)膜厚度、ER-α及ER-β的表達(dá)量以及TSG低劑量+戊酸雌二醇組小鼠體質(zhì)量增幅、血清E2含量均顯著高于TSG同劑量單用組(P<0.05或P<0.01);TSG各劑量組小鼠子宮指數(shù)、子宮管徑及內(nèi)膜厚度、ER-α及ER-β的表達(dá)量,TSG各劑量+戊酸雌二醇組小鼠子宮管徑、ER-β的表達(dá)量以及TSG低劑量組小鼠體質(zhì)量增幅均顯著低于陽性對照組,而TSG各劑量+戊酸雌二醇組小鼠血清LH水平均顯著高于陽性對照組(P<0.05或P<0.01)。結(jié)論:TSG可一定程度地增加性未成熟小鼠的子宮指數(shù)和體質(zhì)量,并調(diào)節(jié)其體內(nèi)雌激素水平,增加子宮管徑及內(nèi)膜厚度,上調(diào)子宮組織中ER的表達(dá),具有一定的雌激素樣作用。但這種作用弱于戊酸雌二醇,且兩者聯(lián)合使用可能會拮抗戊酸雌二醇的作用。
關(guān)鍵詞 二苯乙烯苷;性未成熟小鼠;雌激素受體;雌激素樣作用;戊酸雌二醇
Estrogen-like Effect of Tetrahydroxy Stilbene Glucoside and Its Effects on the Expression of ER in Uterus of Sexually Immature Mice
ZHU Can1,LI Yaofeng1,PENG Fang1,CHEN Tianqi1,LU Hai2,LIU Cheng2,YANG Changfu1,WANG Hesheng1(1. School of Basic Medicine, Guiyang College of TCM, Guiyang 550025, China; 2. School of Pharmacy, Guiyang College of TCM, Guiyang 550025, China)
ABSTRACT OBJECTIVE: To investigate estrogen-like effect of tetrahydroxy stilbene glucoside (TSG) and its effects on the expression of estrogen receptor (ER) in uterus of sexually immature mice. METHODS: Totally 60 sexually immature Kunming mice were randomly divided into normal group, positive control group (estradiol valerate, 0.18 mg/kg), TSG low-dose and high-dose groups (50, 150 mg/kg), TSG low-dose and high-dose groups+estradiol valerate groups (same dose as medication alone group). Normal group was given constant volume of water intragastrically, and administration groups were given relevant medicine 0.2 mL/10 g, once morning and night, for consecutive 5 d. The uterus index and body weight increase of mice in each group were determined and calculated the next day after the last administration. The contents of serum estrogen (E2, LH, FSH) were determined by ELISA. HE staining was used to observe the morphology characteristics of uterus, and uterine tube diameter and endometrial thickness were detected. The expression of ER(ER-α and ER-β) in uterus was detected by immunohistochemical staining. RESULTS: The myometrium of the mice in normal group was parallel and compact, the epithelium of the uterus was columnar, and the expression of ER-α and ER-β was low. The uterine tube diameter, endometrium and epithelium of mice in each administration group increased, thickened or proliferated in varying degrees, and the expression of ER-α and ER-β changed. Compared with normal group, uterus indexes (positive control group, TSG high-dose group, TSG+estradiol valerate groups), the increase of body weight (positive control group, TSG high-dose groups, TSG low-dose+estradiol valerate group), uterine tube diameter and endometrial thickness (positive control group, TSG low-dose group, TSG+estradiol valerate groups), the expression of ER-α (positive control group, TSG+estradiol valerate groups) and the expression of ER-β (postive control group, TSG high-dose+estradiol valerate group)were increased significantly, while serum contents of LH (positive control group, TSG high-dose group) and FSH (TSG low-dose+estradiol valerate group) were decreased significantly (P<0.05 or P<0.01). The uterus index, uterine tube diameter, endometrial thickness and the expression in ER-α and ER-β of TSG+estradiol valerate groups, the increase of body weight and serum content of E2 in TSG low-dose+estradiol valerate group were significantly higher than same TSG dose alone groups (P<0.05 or P<0.01). The uterus index, uterine tube diameter, endometrial thickness and the expression of ER-α and ER-β in TSG groups, uterine tube diameter and the expression of ER-β in TSG+estradiol valerate groups, body weight increase of mice in TSG low-dose group were significantly lower than positive control group, while serum content of LH in TSG+estradiol valerate groups were significantly higher than positive control group (P<0.05 or P<0.01). CONCLUSIONS: TSG can increase uterus indexes and body weight of sexually immature mice to certain extent, regulate estrogen level, increase the diameter of uterine tube and endometrial thickness and up-regulate the expression of ER in the uterus, showing certain estrogen-like effect, which is weaker than that of estradiol valerate. Combined use of them may antagonize the effect of estradiol valerate.
