李 銳, 文正勇*, 覃川杰, 鄒遠(yuǎn)超,王 均, 賀 揚(yáng), 袁登越
(1. 內(nèi)江師范學(xué)院 生命科學(xué)學(xué)院, 四川 內(nèi)江 641100;2. 內(nèi)江師范學(xué)院 長(zhǎng)江上游魚類資源保護(hù)與利用四川省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室, 四川 內(nèi)江 641100)
肌動(dòng)蛋白(actin)是構(gòu)成細(xì)胞的基本骨架主要成分,廣泛分布于動(dòng)植物等真核生物細(xì)胞中,主要參與細(xì)胞的分裂、細(xì)胞器運(yùn)動(dòng)、染色體運(yùn)動(dòng)、細(xì)胞激化、mRNA加工和運(yùn)輸?shù)仍S多重要生理過(guò)程[1-3].肌動(dòng)蛋白家族包括6種異構(gòu)體、2種平滑肌型(α-血管平滑肌型和γ-內(nèi)臟平滑肌型)、2種橫紋肌型(α-骨骼肌型和α-心肌型)和2種細(xì)胞質(zhì)型(β-細(xì)胞質(zhì)型和γ-細(xì)胞質(zhì)型)[4-5].β-actin的氨基酸序列在脊椎動(dòng)物中十分保守:劉秀霞等[5]報(bào)道魚類、兩棲類、鳥(niǎo)類、哺乳類等不同類群脊椎動(dòng)物β-actin氨基酸序列同源性均在96%以上;覃川杰等[6]報(bào)道寬體沙鰍(Sinibotiareevesae)的β-actin氨基酸序列與凡納濱對(duì)蝦(Litopenaeusvannamei)等無(wú)脊椎動(dòng)物具有較高的同源性,與鰱(Hypophthalmichthysmolitrix)、非洲爪蟾(Xenopuslaevis)、小白鼠(Musmusculus)等脊椎動(dòng)物的同源性高達(dá)95%~99%,提示該基因的生理功能在不同物種之間具有很高的保守性.此外,β-actin在不同的組織細(xì)胞中能較高較穩(wěn)定地表達(dá),且不容易隨年齡的變化而改變,因此在研究某基因的mRNA相對(duì)表達(dá)量時(shí),β-actin常常被用作內(nèi)標(biāo)基因[7].目前,包括鱖魚(Sinipercachuatsi)[5]、寬體沙鰍[6]、黃鱔(Monopterusalbus)[8]、鳡魚(Elopichthysbambusa)[9]、松江鱸魚(Trachidermusfasciatus)[10]、大鱗副泥鰍(Paramisgurnusdabryanus)[11]等在內(nèi)的多種硬骨魚類β-actin基因已經(jīng)被成功克隆,將為這些魚類功能基因的轉(zhuǎn)錄調(diào)控研究奠定良好的基礎(chǔ).
烏鱧(Channaargus)隸屬鱸形目(Perciformes)、攀鱸亞目(Anabantoidei)、鱧科(Channidae)鱧屬(Channa),又叫財(cái)魚、烏魚、黑魚、生魚、斑魚等,俗稱烏棒,是一種兇猛的肉食性魚類.烏鱧營(yíng)養(yǎng)豐富、味道鮮美,一直被認(rèn)為是食療和滋補(bǔ)的佳品[12].目前我國(guó)除新疆、西藏地區(qū)外,其他省份各大水系均有分布[13].烏鱧作為我國(guó)的大宗水產(chǎn)養(yǎng)殖品種,對(duì)我國(guó)的國(guó)民經(jīng)濟(jì)收入具有較大的貢獻(xiàn),據(jù)2016年中國(guó)漁業(yè)年鑒統(tǒng)計(jì),2015年我國(guó)烏鱧總產(chǎn)量49.5萬(wàn)t,在大宗淡水養(yǎng)殖魚類中排第9位.同時(shí),烏鱧作為特種水產(chǎn)養(yǎng)殖品種,對(duì)四川的漁業(yè)經(jīng)濟(jì)也具有重要貢獻(xiàn):2015年四川省烏鱧產(chǎn)量8 977 t,占全國(guó)總產(chǎn)量1.8%,且產(chǎn)量逐年上升.內(nèi)江地處成渝之間,擁有川南最大的水產(chǎn)養(yǎng)殖水面,水產(chǎn)養(yǎng)殖總產(chǎn)量位居四川前三,同時(shí)也是烏鱧主養(yǎng)區(qū)之一.隨著生物技術(shù)的快速發(fā)展,對(duì)烏鱧在分子生物學(xué)方面的研究越來(lái)越多:胃蛋白酶原基因[14]、腦型芳香化酶基因[15]、MHC[16]、STAT1[17]及Foxl2[18]等許多功能基因被克隆,這些功能基因的轉(zhuǎn)錄水平研究都需要管家基因作為內(nèi)標(biāo),β-actin已廣泛作為內(nèi)參基因使用,對(duì)其進(jìn)行研究顯得十分重要.本研究首次克隆了烏鱧的β-actin基因的cDNA序列,并對(duì)其進(jìn)行了生物信息學(xué)分析,進(jìn)一步對(duì)其組織表達(dá)進(jìn)行了檢測(cè),以期為其他功能基因的研究以及轉(zhuǎn)基因?yàn)貅k的生產(chǎn)奠定理論基礎(chǔ).
