烏日汗,包連勝,包秀萍,李 爽,王歆遠,賈士儒*
(1.天津科技大學(xué)生物工程學(xué)院,天津 300457;2.內(nèi)蒙古民族大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,內(nèi)蒙古 通遼 028043;3.內(nèi)蒙古民族大學(xué)附屬醫(yī)院康復(fù)保健醫(yī)院,內(nèi)蒙古 通遼 028000)
自古以來,飲食療法在蒙醫(yī)學(xué)中占據(jù)重要地位,而酸馬奶是最早應(yīng)用于食療的飲料[1]。蒙古人釀制酸馬奶的技術(shù)和用其治療疾病之事,早在元代即已馳名國內(nèi)外,亦有元代以前給受傷大出血昏厥的人喝酸馬奶以救治的記載[2]。據(jù)文獻報道,酸馬奶對結(jié)核病為主的傳染性疾病、消化系統(tǒng)疾病、心血管系統(tǒng)疾病等均有明顯的輔助治療作用[3-6]。因此,目前俄羅斯、蒙古國和我國內(nèi)蒙古地區(qū)還專門設(shè)立了“酸馬奶醫(yī)療中心”,用其治療或輔助治療消化系統(tǒng)病、心血管系統(tǒng)病等慢性疾病[7]。酸馬奶的這些治療作用與其化學(xué)成分、菌群結(jié)構(gòu)等密切相關(guān)。酸馬奶是以新鮮馬奶為原料,經(jīng)乳酸菌和酵母菌等微生物共同發(fā)酵而成的。酸馬奶的化學(xué)組成不僅取決于原料馬奶,也與其微生物組成及含量有密切關(guān)系。群落結(jié)構(gòu)除受到發(fā)酵溫度、發(fā)酵時間等因素的影響以外,發(fā)酵引子也是非常重要的影響因素,發(fā)酵引子的組成、品質(zhì)和活力與酸馬奶質(zhì)量的好壞、風(fēng)味特點等有密切關(guān)系。酸馬奶的發(fā)酵引子蒙語稱為“horongo”,是延續(xù)酸馬奶質(zhì)量的關(guān)鍵,因此了解酸馬奶發(fā)酵引子的化學(xué)組成及微生物多樣性至關(guān)重要。以往對于某種體系微生物多樣性的測定多采用傳統(tǒng)分類鑒定方法,但此種方法有選擇性和局限性,因自然界中絕大部分微生物仍處于無法培養(yǎng)狀態(tài)。隨著分子生物學(xué)手段應(yīng)用于微生物群落結(jié)構(gòu)分析,彌補了傳統(tǒng)分類學(xué)方法的不足,大大促進了對環(huán)境中不可培養(yǎng)微生物的研究[8],尤其是Illumina MiSeq為代表的第2代測序技術(shù),采用邊合成邊測序原理,不僅可以對不同樣品的多個可變區(qū)同時進行測序,而且擁有較高的測序速度和通量,結(jié)果可信度也較高[9]。目前該測序技術(shù)在微生物多樣性和群落結(jié)構(gòu)分析方面已經(jīng)獲得廣泛的應(yīng)用,但利用該技術(shù)在酸馬奶群落結(jié)構(gòu)方面的研究尚鮮見報道。
酸馬奶引子:取自內(nèi)蒙古通遼市科爾沁區(qū)食療用酸馬奶生產(chǎn)地的3 個平行樣品(命名為酸馬奶引子-1、酸馬奶引子-2、酸馬奶引子-3),測定pH值后分別裝入采樣管中封口,立即在液氮中冷凍后帶回實驗室保存于-80 ℃,進行后續(xù)實驗。
FastDNA?Spin Kit for Soil試劑盒 美國MP Biomedicals公司;Agencourt AMPure XP核酸純化磁珠美國Beckman Coulter公司;TopTaq DNA Polymerase kit北京全式金生物公司。
PHS-3C pH計 上海儀電科學(xué)儀器公司;1260液相色譜系統(tǒng)、7890A氣相色譜儀、2100生物分析儀美國Agilent公司;NanoDrop 2000分光光度計、Invitrogen Qubit 3.0分光光度計、ABI 2720 Thermal Cycler擴增儀 美國Thermo Fisher Scientific公司;MiSeq臺式測序儀 美國Illumina公司;5810R高速冷凍離心機德國Eppendorf公司。