KEYWORDS Estradiol valerate; Sexually immature mice; Estrogen receptor; Estrogen-like effect; Estradiol valerate
長期以來,雌激素水平低下引發(fā)的更年期綜合征、心血管疾病、骨質(zhì)疏松等疾病嚴(yán)重影響著女性生活質(zhì)量。雌激素替代療法雖療效顯著,但如高血壓、水腫、癡呆等副作用較多,且會增加雌激素依賴性腫瘤的發(fā)生風(fēng)險[1]。因此,天然的、具有雌激素樣活性且不良反應(yīng)相對較少的植物雌激素(PE)逐漸成為業(yè)界研究的熱點(diǎn)。有研究發(fā)現(xiàn),PE可用于治療圍絕經(jīng)期綜合征、骨質(zhì)疏松、心血管疾病、肥胖、代謝綜合征等疾病,療效確切[2]。
制首烏為蓼科植物何首烏(Polygonum multiflorum Thunb.)干燥塊根的炮制加工品?,F(xiàn)代研究表明,制首烏具有雌激素樣作用,可改善衰老模型大鼠血清性激素水平,預(yù)防和延緩其顆粒細(xì)胞凋亡[3-4]。本課題組前期亦發(fā)現(xiàn),制首烏水煎液可調(diào)節(jié)去卵巢大鼠的生殖軸,亦能抑制雷公藤多苷對大鼠生殖功能的破壞作用[5-6]。制首烏的主要活性成分為二苯乙烯苷(TSG),易溶于水,其含量是制首烏藥材質(zhì)量控制的專屬性指標(biāo)[7]。有研究指出,TSG能抗衰老、防治骨質(zhì)疏松、改善血管性癡呆[8-12]。鑒于此,本研究以剛斷乳且性未成熟的雌性小鼠為對象,通過檢測其經(jīng)TSG處理后的血清性激素水平、子宮組織形態(tài)和雌激素受體(ER,分為ER-α、ER-β亞型)表達(dá)情況,評價TSG的雌激素樣作用,以期為制首烏雌激素樣作用的物質(zhì)基礎(chǔ)研究以及臨床應(yīng)用提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。
1 材料
1.1 儀器
TG20-WS型高速離心機(jī)(湖南湘立科學(xué)儀器有限公司);Varioskan Flash型多功能酶標(biāo)儀(美國Thermo Fisher Scientific公司);BX53F型生物顯微鏡(日本Olympus公司)。
1.2 藥品與試劑
TSG對照品(上海源葉生物科技有限公司,批號:J17O8Z45941,純度:≥98%);戊酸雌二醇片(陽性對照,德國Jenapharm GmbH & Co. KG,注冊證號:國藥準(zhǔn)字J20171038,規(guī)格:1 mg);兔ER-α多克隆抗體(美國Abcam公司,批號:GR3203259-1);兔ER-β多克隆抗體(美國Affinity Biologicals公司,批號:66v5464);辣根過氧化物酶標(biāo)記山羊抗兔免疫球蛋白G(IgG)(H+L)二抗、二氨基聯(lián)苯胺(DAB)辣根過氧化物酶顯色試劑盒(上海碧云天生物技術(shù)有限公司,批號分別為01151818022、112117180301);雌二醇(E2)、黃體生成素(LH)、卵泡刺激素(FSH)酶聯(lián)免疫吸附測定(ELISA)試劑盒(武漢伊萊瑞特生物科技有限公司,批號分別為T1U811PA、A8Z7SYMP、MX6L1XTQ);其余試劑均為分析純,水為蒸餾水。
1.3 動物
SPF級雌性昆明種小鼠60只,出生21 d(剛斷乳、性未成熟),體質(zhì)量8~11 g,由重慶醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動物中心提供[動物生產(chǎn)許可證號:SCXK(渝)2017-0001]。所有小鼠均分籠飼養(yǎng),每籠5只,人工控制室溫為(22±2)℃,濕度為42%~62%,晝夜節(jié)律12 h。小鼠均自由飲水、進(jìn)食,適應(yīng)性飼養(yǎng)4 d。
