周 熙王 希劉水平羅 誠王宗成張瑞華
(1. 株洲市食品藥品檢驗(yàn)所,湖南 株洲 412000; 2. 湖南科技學(xué)院化學(xué)與生物工程學(xué)院,湖南 永州 425199;3. 湖南炎帝生物工程有限公司,湖南 株洲 412007)
葛仙米學(xué)名擬球形念珠藻(Nostoc sphaeroides),發(fā)育成熟后呈藍(lán)綠色膠質(zhì)狀,顆粒圓潤,玲瓏剔透[1],為中國獨(dú)有的淡水野生藍(lán)藻,與發(fā)菜同屬。葛仙米不含藍(lán)藻毒素,是一種有較高藥用和食用價(jià)值的經(jīng)濟(jì)藍(lán)藻[2],而且富含蛋白質(zhì)及豐富的多糖[3-5]。多糖類物質(zhì)往往具有許多生物活性,葛仙米多糖主要成分為半乳糖、甘露糖和木糖,對HCT116細(xì)胞增殖具有很強(qiáng)的抑制活性[3]。隨著技術(shù)的進(jìn)步和多糖研究的深入,葛仙米必將進(jìn)一步在食品、保健食品及醫(yī)療行業(yè)發(fā)揮巨大作用[6-7]?,F(xiàn)有多糖測定的標(biāo)準(zhǔn)方法均為化學(xué)法:SN/T 4260—2015《出口植物源食品中粗多糖的測定 苯酚—硫酸法》、NY/T 1676—2008《食用菌中粗多糖含量的測定》等。這2種方法經(jīng)過不斷優(yōu)化后,已經(jīng)廣泛用于植物、真菌等多糖的測定。但由于葛仙米中多糖含量高,而且黏度非常大,采用化學(xué)法分析時(shí),多糖較難完全提取出來,測定結(jié)果不穩(wěn)定,無法準(zhǔn)確測定[7-9]。
對葛仙米有效成分多糖進(jìn)行檢驗(yàn)方法研究及質(zhì)量分析,可為企業(yè)原料規(guī)?;B(yǎng)殖、提取方法優(yōu)化篩選、進(jìn)一步的開發(fā)利用等提供試驗(yàn)依據(jù),為食品藥品監(jiān)管部門對其質(zhì)量及安全風(fēng)險(xiǎn)評估提供準(zhǔn)確可靠的數(shù)據(jù),為質(zhì)量監(jiān)控提供技術(shù)指標(biāo)。
目前,有關(guān)葛仙米多糖的化學(xué)結(jié)構(gòu)研究較少,其多糖的單糖組成是研究多糖生物活性的基礎(chǔ)[10-11]。1-苯基-3-甲基-5-吡唑啉酮(1-phenyl-3-methyl-5-pyrazolone,PMP)柱前衍生化高效液相色譜測定多糖含量的方法,目前被廣泛用于各種多糖的單糖組分檢測研究[12]。氣相色譜法亦可定性、定量分析多糖的組分和含量,一般是將多糖酸水解或甲醇醇解,再用衍生物法以增加其揮發(fā)性[13]。相比化學(xué)法,色譜法靈敏度應(yīng)更高、穩(wěn)定性更好,可定性、定量分析多糖的組分和含量[14]。但由于多糖的結(jié)構(gòu)比較復(fù)雜,其水解前處理方法多樣,水解條件各有不同,因此有必要找到穩(wěn)定的前處理方法,與化學(xué)法測定多糖含量進(jìn)行對比,同時(shí)對該方法的精密度、重現(xiàn)性、顯色穩(wěn)定性和加樣回收率進(jìn)行考察,為葛仙米多糖提取物中多糖含量的準(zhǔn)確測定提供依據(jù)。
葛仙米多糖提取物:湖南炎帝生物工程有限公司。其中Y1與Y2為野生葛仙米,Y3~Y6分別為春夏秋冬4個(gè)季節(jié)的樣品,樣品信息見表1。
表1 樣品Table 1 Sample
電子天平:MS205DU型,瑞士梅特勒-托利多國際貿(mào)易有限公司;
液相色譜儀:Thermo U3000型,美國賽默飛世爾科技公司;
pH計(jì):FE-20型,瑞士梅特勒-托利多國際貿(mào)易有限公司。
