許艷麗 鮑蕾 何曉霞 吳振興 靜平 曹文卿 梁成珠*
(1.山東出入境檢驗檢疫局山東青島266001;2.青島出入境檢驗檢疫局)
生物分子相互作用技術(shù)檢測黃曲霉毒素B1
許艷麗1鮑蕾1何曉霞2吳振興1靜平1曹文卿1梁成珠1*
(1.山東出入境檢驗檢疫局山東青島266001;2.青島出入境檢驗檢疫局)
建立一種利用生物分子相互作用技術(shù)檢測飼料中黃曲霉毒素B1的方法。將黃曲霉毒素B1抗體固化在芯片上,樣品經(jīng)甲醇-水提取、稀釋后通過固化黃曲霉毒素B1抗體的芯片,從而測定樣品中的黃曲霉毒素B1含量。方法檢出限為1 μg/kg,檢測限為2 μg/kg,回收率為67.0%-90.1%,相對標(biāo)準(zhǔn)偏差為6.57%-7.81%。該方法檢測靈敏度高、檢測時間短、操作簡便易行。
生物分子相互作用;黃曲霉毒素;黃曲霉毒素B1抗體
黃曲霉毒素(Aflatoxins,AFT)是真菌的次級代謝產(chǎn)物,主要是由黃曲霉(A.flavus)、寄生曲霉(A.parasiticus)和集蜂曲霉(A.nonius)等菌株產(chǎn)生。黃曲霉毒素是一種毒性很強的肝毒素,可引起肝臟的急性或慢性損害,此外對腎臟等其他多種組織器官也能造成嚴(yán)重損害。更為嚴(yán)重的是黃曲霉毒素已被證實具有致癌、致畸、致細胞突變的“三致”作用,黃曲霉毒素B1被公認(rèn)為是目前致癌力最強的天然物質(zhì),廣泛存在于花生、玉米、麥類、稻谷等農(nóng)產(chǎn)品中,嚴(yán)重危害人、畜、禽類健康[1],1993年黃曲霉毒素被世界衛(wèi)生組織(WHO)的癌癥研究機構(gòu)劃定為Ⅰ類致癌物[2]。
黃曲霉毒素的檢測方法主要有薄層色譜法、高效液相色譜法、質(zhì)譜法以及以酶聯(lián)免疫為基礎(chǔ)的免疫分析/免疫親和分析法,如酶聯(lián)免疫吸附法等多種方法[3-7]。生物分子相互作用分析技術(shù)是超微量檢測領(lǐng)域中一項新興的檢測技術(shù),是將表面等離子共振與芯片技術(shù)相結(jié)合而建立的一類微量物質(zhì)檢測技術(shù),由于該技術(shù)無需借助標(biāo)記物進行分析,使其廣泛應(yīng)用于各類小分子化合物、多肽、蛋白質(zhì)、寡核苷酸和寡聚糖直至類脂、噬菌體、病毒和細胞的測定和診斷[8-11]。與其他分析技術(shù)不同,生物分子相互作用分析技術(shù)是一項通用的檢測技術(shù),可以任意耦聯(lián)如上所述任一種生物分子到生物芯片表面,因此生物分子相互作用分析技術(shù)的應(yīng)用領(lǐng)域特別廣泛,尤其適合高通量檢測,在幾分鐘內(nèi)自動完成一個樣品的分析,能在無人情況下連續(xù)分析幾百個樣品。
本研究以毒性最大的黃曲霉毒素B1(簡稱AFB1)為研究對象,探索利用分子相互作用技術(shù)檢測AFB1的方法。
2.1 材料
2.1.1 儀器
Biacore 3000:美國GE Healthcare公司;CM-5商品芯片:美國GE Healthcare公司;ULTRA-TURRAXT-25高速均質(zhì)器:德國IKA公司。
2.1.2 試劑
EDC、NHS:美國GE Healthcare公司;AFB1抗體:SIGMA公司;黃曲霉毒素B1、B2、G1、G2(AFB1、AFB2、AFG1、AFG2):SIGMA公司;甲醇、乙腈:均為色譜純,德國默克公司;PBS溶液(10倍濃縮液):VICAM公司;Glycine-HCl(pH 3.0、pH 2.5和pH 1.5)、0.1 mol/L HAc-NaAc緩沖液(pH=4.5)、1 mol/L鹽酸乙醇胺溶液(pH=8.5):美國GE Healthcare公司;水為重蒸水。
2.2 方法
2.2.1 溶液配制
載流緩沖液(PBS):將PBS溶液用水稀釋10倍,經(jīng)過濾、脫氣后,4-8℃下保存。
樣品稀釋液:0.1 mol/L HAc-NaAc緩沖液,pH=4.5,無菌過濾。
封閉液:1 mol/L鹽酸乙醇胺溶液(pH=8.5),無菌過濾。
AFB1抗體:將AFB1抗體溶于100 μL水中,于-20℃下保存。
2.2.2 芯片表面處理方法
芯片表面用0.4 mol/L的EDC和0.1 mol/L NHS等體積混合后上機,活化10 min后,進樣AFB1抗體,設(shè)置流速10 μL/min,進樣10 min,然后用封閉液封閉6 min,流速為10 μL/min。
2.2.3 樣品的提取及制備
