丁艷潔,李思源,李軍,常子濤,張震,吳媛媛(石河子大學(xué)醫(yī)學(xué)院,新疆石河子8300;石河子大學(xué)醫(yī)學(xué)院第一附屬醫(yī)院)
糖尿病是以高血糖為特征的代謝性疾病。研究表明,無論1型還是2型糖尿病的發(fā)病都與胰島素(INS)分泌異常有關(guān)[1,2]。因此,關(guān)于INS分泌的作用機(jī)制及其影響因素已成為近年來國內(nèi)外研究的熱門方向。胰高血糖素(Gn)和INS之間存在著拮抗作用:當(dāng)血糖濃度過低時(shí),Gn分泌增多,使血糖含量升高;當(dāng)血糖濃度過高時(shí),INS分泌增多,使血糖含量降低。本課題組前期研究表明,Gn在不同濃度葡萄糖環(huán)境下,均可促進(jìn)胰島β細(xì)胞分泌INS[3~5],但其具體機(jī)制尚不明確。環(huán)磷酸腺苷(cAMP)是一種由三磷酸腺苷(ATP)脫掉兩個(gè)磷酸羧合而成的環(huán)狀核苷酸,當(dāng)血糖升高時(shí),Gn可以刺激ATP環(huán)化為cAMP,從而增加其濃度。2016年10月~2017年1月,我們對胰島β細(xì)胞系MIN6細(xì)胞在不同濃度葡萄糖環(huán)境下進(jìn)行Gn干預(yù),觀察對INS及cAMP含量的影響,探討Gn影響INS分泌的機(jī)制,為糖尿病治療藥物的開發(fā)提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。
1.1 細(xì)胞與材料 胰島β細(xì)胞系MIN6細(xì)胞。主要試劑有cAMP信號(hào)通路刺激劑鹽酸異丙腎上腺素(ISO)、0.25%含EDTA-胰蛋白酶液、小鼠INS-ELISA試劑盒、cAMP-ELISA試劑盒等。
1.2 細(xì)胞培養(yǎng) 用含15%胎牛血清(FBS)、4.5 g/L葡萄糖、2%青鏈霉素、1%L-谷氨酰胺及1%β-巰基乙醇的DMEM培養(yǎng)基,在37 ℃含5%CO2的培養(yǎng)箱中培養(yǎng),傳代至4~15代用于實(shí)驗(yàn)。
1.3 不同濃度Gn對MIN6細(xì)胞分泌INS及cAMP影響的觀察
1.3.1 分組及干預(yù)方法 取對數(shù)生長期的MIN6細(xì)胞,以4×105/孔的密度接種于6孔板中,分為正常對照1組、低糖1組、高糖1組,分別在葡萄糖終濃度為0、2.8、16.7 mmol/L培養(yǎng)基中培養(yǎng),每組均給予0、500、1 000 ng/L的Gn干預(yù)1 h。
1.3.2 細(xì)胞上清液INS含量檢測 采用ELISA法。各組細(xì)胞接種于6孔培養(yǎng)板,換2%FBS的培養(yǎng)基37 ℃培養(yǎng)12 h后,Krebs液沖洗3遍,之后每孔分別加不同刺激的處理液,正常對照組的0 ng/L水平加入Kerbs液,37 ℃孵育1 h;吸取每孔上清液分裝,用INS-ELISA試劑盒檢測INS含量。
1.3.3 細(xì)胞上清液cAMP含量檢測 采用ELISA法。各組細(xì)胞接種于6孔培養(yǎng)板,用不含F(xiàn)BS的培養(yǎng)基饑餓處理12 h,之后每孔分別加入不同刺激液1 mL處理,正常對照組的0 ng/L水平加入同體積Kerbs液,37 ℃培養(yǎng)箱孵育7 min。吸除刺激液,每孔加0.1 mmol/L的HCl 1 mL,室溫孵育20 min;收集上清液,用cAMP-ELISA試劑盒檢測cAMP含量。
1.4 加入ISO后不同濃度Gn對MIN6細(xì)胞分泌INS及cAMP影響的觀察
1.4.1 分組及干預(yù)方法 取對數(shù)生長期的MIN6細(xì)胞,以4×105/孔的密度傳代于6孔板中,分為正常對照2組、低糖2組、高糖2組,分別在葡萄糖終濃度為0、2.8、16.7 mmol/L培養(yǎng)基中培養(yǎng),并均加入500 μL ISO,37 ℃孵育10 min,然后每組均給予0、500、1 000 ng/L的Gn干預(yù)1 h。
1.4.2 細(xì)胞上清液INS及cAMP含量檢測 同1.3.2、1.3.3。
2.1 不同濃度Gn對MIN6細(xì)胞分泌INS及cAMP的影響
2.1.1 細(xì)胞上清液INS含量比較 正常對照1組、低糖1組、高糖1組中,1 000 ng/L Gn干預(yù)后INS含量高于500、0 ng/L時(shí),500 ng/L Gn干預(yù)后INS含量均高于0 ng/L時(shí)(P均<0.05)。見表1。
2.1.2 各組細(xì)胞上清液cAMP含量比較 正常對照1組中,1 000 ng/L Gn干預(yù)后cAMP含量高于0 ng/L時(shí),500 ng/L Gn干預(yù)后cAMP含量高于0 ng/L時(shí)(P均<0.05)。低糖1組、高糖1組中,1 000 ng/L Gn干預(yù)后cAMP含量均高于500、0 ng/L時(shí),500 ng/L Gn干預(yù)后cAMP含量均高于0 ng/L時(shí)(P均<0.05)。見表2。
2.2 加入ISO后不同濃度Gn對MIN6細(xì)胞分泌INS的影響
