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達(dá)托霉素新雜質(zhì)及其來(lái)源研究

2019-06-01 07:03夏興邵東孫新強(qiáng)
中國(guó)抗生素雜志 2019年5期
關(guān)鍵詞:側(cè)鏈硅烷雜質(zhì)

夏興 邵東 孫新強(qiáng),*

(1 上海來(lái)益生物藥物研究開發(fā)中心有限責(zé)任公司,上海 200240;2 浙江醫(yī)藥股份有限公司新昌制藥廠,新昌 312500)

達(dá)托霉素是一種由13個(gè)氨基酸組成的新型脂肽類抗生素,是一種鈣離子依賴型的抗生素。在鈣離子存在的條件下,它將以非共價(jià)鍵的形式與細(xì)胞膜上達(dá)托霉素結(jié)合蛋白(DBPs)結(jié)合。達(dá)托霉素由微生物玫瑰孢鏈霉菌發(fā)酵生成的,具有在體外抗絕大多數(shù)的臨床革蘭陽(yáng)性菌的作用,包括厭氧菌、腸球菌等耐藥菌,且主要用于耐藥菌,如耐萬(wàn)古霉素的腸球菌(VRE),耐甲氧西林金葡菌(MRSA)等,在醫(yī)學(xué)方面具有廣闊的應(yīng)用前景[1-2]。

達(dá)托霉素的化學(xué)結(jié)構(gòu)復(fù)雜,結(jié)構(gòu)如圖1所示,其生產(chǎn)、純化、運(yùn)輸、保藏環(huán)節(jié)的條件變化均會(huì)導(dǎo)致雜質(zhì)的產(chǎn)生,影響產(chǎn)品質(zhì)量和治療效果。為評(píng)價(jià)藥物的安全性、雜質(zhì)的生物學(xué)影響,必須對(duì)相關(guān)雜質(zhì)的結(jié)構(gòu)進(jìn)行確證。同時(shí),在進(jìn)行達(dá)托霉素申報(bào)注冊(cè)時(shí)也需要說(shuō)明相關(guān)雜質(zhì)的來(lái)源,因此對(duì)相關(guān)雜質(zhì)的研究十分重要。本文在研究達(dá)托霉素相關(guān)雜質(zhì)過(guò)程中[3],發(fā)現(xiàn)了一個(gè)未知雜質(zhì)。通過(guò)高效液相分離純化了該雜質(zhì),并進(jìn)行UPLC-MS和NMR測(cè)定,推定了其結(jié)構(gòu)。根據(jù)其化學(xué)結(jié)構(gòu),檢測(cè)了生產(chǎn)原料,推測(cè)了其可能的來(lái)源。

1 儀器和試劑

Aglient 1100液相系統(tǒng)(美國(guó)Aglient);質(zhì)譜儀:ACQUITYTMUPLC & Q-TOF MS Premier(美國(guó)Waters);核磁共振儀:Bruker Avance III 400MHz(德國(guó)Bruker);GC-MS:安捷倫7890A-5975C(美國(guó)Aglient)。

達(dá)托霉素(浙江醫(yī)藥股份有限公司,批號(hào):306DT150301);癸酸:杭州油脂化工(批號(hào):20170321009);乙腈購(gòu)于百靈威化學(xué)技術(shù)有限公司,色譜純;硅烷化試劑購(gòu)于上海安普科技;其他試劑均為分析純。

2 實(shí)驗(yàn)方法

2.1 HPLC分析方法

按照文獻(xiàn)方法進(jìn)行HPLC分析[4]。色譜柱:菲羅門C8,IB-SIL(4.6mm×250mm, 5μm) C8柱;柱溫:25℃(22~28℃);檢測(cè)波長(zhǎng):214nm;流速:1.5mL/min;進(jìn)樣量:20μL。

流動(dòng)相:A相0.45% NH4H2PO4中的20%乙腈,pH 3.25;B相0.45% NH4H2PO4中的50%乙腈,pH 3.25。目標(biāo)流動(dòng)相為35%乙腈于0.45% NH4H2PO4中,使得達(dá)托霉素的保留時(shí)間維持在(36.0±1.5)min,如有偏差,可通過(guò)調(diào)節(jié)A、B相,使保留時(shí)間在合理范圍內(nèi)。

溶液配制:精密量適量達(dá)托霉素樣品,加A相和B相(1:1,V/V)流動(dòng)相,制成含達(dá)托霉素1mg/mL?;靹?,進(jìn)行HPLC分析。