本樣品選取基質(zhì)效應(yīng)較大的飼料樣品,稱取25.0 g樣品,加入125 mL 60%甲醇-水溶液,用高速均質(zhì)器均質(zhì)2 min提取,以普通濾紙過濾10 mL,加入20 mL水稀釋,再次以玻纖濾紙過濾,待用。
2.2.4 測試條件
載流為PBS,流速為5 μL/min。
3.1 AFB1抗體在傳感芯片表面的固化
本研究采用的標(biāo)準(zhǔn)物為AFB1,分子式C17H12O6,分子量312.27,分子內(nèi)不含有氨基或亞氨基,因此,采用將AFB1抗體偶聯(lián)到羧化后的葡聚糖(CM5)芯片表面。AFB1抗體固化、封閉后的RU增量約為11535.7 RU(RU:Resonance unit共振單位)。
本研究測試了在不同pH值醋酸鈉溶液里進行偶聯(lián)的效果,如圖1所示。a(pH 4.0)、b(pH 4.5)、c(pH 5.0)都可以實現(xiàn)需要的偶聯(lián)水平,c與b偶聯(lián)量相差不多,但c偶聯(lián)量達到了飽和狀態(tài),因此,選用b(pH 4.5)的10 mmol/L醋酸鈉進行抗體偶聯(lián)。
圖1 不同pH的醋酸鈉偶聯(lián)量
3.2 芯片再生實驗
分別采用3種pH值(pH 3.0、pH 2.5和pH 1.5)的Glycine-HCl再生溶液進行檢測,結(jié)果見圖2。
圖2再生條件試驗
圖2 顯示,在pH值3.0時,Sample response值與初始值(starting levels)相比明顯降低,說明再生條件過于溫和,芯片上結(jié)合的化合物可能未完全洗脫;在pH值1.5時,baseline值與初始值(starting levels)相比明顯降低,表明再生條件過于嚴(yán)苛,芯片上偶聯(lián)的抗體受到損傷。綜合上述考慮,在后續(xù)實驗中選擇pH 2.5的Glycine-HCl再生溶液。
固化AFB1抗體芯片檢測溶液中AFB1的實驗如圖3所示。選擇再生條件為pH 2.5的Glycine-HCl溶液,10 μL,流速為5 μL/min。由圖3可以看出,采用這一再生條件,實驗結(jié)果的重復(fù)性和一致性都很好。
圖3 芯片再生實驗
3.3 偶聯(lián)后芯片的穩(wěn)定性
將CM5芯片偶聯(lián)AFB1抗體后,存于PBS緩沖液中,置于4℃冰箱保存,每隔2-5 d取出,檢測芯片的共振響應(yīng),結(jié)果如圖4所示。在30 d內(nèi)共振響應(yīng)無明顯改變,檢測的相對標(biāo)準(zhǔn)偏差為2.2%,可見該偶聯(lián)條件下AFB1抗體穩(wěn)定性較好。
圖4 偶聯(lián)后芯片穩(wěn)定性測試
3.4 方法的建立及標(biāo)準(zhǔn)曲線
根據(jù)以上確定的實驗條件,采用固化AFB1抗體芯片檢測一組梯度AFB1標(biāo)準(zhǔn)溶液,得到的標(biāo)準(zhǔn)曲線(圖5)顯示線性較好。
圖5 不同濃度的AFB1的標(biāo)準(zhǔn)曲線
3.5 方法的檢出限和檢測限
根據(jù)不同濃度標(biāo)準(zhǔn)溶液譜圖的信噪比(S/N)確定方法的檢出限和檢測限,方法的檢出限為1 μg/kg(S/N≥3),檢測限為2 μg/kg(S/N≥10)。
3.6 方法的回收率及精密度測定
本方法的精密度實驗是在空白飼料中添加AFB1抗體標(biāo)準(zhǔn)溶液,添加水平為1水平(2 μg/kg)、2水平(4 μg/kg)、3水平(8 μg/kg)共3個水平,每水平進行10次平行實驗,回收率范圍在67.0%-90.1%;精密度為6.57%-7.81%。
3.7 方法的特異性
本實驗向被測樣品添加不同濃度的AFB2、AFG1、AFG2等與AFB1結(jié)構(gòu)類似的生物毒素作為競爭干擾物,檢測其對AFB1的影響。結(jié)果顯示,AFB2、AFG1、AFG2作為干擾物,沒有對AFB1的檢測產(chǎn)生顯著影響,說明該方法具有良好的選擇性和專一性。
本研究利用生物分子相互作用技術(shù),在芯片表面固化AFB1抗體后直接檢測樣品中的AFB1含量。對該方法的試劑穩(wěn)定性、方法特異性、回收率等進行了驗證,結(jié)果表明,該方法的檢測靈敏度高,有機溶劑使用量少,每個芯片的每個通道可重復(fù)利用,降低了檢測成本;檢測時間短,一般5 min內(nèi)即可檢測出結(jié)果,降低了檢測人員的工作強度;該方法操作簡便易行,可以實現(xiàn)標(biāo)準(zhǔn)化操作,易于推廣;通過SPR檢測器的自動記錄,減少主觀性,可以用于不同樣品的大批量檢測,應(yīng)用于不同的檢測需求中。