1.3.1 化學(xué)成分分析
1.3.1.1 乳糖、半乳糖和葡萄糖含量的測定[8]
將凍存的酸馬奶引子樣品在室溫下融化后搖勻,稱取0.4 g該樣品,與1.2 mL超純水混合均勻,超聲波處理3 min,以105 ℃高壓處理15 min,再經(jīng)4 ℃、4 500 r/min離心10 min。取上清液經(jīng)0.22 μm膜過濾后進入Agilent 1260液相色譜系統(tǒng)(Bio-Rad HPX-87H離子交換柱(300 mm×7.8 mm)),使用示差檢測器檢測。流動相為5 mmol/L硫酸溶液,流速0.6 mL/min,柱溫60 ℃,進樣量20 μL,18 min停止。
1.3.1.2 有機酸含量的測定
將凍存的酸馬奶引子樣品在室溫下融化搖勻,稱取1.0 g樣品,與3 mL 1 mol/L的鹽酸振蕩混勻,12 000 r/min離心15 min,吸取上清液經(jīng)0.22 μm濾膜過濾后進入1260液相色譜系統(tǒng)分析。流動相為5 mmol/L的硫酸,流速0.6 mL/min,示差檢測器檢測,柱溫60 ℃,進樣量20 μL,25 min停止。
1.3.1.3 游離脂肪酸含量的測定[10]
脂肪的提?。簩龃鏄悠肥覝厝诨瘬u勻,取1 mL樣品加入1.5 mL氯仿-甲醇溶液(2∶1,V/V),25 ℃浸提3 h,加入0.9%氯化鈉溶液靜置分層,收集下層氯仿層氮吹濃縮。
脂肪酸甲酯化:在脂肪提取物中加入2 mL正己烷搖勻,加入2 mL 14%三氟化硼-甲醇,50 ℃水浴5 min,再加入飽和氯化鈉溶液至10 mL,離心取上清液,經(jīng)0.45 μm濾膜過濾后進行分析。
氣相色譜檢測:采用配有氫火焰檢測器的7890A氣相色譜儀(HP-innowax(30 m×0.32 mm,0.5 μm))進行檢測。載氣為氮氣,恒壓:線速率38.4 cm/s;進樣口溫度270 ℃,進樣體積1 μL,分流比20∶1;柱溫箱溫度:初始50 ℃保持2 min,以25 ℃/min的升溫速率升溫到175 ℃,以3.5 ℃/min的升溫速率升溫到230 ℃,保持5 min;檢測器溫度280 ℃,氣體設(shè)置為氫氣40 mL/min、空氣450 mL/min、尾吹氣30 mL/min。
1.3.2 細菌多樣性分析
1.3.2.1 宏基因組DNA的提取
將各酸馬奶引子樣品在室溫充分融化,按照FastDNA?Spin Kit for Soil試劑盒說明書抽提基因組DNA,并使用Nanodrop 2000檢測其質(zhì)量(質(zhì)量濃度≥20 ng/μL,總量≥500 ng,OD260nm/OD280nm=1.8~2.0),同時利用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測其完整性。
1.3.2.2 目的區(qū)域擴增
以提取的基因組DNA為模板,使用16S rDNA V3-V4區(qū)特異引物341F(5’-CCTACGGGNGGCWGCAG-3’)和805R(5’-GACTACHVGGGTATCTAATCC-3’),并采用高效和高保真酶(TopTaq DNA Polymerase kit)進行聚合酶鏈式反應(yīng)(polymerase chain reaction,PCR)擴增,設(shè)置3 個重復(fù)實驗,擴增條件為:94 ℃預(yù)變性2 min;94 ℃變性20 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸1 min,共進行25 個循環(huán);最后72 ℃延伸10 min。
1.3.2.3 PCR產(chǎn)物的混樣和純化
PCR產(chǎn)物使用1%瓊脂糖凝膠進行電泳檢測;將同一樣本的3 個平行擴增產(chǎn)物混合,每個樣本加入等體積的Agencourt AMpure XP核酸純化磁珠對產(chǎn)物進行純化。
1.3.2.4 各樣本添加特異性標簽序列
