鄧晗,史瑾,王維,郝東,王俊,楊小琳
摘 要:目的:以畢赤酵母表達(dá)的重組人溶菌酶(hLYZ,以下簡(jiǎn)稱(chēng)hLYZ)發(fā)酵液為原料,建立一種hLYZ純化方法。方法:高速離心技術(shù)、膜過(guò)濾技術(shù),超濾技術(shù)為主的粗純工藝;應(yīng)用離子交換色譜的精細(xì)純化工藝。結(jié)果:以該純化工藝可生產(chǎn)獲得單一組分的hLYZ,經(jīng)SDS聚丙烯酰胺凝膠電泳及反相高效液相色譜C18柱檢測(cè)其純度可達(dá)98%以上。結(jié)論:本工藝得到的hLYZ純度大于98%、可用于進(jìn)一步工業(yè)化研究。
關(guān)鍵詞:hLYZ;超濾濃縮;離子交換層析;純化
中圖分類(lèi)號(hào):Q55 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A 文章編號(hào):2095-2945(2018)06-0176-03
Abstract: Objective: to establish a method for purification of human lysozyme (hLYZ) from the fermentation broth of recombinant human lysozyme (hLYZ) expressed by Pichia pastoris. Methods: high speed centrifugation, membrane filtration and ultrafiltration were used for crude purification, and ion exchange chromatography was used for fine purification. Results: a single component of hLYZ could be obtained by this purification process. The purity of hLYZ could reach more than 98% by SDS polyacrylamide gel electrophoresis and RP-HPLC C18 column. Conclusion: the purity of hLYZ obtained by this process is more than 98%, which can be used for further industrial research.
Keywords: hLYZ; ultrafiltration concentration; ion exchange chromatography; purification
引言
溶菌酶(lysozyme)是一種專(zhuān)門(mén)作用于微生物細(xì)胞壁的水解酶,又稱(chēng)胞壁質(zhì)酶,溶菌酶廣泛的存在于高等動(dòng)物組織及分泌物、鳥(niǎo)類(lèi)和家禽的蛋清中也含有此酶、其中以雞蛋清中含量最高[1-2]。它是一種無(wú)毒、無(wú)副作用的蛋白質(zhì),具有一定的溶菌作用,可作為食品防腐劑。同時(shí)它具有抗菌、抗病毒等多種作用[3]。溶菌酶還具有破壞細(xì)胞壁結(jié)構(gòu)的功能,因此溶菌酶成為基因工程及細(xì)胞工程必不可少的工具酶[4]。隨著生物工程的迅速發(fā)展,溶菌酶應(yīng)用價(jià)值將會(huì)越來(lái)越重要。目前用于溶菌酶分離純化的方法主要有結(jié)晶法[5-6]、離子交換法[7-8],特別是現(xiàn)在采用的新技術(shù)如膜分離技術(shù)[9-10]、超濾法、親和-膜過(guò)濾技術(shù)等[11-12]。
