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關(guān)鍵酶基因的過表達(dá)與環(huán)境因素對大腸桿菌血紅素合成的調(diào)控

2018-12-15 02:56陳丹園沈云杰楊燕唐蕾
食品與發(fā)酵工業(yè) 2018年11期
關(guān)鍵詞:雙酶共表達(dá)血紅素

陳丹園,沈云杰,楊燕,唐蕾,*

1(江南大學(xué),工業(yè)生物技術(shù)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇 無錫,214122) 2(江南大學(xué) 生物工程學(xué)院,江蘇 無錫,214122)

血紅素是包含原卟啉及環(huán)中配位的二價鐵離子的小分子物質(zhì)[1],廣泛存在于動植物和微生物中,主要發(fā)揮三大作用:一是血紅素中的鐵和整體鐵元素的轉(zhuǎn)換平衡直接關(guān)系到細(xì)胞甚至整個生命體能否正常運(yùn)轉(zhuǎn)[2];二是血紅素具有間接抗氧化的功能,血紅素的降解物質(zhì)膽綠素和膽紅素是活性氧很好的捕獲劑,可以維持細(xì)胞內(nèi)氧化還原氛圍的穩(wěn)定[3];三是作為血紅素蛋白的輔基,酶結(jié)合輔基后具備活性來維持生命體的正常運(yùn)轉(zhuǎn)[4],這些酶在氣體運(yùn)輸儲存[5-6]、呼吸鏈的氧化還原能量代謝及電子傳遞[7-8]、調(diào)控信號通路[9-10]等過程中發(fā)揮著至關(guān)重要的作用。

大腸桿菌作為基因工程的常用宿主菌,主要以C5途徑合成各種卟啉物質(zhì)(圖1),既可用于生產(chǎn)血紅素又可表達(dá)血紅素結(jié)合蛋白,但是血紅素的產(chǎn)量不足成為相關(guān)研究中的主要限制因素。國內(nèi)外學(xué)者圍繞如何提高血紅素合成前體ALA開展了大量研究工作。例如,康振等[11]將來自于Salmonellaarizona的突變基因hemAM與大腸桿菌的hemL基因共表達(dá)于E.coliDH5α,發(fā)現(xiàn)ALA產(chǎn)量大幅度提高。LEE等[12]提出hemD能加速內(nèi)源ALA的產(chǎn)生。YU等[13]經(jīng)轉(zhuǎn)錄分析提出hemA和hemL共表達(dá)后造成糖酵解途徑被抑制,ALA積累會刺激血紅素合成和呼吸代謝。

圖1 大腸桿菌血紅素合成途徑Fig.1 The heme pathway of E.coli

上述研究表明在大腸桿菌中血紅素的合成受到多種酶的調(diào)控,且大腸桿菌本身卟啉合成途徑中的關(guān)鍵基因表達(dá)對終產(chǎn)物血紅素的貢獻(xiàn)尚不清楚,為此本研究構(gòu)建了源于E.coliBL21的gltX、hemA、hemB、hemD、hemH和hemAD與pET28a的重組質(zhì)粒進(jìn)行同源表達(dá),并考查了環(huán)境對Eco/pEA合成血紅素過程的中間產(chǎn)物ALA和終產(chǎn)物血紅素產(chǎn)量影響,為大腸桿菌本身的C5途徑酶的調(diào)控及其環(huán)境影響作出相應(yīng)分析。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 菌株與質(zhì)粒

1.1.2 酶和試劑

引物由華大基因合成;限制性內(nèi)切酶BamH Ⅰ、EcoR Ⅰ、Hind Ⅲ、NotⅠ和XhoⅠ和T4 DNA連接酶均購自Takara公司;CloneEZ PCR克隆試劑盒購自南京金斯瑞生物科技有限公司;5-氨基乙酰丙酸鹽酸鹽標(biāo)準(zhǔn)品、牛血紅蛋白及草酸購自Sigma公司;異丙基-β-D-硫代半乳糖苷(isopropyl-β-D-thiogalactopyranoside,IPTG)、硫酸卡那霉素(Kan)均購自上海生工。