利用帶有Index序列的引物,通過高保真PCR向文庫末端引入特異性標簽序列。此處采用8 個循環(huán)數(shù)的PCR程序。擴增后的產(chǎn)物利用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測,使用核酸純化磁珠對擴增產(chǎn)物進行純化,即可得到各樣本的原始文庫。
1.3.2.5 文庫進行定量及混合
將上一步得到的純化產(chǎn)物利用1%瓊脂糖凝膠進行初步定量,根據(jù)其結(jié)果對已經(jīng)帶有各自Index標簽的樣本文庫濃度進行適當稀釋,后利用Qubit對文庫進行精確定量,根據(jù)不同樣品的測序通量要求,按相應(yīng)比例混合樣品,后采用MiSeq平臺,2×250 bp的雙端測序策略對文庫進行測序,后續(xù)進行生物信息學(xué)分析。測序及生物信息服務(wù)由上海天昊生物科技有限公司完成。
1.3.2.6 生物信息學(xué)分析
測序得到的原始數(shù)據(jù)(Raw Data),存在一定比例的干擾數(shù)據(jù)(Dirty Data)。為得到高質(zhì)量的測序數(shù)據(jù),以提高后續(xù)生物信息分析準確性、可靠性,首先對原始數(shù)據(jù)進行拼接、過濾,得到質(zhì)量和可信度較高的優(yōu)化序列(Clean reads),然后對優(yōu)化序列在97%水平上進行可操作分類單元(operational taxonomic units,OTU)聚類,并使用mothur軟件將每條OTU代表序列與數(shù)據(jù)庫進行比對從而完成OTU的物種注釋。通過對OTU進行豐度、Alpha多樣性以及物種在各個分類水平上的群落結(jié)果統(tǒng)計分析,得到細菌群落結(jié)構(gòu)組成。
圖1 酸馬奶引子樣品中糖含量Fig. 1 Sugar content of koumiss starter culture
圖2 酸馬奶引子樣品中4 種有機酸含量Fig. 2 Contents of organic acids in koumiss starter culture
該酸馬奶引子樣品pH值為3.54;糖含量檢測結(jié)果顯示(圖1),該酸馬奶發(fā)酵引子中乳糖和半乳糖質(zhì)量分數(shù)分別為(0.281±0.011)%和(0.100±0.003)%,未檢測到葡萄糖。此外,檢測的4 種有機酸(圖2)中,乳酸質(zhì)量分數(shù)最高,為(1.506±0.069)%;其次為丁酸(1.143±0.061)%,乙酸和丙酸質(zhì)量分數(shù)分別為(0.345±0.014)%、(0.053±0.002)%。
表1 酸馬奶引子樣品中脂肪酸組成及含量Table 1 Fatty acid composition of koumiss starter culture mg/L
表1顯示,共檢測到19 種脂肪酸,包括12 種飽和脂肪酸和7 種不飽和脂肪酸。飽和脂肪酸中丁酸(C4:0)質(zhì)量濃度最高,為(78.73±1.36)mg/L;其次為癸酸(C10:0),質(zhì)量濃度為(18.82±1.03)mg/L。檢測到的7 種不飽和脂肪酸中,包括十四碳烯酸(C14:1)、棕櫚油酸(C16:1)、油酸(C18:1n9c)3 種單不飽和脂肪酸和亞油酸(C18:2n6c)、γ-亞麻酸(C18:3n6)、α-亞麻酸(C18:3n3)、二十二碳六烯酸(docosahexaenoic acid,DHA)(C22:6n3)4 種多不飽和脂肪酸。多不飽和脂肪酸中α-亞麻酸(C18:3n3)質(zhì)量濃度高達(14.12±0.36)mg/L。
2.2.1 序列豐度和多樣性
表2 樣品信息、序列豐度和多樣性指數(shù)統(tǒng)計Table 2 Sample information, sequence abundance and microbial diversity of koumiss starter culture