2 方法
2.1 分組與給藥
將小鼠隨機(jī)分為6組,即正常組,陽性對照組,TSG低、高劑量組,TSG低、高劑量+戊酸雌二醇組,每組10只。分組后稱定并記錄小鼠體質(zhì)量。正常組小鼠灌胃等體積水,各給藥組小鼠均灌胃相應(yīng)藥物溶液(均以水為溶劑制備)0.2 mL/10 g,早晚各1次,連續(xù)5 d。其中,陽性對照組小鼠給予戊酸雌二醇(0.18 mg/kg,根據(jù)臨床成人等效劑量換算而得),TSG低、高劑量組小鼠給予TSG(50、150 mg/kg,劑量根據(jù)文獻(xiàn)[13]及前期預(yù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果設(shè)置),TSG低、高劑量+戊酸雌二醇組小鼠同時給予TSG和戊酸雌二醇(劑量同單用組)。
2.2 小鼠子宮指數(shù)和體質(zhì)量增幅測定
末次給藥次日,采用眼球摘除法取血。血樣室溫靜置2 h后,以1 000×g離心20 min,取上層血清,于-20 ℃保存,備用。斷頸處死小鼠后,迅速剖取子宮,剔除多余組織,稱定子宮質(zhì)量,計(jì)算小鼠子宮指數(shù)(子宮指數(shù)=子宮濕質(zhì)量/體質(zhì)量×100%)。分別于給藥前以及末次給藥次日稱定各組小鼠體質(zhì)量,并計(jì)算體質(zhì)量增幅[體質(zhì)量增幅=(給藥后體質(zhì)量-給藥前體質(zhì)量)/給藥前體質(zhì)量×100%]。
2.3 小鼠血清E2、LH、FSH含量檢測
取“2.2”項(xiàng)下血清樣品適量,采用ELISA法以酶標(biāo)儀于450 nm波長下檢測血清E2、LH、FSH含量,嚴(yán)格按照相應(yīng)試劑盒說明書操作。
2.4 小鼠子宮組織形態(tài)學(xué)觀察及子宮管徑、內(nèi)膜厚度檢測
稱定小鼠子宮質(zhì)量后,立即用磷酸鹽緩沖液(PBS,pH 7.4,下同)清洗,于4%多聚甲醛溶液中固定24 h,經(jīng)乙醇梯度脫水、透明、石蠟包埋后,切片(厚度約5 μm),常規(guī)蘇木精-伊紅(HE)染色,封片。每組選取6張切片,置于生物顯微鏡下觀察其子宮組織形態(tài)學(xué)特征,并采用CellSens Stantard 1.0軟件定量檢測其子宮管徑和內(nèi)膜厚度。
2.5 小鼠子宮組織ER表達(dá)情況檢測
采用免疫組織化學(xué)染色法(IHC)檢測。取“2.4”項(xiàng)下石蠟切片,經(jīng)常規(guī)脫蠟、水化后,微波修復(fù),以3%H2O2室溫孵育10 min,用PBS清洗后,滴加相應(yīng)一抗(1 ∶ 100),于4 ℃孵育過夜;次日用PBS清洗后,滴加相應(yīng)二抗(1 ∶ 50),室溫孵育30 min,用PBS清洗后,以DAB辣根過氧化物酶顯色試劑盒顯色,用水清洗,以蘇木精復(fù)染,脫水、透明、封片后,置于生物顯微鏡下觀察,細(xì)胞核被染為棕黃色者為ER-α、ER-β表達(dá)陽性。采用Image-Pro Express 5.1圖像處理軟件分析陽性區(qū)域的灰度值,用以表示ER-α、ER-β的表達(dá)量。
2.6 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法
采用SPSS 17. 0軟件對數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。計(jì)量資料以x±s表示,多組間比較采用單因素方差分析,兩組間比較采用t檢驗(yàn)。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
