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桂花果皮醇提物的抑菌活性和抗氧化活性的研究

2018-10-08 05:52:46伍佩珂蔣小妹汪淑芳張曉喻楊秋萍李學(xué)理吳鳳蘭
關(guān)鍵詞:提物果皮金黃色

劉 剛, 伍佩珂, 蔣小妹, 汪淑芳, 張曉喻, 楊秋萍, 李學(xué)理, 吳鳳蘭

(1. 四川師范大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院, 四川 成都 610101;2. 四川師范大學(xué) 食品功能及加工應(yīng)用研究所, 四川 成都 610101)

桂花(OsmanthusfragransLour.)是木犀科木犀屬的小喬木[1],原產(chǎn)我國(guó)西南部,主要分布于廣西、湖南、貴州及福建等地區(qū)[2].中國(guó)南嶺以北到秦嶺以南的中亞熱帶和北亞熱帶(北緯24°~33°),是桂花集中分布和栽培的地區(qū)[3].桂花花朵的營(yíng)養(yǎng)價(jià)值高、民間習(xí)用歷史久遠(yuǎn),早在漢朝就已廣泛應(yīng)用于食品、香料、酒、茶等行業(yè),研究也較多[4-5].桂花的果實(shí)可入藥,有化痰、生津、暖胃、平肝的功效,其枝葉及根可煎汁敷患處,具有活筋骨、止疼痛的功效[6].有研究表明,桂花果皮作為未充分利用的副產(chǎn)物,含有多種功效成分[7-8].如蒽醌類(lèi)化合物,其具有抑菌、抗腫瘤、止血等作用,含有的有機(jī)酸具有抗菌、利膽、升白等作用,其黃酮類(lèi)化合物有抗菌、抗病毒、解痙攣等作用,桂花果皮中的黑色素還具有抗氧化活性[9].研究桂花果皮提取物的抗菌活性,具有重要意義.

金黃色葡萄球菌S.aureus是重要的條件致病菌[10],屬革蘭氏陽(yáng)性菌,它不僅易引發(fā)許多嚴(yán)重感染,而且還可產(chǎn)生具有較強(qiáng)細(xì)胞毒性的腸毒素.大腸桿菌E.coli是人類(lèi)及各類(lèi)溫血?jiǎng)游锬c道中的正常寄居菌,屬于革蘭氏陰性菌.大腸桿菌是國(guó)際上公認(rèn)的衛(wèi)生監(jiān)測(cè)指示菌[11],如果食品、飲水中檢測(cè)出該菌,就意味著該食物可能直接或間接受到了糞便的污染[12].本實(shí)驗(yàn)研究以金黃色葡萄球菌、大腸桿菌為目標(biāo)檢測(cè)微生物,研究桂花果皮醇提物的抑菌活性,并進(jìn)一步研究桂花果皮醇提物清除DPPH·和ABTS·的能力,從而評(píng)價(jià)其抗氧化活性.近年來(lái),對(duì)桂花油脂類(lèi)功能的研究較多[13-14],但是,對(duì)桂花果皮醇提物的抑菌及抗氧化活性,目前尚未見(jiàn)文獻(xiàn)報(bào)道.

1 材料和方法

1.1材料與文獻(xiàn)[1]對(duì)照,在四川師范大學(xué)成龍校區(qū)采集的植物材料,鑒定為桂花(O.fragrans),采集其果實(shí)后,去雜清洗,分離出種子與果皮.果皮置60 ℃干燥,粉碎,過(guò)20~40目篩,備用.桂花果皮醇提物的制備:稱(chēng)取桂花果皮25.00 g,按1∶20比例加入體積分?jǐn)?shù)70%乙醇,60 ℃水浴回流提取1 h,重復(fù)2次,過(guò)濾,合并過(guò)濾液,濃縮至50 mL(以生藥量計(jì)500 mg/mL),冷藏備用.

