李芬，董書甲，趙攀，趙新節(jié)，何熹

(齊魯工業(yè)大學(xué)山東省微生物工程重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，山東濟(jì)南 250353)

甲殼素，又名幾丁質(zhì)，是一類天然多糖類高分子化合物，具有很好的生物安全性、生物相容性和生物可降解性，被廣泛應(yīng)用到醫(yī)藥、食品、農(nóng)業(yè)、保健品、化妝品和紡織等眾多領(lǐng)域之中[1]。作為土壤改良劑，甲殼素含有豐富的碳和氮元素，使得甲殼素被微生物分解利用后可以用它來作為植物生長的養(yǎng)分，使得土壤中的微生物體系得到改善[2]。

土壤微生物是土壤生態(tài)系統(tǒng)中最活躍的成員，能夠利用有機(jī)質(zhì)作為營養(yǎng)及能量來源，與土壤酶共同參與土壤各種化學(xué)反應(yīng)和生物化學(xué)過程，其生物量及數(shù)量分布可以敏感地反映土壤環(huán)境質(zhì)量的變化[3]。土壤微生物對植株的生長有良好的促進(jìn)作用[4-7]。趙春燕等發(fā)現(xiàn)，添加甲殼素的土壤中自生固氮細(xì)菌、纖維分解細(xì)菌、乳酸細(xì)菌和放線菌等有益菌數(shù)量顯著增加，酵母菌數(shù)量略有增加，而常見的霉菌和其它絲狀真菌的數(shù)量明顯減少[8]。尹秀蓮等[9]通過對甲殼素及其衍生物的研究發(fā)現(xiàn)，甲殼素低聚糖對革蘭氏陽性菌表現(xiàn)出強(qiáng)抑制作用。土壤中的微生物群落結(jié)構(gòu)失衡，尤其是土壤中真菌群落結(jié)構(gòu)的變化是引起連作障礙的主要原因[10]。王艷芳等[11]研究了甲殼素對連作條件下平邑甜茶幼苗生長及土壤環(huán)境的影響，發(fā)現(xiàn)甲殼素對真菌的生長有明顯的抑制作用而對細(xì)菌的生長有促進(jìn)作用；改變了土壤中微生物的群落結(jié)構(gòu)，從而改善了連作土壤環(huán)境，有效緩解了平邑甜茶的連作障礙。本研究以甲殼素處理葡萄園土壤，采用細(xì)菌16S rDNA[細(xì)菌染色體上編碼16S rRNA(核糖體RNA)相對應(yīng)的DNA序列]、真菌內(nèi)轉(zhuǎn)錄間隔區(qū)(Internal Transcribed Spacer，ITS)測序，對土壤中的細(xì)菌和真菌種類組成及數(shù)量進(jìn)行分析，從而了解甲殼素添加對葡萄園土壤微生物群落結(jié)構(gòu)的影響。

1 材料與方法

1.1 土壤樣品采集

試驗(yàn)在山東省萊西市沽河街道辦事處曲家莊村(葛洪強(qiáng)葡萄園)進(jìn)行，試驗(yàn)設(shè)置2個(gè)處理：①對照組，土壤中不添加甲殼素。②試驗(yàn)組，土壤中添加甲殼素。各處理面積均為666.7m2。

試驗(yàn)所用甲殼素為濟(jì)南阿波羅甲殼素肥業(yè)有限公司生產(chǎn)的963牌養(yǎng)根素(其主要成分為蝦蟹殼生產(chǎn)的殼聚糖，含量為60～80g/L)，隨基肥施入，離植株60cm開30cm深的溝施入，每年1次，每666.7m2用量300g(折合純甲殼素的量)，2009～2014年連續(xù)6年施入。

2015年進(jìn)行土壤樣品采集。隨機(jī)選取添加甲殼素和未添加甲殼素的土壤區(qū)域，每個(gè)區(qū)域選3處取樣，每處采用對角線五點(diǎn)取樣法采集土壤樣品，將三次樣品混勻。取樣時(shí)去除地表面的植物等殘?bào)w，用土鏟垂直切開土壤，取0～20cm土層的土壤，挑出碎石、植物殘根后，將土壤樣本裝入無菌自封袋中，盡快帶回實(shí)驗(yàn)室后送檢。應(yīng)用Illumina Misq測序平臺(華大基因)進(jìn)行分析。