3 結(jié)果
3.1 TSG對性未成熟小鼠子宮指數(shù)和體質(zhì)量增幅的影響
與正常組比較,陽性對照組、TSG高劑量組、TSG各劑量+戊酸雌二醇組小鼠子宮指數(shù)均顯著升高,且TSG各劑量+戊酸雌二醇組均顯著高于TSG同劑量單用組,而TSG各劑量組顯著低于陽性對照組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05或P<0.01)。與正常組比較,陽性對照組、TSG高劑量組、TSG低劑量+戊酸雌二醇組小鼠體質(zhì)量增幅均顯著升高,且TSG低劑量+戊酸雌二醇組顯著高于TSG低劑量組,而TSG低劑量組顯著低于陽性對照組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05或P<0.01),詳見表1。
3.2 TSG對性未成熟小鼠血清E2、LH、FSH含量的影響
與正常組比較,陽性對照組、TSG高劑量組小鼠LH含量以及TSG低劑量+戊酸雌二醇組小鼠血清FSH含量均顯著降低,而TSG低劑量+戊酸雌二醇組小鼠血清E2水平顯著高于TSG低劑量組,TSG各劑量+戊酸雌二醇組小鼠血清LH含量均顯著高于陽性對照組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);而其余各組上述指標(biāo)組間比較,差異均無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),詳見表2。
3.3 TSG對性未成熟小鼠子宮管徑、內(nèi)膜厚度的影響
正常組小鼠子宮肌層排列平行、緊密,子宮腺散在分布于固有層,子宮上皮呈單層柱狀。各給藥組小鼠子宮管徑增大,子宮內(nèi)膜增厚,腺體數(shù)量增多,其中陽性對照組、TSG低劑量+戊酸雌二醇組子宮上皮增生為復(fù)層,詳見圖1。
與正常組比較,陽性對照組、TSG低劑量組、TSG各劑量+戊酸雌二醇組小鼠子宮管徑顯著增大、子宮內(nèi)膜顯著增厚,且TSG各劑量組+戊酸雌二醇組小鼠上述指標(biāo)均顯著高于TSG同劑量單用組,而TSG各劑量組、TSG各劑量+戊酸雌二醇組小鼠子宮管徑以及TSG各劑量組小鼠子宮內(nèi)膜厚度均顯著低于陽性對照組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05或P<0.01),詳見表3。
3.4 TSG對性未成熟小鼠子宮組織ER表達(dá)的影響
由DAB染色結(jié)果可見,ER-α、ER-β在小鼠子宮黏膜層、肌層、漿膜層均有表達(dá)。正常組小鼠子宮組織ER-α、ER-β的表達(dá)均較少。與正常組比較,各給藥組小鼠子宮組織ER-α、ER-β的表達(dá)均有所變化,其中陽性對照組、TSG各劑量+戊酸雌二醇組小鼠子宮組織ER-α的表達(dá)量以及陽性對照組、TSG高劑量+戊酸雌二醇組小鼠子宮組織ER-β的表達(dá)量均顯著提高,且TSG各劑量組+戊酸雌二醇組ER-α、ER-β的表達(dá)量均顯著高于TSG同劑量單用組,而TSG各劑量組ER-α表達(dá)量以及TSG各劑量組、TSG各劑量+戊酸雌二醇組ER-β表達(dá)量均顯著低于陽性對照組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05或P<0.01),詳見圖2、圖3、表3。
4 討論