葛仙米多糖提取物的前處理水解條件經(jīng)過單因素考察確定,參考相關(guān)文獻(xiàn)資料[15-17]主要考察水解溫度高低、時(shí)間長短以及三氟乙酸對水解程度的影響;通過單因素的考察確定最佳的水解條件。
1.3.1 標(biāo)準(zhǔn)單糖溶液的配置及衍生 分別精密稱取甘露糖、氨基葡萄糖、鼠李糖、葡萄糖醛酸、半乳糖醛酸、葡萄糖、半乳糖、木糖及巖藻糖標(biāo)準(zhǔn)品100 mg于10 mL容量瓶中,加水稀釋至刻度,搖勻,即得9種單糖的標(biāo)準(zhǔn)儲備溶液。再配置成濃度分別為0.1,0.5,1.0,1.5,2.0 mg/mL的單糖混合標(biāo)準(zhǔn)溶液。分別取50 μL的單糖標(biāo)準(zhǔn)液及不同濃度梯度的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,各加0.6 mol/L的NaOH溶液50 μL,置于5 mL的具塞試管中,漩渦混勻;再加0.5 mol/L的PMP(0.435 5 g/5 mL)甲醇溶液100 μL,漩渦混勻,在70 ℃的烘箱中避光反應(yīng)80 min,取出避光冷卻至室溫,加0.3 mol/L的HCl溶液100 μL中和,加水至2 mL,再加等體積的氯仿,漩渦混勻,靜置,棄去氯仿相,如此萃取3次。將水相用0.45 μm 微孔膜過濾后供HPLC進(jìn)行分析,作為定性定量的依據(jù)[15-18]。
1.3.2 葛仙米多糖提取物的水解 吸取0.1 mL質(zhì)量分?jǐn)?shù)為5 mg/mL的多糖樣品溶液于2 mL的西林瓶中,加入濃度為3 mol/L的三氟乙酸(trifluoroacetic acid,TFA)溶液100 μL,充N2封管,在110 ℃的烘箱中水解4 h;冷卻后將水解液轉(zhuǎn)移至5 mL的離心管中,并用0.2 mL甲醇沖洗轉(zhuǎn)移殘余水解液,加0.2 mL甲醇后用N2吹干,如此重復(fù)加甲醇并用N2吹干3次,去除TFA,得水解樣品。取本品水解的殘?jiān)尤?0 μL超純水溶解殘?jiān)?,按照?.3.1”方法進(jìn)行衍生、中和、萃取,用0.45 μm微孔膜過濾后,超聲脫氣,進(jìn)行HPLC檢測分析[15-18]。
1.3.3 色譜條件 色譜柱:Welch Xtimate(4.6 mm×250 mm,5 μm);流動(dòng)相:以0.1 mol/L磷酸鹽緩沖溶液(用3 mol/L 氫氧化鈉調(diào)節(jié)pH值至6.7)為流動(dòng)相A,乙腈為流動(dòng)相B,梯度洗脫(表2);檢測波長:260 nm;柱溫:30 ℃;流速:1.0 mL/min;進(jìn)樣量:10 μL。
表2 梯度洗脫程序Table 2 Gradient elution program
1.4.1 溶液的配置 精確稱取重蒸酚25.0 g,加水溶解后,轉(zhuǎn)移至500 mL的容量瓶中,稀釋至刻度處,混勻,得到質(zhì)量濃度為5%的苯酚溶液,將其保存在4 ℃中,備用。標(biāo)準(zhǔn)葡萄糖溶液配置:精準(zhǔn)稱取無水葡萄糖10.0 mg于100 mL容量瓶中,加入蒸餾水至刻度處、搖勻,配成葡萄糖溶液濃度為0.10 mg/mL,備用[19]。
1.4.2 標(biāo)曲的繪制 準(zhǔn)確吸取葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液0.00,0.10,0.20,0.40,0.60,0.80,1.00 mL置于25 mL的離心管中,補(bǔ)加水至2.0 mL,加入5%的苯酚溶液1.0 mL,混合均勻后,繼續(xù)加入濃硫酸10 mL,混勻后,沸水浴2 min,冷卻至室溫,在485 nm波長處以試劑空白為參比,1 cm比色皿測定吸光光度值[19]。以葡萄糖質(zhì)量為橫坐標(biāo),吸光光度值為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)曲,見圖1。