1.1試驗(yàn)用魚及暫養(yǎng)管理試驗(yàn)用烏鱧購(gòu)于內(nèi)江市桂湖街農(nóng)貿(mào)市場(chǎng),為人工養(yǎng)殖烏鱧,暫養(yǎng)于內(nèi)江師范學(xué)院長(zhǎng)江上游魚類資源保護(hù)與利用四川省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室.烏鱧暫養(yǎng)于100 L水族箱中,水溫(22±0.5) ℃,水體溶氧保持在(7.5±0.6) mg·L-1之間,且每2 d換水族箱中的水約1/3,新?lián)Q用水均有充分曝氣.每天晚上7點(diǎn)投喂餌料,餌料占體質(zhì)量比為5%,未吃完餌料及時(shí)撈出.
1.2組織樣品獲得經(jīng)暫養(yǎng)2周后,選取健康無(wú)病、活力好的4尾烏鱧用于試驗(yàn)(其中1尾用于克隆,另3尾用于組織分布),平均體質(zhì)量為(150±5.6) g.試驗(yàn)魚經(jīng)MS-222麻醉后,置于冰上并迅速取出腦、肝臟、心臟、肌肉、脂肪(腸系膜脂肪)、脾臟、腎臟(中腎)、胃、眼、鰓、性腺共11個(gè)組織,樣品立即放入液氮中冷凍,然后放于-80 ℃冰箱備用.
1.3β-actin基因cDNA序列克隆將健康烏鱧解剖后,取適量肝臟組織,利用Trizol法提取總RNA,經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)合格后,用Eppendorf核酸分析儀測(cè)定其濃度,并取1 μg總RNA按照TaKaRa反轉(zhuǎn)錄試劑盒操作說(shuō)明合成第一鏈cDNA,保存于-80 ℃冰箱備用.
從實(shí)驗(yàn)室測(cè)得的烏鱧性腺轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)庫(kù)(未公布)中獲得β-actin的mRNA部分核心序列片段,經(jīng)NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)BLAST比對(duì)確認(rèn)后,結(jié)合GenBank已公布的其他魚類β-actin保守序列設(shè)計(jì)兩對(duì)性引物,分別是:
cDNA-F1:5′-CACGCGTAACTCACCTGAAC-3′,
cDNA-R1:5′-GGCATACAGGTCTTTACGG-3′,
cDNA-F2:5′-CCTTCCTTCCTCGGTAT-3′,
cDNA-R2:5′-GCACTTTATTGGGATTGTT-3′.
以烏鱧肝臟cDNA為模版,進(jìn)行RCR擴(kuò)增,反應(yīng)程序?yàn)椋?5 ℃預(yù)變性3 min,95 ℃ 30 s,56 ℃ 45 s,72 ℃ 1 min 30 s,共計(jì)34個(gè)循環(huán),最后72 ℃延伸10 min.PCR產(chǎn)物經(jīng)質(zhì)量分?jǐn)?shù)2.0%瓊脂糖凝膠電泳分離檢測(cè)后,用TaKaRa膠回收試劑盒分離純化,再與pMD18-T克隆載體連接并轉(zhuǎn)化到感受態(tài)細(xì)胞E.coli DH5,挑取陽(yáng)性克隆送往上海立菲生物技術(shù)有限公司測(cè)序.