1.2測(cè)試菌種金黃色葡萄球菌、大腸桿菌均由四川師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院實(shí)驗(yàn)室提供.分別取出大腸桿菌、金黃色葡萄球菌各0.1 mL,接種到20 mL牛肉膏蛋白胨瓊脂固體培養(yǎng)基,37 ℃恒溫培養(yǎng)24 h,挑選生長(zhǎng)健壯的菌落,再接種到牛肉膏蛋白胨液體培養(yǎng)基,培養(yǎng)24 h活化菌種,備用.參照文獻(xiàn) [15]的方法,制備菌懸液:分別取活化菌種各0.1 mL,置于20 mL牛肉膏蛋白胨液體培養(yǎng)基,37 ℃恒溫培養(yǎng)48 h.紫外可見(jiàn)分光光度計(jì)625 nm處測(cè)定OD值,加無(wú)菌的牛肉膏蛋白胨液體培養(yǎng)基,調(diào)節(jié)菌懸液體積使其OD值在0.08~0.13,此時(shí)每毫升菌懸液的活菌數(shù)(CFU,培養(yǎng)單位)即為108CFU/mL.測(cè)定時(shí),再加適量無(wú)菌牛肉膏蛋白胨液體培養(yǎng)基,使菌懸液的活菌數(shù)稀釋到105CFU/mL.

1.3儀器R-1005型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀,上海予華儀器設(shè)備有限公司;SHB-B95型循環(huán)水式多用真空泵,鄭州長(zhǎng)城科工貿(mào)有限公司;HH.W21型恒溫水浴鍋,北京中興偉業(yè)儀器有限公司;LDZX-50KB型立體壓力蒸汽滅菌鍋,上海申安醫(yī)療器械廠;ESJ205-4型電子分析天平,沈陽(yáng)龍騰電子稱(chēng)量?jī)x器有限公司;DZF-6050型真空干燥箱、DHP-9082型電熱恒溫培養(yǎng)箱,上海一恒科學(xué)儀器有限公司;SW-CJ-2F型超凈工作臺(tái),蘇凈集團(tuán)蘇州安泰空氣技術(shù)有限公司;DHG-9240型電熱鼓風(fēng)干燥箱,上海精宏實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司;UV-2600型紫外可見(jiàn)分光光度計(jì),日本島津科學(xué)儀器公司.

1.4試劑牛肉膏蛋白胨培養(yǎng)基(杭州微生物試劑有限公司),乙醇、甲醇、DPPH、ABTS(成都市長(zhǎng)征化玻有限公司),其余試劑為分析純.

1.5桂花果皮醇提物的抑菌活性

1.5.1濾紙片擴(kuò)散法 參照文獻(xiàn)[16]方法,根據(jù)有無(wú)抑菌圈、抑菌圈直徑判定提取物的抑菌活性.用打孔器制備5 mm濾紙圓片,滅菌后烘干.分別將10 μL一定質(zhì)量濃度桂花皮醇提取物滴在各濾紙圓片上,以體積分?jǐn)?shù)75%乙醇為陽(yáng)性對(duì)照,以蒸餾水為空白對(duì)照.分別移取0.1 mL菌懸液,用滅菌的涂布棒均勻涂布到牛肉膏蛋白胨瓊脂固體培養(yǎng)基,用無(wú)菌鑷子夾取各處理過(guò)的濾紙片,置于培養(yǎng)基上,每皿貼4張.37 ℃培養(yǎng)24 h,測(cè)定抑菌圈直徑,重復(fù)3次.

1.5.2比濁法 參照文獻(xiàn)[17]方法,測(cè)定醇提物的抑菌活性.以體積分?jǐn)?shù)75%乙醇為陽(yáng)性對(duì)照,以只加0.10 mL菌懸液、4.90 mL培養(yǎng)基為空白對(duì)照.將桂花皮醇提物稀釋成不同的濃度,分別吸取0.10 mL加入裝有4.8 mL無(wú)菌液體培養(yǎng)基的一系列試管,再加入0.10 mL菌懸液,塞上棉塞,震蕩混勻.在37 ℃條件培養(yǎng)24 h.用液體培養(yǎng)基調(diào)零,600 nm處測(cè)定各個(gè)試管的OD值,重復(fù)3次.

1.5.3測(cè)定最小抑菌濃度(MIC) 參照文獻(xiàn)[18]方法,采用試管2倍稀釋法測(cè)定醇提物的最小抑菌質(zhì)量濃度.取2組各9支無(wú)菌試管,每管各加2.00 mL滅菌培養(yǎng)基,先在第1支試管中加桂花皮醇提物2.00 mL,混勻后吸出2.00 mL置于第2支試管,混勻后再吸取2.00 mL至第3支試管,如此連續(xù)稀釋至第7管,混勻后棄去2.00 mL;第8支試管不加提取物,作為空白對(duì)照;第9支試管不加細(xì)菌只加提取物2.00 mL,混勻后棄去2.00 mL,觀察提取物是否有污染.第二組的1~7支試管,分別加入0.1 mL的105CFU/mL大腸桿菌、金黃色葡萄球菌的菌懸液,混勻,37 ℃培養(yǎng)24 h,觀察結(jié)果.與第8、9支試管比較,第1~7支試管中不發(fā)生混濁變化的最高提取物稀釋倍數(shù)的濃度,即為MIC值,重復(fù)測(cè)定3次.