與其他來(lái)源溶菌酶相比,人溶菌酶具有其優(yōu)越性和多種藥理作用,在臨床上也具有重要價(jià)值。 因此分離純化得到高純度hLYZ,產(chǎn)品用于進(jìn)一步科學(xué)研究就顯得尤為重要。但天然溶菌酶來(lái)源及其困難,DNA重組技術(shù)進(jìn)行生產(chǎn)是解決這一困難的有效途徑,現(xiàn)已利用化學(xué)合成或從人細(xì)胞組織中制備cDNA等途徑獲取人溶菌酶基因,并在大腸桿菌,酵母菌等表達(dá)系統(tǒng)進(jìn)行了表達(dá),由于其表達(dá)水平不高,再加上后期純化工藝損失,總體收益較低, 因此目前國(guó)內(nèi)外對(duì)于hLYZ純化工藝研究相對(duì)較少,本工藝運(yùn)用固液分離技術(shù),超濾技術(shù)、離子交換層析技術(shù)得到純度大于98%的hLYZ產(chǎn)品,符合工業(yè)化生產(chǎn)要求,且工藝相對(duì)簡(jiǎn)單易操,可用于進(jìn)一步的工業(yè)化研究。
1 材料和方法
1.1 儀器
遼陽(yáng)陽(yáng)光三足式離心機(jī)(SSC600-NG)、0.22um除菌濾器、天津膜天膜中空纖維膜組件、武漢新力協(xié)力超濾膜組件、AKTA purifiers 100、北京六一電泳儀、日立HPLC 、C18層析柱(中科院大連化學(xué)物理研究所)。
1.2 試劑及材料
(1)試劑。十二水合磷酸氫二鈉、二水合磷酸二氫鈉、氯化鈉、氫氧化鈉、鹽酸以及電泳相關(guān)試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純;去離子水;超純水;乙腈及三氟乙酸均為色譜純;CM Sepharose Fast Flow(保賽恒成生產(chǎn),批號(hào):20131120)。對(duì)照品LYZ:sigma Lysozme hunman(L1667)。(2)材料。本公司201705003-50L批hLYZ發(fā)酵液。
1.3 方法
(1)hLYZ粗純。發(fā)酵液經(jīng)沉降式離心機(jī)轉(zhuǎn)速2000轉(zhuǎn)/分鐘,離心60分鐘進(jìn)行固液分離;收集上清,上清經(jīng)0.22um中空纖維膜過(guò)濾系統(tǒng),去除殘余菌體、細(xì)胞碎片以及部分雜質(zhì);收集0.22um濾出液用5k卷式超濾膜超濾濃縮脫鹽。(2)hLYZ陽(yáng)離子交換層析。a. 樣品處理:最終收集收集的濃縮液中加入0.05M磷酸二氫鈉溶液,調(diào)節(jié)pH7.5-8.0,電導(dǎo)6.0-7.0 mS/cm,配成上樣溶液備用。b. CM陽(yáng)離子交換層析純化:配制流動(dòng)相A:pH7.6 50mM磷酸鹽緩沖液,pH7.5-8.0之間,電導(dǎo)6.0-7.0 mS/cm;B:pH7.6 50mM磷酸鹽緩沖液,1M NaCl,pH7.5-8.0之間。將a中的hLYZ樣品上CM FF層析柱,樣品上樣完成后,用A相平衡,10%B相洗脫為雜質(zhì),16%B洗脫液為hLYZ。
1.4 分析檢測(cè)
(1) Tricine-SDS-PAGE電泳檢測(cè)。hLYZ分子量為14.7Kd,故采用15%的分離膠分別對(duì)粗純樣品以及離子交換層析樣品進(jìn)行分析檢測(cè),先60v電壓 60min,再120v電壓150min。電泳完成后用固定液固定30min,再用R250染色30min,最后用脫色液脫色。(2)HPLC對(duì)hLYZ純度分析。采用HPLC對(duì)純化后hLYZ進(jìn)行純度分析,色譜柱為C18柱,流動(dòng)相A:生理鹽水+0.1%TFA;B相為60%已腈+40%生理鹽水,色譜分析程序?yàn)?0B-70B 30min。檢測(cè)波長(zhǎng)為215nm。
2 結(jié)果
2.1 hLYZ純化
hLYZ發(fā)酵液先進(jìn)行固液分離;去除酵母細(xì)胞以及不溶性雜質(zhì),在過(guò)0.22um中空纖維膜過(guò)濾系統(tǒng),進(jìn)一步去除殘余菌體、細(xì)胞碎片以及部分大分子物質(zhì)等;最后用5k卷式超濾膜超濾濃縮脫鹽出去部分小分析物質(zhì)。
將5k脫鹽濃縮后的hLYZ加入0.05M磷酸二氫鈉溶液,調(diào)節(jié)pH7.5-8.0,電導(dǎo)6.0-7.0 mS/cm,分別用10%,16%的B相進(jìn)行階梯洗脫,16B洗脫為目標(biāo)蛋白,見(jiàn)圖1。