[1]Brown M P,Brown-Jenco C S,Payne G A.Genetic and molecular analysis of aflatoxin biosynthesis[J].Fungal Genet Bil,1999,26:81-98.
[2]Henry S H.Reducing Liver cancer:Global control of aflatoxin[J].Science,1999,286:2543-2454.
[3]尚瑛達,曹素芳.薄層色譜法測定黃曲霉毒素B1探討[J].糧食與油脂,1993,(4):50-51.
[4]劉艷麗,程安春,汪銘書.黃曲霉毒素及其檢測方法的研究進展[J].黑龍江畜牧獸醫(yī),2006,(06):15-17.
[5]許艷麗,鮑蕾,靜平,等.生物傳感器在生物毒素檢測中的應(yīng)用進展[J].食品質(zhì)量安全檢測學(xué)報,2012,3(5):432-436.
[6]Cuccioloni M,Mozzicafreddo M,BarocciS,et al.Biosensor-Based Screening Method for the Detection of AflatoxinsB1-G1[J].Anal Chem,2008,80:9250-9256.
[7]連庚寅,王雄,宋歡.免疫親和柱凈化高效液相色譜法測定堅果中黃曲霉毒素[J].農(nóng)產(chǎn)品加工(學(xué)刊),2010,(06):32-34.
[8]張捷,陳廣全,樂加昌,等.生物傳感器在食源性致病菌檢測中的應(yīng)用[J].食品工業(yè)科技,2011,(32):453-456.
[9]Jing Yuan,Dawei Deng,Denis R Lauren,et al.Surface Plasmon resonance biosensor for the detection of ochratoxin A in cereals and beverages[J].Anal Chim Acta,2009,656(1-2):63-71.
[10]段媛媛,劉德立.SPR生物傳感器的特點及其在生物特異性相互作用分析中的應(yīng)用[J].生物技術(shù)通報,2002,32(1):72-76.
[11]黃漢昌,姜招峰,朱宏吉.SPR技術(shù)分析生物分子相互作用的研究方法[J].生物技術(shù)通報,2008,(1):108-112.
Determination of Aflatoxin B1by Biomolecular Interaction Analysis
XU Yanli1,BAO Lei1,HE Xiaoxia2,WU Zhenxing1,JING Ping1,CAO Wenqing1,LIANG Chengzhu1*
(1.Shandong Exit-Entry Inspection and Quarantine Bureau,Shandong,Qingdao,266001;2.Qingdao Exit-Entry Inspection and Quarantine Bureau)
The concentration of aflatoxin B1in feed was determined by the surface plasmon resonance technique.The chip immobilized by anti-AFB1body to determine the AFB1in the sample solution.The LOD of method is 1 μg/kg and LOQ is 2 μg/kg,the recoveries of AFB1are 67.0%-90.1%,and the relative standard deviations are 6.57%-7.81%.This method is of high sensitivity,convenience operation.
Biomolecular Interaction Analysis;Aflatoxin B1;Aflatoxin B1Anti-Body
TS207.4
E-mail:evillive1124@163.com;*通訊作者E-mail:liangcz@163.com
國家質(zhì)檢總局科技計劃項目(2012IK174)
2016-11-15