通過Illumina MiSeq第2代測序技術(shù),納入本研究的3 個樣品共產(chǎn)生230 091 條原始序列,經(jīng)過質(zhì)控和過濾后共得到186 248 條高質(zhì)量優(yōu)化序列,各樣本所產(chǎn)生序列數(shù)見表2,該酸馬奶引子樣品平均獲得62 082.7 條優(yōu)化序列。將所得優(yōu)化序列以97%的相似性進行聚類,相似度大于97%的序列將聚為同一個OTU,同時使用de novo模式去除嵌合體序列,最終產(chǎn)生34.3 個OTU,每個樣品OTU聚類后使用mothur軟件找出與OTU序列相似度最高且可信度達80%以上的物種信息用于OTU注釋。該酸馬奶引子樣品可以注釋到1 個界、4 個門、8 個綱、13 個目、22 個科、25 個屬和28 個種,各分類水平上的OTU數(shù)目見表3。
表3 各分類水平上的OTU數(shù)目統(tǒng)計Table 3 Statistics of the numbers of OTUs at each taxonomic level
2.2.2 Alpha多樣性分析
圖3 樣品的細菌稀疏曲線圖Fig. 3 Rarefaction analysis of the pyrosequencing reads in samples of koumiss starter culture
圖4 樣品的Shannon-Wiener曲線Fig. 4 Shannon-Wiener index curve of samples of koumiss starter culture
圖5 樣品的Rank Abundance曲線Fig. 5 Rank Abundance distribution curve of samples of koumiss starter culture
該樣本菌群豐富度指數(shù)Chao1指數(shù)和ACE指數(shù)分別為35.2±3.3和35.4±2.9(表2);樣本的稀釋性曲線如圖3所示,該曲線隨著抽取序列數(shù)的增加而趨于平緩,說明樣本的測序數(shù)據(jù)量合理,更多的數(shù)據(jù)量只會產(chǎn)生少量新的OTU。但Shannon多樣性曲線已經(jīng)飽和,如圖4所示,說明即使再增加測序量,樣本微生物的多樣性已經(jīng)不再隨之發(fā)生變化,該測序數(shù)據(jù)量可以反映樣本絕大多數(shù)的微生物信息。從圖5可知,Rank Abundance曲線在橫坐標上的范圍較大且整體較平滑,表明其物種的豐度較高且物種的分布較均勻。
2.2.3 群落結(jié)構(gòu)分析
該酸馬奶引子樣品鑒定為4 個門,分別為厚壁菌門(Firmicutes)、變形菌門(Proteobacteria)、放線菌門(Actinobacteria)和擬桿菌門(Bacteroidetes),其中厚壁菌門在樣品中的含量最高(88.75%),其次為變形菌門(11.12%)(圖5A);從綱的分類水平來看(圖5B),酸馬奶發(fā)酵引子細菌在芽孢桿菌綱(Bacilli,88.74%)、α-變形桿菌綱(Alphaproteobacteria,9.87%)、γ-變形桿菌綱(Gammaproteobacteria,1.25%)中均有分布;從目的分類水平來看(圖5C),酸馬奶發(fā)酵引子細菌主要在乳酸桿菌目(Lactobacillales,88.74%)和紅螺菌目(Rhodospirillales,9.84%)有分布;在科的分類水平上,該樣品細菌主要在乳桿菌科(Lactobacillaceae,84.08%)、醋桿菌科(Acetobacteraceae,9.84%)和鏈球菌科(Streptococcaceae,4.59%)有分布;在屬的分類水平上,如圖5E所示,相對豐度由大到小依次為乳桿菌屬(Lactobacillus,84.08%)、醋桿菌屬(Acetobacter,9.83%)、乳球菌屬(Lactococcus,2.41%)、鏈球菌屬(Streptococcus,2.18%)、其他(others,1.5%)。由此可見,乳酸桿菌屬為該酸馬奶引子樣品的絕對優(yōu)勢種群。