1.4β-actin序列分析根據(jù)測(cè)序結(jié)果拼接組裝獲得烏鱧β-actin的cDNA序列,在NCBI核酸數(shù)據(jù)庫(kù)作BLAST(https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi)比對(duì)分析,通過(guò)在線軟件ORF Finder(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/orffinder/)預(yù)測(cè)烏鱧β-actin的開(kāi)放閱讀框,進(jìn)一步用Primer 5.0軟件預(yù)測(cè)蛋白序列,并將序列提交NCBI數(shù)據(jù)庫(kù).通過(guò)Motif Scan程序(http://hits.isb-sib.ch/cgi-bin/PFSCAN)分析烏鱧β-actin蛋白的功能位點(diǎn),TMHMM server v.2.0(http://www.cbs.dtu.dk/services/TMHMM/)分析跨膜結(jié)構(gòu),并用DNAMAN 8.0軟件分析烏鱧β-actin蛋白的相對(duì)分子質(zhì)量、等電點(diǎn)、氨基酸組成等特征.
1.5分子系統(tǒng)發(fā)育分析通過(guò)BLAST比對(duì),從GenBank下載獲得的其他物種的β-actin核酸序列和蛋白序列,選取大西洋鮭、虹鱒、斑馬魚、烏鱧、爪蟾、小白鼠和人共7個(gè)物種的蛋白序列用BioEdit 7.1軟件進(jìn)行氨基酸序列比對(duì)分析.由于β-actin在不同物種間蛋白序列具有很高的保守性,因此選用核苷酸序列進(jìn)行分子系統(tǒng)發(fā)育分析[5].選取22個(gè)物種的β-actin核酸序列,通過(guò)ClustalX 2.0[19]進(jìn)行多重序列比對(duì)分析,用DAMBE軟件[20]進(jìn)行各序列的堿基替代飽和性檢驗(yàn),然后用MEGA 6.0軟件[21],采用鄰位相接法(Neighbor-Joining),構(gòu)建烏鱧及其他21個(gè)物種β-actin基因的系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)(序列信息見(jiàn)表1),并用Bootstrap重復(fù)1 000次計(jì)算各分支的置信度.
表 1 用于進(jìn)化分析的物種序列信息
1.6β-actin組織表達(dá)用Trizol法提取各組織總RNA.各組織RNA經(jīng)混合后,取1 μg RNA按照TaKaRa反轉(zhuǎn)錄試劑盒操作說(shuō)明合成cDNA,以特異性引物:
β-actin qF:5′-CTCCACTCAACCCCAAAG-3′,
β-actin qR:5′-GAGCGTAGCCCTCATAGA-3′
進(jìn)行半定量PCR.PCR擴(kuò)增體系為:dd H2O 20.25 μL、10×Buffer 2.5 μL、dNTP 0.5 μL、上下游引物各0.5 μL、cDNA模板0.5 μL、rTaq酶0.25 μL,共計(jì)25 μL體系.PCR反應(yīng)條件為:95 ℃預(yù)變性3 min,95 ℃變性30 s,56 ℃退火45 s,72 ℃延伸30 s,共計(jì)34個(gè)循環(huán),最后72 ℃延伸5 min.PCR產(chǎn)物經(jīng)質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1.5%瓊脂糖凝膠電泳后,置于凝膠圖像采集系統(tǒng)中采集圖像.
2.1烏鱧β-actincDNA序列的克隆與特征分析以烏鱧肝臟cDNA為模板,擴(kuò)增獲得長(zhǎng)度為909和965 bp兩個(gè)PCR產(chǎn)物片段,經(jīng)過(guò)測(cè)序及組裝后,得到一個(gè)全長(zhǎng)為1 813 bp的烏鱧β-actin cDNA序列.序列經(jīng)BLAST比對(duì)確認(rèn)后,上傳NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)(GenBank登錄號(hào):KX925979).經(jīng)預(yù)測(cè),烏鱧β-actin cDNA序列包含一個(gè)1 125 bp的開(kāi)放閱讀框(ORF),共編碼375個(gè)氨基酸,起始密碼子為ATG,終止密碼子為TAA;蛋白功能位點(diǎn)分析顯示,在氨基酸序列的53~63位、104~116位及356~364位是烏鱧的β-actin信號(hào)位點(diǎn);在cDNA末段發(fā)現(xiàn)了PloyA加尾信號(hào)(aataaa)(圖1).