表1 本研究中使用的質(zhì)粒和菌株Table 1 Strains and plasmids used in this study

1.1.3 培養(yǎng)基

LB液體培養(yǎng)基(g/L):胰蛋白胨10,NaCl 10,酵母粉5,pH 7.0,115 ℃滅菌20 min;LB固體培養(yǎng)基:在LB液體培養(yǎng)基中加入2%的瓊脂;LB Kanr培養(yǎng)基:在LB培養(yǎng)基滅菌后溫度降至60 ℃,加入相應(yīng)比例硫酸卡那霉素溶液,終濃度為100 mg/L。

1.2 方法

1.2.1 菌株構(gòu)建

根據(jù)NCBI上公布的E.coliBL21基因組(https:// www.ncbi.nlm.nih.gov/nuccore/AM946981.2)設(shè)計(jì)血紅素合成相關(guān)酶基因的引物用于基因擴(kuò)增,如表2所示。

表2 本研究中所用引物Table 2 Sequences of primers used in this study

注:表格中下劃線標(biāo)注表示酶切位點(diǎn)序列,斜體標(biāo)注表示同源臂序列,粗體標(biāo)注表示添加的RBS序列。

以pEB質(zhì)粒為例,用E.coliBL21作為模板,利用引物hemBF和hemBR擴(kuò)增得到hemB目的片段,用BamH Ⅰ和NotⅠ雙酶切pET28a和片段hemB,膠回收后以T4 DNA連接酶在適當(dāng)酶連體系中連接成新質(zhì)粒pEB如圖2-a,轉(zhuǎn)化至E.coliBL21中驗(yàn)證。同理,gltX、hemA、hemD和hemH基因使用Hind Ⅲ和EcoR Ⅰ雙酶切。

最終將構(gòu)建的pEB、pEX、pED和pEH分別轉(zhuǎn)化至表達(dá)宿主E.coliBL21中,重組菌依次命名為Eco/pEB、Eco/pEX、Eco/pEA、Eco/pED和Eco/pEH。

表達(dá)質(zhì)粒pEAD則借助CloneEZ PCR試劑盒同源重組完成,以原pED為模板用同源臂引物hemADF和hemADR(為確保hemA和hemD均能正常轉(zhuǎn)錄表達(dá),在同源臂引物上引入一個pET28a的RBS序列TAAGGAGGAATCTT)擴(kuò)增得到含有RBS的hemD,隨后用Hind Ⅲ單酶切pEA使其線性化,最后將含有RBS的hemD和線性化的pEA純化后通過CloneEZ酶在22 ℃溫浴30 min后連接得到重組共表達(dá)質(zhì)粒。將上述重組共表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)化至感受態(tài)E.coliBL21中,提取質(zhì)粒并進(jìn)行雙酶切驗(yàn)證,將驗(yàn)證正確的質(zhì)粒命名為pEAD,質(zhì)粒構(gòu)建如圖2-b。轉(zhuǎn)化后的新菌株命名為E.co/ pEAD,保存于-80 ℃甘油中。

圖2 血紅素關(guān)鍵基因重組質(zhì)粒的構(gòu)建Fig.2 Recombinant plasmids of important heme genes

1.2.2 重組蛋白表達(dá)及SDS-PAGE檢測

改進(jìn)宋艷群等[1]方法,重組菌于37 ℃,200 r/min過夜活化培養(yǎng)后以4%接種量轉(zhuǎn)接至含有Kanr的LB液體培養(yǎng)基中;待菌體的OD值為0.6~0.8時以0.5 mmol/L IPTG于37 ℃、200 r/min的條件誘導(dǎo)4 h;用0.2 mmol/L(pH=7.5)的Tris-HCl緩沖液懸浮菌體;濕菌體與緩沖液的質(zhì)量體積比為1∶16,60%的功率工作1 s、間歇3 s,超聲破碎20 min;1 000 r/min離心15 min,上清液為可溶蛋白,用一定比例的緩沖液充分懸浮沉淀后的溶液即為蛋白包涵體。