1.4.3 樣品中總糖的測定 稱取0.1 g的葛仙米多糖提取物在水中溶解,定容至100 mL(V1)。準(zhǔn)確吸取2 mL(V2)的葛仙米多糖提取物溶液置于25 mL的離心管中,加入10 mL無水乙醇,混勻,于4 ℃冰箱中靜置4 h,離心(5 000 r/min, 5 min),棄去上清液,殘?jiān)? mL 80%乙醇洗滌,洗滌3遍,殘?jiān)芙舛ㄈ葜?5 mL(V3)[19]。準(zhǔn)確吸取前處理好的葛仙米多糖提取物1.0 mL(V4),補(bǔ)加水至2.0 mL,然后照“1.4.2”方法測定吸光光度值,依照標(biāo)曲計(jì)算葛仙米多糖提取物的濃度,按式(1)計(jì)算總糖含量[19]。
圖1 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線Figure 1 Standard curve of glucose
(1)
式中:
X——總糖含量,%;
m1——樣品中葡萄糖測定量,mg;
m2——樣品的質(zhì)量,g;
V1——樣品提取液的定容體積,mL;
V2——沉淀粗多糖所用溶液的體積,mL;
V3——粗多糖溶液體積,mL;
V4——測定樣品溶液體積,mL。
單糖PMP衍生物的標(biāo)樣圖以及代表性樣品單糖衍生圖見圖2。表3表明:甘露糖、氨基葡萄糖、鼠李糖以及葡萄萄醛酸等9種單糖的衍生物在0.1~2.0 mg/mL時(shí)線性關(guān)系良好。
2.2.1 水解時(shí)間的考察 按“1.3”水解衍生多糖樣品,分別考察水解2,3,4,5,6 h多糖的水解程度。最后結(jié)果如表4所示,隨著水解時(shí)間的延長,單糖的總峰面積增加,水解4 h時(shí)最大,隨后減少。由此可見,水解4 h最佳。
表3 單糖的標(biāo)準(zhǔn)曲線Table 3 The monosaccharide of lineal relation
圖2 多糖水解樣品和標(biāo)樣衍生物的HPLC分離效果圖Figure 2 Separation of polysaccharide hydrolysate and standards derivatives by HPLC
2.2.2 TFA濃度的考察 照“1.3”項(xiàng),水解衍生多糖樣品,分別考察不同濃度TFA(2,3,4,5,6 mol/L)對多糖水解的影響。如表5所示,隨TFA的濃度的增加,單糖的總峰面積先增加然后降低,當(dāng)TFA的濃度為3 mol/L時(shí)水解衍生結(jié)果最佳。
2.2.3 水解溫度的考察 照“1.3”項(xiàng),水解衍生多糖樣品,分別考察不同溫度(100,110,120 ℃)對多糖水解的影響,如表6所示,根據(jù)峰面積總和的大小,確定110 ℃最佳。
取“1.3.1”和“1.3.2”的對照品溶液和樣品溶液,按“1.3.3”的色譜條件進(jìn)行分析,同時(shí)做空白試驗(yàn),記錄色譜圖,9種單糖分離良好,理論板數(shù)均不低于5 000(見圖2)。
2.4.1 儀器精密度 按“1.3.1”項(xiàng)下衍生混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,再依照“1.3.3”項(xiàng)下色譜條件進(jìn)樣,連續(xù)進(jìn)樣6針,計(jì)算其RSD,測定結(jié)果見表7。結(jié)果表明儀器的精密度良好。