圖6 樣品中菌群相對豐度Fig. 6 Relative abundances of bacteria in samples of koumiss starter culture at various taxonomic levels
酸馬奶口味存在地區(qū)差異,這種差異可由發(fā)酵引子延續(xù)。因為酸馬奶的發(fā)酵引子即為發(fā)酵結(jié)束后留存的酸馬奶,可采用不同的方法保存至下一次發(fā)酵,本研究酸馬奶引子樣品為該地區(qū)食療用酸馬奶釀制方將發(fā)酵結(jié)束后的酸馬奶在罐中冷藏保存。酸馬奶引子是專屬的,不僅是酸馬奶發(fā)酵的基礎(chǔ),也可代表該地區(qū)酸馬奶的基本特點。
大多數(shù)成年人由于缺乏乳糖酶或乳糖酶活力低而不能消化利用乳糖,導(dǎo)致乳糖不耐癥,表現(xiàn)為腸胃氣脹、腹痛和腹瀉[11-12]。鮮馬乳中所含的糖類物質(zhì)幾乎全為乳糖,且比牛乳的含量高出20%之多[13]。孫天松等[7]檢測新疆地區(qū)28 個酸馬奶樣品化學(xué)組成,結(jié)果顯示其乳糖質(zhì)量濃度為1.34~3.4 g/100 mL。蒙古國酸馬奶的乳糖質(zhì)量分數(shù)平均為2.3%(發(fā)酵時間18 h),前蘇聯(lián)酸馬奶的乳糖質(zhì)量分數(shù)為2.6%(發(fā)酵時間24 h)[14]。鮮馬乳中乳糖含量降低是由于鮮馬乳中的乳糖在乳酸菌的作用下,通過半乳糖苷透過酶和磷酸轉(zhuǎn)移酶的作用進入細胞,然后由β-半乳糖苷酶水解成一分子的葡萄糖和一分子的半乳糖。本研究酸馬奶引子樣品中乳糖含量僅為(0.281±0.011)%,低于上述研究結(jié)果,該結(jié)果證明,酸馬奶發(fā)酵結(jié)束,保存引子的過程中此反應(yīng)雖然緩慢,但仍在繼續(xù)。因此酸馬奶非常適合于乳糖不耐癥患者飲用。
馬乳中的乳糖在乳酸菌和酵母菌的作用下降解,產(chǎn)生大量以乳酸為主的有機酸,使得其pH值下降。布仁其其格等[15]對內(nèi)蒙古錫林郭勒盟正鑲黃旗農(nóng)戶家酸馬奶發(fā)酵過程進行檢測,pH值最低達到3.54。孫天松等[7]對新疆維吾爾自治區(qū)不同地區(qū)28 份酸馬奶樣品測定的pH值為3.47~4.56。Ishii[16]對蒙古國游牧民族3 個地區(qū)的酸馬奶進行了測定,pH值為3.7~3.9。本研究中酸馬奶引子樣品pH值為3.54,處于較低水平。酸馬奶pH值受到微生物組成、環(huán)境、氣候、發(fā)酵溫度和發(fā)酵時間等因素的影響而產(chǎn)生一定差異。
有機酸不僅是酸乳中乳糖代謝的中間產(chǎn)物,又是形成某些風(fēng)味物質(zhì)的前體物。本研究檢測的4 種有機酸中,乳酸質(zhì)量分數(shù)最高,為(1.506±0.069)%。在發(fā)酵乳的生產(chǎn)中乳酸起著非常重要的作用,它不僅是導(dǎo)致pH值降低的主要原因,也是酸乳濃厚的風(fēng)味和香味的來源之一[17]。本樣品中丁酸含量僅次于乳酸。據(jù)臨床數(shù)據(jù)顯示,胃排空延遲為常見疾病,尤其多發(fā)于功能性消化不良、糖尿病性或者特發(fā)性胃輕癱等患者,主要表現(xiàn)為胃飽脹感、腹痛、腹脹、惡心、嘔吐等[18-23]。丁酸可以特異性的通過GPR43受體促進任何小鼠gastroid中產(chǎn)ghrelin內(nèi)分泌細胞的分化,從而增加胃的三相收縮促進胃排空[24]。
酸乳制備過程中,乳脂類的酶促水解反應(yīng)最終產(chǎn)生游離脂肪酸和甘油。此外,乳糖代謝、氨基酸脫氨基和脂類氧化等都可能形成游離脂肪酸。本研究共檢測出19 種脂肪酸,包括12 種飽和脂肪酸和7 種不飽和脂肪酸。不飽和脂肪酸中的多不飽和脂肪酸是人體必需的脂肪酸,具有諸多生理功能,例如調(diào)節(jié)血脂、改善血液循環(huán)、防止動脈粥樣硬化和血栓形成等[25-26]。但多不飽和脂肪酸機體自身不能合成,必需由食物供給。本樣品檢測出4 種多不飽和脂肪酸,分別為亞油酸(C18:2)、α-亞麻酸(C18:3n3)、γ-亞麻酸(C18:3n6)和DHA(C22:6n3)。