1.2.3 ALA濃度檢測

參考ZHANG[14]ALA檢測方法,以5-氨基乙酰丙酸鹽標(biāo)準(zhǔn)品作為標(biāo)準(zhǔn)樣品,準(zhǔn)確配制濃度為1.0、2.0、4.0、6.0、8.0和10.0 mg/L的ALA標(biāo)準(zhǔn)液;將2.0 mL新鮮ALA標(biāo)準(zhǔn)液或待測樣品加入到10 mL具塞離心管中,再依次添加1.0 mL乙酸鹽緩沖液(pH 4.6)和0.5 mL乙酰丙酮,在沸水浴中加熱15 min,待離心管自然冷卻至室溫,從離心管中取出2 mL反應(yīng)液,再加入2 mL DMAB顯色劑,顯色反應(yīng)30 min,以水做空白參照,在554 nm處測定吸光度(A554)。

1.2.4 血紅素卟啉濃度檢測

利用熒光法[15]檢測血紅素和卟啉濃度。取培養(yǎng)后的適量菌體[OD600× mL=8,若菌體的OD600值為0.4,則取20 mL菌液][16]于4 ℃、12 000 r/min離心5 min后得到菌體沉淀,水洗后將菌體重懸轉(zhuǎn)移至1.5 mL琥珀色離心管,離心后去上清;向1.5 mL離心管加入500 μL 20 mmol/L的草酸,于4 ℃暗室過夜靜置16 h;在各離心管中加入500 μL 2 mol/L草酸,取一半樣品(用于卟啉濃度檢測)于常溫下反應(yīng)作為實(shí)驗(yàn)對照組,另一半樣品(用于卟啉和血紅素總濃度檢測)于95 ℃水溶中加熱30 min,自然冷卻后12 000 r/min離心5 min,取200 μL于黑色96孔熒光板,進(jìn)行熒光值檢測(激發(fā)波長為400 nm,發(fā)射波長為620 nm),兩組樣品差值即為待測血紅素濃度。

1.2.5 環(huán)境因素的設(shè)置

采用單因素實(shí)驗(yàn),分別設(shè)置不同環(huán)境因素:溫度分別為16、25、30和37 ℃;裝液量分別為60、80、100、150和200 mL;外源添加物分別為0.2 mmol/L的FeCl2、谷氨酸(glutamate,Glu)、丙氨酸(alanine,Ala)、甘氨酸(glycine,Gly)和葡萄糖(glucose,Glc)。

2 結(jié)果與討論

2.1 血紅素酶基因過表達(dá)菌株的構(gòu)建

在大腸桿菌C5途徑中(圖1),谷氨酸由谷氨酰t-RNA合成酶(由gltX編碼)催化生成谷氨酰-tRNA,后者在谷氨酰-tRNA還原酶(由hemA編碼)催化下生成谷氨酸-1-半醛,再經(jīng)谷氨酸1-半醛-氨基轉(zhuǎn)移酶(由hemL編碼)合成ALA,后續(xù)經(jīng)ALA脫水酶、尿卟啉原Ⅲ合成酶和亞鐵螯合酶等形成卟啉至終產(chǎn)物血紅素[17]。通常,hemA參與的ALA合成是吡咯類化合物合成的限速步驟[18-19],ALA脫水酶(由hemB編碼)是ALA合成后的第1個下游酶,尿卟啉原Ⅲ合成酶(由hemD編碼)用于催化HMB形成第1個卟啉環(huán),亞鐵螯合酶(由hemH編碼)[20]則催化終產(chǎn)物血紅素的形成。

選取gltX、hemA、hemB、hemD、hemH作該本研究的關(guān)鍵酶基因,進(jìn)行PCR擴(kuò)增,并與pET28a載體連接成新質(zhì)粒,進(jìn)行雙酶切驗(yàn)證試驗(yàn),結(jié)果如圖3所示。

(a)3、(b)1、(c)1、(d)1、(e)1:DNA marker;(a)1:pEX雙酶切產(chǎn)物;(b)3:pEA雙酶切產(chǎn)物;(c)3:pEB雙酶切產(chǎn)物;(d)5:pED雙酶切產(chǎn)物;(e)3:pEH雙酶切產(chǎn)物圖3 重組質(zhì)粒構(gòu)建的凝膠電泳Fig.3 Construction of recombinant plasmids