PE與雌激素結(jié)構(gòu)類似,可與體內(nèi)ER結(jié)合并發(fā)揮雌激素樣作用;同時,PE也可導(dǎo)致靶組織中ER表達(dá)水平發(fā)生相應(yīng)變化[2]。ER包括ER-α和ER-β兩種亞型,前者的總體活性更高[14]。有研究表明,PE對機(jī)體具有雙重調(diào)節(jié)作用:一方面,當(dāng)體內(nèi)雌激素水平較低時,PE可與ER結(jié)合發(fā)揮雌激素樣作用,以防治絕經(jīng)后雌激素水平過低所引發(fā)的健康問題[15-19];另一方面,當(dāng)體內(nèi)雌激素水平較高時,PE可通過競爭性結(jié)合靶細(xì)胞ER而產(chǎn)生抗雌激素作用,從而抑制雌激素依賴性腫瘤細(xì)胞的增殖,并誘導(dǎo)其凋亡[20-23]。
小鼠子宮增重實(shí)驗(yàn)常用來評價藥物的雌激素樣作用[24]。因子宮組織富含ER,當(dāng)PE與ER結(jié)合后,可誘導(dǎo)子宮靶蛋白(IPs)含量增加,從而刺激子宮增重。為盡量減少內(nèi)源性雌激素對實(shí)驗(yàn)的干擾,本研究選用斷乳、性未成熟的雌性小鼠,測定其給藥后的子宮指數(shù)。結(jié)果發(fā)現(xiàn),與正常組比較,陽性對照組、TSG高劑量組、TSG各劑量+戊酸雌二醇組小鼠子宮指數(shù)均顯著升高,且TSG各劑量+戊酸雌二醇組均顯著高于TSG同劑量單用組,而TSG各劑量組顯著低于陽性對照組;陽性對照組、TSG高劑量組、TSG低劑量+戊酸雌二醇組小鼠體質(zhì)量增幅均顯著升高,且TSG低劑量+戊酸雌二醇組顯著高于TSG低劑量組,而TSG低劑量組顯著低于陽性對照組。這表明TSG對性未成熟小鼠子宮的生長發(fā)育具有一定的促進(jìn)作用,但這種雌激素樣作用弱于陽性對照藥物及兩者聯(lián)用。
在正常的生理狀態(tài)下,LH、FSH共同調(diào)控機(jī)體生殖系統(tǒng)內(nèi)分泌功能:當(dāng)血清E2含量升高時,在生殖軸負(fù)反饋調(diào)節(jié)作用下,腺垂體FSH和LH的分泌量將會降低[25]。本研究考察并比較了各組小鼠的血清性激素含量。結(jié)果顯示,與正常組比較,陽性對照組、TSG高劑量組小鼠LH含量以及TSG低劑量+戊酸雌二醇組小鼠血清FSH含量均顯著降低,而TSG低劑量+戊酸雌二醇組小鼠血清E2水平顯著低于TSG低劑量組,TSG各劑量+戊酸雌二醇組小鼠血清LH含量均顯著高于陽性對照組。這提示TSG具有一定的雌激素樣作用,可一定程度地調(diào)節(jié)小鼠血清雌激素含量,但這種作用普遍弱于陽性對照藥物。
小鼠子宮組織HE染色結(jié)果顯示,正常組小鼠子宮肌層排列平行、緊密,子宮腺散在分布于固有層,子宮上皮為單層柱狀上皮;各給藥組小鼠子宮管徑增大,子宮內(nèi)膜增厚,腺體數(shù)量增多。與正常組比較,陽性對照組、TSG低劑量組、TSG各劑量+戊酸雌二醇組小鼠子宮管徑顯著增大、子宮內(nèi)膜顯著增厚,且TSG各劑量組+戊酸雌二醇組小鼠上述指標(biāo)顯著高于TSG同劑量單用組,而TSG各劑量組、TSG各劑量+戊酸雌二醇聯(lián)用組小鼠子宮管徑以及TSG各劑量組小鼠子宮內(nèi)膜厚度均顯著低于陽性對照組。經(jīng)DAB染色可見,ER在小鼠子宮黏膜層、肌層、漿膜層均有表達(dá)。與正常組比較,各給藥組小鼠子宮組織ER的表達(dá)均有所變化,其中陽性對照組、TSG各劑量+戊酸雌二醇組小鼠子宮組織ER-α的表達(dá)量以及陽性對照組、TSG高劑量+戊酸雌二醇組小鼠子宮組織ER-β的表達(dá)量均顯著提高,且TSG各劑量+戊酸雌二醇組ER-α表達(dá)量顯著高于TSG同劑量單用組,而TSG各劑量組ER-α表達(dá)量以及TSG各劑量組、TSG各劑量+戊酸雌二醇組ER-β表達(dá)量均顯著低于陽性對照組。