2.2.1 細(xì)胞上清液INS含量比較 正常對照2組、低糖2組、高糖2組中,1 000 ng/L Gn干預(yù)后INS含量均高于500、0 ng/L時(shí),500 ng/L Gn干預(yù)后INS含量均高于0 ng/L時(shí)(P均<0.05)。見表1。
表1 不同濃度Gn條件下各組細(xì)胞上清液INS分泌量比較
注:與同組0 ng/L比較,*P<0.05;與同組500 ng/L比較,﹟P<0.05。
2.2.2 各組細(xì)胞上清液cAMP含量比較 正常對照2組、低糖2組、高糖2組中,1 000 ng/L Gn干預(yù)后cAMP含量均高于500、0 ng/L時(shí),500 ng/L Gn干預(yù)后cAMP含量均高于0 ng/L時(shí)(P均<0.05)。見表2。
表2 不同濃度Gn條件下各組細(xì)胞上清液cAMP含量比較
注:與同組0 ng/L比較,*P<0.05;與同組500 ng/L比較,﹟P<0.05。
2.3 細(xì)胞上清液cAMP與INS含量的相關(guān)性 在未添加ISO時(shí),細(xì)胞上清液cAMP與INS含量呈正相關(guān)(r=0.897 2,r2=0.804 9,P<0.05);在添加ISO后,細(xì)胞上清液cAMP與INS含量也呈正相關(guān)(r=0.894 7,r2=0.800 5,P<0.05)。見圖1、2。
糖尿病是一種由于INS分泌不足和(或)INS抵抗而引起的代謝性疾病,除INS分泌絕對不足的1型糖尿病外,2型糖尿病患者亦表現(xiàn)為胰島β細(xì)胞INS分泌功能的缺陷。β細(xì)胞的INS分泌過程受到各種供能物質(zhì)及激素、多肽和神經(jīng)遞質(zhì)類等多種因素的調(diào)控[6],其中如Gn、Gn樣肽等激素,不直接引起INS分泌,但可通過作用于胰島β細(xì)胞,增加或減少細(xì)胞內(nèi)第二信使信號(hào)系統(tǒng)的某些第二信使的濃度,發(fā)揮調(diào)節(jié)INS分泌的作用[7]。以往的研究大都針對如何減少Gn,而Gn對胰島β細(xì)胞INS分泌功能的影響則研究較少。
圖1 未添加ISO時(shí)細(xì)胞上清液中cAMP與INS含量相關(guān)性散點(diǎn)圖
圖2 添加ISO后細(xì)胞上清液中cAMP與INS含量相關(guān)性散點(diǎn)圖
本課題組前期研究發(fā)現(xiàn),Gn對INS分泌有促進(jìn)作用[8]。Gn可能通過旁分泌作用直接到達(dá)臨近的β細(xì)胞,對INS分泌產(chǎn)生調(diào)節(jié)作用;也可能通過先與細(xì)胞膜上的Gn受體結(jié)合,引起腺苷酸環(huán)化酶活化,從而使ATP環(huán)化為cAMP,再通過cAMP-PKA第二信使信號(hào)途徑實(shí)現(xiàn)[9,10]。因此,第二信使信號(hào)分子cAMP可能是Gn參與調(diào)控INS分泌的橋梁[11,12],但其影響作用的機(jī)制和具體環(huán)節(jié)尚不十分清楚。本研究發(fā)現(xiàn),正常對照1組、低糖1組、高糖1組中,1 000 ng/L Gn干預(yù)后INS的分泌量高于500、0 ng/L時(shí),500 ng/L Gn干預(yù)后INS的分泌量均高于0 ng/L時(shí);提示Gn干預(yù)可促進(jìn)不同葡萄糖水平的細(xì)胞上清液INS含量升高[13],且Gn濃度較高時(shí)對INS含量的促進(jìn)作用更明顯;正常對照1組、低糖1組、高糖1組中,1 000 ng/L Gn干預(yù)后cAMP含量均高于500、0 ng/L時(shí),500 ng/L Gn干預(yù)后cAMP含量均高于0 ng/L時(shí),提示Gn干預(yù)可使不同葡萄糖水平的細(xì)胞上清液cAMP含量升高,且Gn濃度較高時(shí)對cAMP含量的促進(jìn)作用更明顯。cAMP含量與INS分泌量呈正相關(guān)關(guān)系,提示Gn干預(yù)可使不同葡萄糖水平的細(xì)胞上清液INS含量升高的機(jī)制可能與cAMP有關(guān)。
本研究進(jìn)一步通過添加cAMP刺激劑ISO,測定Gn對第二信使信號(hào)通路cAMP產(chǎn)生的影響以及對INS分泌的影響。本研究發(fā)現(xiàn),正常對照2組、低糖2組、高糖2組中,1 000 ng/L Gn干預(yù)后INS含量均高于500、0 ng/L時(shí),500 ng/L Gn干預(yù)后INS含量均高于0 ng/L時(shí);提示加入ISO后,Gn干預(yù)可使不同葡萄糖水平的細(xì)胞上清液INS含量升高,且Gn濃度較高時(shí)對INS含量的促進(jìn)作用更明顯。正常對照2組、低糖2組、高糖2組中,1 000 ng/L Gn干預(yù)后cAMP含量均高于500、0 ng/L時(shí),500 ng/L Gn干預(yù)后cAMP含量均高于0 ng/L時(shí);提示加入ISO后,Gn干預(yù)可使不同葡萄糖水平的細(xì)胞上清液cAMP含量升高,且Gn濃度較高時(shí)對cAMP含量的促進(jìn)作用更明顯。cAMP含量與INS分泌量呈正相關(guān)關(guān)系,提示Gn干預(yù)可使不同葡萄糖水平的細(xì)胞上清液INS含量升高的機(jī)制可能與cAMP有關(guān)。