各片段大小分別為1 416、1 257、975、741和963 bp,酶切結(jié)果與理論相符,測序正確,說明這些血紅素酶基因過表達(dá)菌株構(gòu)建成功。將新質(zhì)粒分別命名為pEX、pEA、pEB、 pED和pEH,轉(zhuǎn)化至E.coliBL21構(gòu)建成新菌株Eco/pEX、Eco/pEA、Eco/pEB、Eco/pED和Eco/pEH。

2.2 血紅素酶基因重組菌的表達(dá)及對卟啉合成的影響

將構(gòu)建的重組菌于0.5 mmol/L IPTG,在37 ℃條件下誘導(dǎo)4 h,5-氨基乙酰丙酸脫水酶、尿卟啉原Ⅲ合成酶、谷氨酰tRNA還原酶、谷氨酰tRNA合成酶和亞鐵螯合酶的蛋白表達(dá)如圖4所示,分析各蛋白分子量分別約為39.45、31.65、50.15、56.95和39.65 ku,大小正確。5-氨基乙酰丙酸脫水酶(由hemB編碼)和谷氨酰tRNA合成酶(由gltX編碼)誘導(dǎo)后主要以可溶蛋白存在,尿卟啉原Ⅲ合成酶(由hemD編碼)和谷氨酰tRNA還原酶(由hemA編碼)誘導(dǎo)后主要以包涵體形式存在,亞鐵螯合酶(由hemH編碼)誘導(dǎo)后則以可溶蛋白和包涵體2種形式并存。

(a)1-protein Marker;2-pEB(-IPTG);3-pEB(+0.5mmol/L IPTG);4-pEB包涵體;5-pET28a(-IPTG);6-pED(-IPTG);7-pED(+0.5 mmol/L IPTG);8-pED包涵體;9-pEA(-IPTG);10-pEA(+0.5 mmol/L IPTG);(b)1-protein marker;2-pEH(-IPTG);3-pEH(+0.5 mmol/L IPTG);4-pEH包涵體;5-pET28a (-IPTG);6-pEX(-IPTG);7-pEX(+0.5 mmol/L IPTG);8-pEX包涵體;9-pEA包涵體;10-protein marker圖4 重組蛋白的檢測Fig.4 Detection of recombinant proteins

按1.2.4方法處理菌體后檢測血紅素卟啉,結(jié)果如圖5所示。hemA、hemB、hemD和hemH對總卟啉(包括重組菌血紅素合成途徑中產(chǎn)生的尿卟啉、糞卟啉和血紅素等)均有一定的促進(jìn)作用,其中Eco/pEA的產(chǎn)量在無IPTG誘導(dǎo)下血紅素濃度最高可達(dá)17.01 μmol/L,誘導(dǎo)條件下達(dá)14.80 μmol/L,說明hemA對血紅素合成的影響最顯著,遠(yuǎn)超過其他基因?qū)ρt素合成的影響。hemA是血紅素前體ALA合成的關(guān)鍵酶[17],已有研究報(bào)道指出,過表達(dá)S.srizona的hemAM使ALA產(chǎn)量增加,而E.coli的hemL與S.srizona的hemAM編碼的酶協(xié)同作用可進(jìn)一步使ALA產(chǎn)量增加,過表達(dá)gltX時會出現(xiàn)ALA產(chǎn)量下降的現(xiàn)象,同時對hemB有轉(zhuǎn)錄上調(diào)作用[11]。ZHANG等[21]嘗試共表達(dá)hemAM、hemF和hemL可大幅度提升ALA產(chǎn)量,hemA、hemD和hemL共表達(dá)效果次之。

