王靜瑩,薄海波*,吉生軍,程子毓,陳秀紅
1(青海師范大學(xué),青海 西寧,810000) 2(青海省出入境檢驗(yàn)檢疫局,青海 西寧,810000)
高效液相色譜法測(cè)定牛羊雜碎等肉類中嘌呤及尿酸
王靜瑩1,薄海波1*,吉生軍1,程子毓1,陳秀紅2
1(青海師范大學(xué),青海 西寧,810000) 2(青海省出入境檢驗(yàn)檢疫局,青海 西寧,810000)
建立同時(shí)測(cè)定肉類食品中尿酸、鳥嘌呤、次黃嘌呤、黃嘌呤和腺嘌呤的高效液相色譜分析方法,并測(cè)定肉類樣品中上述4種嘌呤及尿酸的含量。色譜條件:資生堂CAPCELL PAK-C18(4.6 mm×250 mm,5 μm)色譜柱,柱溫30℃;流動(dòng)相為7×10-3mol/L KH2PO4-H3PO4(pH=3.83),流速1.0 mL/min;檢測(cè)器為紫外檢測(cè)器,檢測(cè)波長(zhǎng)254 nm;進(jìn)樣量10 μL。結(jié)果:在上述條件下4種嘌呤和尿酸分離和測(cè)定效果良好,4種嘌呤和尿酸的質(zhì)量濃度和峰面積在0.05~50 μg/mL線性范圍內(nèi)線性關(guān)系良好,相關(guān)系數(shù)均在0.999 6以上,檢出限在0.010~0.024 μg/mL之間,精密度檢測(cè)RSD為0.25%~0.81%,各組分回收率為92.0%~105.0%,方法精密度RSD為6.27%~11.09%。結(jié)論:該方法簡(jiǎn)便,快捷,可靠,各組分分離度好,可應(yīng)用于肉類食品中嘌呤和尿酸的同時(shí)分析測(cè)定。
高效液相色譜(HPLC);牛羊雜碎;嘌呤;尿酸
嘌呤(C5H4O4)是一類生物堿,是核酸的重要組成部分,人體內(nèi)嘌呤的主要來(lái)源有體內(nèi)合成、人體組織中核酸分解以及食物中攝取,而飲食是人體嘌呤的一個(gè)重要來(lái)源。常見的嘌呤主要有腺嘌呤(adenine)、鳥嘌呤(guanine)、黃嘌呤(xanthine)和次黃嘌呤(hypoxanthine) 4 種[1],嘌呤經(jīng)體內(nèi)代謝最終轉(zhuǎn)化生成尿酸(Uric acid),正常情況下主要經(jīng)腎排出體外。尿酸是人體內(nèi)特有的天然水溶性抗氧化劑,具有刺激樹突狀細(xì)胞及T細(xì)胞成熟以維護(hù)機(jī)體免疫力、維持血壓、促進(jìn)傷口愈合等功能[2]。長(zhǎng)期攝入高嘌呤的食品再加上一些誘導(dǎo)因素會(huì)導(dǎo)致嘌呤在體內(nèi)的最終產(chǎn)物——尿酸的沉積,最終引發(fā)痛風(fēng)。
食品嘌呤含量的檢測(cè)方法和樣品前處理方法多種多樣,目前國(guó)內(nèi)外沒有建立統(tǒng)一的標(biāo)準(zhǔn)。嘌呤檢測(cè)的方法主要有液相色譜法、紙層析法、電泳法、薄層色譜法、氣相色譜法和離子色譜法等[3],隨著液相色譜法日漸普及,并因其方便、快速、靈敏、選擇性高,已成為檢測(cè)嘌呤的主流方法。樣品中嘌呤的提取方法有酸提取法[4-7]、有機(jī)溶劑萃取[8-9]和超聲輔助萃取法[10-12]。研究者多采用HClO4[13-19]、三氟乙酸和甲酸[20-21]進(jìn)行樣品水解。HClO4水解樣品,分離效果較好,準(zhǔn)確度和精密度較高,檢測(cè)時(shí)間短。因此本實(shí)驗(yàn)采用高氯酸對(duì)樣品進(jìn)行水解。