綜上所述,Gn可促進(jìn)不同葡萄糖水平下胰島β細(xì)胞INS的分泌,其濃度較高時(shí)對INS促進(jìn)作用更明顯;其機(jī)制可能為Gn通過cAMP信號(hào)通路促進(jìn)INS分泌。本研究結(jié)果為研究促進(jìn)INS分泌類的糖尿病治療藥物開發(fā)提供了實(shí)驗(yàn)室依據(jù),對糖尿病病程的進(jìn)展與治療預(yù)后等具有重要意義。
:
[1] Butler AE, Janson J, Bonner WS, et al. Beta-cell deficit and increased beta-cell apoptosis in humans with type 2 diabetes[J].Diabetes, 2003,52(1):102-110.
[2] Defronzo RA. Lilly lecture 1987. The triumvirate: beta-cell, muscle, liver. A collusion responsible for NIDDM[J]. Diabetes, 1988, 37(6):667-687.
[3] 李軍,李思源,張震,等.胰高血糖素對MIN6細(xì)胞胰島素分泌作用的影響[J].兵團(tuán)醫(yī)學(xué),2014,40(2):1-2.
[4] 李思源, 吳媛媛, 李軍,等. 胰升血糖素對MIN6細(xì)胞增殖活力及胰島素分泌影響的研究[J]. 中國糖尿病雜志, 2015(7):644-646.
[5] Li SY, Li J, Cao GL, et al. Effect of glucagon on insulin secretion through cAMP signaling pathway in MIN6 cells[J]. Int J Clin Exp Pathol, 2015, 8(5):5974.
[6] Brüning JC, Gautam D, Burks DJ, et al. Role of brain insulin receptor in control of body weight and reproduction[J]. Science, 2000, 289(5487):2122-2125.
[7] Brennesvik EO, Ktori C, Ruzzin J, et al. Adrenaline potentiates insulin-stimulated PKB activation via cAMP and Epac: implications for cross talk between insulin and adrenaline[J]. Cell Signal, 2005, 17(12):1551-1559.
[8] 常子濤, 李思源, 李軍,等. 胰升血糖素通過環(huán)磷鳥嘌呤核苷信號(hào)通路調(diào)節(jié)MIN6細(xì)胞胰島素分泌的作用機(jī)制研究[J].中國糖尿病雜志, 2016, 24(8):742-744.
[9] Klemm DJ, Roesler WJ, Boras T, et al. Insulin stimulates cAMP-response element binding protein activity in HepG2 and 3T3-L1 cell lines[J]. J Biol Chem, 1998, 273(2):917.
[10] Choi YH, Park S, Hockman S, et al. Alterations in regulation of energy homeostasis in cyclic nucleotide phosphodiesterase 3B-null mice[J]. J Biol Chem, 2006, 116(12):3240-3251.
[11] Peschke E, Mühlbauer E. New evidence for a role of melatonin in glucose regulation[J]. Best Pract Res Clin Endocrinol Metab, 2010,24(5):829-841.
[12] Idevallhagren O, Barg S, Gylfe E, et al. cAMP mediators of pulsatile insulin secretion from glucose-stimulated single β-cells[J]. J Biol Chem, 2010, 285(30):23007-23018.
[13] Kanno T, Gpel SO, Rorsman P, et al. Cellular function in multicellular system for hormone-secretion: electrophysiological aspect of studies on α-, β- and δ-cells of the pancreatic islet[J]. Neuro Res, 2002,42(2):79-90.