1.2 高通量測序分析

基因測序的總體工作流程大致為：①土壤DNA粗提。土壤中微生物原基因組DNA的提取采用Mag-Bind Soil DNA Kit Protocol試劑盒(OMEGA)。②樣品PCR。分別利用細(xì)菌16S rDNA和真菌ITS通用引物進(jìn)行擴(kuò)增，擴(kuò)增的PCR產(chǎn)物-20℃保存。③PCR產(chǎn)物進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳分析。采用DL2000 Marker、1%的瓊脂糖凝膠，110V恒壓對PCR產(chǎn)物進(jìn)行電泳35分鐘，凝膠成像儀觀察電泳結(jié)果。④高通量測序。使用Axy Prep DNA凝膠回收試劑盒對真菌、細(xì)菌的PCR擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行切膠回收。采用Life Qubit 3.0對純化后的PCR產(chǎn)物進(jìn)行濃度定量，構(gòu)建真菌、細(xì)菌文庫。將樣品(文庫)逐步稀釋到4nm，按1∶1加入氫氧化鈉室溫變性5分鐘，加入HT1 Buffer預(yù)冷，然后進(jìn)行高通量上機(jī)測序[12]。

1.3 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析

下機(jī)后，采用雙峰(pair-end)測序法舍棄原始數(shù)據(jù)(Raw reads)中的低質(zhì)量序列(保證50個(gè)連續(xù)堿基的平均質(zhì)量大于Q30)。用Flash軟件，過濾對接上的序列(連續(xù)相同的堿基個(gè)數(shù)小于6，模糊堿基個(gè)數(shù)小于1)，設(shè)計(jì)無法對接的序列，得到最終用于OTU(operational taxonomic unit)分析的序列(Clean reads)。

采用Uparse 軟件將相似度達(dá)97%以上的序列歸為一個(gè)操作分類單元即OTU；聚類所有序列(Ucl法)，參照RDP(Ribosomal Database Project)數(shù)據(jù)庫，采用貝葉斯算法注釋每個(gè)分類中的OTU代表序列，得到每個(gè)OTU的分類學(xué)信息。分別利用Greengene、UNITE數(shù)據(jù)庫進(jìn)行細(xì)菌及真菌的物種注釋。根據(jù)OTU使用mothur軟件進(jìn)行Alpha多樣性分析，包括Observed species指數(shù)、Chao指數(shù)、Ace指數(shù)、Shannon指數(shù)、Simpson指數(shù)，使用R軟件(V3.1.1)繪制稀釋曲線、Rank abundance曲線、物種累積曲線。

2 結(jié)果與分析

2.1 OTU統(tǒng)計(jì)及豐度分析

物種豐富度是指群落中物種數(shù)目的多少。物種均勻度是指一個(gè)群落或環(huán)境中的全部物種數(shù)目個(gè)體數(shù)目的分配狀況；物種數(shù)目越多，多樣性越豐富，物種數(shù)目相同時(shí)，每個(gè)物種的個(gè)體數(shù)越平均，則多樣性越豐富[13]。OTU Rank曲線能夠體現(xiàn)樣品的物種多樣性，可以同時(shí)解釋樣品多樣性的兩個(gè)方面，即樣品所含物種的豐富度和均勻度。物種的豐富程度由曲線的橫軸長度來反映，曲線越寬，說明樣品中物種組成越豐富。樣品中物種的均勻度由曲線縱軸的形狀來反映，曲線越平坦，說明樣品中物種組成的均勻度越高。由圖1與圖2可知，試驗(yàn)組的細(xì)菌和真菌OTU Rank曲線圖要比對照組的平坦且橫軸長度長。由此可得，試驗(yàn)組所含細(xì)菌和真菌群落的均勻度和豐富度要比對照組好，而且細(xì)菌的物種群落要比真菌的豐富且均勻度更高。

圖1樣品的細(xì)菌OTU Rank曲線圖

圖2 樣品的真菌OTU Rank曲線圖

2.2 Alpha多樣性分析

通過對供試土壤組進(jìn)行16S rDNA及ITS高通量測序，共獲得747336條原始數(shù)據(jù)，700780條過濾數(shù)據(jù)。在97%相似度下，細(xì)菌獲得5661個(gè)OTU，真菌獲得481個(gè)OTU。每個(gè)土壤樣品的序列數(shù)及OTU數(shù)及Alpha多樣性值見表1。

由表1可知，試驗(yàn)組的Observed species指數(shù)、Chao指數(shù)、Ace指數(shù)以及Shannon指數(shù)均比對照組的大，Simpson指數(shù)比對照組要小。Chao和Ace指數(shù)可反映群落物種豐富度，Shannon和Simpson指數(shù)可反映群落物種多樣性。與對照組相比，試驗(yàn)組的細(xì)菌和真菌群落的物種豐富度高、均勻度大，具有更大的群落多樣性，即土壤微生物種類增多，有助于土壤有機(jī)質(zhì)及養(yǎng)分的積累，有利于植物的生長發(fā)育與繁殖。