1.6桂花果皮醇提物的抗氧化活性參照文獻(xiàn)[19-20]方法,分別測(cè)定桂花果皮醇提物清除DPPH·和ABTS·的能力,評(píng)價(jià)其抗氧化活性.

1.6.1清除DPPH·的活性 分別取質(zhì)量濃度25、50、100、125、200、250 mg/mL的醇提取溶液各200 μL置于試管,各加3.8 mL質(zhì)量濃度為80 mg/L的甲醇-DPPH溶液,混勻,避光1 h,515 nm處測(cè)得樣品吸光度值(Ai).以不加樣品,加體積分?jǐn)?shù)70%乙醇的甲醇-DPPH溶液為空白,測(cè)得空白吸光度值(A0);以無(wú)甲醇-DPPH溶液為對(duì)照,測(cè)得對(duì)照吸光度值(Aj).以3.8 mL甲醇加200 μL的體積分?jǐn)?shù)70%乙醇為調(diào)零溶液,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次.按公式計(jì)算清除率:

DPPH·清除率(%)=

[1-(Ai-Aj)/A0]×100%,

Ai為樣品吸光度值;Aj為對(duì)照吸光度值;A0為空白吸光度值.

1.6.2清除ABTS·的活性 先將ABTS溶液與過(guò)硫酸鉀溶液等體積混合,置暗處12 h,再用甲醇稀釋?zhuān)钡皆?34 nm處吸光度值達(dá)到0.688~0.702,即得ABTS·溶液.分別取不同質(zhì)量濃度樣品200 μL,各加入3.8 mL的ABTS·溶液,靜置1 min,在734 nm處測(cè)得樣品吸光度值(Ai);再取3.8 mL 的ABTS·溶液與適量體積的體積分?jǐn)?shù)70%乙醇,混合后測(cè)得空白吸光度值(A0).200 μL的體積分?jǐn)?shù)70%乙醇和3.8 mL蒸餾水混合,作為調(diào)零空白液.實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,按公式計(jì)算清除率:

ABTS·清除率(%)=(1-Ai/A0)×100%,

其中,Ai為樣品吸光度值,A0為空白吸光度值.

1.7統(tǒng)計(jì)與分析用SPSS 17.0軟件進(jìn)行方差分析,多重比較用LSD法[21],結(jié)果以means±std表示.

2 結(jié)果與分析

2.1濾紙片擴(kuò)散法測(cè)定的抑菌活性采用濾紙片擴(kuò)散法,在牛肉膏固體培養(yǎng)基,分別測(cè)定桂花果皮醇提物對(duì)大腸桿菌、金黃色葡萄球菌的抑菌活性,結(jié)果見(jiàn)表1.

從表1可知,與無(wú)菌水空白比較,桂花果皮醇提物對(duì)大腸桿菌、金黃色葡萄球菌都有一定的抑制作用,差異極顯著(P<0.01),對(duì)金黃色葡萄球菌的抑菌圈(8.98±0.413) mm,抑菌效果為低敏,而對(duì)大腸桿菌的抑菌圈(10.09±0.605) mm,抑菌效果為中敏.而與體積分?jǐn)?shù)75%的乙醇比較,桂花果皮醇提物對(duì)這兩種菌的抑菌效果均有顯著或極顯著的差異.桂花果皮醇提物對(duì)金黃色葡萄球菌的抑菌圈(8.98±0.413) mm較體積分?jǐn)?shù)75%乙醇的抑菌圈(6.37±0.187) mm大,而對(duì)大腸桿菌的抑菌圈為(10.09±0.605) mm也較體積分?jǐn)?shù)75%乙醇的抑菌圈(6.67±0.255) mm更大.

表1 桂花果皮醇提物對(duì)大腸桿菌和金黃色葡萄球菌的抑菌活性(n=3)

注:“-”抑菌圈直徑小于6 mm,判定無(wú)抑菌效果;“+”抑菌圈直徑6~10 mm,為低敏;“++”抑制圈直徑,為中敏.與無(wú)菌水比較,**P<0.01,差異極顯著;與體積分?jǐn)?shù)75%乙醇比較,#P≤0.05,差異顯著;##P<0.01,差異極顯著.