圖5 重組菌的卟啉與血紅素含量Fig.5 Contents of heme and porphyrin of recombinant strains

2.3 hemA與hemD的共表達(dá)及其對卟啉合成的影響

hemA和hemD共表達(dá)菌株Eco/pEAD按方法1.2.1構(gòu)建,其重組質(zhì)粒的EcoR Ⅰ和Hind Ⅲ雙酶切產(chǎn)物如圖6所示,分別為5 349、2 203 bp,分子量正確,將重組質(zhì)粒pEAD送至華大測序,序列正確,菌株構(gòu)建成功。將Eco/pEAD于0.5 mmol/L IPTG 37 ℃下誘導(dǎo)5 h,檢測Eco/pEAD蛋白,如圖7所示,pEAD中hemA編碼的酶有大量包涵體形成而hemD編碼的酶并無明顯增加,該現(xiàn)象可能由于第2個基因的轉(zhuǎn)錄不完全,利用單一轉(zhuǎn)錄單元共表達(dá)時,難以控制多個目標(biāo)基因表達(dá)水平的一致性[22]。

1-DNA marker;2-pEA雙酶切產(chǎn)物;3、4-pEAD雙酶切產(chǎn)物圖6 重組質(zhì)粒構(gòu)建的凝膠電泳Fig.6 Construction of recombinant plasmids

1-pET28a;2-pEAD(-IPTG);3-pEAD(+0.5 mmol/L IPTG);4-pEAD包涵體;5-pEA(-IPTG);6-pEA(+0.5 mmol/L IPTG); 7-pEA包涵體;8-pED(-IPTG);9-pED(+0.5 mmol/L IPTG);10-pED包涵體;11-protein marker圖7 Eco/pEAD的目標(biāo)蛋白檢測Fig.7 Target protein detection of Eco/pEAD

Eco/pEAD卟啉和血紅素含量如圖8所示,最高分別為74.90 μmol/L和22.69 μmol/L,較之高產(chǎn)菌株E.colipEA的卟啉含量76.70 μmol/L和血紅素含量26.53 μmol/L,沒有起到明顯的提升產(chǎn)量的效果,反而略有下降。LIU等[16]提出多基因強(qiáng)制表達(dá)時,各基因表達(dá)效果會減弱,2個對血紅素有利的基因常規(guī)共表達(dá)不一定會使血紅素增產(chǎn)效果疊加,與本研究結(jié)果相類似。

對各重組菌的卟啉和血紅素含量檢測分析,菌體產(chǎn)卟啉和血紅素的趨勢是基本一致的,血紅素產(chǎn)量可以作為體現(xiàn)卟啉總量積累的表征。血紅素產(chǎn)量不僅受內(nèi)源酶的調(diào)控,而且受環(huán)境因素的影響。從圖5、8結(jié)果可知,誘導(dǎo)劑可以誘導(dǎo)酶的表達(dá),但是不添加誘導(dǎo)劑時各酶基因?qū)ρt素產(chǎn)量提升趨勢更顯著于是在不添加誘導(dǎo)劑時對血紅素產(chǎn)量最高的Eco/pEA進(jìn)行環(huán)境因素分析,同時檢測血紅素前體物質(zhì)ALA[23]產(chǎn)量,探討在不同環(huán)境下前體物質(zhì)ALA積累與終產(chǎn)物血紅素產(chǎn)量之間的關(guān)聯(lián)。

圖8 Eco/pEAD的血紅素與卟啉含量Fig.8 Contents of heme and porphyrin of Eco/pEAD

2.4 環(huán)境因素對Eco/pEA的ALA及血紅素產(chǎn)量影響

根據(jù)2.3結(jié)果,選取不添加誘導(dǎo)劑時血紅素產(chǎn)量最高的Eco/pEA進(jìn)行環(huán)境因素分析。將Eco/pEA在各個溫度下培養(yǎng)5 h后(以O(shè)D600為0.6~0.8記為菌體培養(yǎng)的0 h)進(jìn)行ALA和血紅素的檢測,結(jié)果如圖9(a),ALA產(chǎn)量在初期隨著溫度的升高有上升的趨勢,30 ℃時最高為27.64 mg/L,37 ℃時有所下降為23.38 mg/L。血紅素產(chǎn)量則隨溫度增加呈上升趨勢,在37 ℃時達(dá)到最高26.53 μmol/L。該結(jié)果顯示ALA積累與血紅素產(chǎn)量受溫度影響并不一致,30 ℃對產(chǎn)ALA最有利但并不是血紅素積累的最佳溫度,血紅素在37 ℃為最佳溫度。