表1 葡萄園土壤測序序列和Alpha多樣性分析

2.3 物種注釋分析

由于樣品中所檢測出的微生物種類繁多，許多物種含量十分少，以物種的豐度大于0.5%作為劃分依據(jù)。由表2可得，對照組土壤中的細(xì)菌門類主要為變形菌門、酸桿菌門、浮霉菌門和厚壁菌門，試驗(yàn)組土壤中的主要為變形菌門、酸桿菌門、厚壁菌門、擬桿菌門和浮霉菌門。加入甲殼素后，土壤中細(xì)菌群落相對豐度增加較大的是擬桿菌門和厚壁菌門，分別增加了193.52%和47.45%；泉古菌門和疣微桿菌門則分別減少了47.30%和46.61%。

由表3可得，試驗(yàn)組與對照組相比，主要真菌中，子囊菌門增加了129.25%，擔(dān)子菌門增加了47.24%，接合菌門減少了80.06%。

從屬分類水平看，由表4可看出，兩組土壤樣品的細(xì)菌所占比例差距較大，試驗(yàn)組的亞硝化螺菌假絲酵母屬、紅游動(dòng)菌屬和慢生根瘤菌屬等所占比例明顯少于對照組，浮霉菌屬、腸球菌屬和芽孢桿菌屬等所占比例明顯多于對照組。

從表5可看出，在兩組樣品土壤微生物中，真菌種類大致相同，但試驗(yàn)組的土赤殼屬、枝孢屬和外瓶霉屬等所占比例明顯低于對照組，紅酵母屬、蟲草屬、隱球菌屬和被孢霉屬等種類所占比例明顯高于對照組。

表2 對照組和試驗(yàn)組門水平的細(xì)菌主要群落相對豐度(%)

表3 對照組和試驗(yàn)組門水平的真菌主要群落相對豐度(%)

表4 對照組和試驗(yàn)組屬水平的細(xì)菌主要群落相對豐度(%)

表5 對照組和試驗(yàn)組屬水平的真菌主要群落相對豐度(%)

3 討論

本研究通過16S rDNA及ITS高通量測序，分析了添加甲殼素(試驗(yàn)組)與未添加甲殼素(對照組)的土壤細(xì)菌與真菌群落結(jié)構(gòu)差異。結(jié)果表明，添加甲殼素后，土壤中的細(xì)菌及真菌物種豐富度、均勻度及物種多樣性均有明顯的提高。土壤微生物是土壤生態(tài)系統(tǒng)的重要組成成分，主導(dǎo)著養(yǎng)分循環(huán)和能量流動(dòng)，對維持系統(tǒng)的穩(wěn)定性及可持續(xù)性具有重要作用[14]，且微生物參與大約90%的土壤反應(yīng)過程[15]，故其種類的增多在一定程度上有助于土壤有機(jī)質(zhì)及養(yǎng)分的積累，有利于植物的生長發(fā)育與繁殖。

添加甲殼素后，土壤中細(xì)菌與真菌中的微生物群落組成比例均有所變化。從門類水平來看，土壤中擬桿菌相對豐度明顯提高，擬桿菌門可以通過降解纖維素、果膠和其他復(fù)雜的碳?xì)浠衔餅橹参锾峁┨厥獾臓I養(yǎng)[16]；試驗(yàn)組與對照組相比，絲狀真菌的相對豐度減少，說明甲殼素對絲狀真菌有一定的抑制作用，這與趙春燕[8]通過不同濃度的甲殼素灌根處理盆栽番茄來探究其對土壤微生物的影響研究相一致。從屬類水平來看，土壤中細(xì)菌浮霉菌屬、芽孢桿菌屬，真菌被孢霉屬的相對豐度明顯提高，而真菌枝孢屬的相對豐度明顯受到抑制。浮霉菌屬可以參與氮、碳、硫循環(huán)，進(jìn)行多種循環(huán)代謝，富集礦物質(zhì)，增強(qiáng)土壤肥力[17]；芽孢桿菌屬可以代謝碳源[16]，具有保濕、抑植物病菌的作用，對植物有促生作用[18]；被孢霉屬能分解土壤中的糖類和簡單多糖[19]，為植物提供營養(yǎng)元素；枝孢屬為植物致病菌，可寄生于植物各地上部分引起病害[20]?？偟膩碚f，甲殼素能夠增加土壤微生物的物種種類與生物量，提高大部分有益菌的相對豐度，抑制部分有害菌的生長，有利于土壤中有機(jī)質(zhì)與營養(yǎng)的積累，改善土壤環(huán)境。