無(wú)菌水空白對(duì)照的抑菌圈為0.00 mm,表明無(wú)外來(lái)污染的影響,無(wú)菌操作可控,實(shí)驗(yàn)準(zhǔn)確可信.設(shè)體積分?jǐn)?shù)75%乙醇的對(duì)照,其對(duì)大腸桿菌的抑菌圈為(6.67±0.255) mm,而對(duì)金黃色葡萄球菌的抑菌圈(6.37±0.187) mm,說(shuō)明體積分?jǐn)?shù)75%乙醇對(duì)兩類(lèi)供試細(xì)菌均具有一定的抑菌效果.試驗(yàn)結(jié)果表明:與體積分?jǐn)?shù)75%乙醇比較,桂花果皮醇提物對(duì)金黃色葡萄球菌的抑菌圈較大(8.98±0.413) mm,差異性達(dá)到顯著(P≤0.05),而對(duì)大腸桿菌的抑菌圈更大(10.09±0.605) mm,差異極顯著(P<0.01).對(duì)G+和G-菌的抑制作用,桂花果皮醇提物的效果明顯高于體積分?jǐn)?shù)75%的乙醇.

2.2比濁法測(cè)定的抑菌活性采用比濁法,測(cè)定桂花果皮醇提物對(duì)大腸桿菌、金黃色葡萄球菌的抑菌作用,結(jié)果見(jiàn)表2.

從表2可知,桂花果皮醇提物對(duì)大腸桿菌、金黃色葡萄球菌的抑菌效果均極顯著(P<0.01),且隨桂花果皮醇提物質(zhì)量濃度的增加,抑菌效果增強(qiáng).與體積分?jǐn)?shù)75%乙醇比較,桂花果皮醇提物有極顯著的差異性(P<0.01),體積分?jǐn)?shù)75%乙醇對(duì)大腸桿菌的抑菌率為2.55%,最低質(zhì)量濃度125 mg/mL的桂花果皮醇提物的抑菌率達(dá)20.94%;而對(duì)金黃色葡萄球菌,體積分?jǐn)?shù)75%乙醇的抑菌率為2.23%,最低質(zhì)量濃度125 mg/mL桂花果皮醇提物的抑菌率達(dá)19.14%.因此,最低質(zhì)量濃度125 mg/mL的桂花果皮醇提物對(duì)大腸桿菌、金黃色葡萄球菌的抑制率,明顯高于體積分?jǐn)?shù)75%乙醇.桂花果皮醇提物質(zhì)量濃度500 mg/mL時(shí)對(duì)大腸桿菌的抑菌率達(dá)到91.66%,而對(duì)金黃色葡萄球菌的抑菌率91.39%,桂花果皮醇提物對(duì)兩類(lèi)細(xì)菌的抑制率均大于90%.

表2 桂花果皮醇提物對(duì)大腸桿菌、金黃色葡萄球菌的抑制率(n=3)

注:與空白對(duì)照比較,**P<0.01,差異極顯著;與乙醇比較##P<0.01,差異極顯著.

2.3桂花果皮醇提物的最低抑菌質(zhì)量濃度(MIC) 采用試管二倍稀釋法,測(cè)定桂花果皮醇提物的MIC值,結(jié)果見(jiàn)表3.

表3 桂花果皮醇提物對(duì)大腸桿菌、金黃色葡萄球菌的最低抑菌濃度(MIC)(n=3)

注:“-”表示溶液清澈,無(wú)菌生長(zhǎng);“+”表示有少量細(xì)菌生長(zhǎng);“++”表示有較多細(xì)菌生長(zhǎng);“+++”表示溶液混濁,細(xì)菌正常生長(zhǎng),無(wú)抑菌效果.

結(jié)果表明:桂花果皮醇提物對(duì)金黃色葡萄球菌的最低抑菌質(zhì)量濃度為62.5 mg/mL,對(duì)大腸桿菌的最低抑菌質(zhì)量濃度為125 mg/mL.結(jié)果提示,桂花果皮醇提物對(duì)G+菌的MIC值比對(duì)G-的MIC值小,可能對(duì)兩類(lèi)細(xì)菌的抑制作用機(jī)理有差異.

2.4桂花果皮醇提物對(duì)DPPH·的清除活性用DPPH法測(cè)定桂花果皮醇提物清除自由基的能力,評(píng)價(jià)其抗氧化活性,結(jié)果見(jiàn)圖1.