本研究建立了同時(shí)測(cè)定青藏高原牛羊雜碎等風(fēng)味肉制品中腺嘌呤、鳥嘌呤、次黃嘌呤、黃嘌呤及尿酸的高效液相色譜分析方法,并對(duì)4種嘌呤和尿酸含量進(jìn)行同時(shí)測(cè)定。
1.1 材料與試劑
樣品:新鮮黃牛肉、牦牛肉、手抓羊肉、牛肉、牛頭肉;牛腩、牛肚、牛筋、羊肝、羊心、羊腸等牛羊內(nèi)臟;牛雜碎(含有牛肚,牛筋,牛肺,牛腸,牛腩等內(nèi)臟)、羊雜碎(含有羊肚,羊心,羊肺,羊腸,羊肝等內(nèi)臟)購(gòu)自西寧市各大市場(chǎng)。-20 ℃冷凍保存。
標(biāo)準(zhǔn)品:尿酸、鳥嘌呤、次黃嘌呤、黃嘌呤、腺嘌呤標(biāo)準(zhǔn)品(純度>98.0%),Agilent公司。
稱取尿酸、鳥嘌呤、次黃嘌呤、黃嘌呤和腺嘌呤標(biāo)準(zhǔn)品各0.050 0 g,加20 mL 0.1 mol/L的NaOH溶液助溶,分別用10%甲醇溶液定容至100 mL容量瓶中,搖勻,即得500 μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)單一儲(chǔ)備液。-20 ℃保存。
試劑:甲醇(色譜純),天津市光復(fù)精細(xì)化工研究所;HClO4(分析純),天津東方化工廠;KH2PO4(分析純),北京紅星化工廠;H3PO4(分析純),天津市濱??频匣瘜W(xué)試劑有限公司;KOH(分析純),四川成都化工廠;實(shí)驗(yàn)用水均為超純水。
1.2 儀器與設(shè)備
U1tiMate3000高效液相色譜儀(配有紫外檢測(cè)器),美國(guó)戴安公司;FW-100高速萬(wàn)能粉碎機(jī),紹興市科弘儀器有限公司;雷磁PHS-3C型pH計(jì),上海儀電科學(xué)儀器股份有限公司;L600離心機(jī),湘儀公司;WB-2000水浴鍋,鄭州長(zhǎng)城科工貿(mào)有限公司;TG332A微量分析天平,湘儀天平儀器廠。
1.3 方法
1.3.1 色譜條件
色譜柱:資生堂CAPCELL PAK-C18(4.6 mm×250 mm,5 μm),柱溫30 ℃;流動(dòng)相:7×10-3mol/L KH2PO4-H3PO4(pH=3.83),流速1.0 mL/min;檢測(cè)器:紫外檢測(cè)器,檢測(cè)波長(zhǎng)254 nm;進(jìn)樣量10 μL。
1.3.2 樣品的制備與前處理
將樣品室溫下自然解凍,新鮮黃牛肉、牦牛肉、手抓羊肉、牛肉、牛頭肉等肉類和牛腩、牛肚、牛筋、羊肝、羊心、羊腸等牛羊內(nèi)臟;用刀切碎,再用高速萬(wàn)能粉碎機(jī)絞碎并勻漿,貼明標(biāo)簽,-20 ℃冷凍保存?zhèn)溆谩?/p>
將市購(gòu)的牛雜碎(含有牛肚,牛筋,牛肺,牛腸,牛腩等內(nèi)臟)和羊雜碎(含有羊肚,羊心,羊肺,羊腸,羊肝等內(nèi)臟)分別分樣為牛雜碎肉(干物質(zhì))、牛雜碎湯、牛雜碎肉和湯(混合物)、羊雜碎肉(干物質(zhì))、羊雜碎湯、羊雜碎肉和湯(混合物),用高速萬(wàn)能粉碎機(jī)絞碎并勻漿,貼明標(biāo)簽,-4 ℃冷凍保存?zhèn)溆谩?/p>
稱取0.200 0 g樣品于10 mL具塞刻度離心管中,加入3 mL 體積分?jǐn)?shù)10%的HClO4,搖勻后在沸水浴中水解60 min,冷卻。用1 mol/L的KOH溶液調(diào)節(jié)pH至3.8,再用超純水定容至10 mL,以3 000 r/min的轉(zhuǎn)速離心30 min,上清液濾紙過(guò)濾,再用0.22 μm微孔水膜過(guò)濾,待進(jìn)樣分析。