2.2 相關(guān)雜質(zhì)的制備方法

利用HPLC對(duì)進(jìn)行雜質(zhì)制備,制備條件沿用HPLC分析條件。對(duì)達(dá)托霉素樣品中各個(gè)雜質(zhì)目標(biāo)峰進(jìn)行收集。收集的各個(gè)雜質(zhì)溶液-18℃冷凍保存。等累計(jì)到一定量后,合并相同組分。減壓薄膜濃縮去除有機(jī)溶劑,冷凍干燥,獲得含有雜質(zhì)和鹽的混合物。使用無(wú)水甲醇溶解含上述各個(gè)雜質(zhì)的混合物,過(guò)濾去除不溶于甲醇的鹽,獲得的溶液進(jìn)行減壓濃縮,獲得比較純的雜質(zhì)樣品。

2.3 UPLC-MS分析方法

方法:ESI源,正離子。毛細(xì)管電壓為3.0kV,錐孔電壓35V,源內(nèi)溫度100℃,干燥氣流溫度250℃,干燥器流速400L/h; 碰撞能MS 6eV、MS-MS 35eV,質(zhì)量掃描范圍m/z80~2000,掃描時(shí)間1s,掃描間隔時(shí)間0.02s,樣品濃度1mg/mL。

2.4 NMR檢測(cè)方法

樣品溶于0.5mL DMSO-d6中,進(jìn)行核磁共振掃描。采用Bruke Avance III 400MHz配5mm BBOF探頭,觀察頻率100MHz,掃描范圍-20~220ppm,30度脈沖角,采樣時(shí)間0.68s,延遲時(shí)間2s,掃描次數(shù)5120次,測(cè)定溫度300K。

2.5 癸酸的GC-MS分析方法

癸酸樣品,熔融后取100μL于氣相頂空瓶中,加入900μL硅烷化試劑,封閉后70℃靜置1h。進(jìn)行GC-MS分析。

圖1 達(dá)托霉素結(jié)構(gòu)圖Fig.1 The structure of daptomycin

G C-M S方法:色譜柱:D B-5(30m×0.25mm×0.25μm);進(jìn)樣量:0.2μL;進(jìn)樣溫度:270℃;分流比:100:1;載氣:氦氣(99.999%);流量:1mL/min;柱溫:40℃保持3min,以10℃/min升至300℃,保持8min;接口溫度:270℃;離子源溫度:230℃;四級(jí)桿溫度:150℃;電離方式:EI+,70ev;檢測(cè)器電壓:2200V;掃描方式:全掃描;質(zhì)量范圍:20~500;NIST 2014譜庫(kù)。

3 實(shí)驗(yàn)結(jié)果

3.1 HPLC分析結(jié)果

所述的方法,對(duì)達(dá)托霉素進(jìn)行了分析,發(fā)現(xiàn)達(dá)托霉素樣品中雜質(zhì)較多,主要含有10個(gè)雜質(zhì)。HPLC圖譜參見圖2。針對(duì)這些雜質(zhì),進(jìn)行了分離純化。其中,保留時(shí)間30.1min(相對(duì)保留時(shí)間RRT為0.82)處的雜質(zhì)為新雜質(zhì)。

3.2 MS鑒定結(jié)果

采用全掃描一級(jí)質(zhì)譜,并進(jìn)一步對(duì)新雜質(zhì)進(jìn)行碰撞誘導(dǎo)解離實(shí)驗(yàn),得到一級(jí)、二級(jí)質(zhì)譜圖,一級(jí)MS和二級(jí)MS見圖3~4。

圖2 達(dá)托霉素HPLC圖Fig.2 HPLC profile of daptomycin

圖3 新雜質(zhì)MS圖Fig.3 MS spectra of new impurity

按照文獻(xiàn)[5]的方法,本研究進(jìn)行新雜質(zhì)MS-MS的解析。新雜質(zhì)MS-MS片段模式如圖5所示。正離子模式下,新雜質(zhì)的[M+H]+準(zhǔn)分子離子峰為m/z1618.6995,元素組成為C72H100N17O26;m/z809.8456為[M+2H]2+峰;m/z1280.51為雜質(zhì)脫去脂肪?;鶄?cè)鏈和色氨酰的片段。其他主要的MS-MS數(shù)據(jù)參見表1。MS-MS顯示,y1~y12的離子碎片與達(dá)托霉素的一致;b離子與達(dá)托霉素相比,碎片峰都比達(dá)托霉素的b離子小2。推測(cè)該化合物為在癸?;鶄?cè)鏈上形成雙鍵。