2.2 Tricine-SDS-PAGE電泳檢測(cè)
對(duì)分離純化得到的hLYZ采用Tricine-SDS-PAGE電泳分分析檢測(cè)其純度,檢測(cè)結(jié)果如圖2所示,分離得到的hLYZ分子量在14.4kd,與對(duì)照品LYZ電泳遷移位置一致,且整個(gè)電泳條帶中雜帶較少,純度較高。
1:蛋白分子量標(biāo)準(zhǔn);2:對(duì)照品LYZ;3:純化后hLYZ
2.3.HPLC純度分析
經(jīng)高效液相色譜分析表明:純化后hLYZ出峰時(shí)間為16.03min,對(duì)照品hLYZ出峰時(shí)間為15.96min。純化后hLYZ與對(duì)照品hLYZ出峰時(shí)間基本一致,采用面積歸依法計(jì)算峰面積,得到hLYZ產(chǎn)品純度98.3%,hLYZ產(chǎn)品檢測(cè)色譜圖如圖3 ,hLYZ對(duì)照品出峰時(shí)間如圖4。
3.結(jié)束語(yǔ)
本方法采用傳統(tǒng)的固液分離技術(shù)、過(guò)濾技術(shù)以及超濾技術(shù)得到hLYZ粗品,經(jīng)一部陽(yáng)離子交換層析得到純度位98.3%的hLYZ產(chǎn)品。目前國(guó)內(nèi)外對(duì)于hLYZ的研究較少,且大部分集中在對(duì)蛋清等其他來(lái)源的溶菌酶的研究,而對(duì)人溶菌酶的研究相對(duì)較少,分離純化方面的研究鮮有報(bào)道,本工作初步建立了一種以超濾過(guò)濾技術(shù)粗純,陽(yáng)離子交換層析技術(shù)精純的hLYZ高純度分離純化工藝,工藝進(jìn)一步優(yōu)化后,有望進(jìn)行高純度大規(guī)模的生產(chǎn)。
參考文獻(xiàn):
[1]鳳權(quán),湯斌.溶菌酶分離純化方法的研究進(jìn)展[J].生物學(xué)雜志,2006,23(1).
[2]宋娟.溶菌酶分離方法及進(jìn)展[J].河南化工,2017,34:16-17.
[3]林立.溶菌酶分離方法綜述及進(jìn)展[J].廣州化工,2012,40(7): 53-56.
[4]Paola A,Joseph H.H.Immobilization of lysozyme on food contact polymers as potential antimicrobial films[M].Packaging Technology and Science, 1997,10:271-279.
[5]Alderton G,Ward W,F(xiàn)evold H.Isolation fo lysozyme from egg white[J].Journal of Biological Chemistry,1945,157:43-58.
[6]楊景芝,孫衍華,白吉?jiǎng)?,?雞蛋清溶菌酶提取工藝的改進(jìn)[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2004,30(5):85-87.
[7]余海芬,馬美湖,劉巖.陽(yáng)離子交換法提取蛋清溶菌酶的研究[J].中國(guó)家禽, 2008,30(24):22-25.
[8]宋宏新,薛海燕,楊芳.雞蛋殼溶菌酶分離純化工藝研究[J].食品工業(yè)科技, 2003,9:60-63.
[9]李靜,陳歡林,柴紅.金屬螯合親和膜吸附分離與純化溶菌酶的研究[J].膜科學(xué)與技術(shù),2001.21(4):5-9.
[10]Raja. G Protein purification by ultrafiltration with pretreated mem -brane[J].Journal of membrane Science,2000,49-54.
[11]李存芝,李琳,胡松青,等.親和膜過(guò)濾技術(shù)及其應(yīng)用[J].現(xiàn)代化工,2004, 1(24):64-66.
[12]陳萍,趙瑋,李琳,等.水溶性葡聚糖親和超濾載體對(duì)溶菌酶吸附分離特性的研究[J].食品工業(yè)科技,2011,32(8):84-86.