酸馬奶發(fā)酵的特有風(fēng)味和營養(yǎng)價值是由微生物之間的共同作用促成的。酸馬奶中微生物的多樣性極其豐富。多年來,在酸馬奶微生物多樣性的研究中,多采用傳統(tǒng)分類鑒定方法。孫天松等[27]采用此方法從新疆地區(qū)30 份酸馬奶中共分離到152 株乳酸菌,其中Lactobacillus helveticus占51.3%,Lactobacillus acidophilus占18.4%,Lactobacillus casei subsp. pseudoplantarum占8.6%。Ring等[28]也采用傳統(tǒng)培養(yǎng)方式鑒定蒙古國酸馬奶中乳酸菌的多樣性,結(jié)果發(fā)現(xiàn)乳桿菌屬是酸馬奶中的優(yōu)勢菌群,同時也檢測到了嗜熱鏈球菌、拉烏爾菌屬、嗜冷桿菌屬等。由于該種方法的局限性,同時隨著分子生物學(xué)的不斷發(fā)展,高通量測序技術(shù)自2006年開始廣泛應(yīng)用于微生物群落結(jié)構(gòu)分析領(lǐng)域。布仁其其格[8]采用454焦磷酸高通量測序技術(shù),對內(nèi)蒙古錫林郭勒盟酸馬奶發(fā)酵過程中細菌群落結(jié)構(gòu)動態(tài)變化進行了測定,其結(jié)果顯示酸馬奶發(fā)酵過程中存在豐富的細菌多樣性,而且乳桿菌屬為優(yōu)勢細菌屬,占51.06%,乳球菌屬為其次的優(yōu)勢菌屬,占30.29%。本研究利用Illumina MiSeq第2代測序技術(shù)鑒定內(nèi)蒙古科爾沁地區(qū)酸馬奶引子樣品細菌多樣性,其結(jié)果顯示,乳桿菌屬為該樣品絕對優(yōu)勢種群,占84.08%之多。此值明顯高于以上研究結(jié)果,分析其可能的原因:1)Illumina MiSeq高通量測序技術(shù)覆蓋深度非常大,對物種多樣性的分析十分有利,因此該技術(shù)不僅可作為全面、客觀地揭示特定環(huán)境中群落結(jié)構(gòu)的有效途徑,同時也可作為更深層次挖掘有益微生物資源的有效手段;2)酸馬奶引子在保存過程中,隨著pH值的持續(xù)下降,其他菌屬無法承受如此酸性環(huán)境而降解,但乳桿菌屬因其更強的耐酸性,持續(xù)繁殖,繼而占據(jù)絕對優(yōu)勢。目前,益生菌受到人們越來越多的關(guān)注。根據(jù)聯(lián)合國糧食及農(nóng)業(yè)組織和世界衛(wèi)生組織益生菌的定義,益生菌是一種食用者攝取適當量后,能對食用者健康發(fā)揮有益作用的活菌[29]。益生菌通常由食物攜帶或以制劑形式口服,若要發(fā)揮其生理功能,必需要耐受胃酸而活著到達腸道[30-31]。因此作為益生菌,應(yīng)當具備一些生物學(xué)特性,例如耐酸性。本研究中,酸馬奶引子樣品pH值低至3.54,且仍有大量的乳桿菌屬存活,因此該酸馬奶引子樣品可作為優(yōu)良益生菌的珍貴來源。
本研究對內(nèi)蒙古科爾沁地區(qū)酸馬奶引子樣品化學(xué)成分和細菌多樣性進行分析?;瘜W(xué)成分測定結(jié)果表明,該酸馬奶樣品pH值為3.54,乳糖、半乳糖均較低,未檢測到葡萄糖;4 種有機酸中乳酸含量最高,其次為丁酸;共檢測12 種飽和脂肪酸和7 種不飽和脂肪酸,不飽和脂肪酸中α-亞麻酸含量最高。細菌多樣性分析結(jié)果表明,該樣品中細菌主要分布于4 個屬,分別為乳桿菌屬(Lactobacillus)、醋桿菌屬(Acetobacter)、乳球菌屬(Lactococcus)、鏈球菌屬(Streptococcus);乳桿菌屬為其絕對優(yōu)勢菌屬。
該酸馬奶引子樣品不僅含有較高水平的α-亞麻酸,且含有相對含量高達84.08%、耐酸能力較強的乳桿菌屬,因此可作為優(yōu)良的微生物資源,用于乳酸桿菌屬、乳球菌屬等益生菌的分離和篩選。