陳曉鑫 夏鑫梓 林長鋒 張 躍 陳 欣 于加平
(吉林農(nóng)業(yè)科技學院生物工程學院,吉林 吉林 132101)
樹舌[Ganoderma applanatum(Pers.Ex Wallr)Pat.]隸屬于真菌門擔子菌亞門層菌綱靈芝目靈芝科靈芝屬[1],又被稱為平蓋靈芝、扁木靈芝、赤色老母菌等,分布于東北、西北、華東、華南、西南各省區(qū),在我國資源豐富[2]。野生樹舌多生于楊、樺、柳、櫟等闊葉樹的枯立木、倒木和伐樁上[3]。目前對樹舌的研究主要集中在其子實體多糖及人工栽培等方面,而對運用液體深層發(fā)酵技術(shù)得到的菌絲體中的多糖研究卻鮮見報道。因此,本文以熱水浸提法提取楊樹舌菌絲體多糖,采用苯酚-硫酸法測定多糖含量,通過考察浸提溫度、料液比、pH值和浸提次數(shù)4種影響因素,分別對其進行單因素試驗,然后采用正交試驗法優(yōu)化,最終得出楊樹舌菌絲體多糖最佳提取條件。
楊樹舌菌絲體:經(jīng)過野生子實體(采自吉林省通化市二道江區(qū)桃園村)分離,采用液體深層發(fā)酵得到菌絲體,陰干、低溫烘干,粉碎,置于干燥器中備用。
ZHJH-C1214C型超凈工作臺(上海新苗醫(yī)療器械制造有限公司),IS-RDS3C型疊加式恒溫振蕩箱(常州萬合儀器制造有限公司),UV-9100型紫外分光光度計(上海光譜儀器有限公司),F(xiàn)A1004A型電子分析天平(上海精密科學儀器有限公司),ZW-FX-50L型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(深圳市能易儀器有限公司)。
葡萄糖、蛋白胨、瓊脂、碳酸氫鈉(沈陽市新化試劑廠),硫酸鎂(含7個結(jié)晶水)、維生素B1(天津基準化學試劑有限公司),氫氧化鈉、鹽酸、無水乙醇、苯酚(浙江王龍科技有限公司),濃硫酸、丙酮、氯仿(濰坊日興化工有限公司),正丁醇(天津市福晨化工試劑廠),磷酸二氫鉀、磷酸氫二鉀(天津市瑞金特化學品有限公司),所述試劑均為分析純。
將野生楊樹舌子實體進行菌種分離操作,培養(yǎng)得到斜面母種。將分離得到的菌絲體作為液體菌種培養(yǎng)的原材料,在24℃、150 r/min的恒溫振蕩器中進行液體培養(yǎng)10 d后,接入發(fā)酵罐中進行液體深層培養(yǎng),得到菌絲體。
2.2.1楊樹舌菌絲體中多糖的提取與純化。稱取液體深層發(fā)酵中所得的菌絲體粉碎后放入燒杯中,加入相應體積的蒸餾水于恒溫水浴鍋中浸提,將提取液離心后,殘渣按照相同方法繼續(xù)浸提,煮沸的過程中需攪拌過濾。將濾液合并后濃縮至原液的1/2,然后根據(jù)Sevage法去蛋白,經(jīng)離心機分離,取上清液。于蒸餾水中透析48 h,透析完成后,在提取液中加入95%無水乙醇(使提取液中醇濃度達到85%以上),放于4℃冰箱中沉淀48 h。離心分離得到沉淀,將其放入含有無水乙醇溶液的燒杯中洗2次,再用乙醚、丙酮用同樣的方法各洗2次,最終將得到的楊樹舌菌絲體多糖放入烘箱中干燥至恒質(zhì)量,置于干燥器皿中備用。
2.2.2標準曲線的繪制。準確稱量25 mg無水葡萄糖,放于容量瓶中定容至250 mL,使其葡萄糖溶液濃度為0.1 mg/mL。分別移取上述標準溶液,將其按不同的體積(0.1~0.7 mL)分別加入7只試管中,然后依次加入蒸餾水,使每只試管中的溶液最終體積為1 mL,另取1 mL蒸餾水作為對照。每只試管加入5%苯酚溶液1 mL,搖勻并迅速加入濃硫酸5 mL,然后將其放到冷水中進行冷卻(放置30 min),待冷卻到室溫后搖勻5 min,在490 nm處測得吸光度,繪制標準曲線,得回歸方程為A=1.029 3C+0.009 6,R=0.999 9。
2.2.3換算因子f的測定。準確稱取2.2.1中所得的楊樹舌菌絲體精制多糖1 mg,定容至50 mL,使其濃度達到Cx=0.02 mg/mL。用移液管移取1 mL楊樹舌菌絲體多糖溶液于試管中,加入5%苯酚溶液1 mL后振蕩混勻,隨即迅速向試管中加入濃硫酸5 mL,將其搖勻后并充分反應,放入冷水中待冷卻至室溫后,在490 nm處測定吸光度值,得A=0.112,帶入回歸方程可得Cf=0.015,得到換算因子f=Cx/Cf=1.33。
2.3.1不同溫度提取楊樹舌菌絲體多糖。分別稱取5份等同質(zhì)量菌絲體于燒杯中,并向其中加入等同體積的蒸餾水,于恒溫水浴鍋中浸提2 h,浸提溫度分別設(shè)置為80、85、90、95 ℃和100 ℃,進行提取,按2.2.2進行測定。
2.3.2不同料液比提取楊樹舌菌絲體多糖。分別稱取4份等同質(zhì)量菌絲體于燒杯中,浸提中干粉∶水分別為1∶15、1∶20、1∶25、1∶30(W/V,g/mL),浸提溫度為95 ℃,浸提時間為2 h,進行提取,按2.2.2進行測定。