桂花果皮醇提物質(zhì)量濃度(以生藥計(jì))(mg/mL)

從圖1中,桂花果皮醇提物對(duì)DPPH·有明顯的清除能力,隨其質(zhì)量濃度的增加,清除DPPH·的活性增強(qiáng),表現(xiàn)出明顯的量效關(guān)系.桂花果皮醇提物質(zhì)量濃度大于100 mg/mL,其清除DPPH·的活性達(dá)90%以上,趨于平緩.

在測(cè)定條件下,桂花果皮醇提物質(zhì)量濃度與自由基清除率的擬合曲線方程為

y=27.215ln(x)-31.151,R2=0.938 2,

桂花果皮醇提物對(duì)DPPH·的IC50值為19.145 mg/mL.

2.5桂花果皮醇提物對(duì)ABTS·的清除活性用ABTS法測(cè)定桂花果皮醇提物清除自由基的能力,從而評(píng)價(jià)其抗氧化活性,結(jié)果見(jiàn)圖2.

桂花果皮醇提物質(zhì)量濃度(以生藥計(jì))/(mg/mL)

從圖2可以看出:桂花果皮醇提物對(duì)ABTS·的清除能力顯著,隨其質(zhì)量濃度的增加,對(duì)ABTS·的清除率明顯增強(qiáng),表現(xiàn)出明顯的量效關(guān)系.當(dāng)醇提物質(zhì)量濃度達(dá)到50 mg/mL時(shí),清除率高達(dá)95%,隨后質(zhì)量濃度再增加,對(duì)ABTS·的清除率趨于平緩.

在測(cè)定條件下,桂花果皮醇提物質(zhì)量濃度與其ABTS·清除率的擬合曲線方程為

y=7.727 5ln(x)-62.87,R2=0.955 3,桂花果皮醇提物對(duì)ABTS·的IC50值為4.624 mg/mL.

從桂花果皮醇提物清除DPPH·和ABTS·的清除率、IC50值來(lái)看,抗氧化活性都很高,而且都表現(xiàn)出明顯的量效關(guān)系.

3 結(jié)論

桂花果皮用體積分?jǐn)?shù)70%乙醇作為溶劑,制備得到醇提物,測(cè)定該醇提物的抑菌活性、抗氧化活性,為進(jìn)一步研究桂花果皮的抑菌成分、抑菌機(jī)理等研究奠定了一定的基礎(chǔ).

革蘭氏陰性的大腸桿菌、革蘭氏陽(yáng)性的金黃色葡萄球菌是常見(jiàn)的食源性條件致病菌[22],以抑菌圈、MIC為評(píng)價(jià)指標(biāo),采用濾紙片擴(kuò)散法、比濁法和試管二倍稀釋法,測(cè)定桂花果皮醇提物對(duì)大腸桿菌、金黃色葡萄球菌的抑制效果.濾紙片擴(kuò)散法的結(jié)果表明,桂花果皮醇提物對(duì)G+和G-兩類(lèi)細(xì)菌的抑菌效果,均達(dá)到顯著或極顯著;比濁法的結(jié)果表明,質(zhì)量濃度500 mg/mL的桂花果皮醇提物,對(duì)G+和G-兩類(lèi)細(xì)菌的抑制率都達(dá)到90%以上.桂花果皮醇提物對(duì)大腸桿菌的MIC值為125 mg/mL,對(duì)金黃色葡萄球菌的MIC值為62.5 mg/mL.因此,桂花果皮醇提物具有顯著的抑菌活性.桂花果皮醇提物清除DPPH·的IC50值為 19.145 mg/mL,而清除ABTS·的IC50值為4.624 mg/mL,且都表現(xiàn)出明顯的量效關(guān)系,此結(jié)果表明,桂花果皮醇提物有明顯的抗氧化活性.

綜上所述,桂花果皮的醇提物具有一定的抑菌和抗氧化活性,作為未利用的植物副產(chǎn)物,桂花果皮有望開(kāi)發(fā)成防腐劑或抗氧化劑,以期為桂花資源的高效利用提供理論參考.

致謝四川師范大學(xué)大精設(shè)備項(xiàng)目(DJ2016-08)、食品與藥品制造檢驗(yàn)綜合應(yīng)用的實(shí)踐、生物技術(shù)應(yīng)用型人才培養(yǎng)綜合改革研究與實(shí)踐、四川師范大學(xué)創(chuàng)新創(chuàng)業(yè)訓(xùn)練計(jì)劃項(xiàng)目(201610636120)對(duì)本文給予了資助,謹(jǐn)致謝意.

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