圖 1 烏鱧β-actin cDNA序列及推導(dǎo)氨基酸序列
2.2烏鱧β-actin序列特征分析烏鱧β-actin蛋白由375個(gè)氨基酸組成,預(yù)測(cè)相對(duì)分子質(zhì)量約為41.73 kDa,理論等電點(diǎn)PI為5.16,由20種氨基酸組成,其中甘氨酸(Gly)數(shù)目占比最高為7.73%,色氨酸(Trp)數(shù)目占比最低為1.07%(圖2).跨膜預(yù)測(cè)結(jié)果顯示,烏鱧β-actin蛋白沒(méi)有跨膜區(qū).多重序列比對(duì)顯示:β-actin蛋白序列在各物種之間具有很高的保守性,除了個(gè)別位點(diǎn)存在氨基酸替換外,其余氨基酸序列完全相同.與魚類相比,烏鱧的β-actin蛋白序列第2位氨基酸是天冬氨酸(Asp)而大西洋鮭和虹鱒的第2位氨基酸是谷氨酸(Glu),烏鱧β-actin蛋白序列的第319位氨基酸由絲氨酸(Ser)替換為丙氨酸(Ala);與四足類動(dòng)物相比,烏鱧β-actin蛋白序列的第228位氨基酸是甘氨酸(Gly),而四足類動(dòng)物是丙氨酸(Ala),烏鱧的第279位氨基酸是酪氨酸(Tyr),而小鼠和人是苯丙氨酸(Phe)(圖3).
圖 2 烏鱧β-actin氨基酸組成分析
圖 3 烏鱧與其他動(dòng)物β-actin氨基酸序列的多重比對(duì)
2.3烏鱧β-actin氨基酸與其他物種的同源性分析基于β-actin氨基酸的同源性分析顯示,烏鱧與其他18種動(dòng)物的β-actin蛋白序列同源性很高,均在98%以上.其中,與人的同源性最低為98.4%,與黃鱔、莫桑比克羅非魚、石斑魚的同源性最高為99.4%,與斑馬魚、大鱗大麻哈魚、大西洋鮭、鳡、黑棘鯛、虹鱒、鯽魚、軍曹魚、鯪魚、塞內(nèi)加爾鰨、星斑川鰈、非洲爪蟾、雞及小家鼠等動(dòng)物的同源性介于這兩者之間(見(jiàn)表2).
2.4烏鱧β-actin基因系統(tǒng)發(fā)育分析用DAMBE軟件對(duì)烏鱧等22種動(dòng)物的β-actin核苷酸序列進(jìn)行了核苷酸替代飽和性檢驗(yàn),結(jié)果表明該基因的堿基替換率均未達(dá)飽和,具有系統(tǒng)發(fā)育意義.基于Kimura雙參數(shù)模型用MEGA 6.0軟件以鄰接法構(gòu)建了β-actin基因的系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù),結(jié)果見(jiàn)圖4.烏鱧首先與大西洋鮭、虹鱒、鱖魚、金頭鯛、羅非魚等鱸形目魚類聚類為一支,再與人、家鼠、變色龍等脊椎動(dòng)物構(gòu)成的單支并列聚合為一起,最后再與斑馬魚、鯽魚等鯉形目魚類聚為一支,非洲爪蟾和原雞處于進(jìn)化樹(shù)的根部.系統(tǒng)發(fā)育結(jié)果與烏鱧的分類地位基本一致.
圖 4 基于β-actin核苷酸序列的NJ系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)
表 2 烏鱧β-肌動(dòng)蛋白與其他動(dòng)物的同源性比較%
2.5烏鱧β-actin組織表達(dá)分析用獲得的烏鱧β-actin cDNA序列跨內(nèi)含子設(shè)計(jì)一對(duì)PCR引物,以各組織cDNA為模版進(jìn)行半定量PCR反應(yīng),PCR產(chǎn)物用瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè).結(jié)果顯示,β-actin基因在烏鱧肝臟、鰓、腦、眼、心臟、腎臟、肌肉、性腺、胃、脾臟、脂肪等組織均有表達(dá),且特異性很高,PCR產(chǎn)物條帶亮度除了在性腺組織中略低外,在其他各組織的亮度差別不大,結(jié)果如圖5所示.