兩種染色結(jié)果均表明,TSG具有一定的雌激素樣作用,但這種作用弱于陽性對照藥物;當(dāng)兩者聯(lián)合使用時,其作用強(qiáng)度強(qiáng)于TSG單用,但弱于陽性對照藥物,與前文結(jié)果基本一致。筆者認(rèn)為,兩藥聯(lián)合可能會導(dǎo)致拮抗效應(yīng)的出現(xiàn),即TSG會削弱陽性對照藥物的雌激素樣效應(yīng):當(dāng)體內(nèi)雌激素水平較高時,TSG競爭性結(jié)合ER(包括ER-α、ER-β),而兩者結(jié)合后的效應(yīng)又弱于雌激素與ER結(jié)合后的效應(yīng),故表現(xiàn)出更弱的雌激素樣作用[26]。
綜上所述,制首烏主要活性成分TSG可一定程度地增加性未成熟小鼠的子宮指數(shù)和體質(zhì)量,并調(diào)節(jié)其體內(nèi)雌激素水平,增加子宮管徑及內(nèi)膜厚度,上調(diào)子宮組織中ER的表達(dá),具有一定的雌激素樣作用。但這種作用弱于戊酸雌二醇,且兩者聯(lián)合使用可能會拮抗戊酸雌二醇的作用。本課題組將在本研究的基礎(chǔ)上,進(jìn)一步分析和探討TSG發(fā)揮雌激素樣作用的分子機(jī)制以及對雌激素依賴性腫瘤細(xì)胞的影響,以期為臨床用藥提供更多的實(shí)驗(yàn)依據(jù)。
參考文獻(xiàn)
[ 1 ] 中華醫(yī)學(xué)會婦產(chǎn)科分會.絕經(jīng)過渡期和絕經(jīng)后期激素補(bǔ)充治療臨床應(yīng)用指南:2009版[J].中華婦產(chǎn)科雜志,2010,45(8):635-638.
[ 2 ] 趙元,鄭紅霞,徐穎,等.中藥植物雌激素的研究進(jìn)展[J].中國中藥雜志,2017,42(18):3474-3483.
[ 3 ] 李亞麗,張娜,郭文潮,等.衰老大鼠性激素與其受體的變化以及何首烏飲對其影響的研究[J].中國婦幼保健,2011,26(1):106-109.
[ 4 ] 楊利娟,黃君梅,王飛.何首烏、骨碎補(bǔ)和淫羊藿的植物雌激素作用研究[J].中藥與臨床,2012,3(3):37-40.
[ 5 ] 朱璨,李堯鋒,楊長福,等.制首烏對去卵巢大鼠子宮指數(shù)和性激素水平的影響研究[J].中國民族民間醫(yī)藥,2017,26(10):25-27.
[ 6 ] 朱璨,李堯鋒,彭芳,等.制首烏對大鼠卵巢功能減退的影響研究[J].醫(yī)學(xué)研究生學(xué)報(bào),2018,31(6):602-607.
[ 7 ] 國家藥典委員會.中華人民共和國藥典:一部[S].2015年版.北京:中國醫(yī)藥科技出版社,2015:176-177.
[ 8 ] HUANG C,WANG YZ,WANG J,et al. TSG(2,3,4′,5-tetrahydroxystilbene-2-O-β-D-glucoside) suppresses induction of pro-inflammatory factors by attenuating the binding activity of nuclear factor-κB in microglia[J]. J Neuroinflammation,2013. DOI:10.1186/1742-2094-10-129.
[ 9 ] YANG XP,LIU TY,QIN XY,et al. Potential protection of 2,3,5,4′-tetrahydroxystilbene-2-O-β-D-glucoside against staurosporine-induced toxicity on cultured rat hippocampus neurons[J]. Neurosci Lett,2014. DOI:10.1016/j.neulet.2014.05.045.