2.4.2 精密度試驗(yàn) 分別精密量取同一對照品溶液50 μL,置于15 mL離心管中,共6份,按“1.3.1”項(xiàng)下衍生條件處理。然后,照“1.3.3”項(xiàng)下的色譜條件進(jìn)行分析,計(jì)算甘露糖、氨基葡萄糖、鼠李糖以及葡萄糖醛酸等9種單糖衍生物的峰面積以及RSD值,測定結(jié)果見表8。結(jié)果表明本試驗(yàn)精密度良好,說明樣品水解衍生的處理方法可靠。
2.4.3 穩(wěn)定性試驗(yàn) 精密量取同一對照品溶液50 μL,置于15 mL離心管中,按“1.3.1”項(xiàng)下衍生條件處理。放置在室溫條件下,分別于0,1,2,4,8,16,24,48 h,按照“1.3.3”的色譜條件進(jìn)行分析,計(jì)算9種單糖衍生物峰面積的RSD值,結(jié)果見表9。結(jié)果表明衍生后9種單糖溶液24 h內(nèi)均穩(wěn)定。
2.4.4 重復(fù)性試驗(yàn) 吸取5 mg/mL的葛仙米多糖提取物樣品溶液0.1 mL,按“1.3.2”的試驗(yàn)方案,取樣6份水解衍生處理,然后照按“1.3.3”的色譜條件進(jìn)行分析,計(jì)算樣品中主要5種單糖的RSD,結(jié)果見表10。其重復(fù)性尚可,葡萄糖醛酸以及木糖的RSD偏高,可能是水解后的穩(wěn)定性稍差。
表4 水解時(shí)間對單糖峰面積的影響Table 4 The analysis of hydrolysis time (n=5)
表5 TFA濃度對單糖峰面積的影響Table 5 The analysis of TFA concentration (n=6)
表6 水解溫度對單糖峰面積的影響Table 6 The analysis of hydrolysis temperature (n=3)
表7 儀器精密度Table 7 The precision of instrument
2.4.5 回收率試驗(yàn) 吸取5 mg/mL的葛仙米多糖提取物樣品溶液0.05 mL,同時(shí)每份樣品中加入0.05 mL混合標(biāo)準(zhǔn)溶液(1 mg/L),按“1.3.2”的試驗(yàn)方案,取樣6份水解衍生處理,然后照按“1.3.3”的色譜條件進(jìn)行分析,計(jì)算樣品中主要9種單糖的回收率,結(jié)果見表11?;厥章试?0%~110%時(shí),葡萄糖與甘露糖的回收率偏低。
2.4.6 檢出限試驗(yàn) 精密量取“1.3.2”項(xiàng)下的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液(1 mg/L) 0.25 mL置于100 mL量瓶中,用水稀釋至刻度,搖勻。按“1.3.1”的衍生條件處理。然后,照“1.3.3”的色譜條件進(jìn)行分析,以信噪比(S/N)為3計(jì)算9種單糖的檢出限為4.27~8.48 μg/mL。檢出限計(jì)算結(jié)果見表12,與化學(xué)法相比,HPLC方法的檢出限更低。
表8 精密度試驗(yàn)Table 8 The precision test (n=6)
表9 穩(wěn)定性試驗(yàn)Table 9 The stability test (n=7)
表10 重復(fù)性試驗(yàn)Table 10 The reproducibility test (n=6)
表11 回收率試驗(yàn)Table 11 The recovery test (n=6)
表12 檢出限Table 12 The detection limit (n=9) μg/mL
2.4.7 樣品測定 按“2.2”的方法制備對照品溶液和供試品溶液(共6批樣品),按“2.1”的色譜條件進(jìn)行分析測定。以單糖的含量計(jì)算多糖的含量,選取6種主要的單糖來計(jì)算,即甘露糖、氨基葡萄糖、葡萄糖醛酸、葡萄糖、半乳糖以及木糖,9種單糖含量的計(jì)算結(jié)果見表13、14。同樣6批次樣品用化學(xué)法測定總糖含量,結(jié)果見表15。可以看出化學(xué)法測定結(jié)果整體數(shù)值偏高,平行試驗(yàn)結(jié)果差別較大。