2.3.3不同pH值提取楊樹舌菌絲體多糖。稱取4份等同質(zhì)量菌絲體于燒杯中,浸提中料液的pH值分別為5、6、7、8,浸提溫度為95 ℃,料液比為1∶20(g/mL),浸提時間為2 h,進行提取,按2.2.2進行測定。
2.3.4不同浸提次數(shù)提取楊樹舌菌絲體多糖。用電子天平分別稱取4份等同質(zhì)量菌絲體于燒杯中,95℃下浸提2 h,浸提時料液比為1∶20(g/mL),pH值為7,進行提取,浸提液離心后對殘渣按同樣方法再進行多次提取,按2.2.2進行測定。
3.1.1溫度對菌絲體多糖提取的影響。按照2.3.1所述方法,測定不同浸提溫度對菌絲體多糖含量的影響,如圖1所示。
圖1 不同溫度對多糖提取的影響
由圖1可知,在其他條件不變的情況下,設(shè)定不同浸提溫度對多糖進行提取,可以得出溫度影響多糖浸出率。隨著溫度的升高,多糖含量逐漸增加。當溫度為95℃時,多糖含量達到最高峰值;而溫度超過95℃后,多糖的浸出率開始減少。由此可知,95℃為楊樹舌菌絲體的最佳浸提溫度。
3.1.2料液比對菌絲體多糖提取的影響。按照2.3.2所述方法,測定不同料液比對菌絲體多糖含量的影響,結(jié)果如圖2所示。
圖2 不同料液比對多糖提取的影響
由圖2可知,料液比不同,多糖含量存在差異,多糖含量隨著料液比量的增加而增加。當料液比由1∶10(g/mL)增大至1∶20(g/mL)時,菌絲體中多糖含量達到最高;但當料液比量繼續(xù)增加時,多糖含量卻隨之減少。隨著料液比的不斷增加,所需使用的提取劑蒸餾水的用量也不斷增加,溶解在溶劑中的溶質(zhì)卻不斷減少,后續(xù)濃縮液體所需時間較長、效率較低,使得成本與收益相差甚遠。綜合考慮,料液比選擇1∶20(g/mL)較為合適。
3.1.3pH值對菌絲體多糖提取的影響。按照2.3.3所述方法,研究不同pH值對菌絲體多糖含量的影響,如圖3所示。
圖3 不同pH值對多糖提取的影響
由圖3可知,在其他條件不變的情況下,設(shè)定不同pH值對多糖進行提取,可以看出pH值影響著多糖含量。隨著pH值的變化,溶液由酸性變?yōu)閴A性,多糖含量隨即發(fā)生變化。當pH值為7時,多糖含量達到最高峰值。而當pH值繼續(xù)增加時,多糖含量卻開始下降。因此,pH值為7較為合適。
3.1.4浸提次數(shù)對菌絲體多糖提取的影響。按照2.3.4所述方法,研究不同提取次數(shù)對菌絲體多糖提取率的影響,如圖4所示。
圖4 不同浸提次數(shù)對多糖提取的影響
由圖4可知,在其他條件不變的情況下,只考慮浸提次數(shù)對多糖含量的影響。由浸提次數(shù)1次變?yōu)?次時,多糖含量明顯增加2倍,但當浸提次數(shù)繼續(xù)不斷增加時,多糖含量呈現(xiàn)緩慢增加的趨勢。由此可知,浸提次數(shù)是提取多糖時的一個重要影響因素。如果提取次數(shù)過少,楊樹舌菌絲體中的多糖不能完全被提取出來,無法得到較多的多糖,造成原材料與試劑的浪費,導致經(jīng)濟效益降低。而提取次數(shù)過多,無異于增大了浸提液的體積,使得后續(xù)濃縮處理、醇沉等步驟增加時間,降低試驗效率。綜合考慮,選擇合適的浸提次數(shù)對于多糖提取工藝是至關(guān)重要的。因此,浸提次數(shù)選擇2次。
根據(jù)楊樹舌菌絲體多糖提取單因素試驗結(jié)果,可選取適當?shù)囊蛩嘏c水平,設(shè)計L9(34)正交試驗,進行3次重復,對楊樹舌菌絲體多糖提取條件進一步優(yōu)化。表1為正交試驗因素水平對照表,表2為正交試驗結(jié)果。
由表2結(jié)果可知,不同組合的多糖含量各不相同,存在一定的差異。根據(jù)極差R數(shù)值的大小對楊樹舌菌絲體多糖提取條件的影響因素進行主次排序,依次為D>A>C>B,選取合適的水平組合為A2B2C2D2,由此可得出當浸提溫度為95℃,料液比為1∶20,pH值為7,浸提次數(shù)為2時,是楊樹舌菌絲體多糖的最佳提取工藝條件。以最優(yōu)組合進行驗證試驗,此時的提取率高達113.4 mg/g。
表1 正交試驗因素水平表
表2 正交試驗數(shù)據(jù)結(jié)果
試驗結(jié)果表明,楊樹舌菌絲體最佳提取工藝條件是浸提溫度為95℃,料液比為1∶20,pH值為7,浸提次數(shù)為2次,此時多糖含量可達113.4 mg/g。本文通過對液體深層培養(yǎng)獲得的楊樹舌菌絲體,采用熱水浸提法對其多糖提取有著較為穩(wěn)定的效果,而且此工藝提取過程簡單、測定方法簡便,成本較低,可用作此類真菌多糖的提取工藝,可為楊樹舌多糖實現(xiàn)工業(yè)化生產(chǎn)奠定基礎(chǔ),推動楊樹舌多糖的開發(fā)與利用。