[10] ZHOU XX,YANG Q,XIE YH,et al. Protective effect of tetrahydroxystilbene glucoside against D-galactose induced aging process in mice[J]. Phytochem Lett,2013,6(3):372-378.
[11] 張金康.二苯乙烯苷防治骨質(zhì)疏松的作用及相關(guān)機(jī)制研究[D].西安:第四軍醫(yī)大學(xué),2013.
[12] 馬海涵,邵志成,陳力學(xué),等.二苯乙烯苷對血管性癡呆大鼠室管膜細(xì)胞增殖的影響[J].中國老年學(xué)雜志,2017,37(8):1162-1163.
[13] 金波,黃晶晶,朱學(xué)鑫,等.制首烏二苯乙烯苷預(yù)防急性酒精性肝損傷作用及其機(jī)制[J].中華中醫(yī)藥雜志,2016,31(8):3333-3336.
[14] 趙丕文.十種中藥植物雌激素樣作用及其機(jī)制的研究[D].北京:北京中醫(yī)藥大學(xué),2007.
[15] LAGARI VS,LEVIS S. Phytoestrogens for menopausal bone loss and climacteric symptoms[J]. J Steroid Biochem Mol Biol,2014. DOI:10.1016/j.jsbms.2012.12.002.
[16] ABDI F,ALIMORADI Z,HAQI P,et al. Effects of phytoestrogens on bone mineral density during the menopause transition:a systematic review of randomized,controlled trials[J]. Climacteric,2016,19(6):535-545.
[17] EDEN JA. Phytoestrogens for menopausal symptoms:a review[J]. Maturitas,2012,72(2):157-159.
[18] TANTIKANLAYAPORN D,ROBINSON LJ,SUKSAMRARN A,et al. A diarylheptanoid phytoestrogen from Curcuma comosa,1,7-diphenyl-4,6-heptadien-3-ol,accelerates human osteoblast proliferation and differentiation[J]. Phytomedicine,2013,20(8/9):676-682.
[19] 祝強(qiáng),王婧,董雋,等.雌激素受體α真核表達(dá)載體的構(gòu)建及在大鼠骨髓基質(zhì)干細(xì)胞中的表達(dá)[J].醫(yī)學(xué)研究生學(xué)報(bào),2014,27(1):34-37.
[20] 張百紅,岳紅云.植物雌激素的激素樣作用機(jī)制研究進(jìn)展[J].現(xiàn)代腫瘤醫(yī)學(xué),2018,26(9):1444-1446.
[21] CHEN J,HOU R,ZHANG X,et al. Calycosin suppresses breast cancer cell growth via ERβ-dependent regulation of IGF-1R,p38 MAPK and PI3K/Akt pathways[J]. PLoS One,2014. DOI:10.1371/journal.pone.0142287.
[22] CHEN J,LIU L,HOU R,et al. Calycosin promotes proli- feration of estrogen receptor-positive cells via estrogen receptors and ERK1/2 activation in vitro and in vivo[J]. Cancer Lett,2011,308(2):144-151.
[23] 孫素紅,黃琴,曾峰.雌激素受體不同表達(dá)對局部晚期乳腺癌TC化療方案的敏感性觀察[J].中國藥房,2009,20(20):1558-1559.
[24] SHELBY MD,NEWBOLD RR,TULLY DB,et al. Assessing environmental chemicals forestro-genicity using a combination of in vitro and in vivo assays[J]. Environ Health Perspect,1996,104(12):1296-1300.
[25] ORVIETO R,MELTCER S,LIBERTY G,et al. Does day- 3 LH/FSH ratio influence in vitro fertilization outcome in PCOS patients under going controlledovarian hyperstimulation with different GnRH-analogue? [J]. Gynecol Endocrinol,2012,28(6):422-424.
[26] ARNAL JF,F(xiàn)ONTAINE C,ABOT A,et al. Lessons from the dissection of the activation functions(AF-1 and AF-2) of the estrogen receptor alpha in vivo[J]. Steroids,2013,78(6):576-582.
(收稿日期:2018-07-07 修回日期:2018-12-29)
(編輯:張?jiān)拢?/p>