圖 5 烏鱧β-actin基因組織表達(dá)
本研究利用RT-PCR的方法克隆獲得了烏鱧β-actin基因的cDNA全序列.序列全長(zhǎng)1 813 bp,包含一個(gè)1 125 bp的開(kāi)放閱讀框,共編碼375個(gè)氨基酸,與鱖魚[5]、寬體沙鰍[6]、鳡魚[9]、大鱗副泥鰍[11]等魚類編碼的氨基酸數(shù)目一致.氨基酸序列對(duì)比發(fā)現(xiàn),烏鱧β-actin除個(gè)別氨基酸與其他脊椎動(dòng)物有差異,其余的氨基酸序列完全相同,氨基酸序列高度相似性可能與β-actin具有相同的生理功能密切相關(guān)[3,6].氨基酸序列分析顯示,烏鱧β-actin蛋白具有3個(gè)actin信號(hào)位點(diǎn),這一結(jié)果與鱖魚[5]和寬體沙鰍[6]相同,進(jìn)一步表明不同魚類具有相同的生理功能.跨膜結(jié)構(gòu)域分析表明,烏鱧β-actin蛋白不存在跨膜域結(jié)構(gòu),不屬于膜蛋白,此結(jié)果與寬體沙鰍具有3個(gè)跨膜域的結(jié)果不一致,可能與預(yù)測(cè)軟件不同有關(guān).此外,氨基酸組成分析顯示,烏鱧β-actin由20種氨基酸組成,其中甘氨酸(Gly)數(shù)目占比最高為7.73%,色氨酸(Trp)數(shù)目占比最低為1.07%,這一結(jié)果與寬體沙鰍等其他動(dòng)物的氨基酸含量保持一致.氨基酸同源性分析顯示,烏鱧β-actin蛋白序列與斑馬魚、虹鱒、黃鱔、莫桑比克羅非魚、石斑魚、非洲爪蟾、小鼠、人等動(dòng)物的同源性很高,均在98%以上,這一結(jié)果與鱖魚[5]、寬體沙鰍[6]、鳡魚[9]等其他魚類的研究結(jié)果相同,進(jìn)一步闡述了β-actin蛋白在不同物種之間的保守性.
許多學(xué)者認(rèn)為,由于β-actin蛋白的氨基酸序列在不同物種之間的高度保守性,因此以氨基酸序列構(gòu)建的系統(tǒng)發(fā)育結(jié)果不能反映真實(shí)的物種之間的進(jìn)化關(guān)系,而以核苷酸序列構(gòu)建進(jìn)化樹(shù)較為科學(xué)[5,9].本研究以β-actin核苷酸序列構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù),結(jié)果顯示,烏鱧首先與大西洋鮭、虹鱒、鱖魚、金頭鯛、羅非魚等鱸形目魚類聚為一支,再與人、家鼠、變色龍等脊椎動(dòng)物構(gòu)成的單支并列聚合為一起,最后再與斑馬魚、鯽魚等鯉形目魚類聚為一支,非洲爪蟾和原雞處于進(jìn)化樹(shù)的根部.表明β-actin基因的進(jìn)化與物種的進(jìn)化歷程保持基本一致,這一結(jié)果與文獻(xiàn)[5,9]等觀點(diǎn)一致.
由于β-actin在不同的組織細(xì)胞中能較高較穩(wěn)定地表達(dá),且不容易隨年齡的變化而改變,因此常常作為內(nèi)標(biāo)基因,廣泛應(yīng)用于功能基因轉(zhuǎn)錄表達(dá)研究[7].組織表達(dá)分析顯示,烏鱧β-actin基因在肝臟、鰓、腦、眼、心臟、腎臟、肌肉、性腺、胃、脾臟、脂肪等組織均有表達(dá),且PCR產(chǎn)物條帶亮度除了在性腺組織中略低外,在其他各組織的亮度差別不大,表明烏鱧β-actin基因在各組織表達(dá)相對(duì)恒定,可以作為內(nèi)標(biāo)基因的候選基因.這一結(jié)果與寬體沙鰍的研究結(jié)果[6]一致,但與大鱗副泥鰍的研究結(jié)果[11]不一致,表明β-actin基因的組織分布仍然具有一定的物種特異性,這可能與動(dòng)物體的生活環(huán)境及生理狀態(tài)等因素有關(guān).
本研究成功克隆并獲得了烏鱧β-actin基因的全長(zhǎng)cDNA,并對(duì)該蛋白的氨基酸序列進(jìn)行了分析,進(jìn)一步構(gòu)建了該基因在不同物種之間的系統(tǒng)發(fā)育樹(shù),最后對(duì)該基因的組織分布進(jìn)行了檢測(cè).本文首次研究了烏鱧β-actin基因,將為今后烏鱧其他功能基因的研究提供基礎(chǔ)資料,同時(shí)也為烏鱧β-actin基因的啟動(dòng)子研究以及轉(zhuǎn)基因?yàn)貅k的培育奠定理論基礎(chǔ).