溶氧通過搖瓶裝液量控制,Eco/pEA于37 ℃下培養(yǎng)5 h后檢測ALA與血紅素,結(jié)果如圖9(b)所示,溶氧環(huán)境的改變對ALA積累沒有太大的差異,但隨著溶氧的減少,血紅素產(chǎn)量呈上升趨勢,這可能是血紅素參與多種呼吸鏈酶的反應(yīng),呼吸作用會對胞內(nèi)血紅素含量產(chǎn)生影響。

血紅素蛋白的重組表達(dá)中諸如Fe2+、血紅素前體ALA以及氯高鐵血紅素通常作為添加物補(bǔ)充進(jìn)培養(yǎng)基以促進(jìn)血紅素合成[24-26]。本研究選取FeCl2、Glu、Ala、Gly和Glc作為本研究的外源物添加至培養(yǎng)基中,將Eco/pEA于37 ℃下培養(yǎng)5 h檢測各產(chǎn)物。從圖9-c的結(jié)果中可知,F(xiàn)eCl2、Glu和Glc對ALA和血紅素積累都有一定的促進(jìn)作用,其中Glc的效果最明顯,使得血紅素產(chǎn)量進(jìn)一步增長到34.45 μmol/L。

Fe2+作為血紅素螯合的金屬離子,充足的Fe2+有利于血紅素的合成[27]。Glu作為大腸桿菌C5途徑合成的前體對血紅素積累作用明顯,Glc的存在會抑制ALA脫水酶導(dǎo)致ALA和血紅素的增加[28]。Ala對血紅素的增加原因尚不清楚,有待進(jìn)一步探究。FeCl2、Glu和Glc對ALA和血紅素產(chǎn)量均有促進(jìn)作用,但是Glu對ALA合成的促進(jìn)效果最明顯,而血紅素合成中Glc的促進(jìn)效果最顯著。

(a)-溫度;(b)-溶氧;(c)-外源添加物圖9 環(huán)境因素對Eco/pEA產(chǎn)ALA和血紅素產(chǎn)量的影響Fig.9 The influences of environmental factors on ALA and heme production of Eco/pEA

3 結(jié)語

大腸桿菌作為常用的基因工程宿主菌株,其卟啉類物質(zhì)的合成在菌株的生長、代謝和以血紅素為輔基酶類的異源表達(dá)中具有重要作用。本文通過對大腸桿菌卟啉合成途徑的關(guān)鍵酶基因的過表達(dá)和共表達(dá),發(fā)現(xiàn)hemA基因過表達(dá)對總卟啉和血紅素的積累有明顯的促進(jìn)作用,而其他基因的過表達(dá)以及hemA和hemD的共表達(dá)則無明顯效果。通過溫度、溶氧及外源添加物對卟啉合成前體ALA及終產(chǎn)物血紅素產(chǎn)量影響的分析,發(fā)現(xiàn)適量的外源Fe2+、Glu和Glc同時提升了ALA和血紅素的含量,但溫度及溶氧對ALA和血紅素的影響并不一致。37 ℃對血紅素的積累最有利,而30 ℃時ALA含量最高;溶氧減少時血紅素含量上升,而ALA在溶氧條件改變時沒有明顯的變化規(guī)律。在37 ℃、200 mL裝液量條件下添加0.2 mmol/L Glc時,Eco/pEA的血紅素產(chǎn)量最高,可達(dá)34.45 μmol/L,是原始菌株的11.7倍,以上結(jié)果表明盡管卟啉合成途徑涉及多個關(guān)鍵酶,但它們的過表達(dá)在終產(chǎn)物血紅素合成中所起的作用明顯不同,環(huán)境因素對ALA和血紅素產(chǎn)量的影響并不總是一致,以上結(jié)果為進(jìn)一步調(diào)控大腸桿菌卟啉類物質(zhì)的合成提供了一定的理論依據(jù)。

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