3.3 NMR鑒定結(jié)果(表2,圖6~7)

為進(jìn)一步確證側(cè)鏈結(jié)構(gòu),進(jìn)行了核磁共振分析。13C NMR圖譜參見圖6;1H NMR圖譜參見圖7。核磁共振圖譜的歸屬見表2。

圖4 新雜質(zhì)MS-MS圖Fig.4 MS-MS spectra of new impurity

圖5 新雜質(zhì)結(jié)構(gòu)和MS-MS片段模式Fig.5 Chemical structures of new impurity and its MS-MS fragmentation patterns

表1 新雜質(zhì)的MS-MS序列數(shù)據(jù)分析Tab.1 Ions observed in MS-MS sequence analysis of new impurity

表2 13C NMR和1H NMR在DMSO-d6中數(shù)據(jù)Tab.2 1H NMR and 13C NMR Data for new impurity in DMSO-d6

圖6 新雜質(zhì)13C NMR圖Fig.6 13C NMR spectra of new impurity

按照文獻(xiàn)[5]的方法,我本研究進(jìn)行新雜質(zhì)核磁共振譜圖的解析。相比達(dá)托霉素而言,在13C NMR上,于123.59和132.98ppm處有2個(gè)信號(hào),屬于烯鍵,同時(shí)在28ppm處,少了2個(gè)信號(hào)峰。結(jié)合1H NMR、推測(cè)在側(cè)鏈的3,4位形成了雙鍵。因此推測(cè)該雜質(zhì)的結(jié)構(gòu),為N-(3-癸烯?;?-L-色氨酰基-D-天冬酰胺?;?L-天冬氨酰基-L-蘇氨?;?甘氨?;?L-鳥氨?;?L-天冬氨?;?D-丙氨?;?L-天冬氨?;?甘氨?;?D-絲氨?;?蘇-3甲基-L-谷氨?;?L-3-鄰氨基苯甲?;?L-丙胺酸-ε1-內(nèi)脂,其與達(dá)托霉素的主要區(qū)別在于側(cè)鏈的3,4含有雙鍵。

3.4 癸酸GC-MS分析結(jié)果(圖8~9,表3)

采用ACD lab軟件處理GC-MS數(shù)據(jù)。GC-MS的離子流參見圖8。

圖7 新雜質(zhì)1H NMR圖Fig.7 1H NMR spectra of new impurity

圖8 硅烷化癸酸離子流圖Fig.8 Ion flow spectra of silanized decanoic acid

在硅烷化癸酸的離子流圖中,主要有3個(gè)離子峰。其中組分為硅烷化癸酸。在12.56min,有一個(gè)微量物質(zhì),其MS圖參見圖9。分子量顯示,其比硅烷化癸酸少2Da,為硅烷化癸烯酸(表3)。

GC-MS結(jié)果顯示,癸酸樣品中主要成分為癸酸,主要雜質(zhì)為辛酸、壬酸。并且在樣品中發(fā)現(xiàn)癸烯酸。

GC-MS分析結(jié)果表明,雜質(zhì)為發(fā)酵過(guò)程中補(bǔ)加癸酸時(shí)癸酸中含有少量的癸烯酸所致。因此,想要控制雜質(zhì),需在發(fā)酵過(guò)程中控制癸酸質(zhì)量。

4 討論

圖9 硅烷化癸烯酸MS圖Fig.9 MS spectra of silanized decenoic acid

表3 硅烷化癸酸樣品主要成分Tab.3 Major component of silanized decanoic acid

肽類化合物結(jié)構(gòu)復(fù)雜,由于之間為肽鍵相連,通過(guò)核磁分析很難確定連接關(guān)系。而質(zhì)譜分析所形成的一系列碎片卻對(duì)肽鍵連接順序分析十分有效。Cubist曾經(jīng)報(bào)道過(guò)一個(gè)分子量為1618的雜質(zhì),與我們分離到的新雜質(zhì)分子量一致,但是Cubist并沒(méi)有明確其結(jié)構(gòu)[4,6]。本文在達(dá)托霉素研究的基礎(chǔ)上,利用UPLC-MS和NMR分析了達(dá)托霉素新分離到的雜質(zhì)。測(cè)試結(jié)果表明,該雜質(zhì)與達(dá)托霉素的區(qū)別在于側(cè)鏈上有烯鍵,進(jìn)一步的研究結(jié)果表明,發(fā)酵原料癸酸中含有的微量癸烯酸是該雜質(zhì)形成的可能原因。因此,認(rèn)為在發(fā)酵過(guò)程中,控制起始原料癸酸的質(zhì)量,可以控制該雜質(zhì)的含量[7]。

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