表13 HPLC法樣品測定結(jié)果Table 13 The content determination of samples by HPLC (n=6)
表14 HPLC法單糖含量的計(jì)算結(jié)果Table 14 The content determination of monosaccharide by HPLC (n=6) mg/mL
表15 化學(xué)法測定總糖含量的計(jì)算結(jié)果Table 15 The content determination of polysaccharides by chemical method (n=6)
柱前PMP衍生高效液相色譜法測多糖,以單糖總量計(jì)算多糖,存在操作步驟較多,數(shù)值整體偏低的問題。但相較于化學(xué)法,該方法準(zhǔn)確可靠,線性關(guān)系良好,重復(fù)性和專屬性好,可以很好地完成葛仙米多糖提取物中的單糖組成及定性定量分析。雖然化學(xué)法操作步驟簡單、易行,但其測定值平行性差,檢出限不高,結(jié)果的可靠性較低。另外,按照上述所建立的水解衍生方法,并針對此方法進(jìn)行方法學(xué)考察,測定6批樣品,同時(shí)與化學(xué)法進(jìn)行了比較發(fā)現(xiàn),其中野生的葛仙米多糖提取物多糖含量高于人工養(yǎng)殖的,夏秋季采樣的葛仙米多糖提取物所測多糖含量亦高于其他季節(jié),可能是夏季葛仙米生長旺盛,存儲多糖含量較高。野生葛仙米的多糖提取物中的多糖含量明顯高于養(yǎng)殖的,可能有以下幾個(gè)原因:① 養(yǎng)殖的密度偏大;② 模擬野生環(huán)境可能有所欠缺;③ 經(jīng)緯度的問題,日照、溫度等有所影響。
本試驗(yàn)采用三氟乙酸水解葛仙米多糖提取物,對水解條件進(jìn)行了單因素考察。通過考察發(fā)現(xiàn),在110 ℃下,采用3 mol/L 的三氟乙酸水解4 h,其水解效果更好。然后,進(jìn)行方法學(xué)驗(yàn)證,結(jié)果表明,相較于化學(xué)法新建立的分析方法可靠準(zhǔn)確、靈敏度高,可同時(shí)用于9種單糖的分析,且分離效果較理想。樣品測定結(jié)果顯示,葛仙米多糖提取物中主要含有甘露糖、氨基葡萄糖、葡萄糖醛酸、葡萄糖、半乳糖及木糖6種單糖,其中甘露糖、葡萄糖、半乳糖以及木糖含量較高,與莫開菊等[15]報(bào)道的結(jié)果類似,通過對比,發(fā)現(xiàn)葛仙米多糖提取物中有一種單糖種類不一致,其文中報(bào)道含有阿拉伯糖。經(jīng)加標(biāo)試驗(yàn)確認(rèn),木糖與阿拉伯糖保留時(shí)間極為接近,樣品中峰的保留時(shí)間與木糖衍生物一致,最終確認(rèn)葛仙米多糖提取物中的單糖組成之一應(yīng)是木糖。不足之處在于所測樣品批次少,野生葛仙米的樣品難以收集,沒能比較不同月份以及不同年份野生和人工養(yǎng)殖的葛仙米中多糖含量的差異,如有大樣本的數(shù)據(jù),更能找出其中的規(guī)律,為葛仙米的人工養(yǎng)殖提供科學(xué)的依據(jù)。
此外,現(xiàn)有研究表明葛仙米多糖的分子量與其生物活性存在直接關(guān)聯(lián),但由于多糖結(jié)構(gòu)的復(fù)雜性,大部分研究都只是在一級結(jié)構(gòu)上。而葛仙米多糖的研究起步較晚,相關(guān)的生物活性研究亦較少。確定葛仙米多糖單糖的組成和含量可以為進(jìn)一步研究、開發(fā)葛仙米的相關(guān)活性提供理論基礎(chǔ)[3,10-11]。