2.1 實(shí)驗(yàn)條件的優(yōu)化
2.1.1 色譜柱的選擇
CAPCELL PAK-C18柱采用高純度多孔球形硅膠作為基質(zhì),表面包覆單層有機(jī)硅聚合物薄膜,并在其上鍵合十八烷基(C18)等各種官能團(tuán)的高性能填料填充的色譜柱。該填料既具有硅膠類填料的高分離能力,又具有聚合物填料的耐久性。該色譜柱適合測(cè)定極性成分,能與極性較強(qiáng)的水流動(dòng)相兼容使分離的各組分呈現(xiàn)出良好的色譜峰形。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明:使用資生堂CAPCELL PAK-C18能將4種嘌呤和尿酸完全分離。
2.1.2 檢測(cè)波長(zhǎng)的選擇
尿酸、鳥嘌呤、次黃嘌呤、黃嘌呤和腺嘌呤都有著共軛雙鍵,在紫外區(qū)220~300 nm之間有強(qiáng)吸收峰。綜合考慮4種嘌呤和尿酸的吸收峰,選擇以波長(zhǎng)254 nm作為實(shí)驗(yàn)檢測(cè)波長(zhǎng)。
2.1.3 流動(dòng)相的優(yōu)化
2.1.3.1 流動(dòng)相pH的選擇
流動(dòng)相的酸度對(duì)嘌呤類物質(zhì)的分離程度和保留時(shí)間影響較大,應(yīng)選擇合適的pH值使4種嘌呤和尿酸達(dá)到最佳分離效果??疾炝藵舛认嗤?7.0×10-3mol/L),不同pH(3.65,3.83、3.93、4.15)的KH2PO4- H3PO4溶液對(duì)4種嘌呤及尿酸峰形和分離效果的影響。見圖1。
1-尿酸;2-鳥嘌呤;3-次黃嘌呤;4-黃嘌呤;5-腺嘌呤圖1 流動(dòng)相pH為3.65、3.83、3.93、4.15的色譜圖Fig.1 Chromatogram of mobile phase pH is 3.65、3.83、 3.93、 4.15
觀察上圖中4種嘌呤和尿酸的分離情況結(jié)果,在pH為3.83時(shí),4種嘌呤和尿酸可以完全分離,而且基線穩(wěn)定,重復(fù)性最好,出峰順序依次為尿酸、鳥嘌呤、次黃嘌呤、黃嘌呤、腺嘌呤。因此確定流動(dòng)相pH為3.83。
2.1.3.2 流動(dòng)相濃度的選擇
采用KH2PO4- H3PO4溶液做流動(dòng)相,考察了相同pH(3.83),不同濃度(2.0×10-4、5.0×10-3、7.0×10-3、1.0×10-2、2.0×10-2mol/L)的KH2PO4-H3PO4溶液對(duì)4種嘌呤及尿酸峰形和分離效果的影響,見圖2。
1-尿酸;2-鳥嘌呤;3-次黃嘌呤;4-黃嘌呤;5-腺嘌呤圖2 流動(dòng)相濃度為2.0×10-4、5.0×10-3、7.0×10-3、1.0×10-2、2.0×10-2 mol/L的色譜圖Fig.2 Chromatogram of mobile phase concentration is 2.0×10-4、5.0×10-3、7.0×10-3、1.0×10-2、2.0×10-2 mol/L
觀察上圖中4種嘌呤和尿酸的分離情況,流動(dòng)相的濃度對(duì)于峰形、分離度影響較大。在濃度7.0×10-3mol/L的情況下,基線較穩(wěn)定,分離度好。因此最終確定流動(dòng)相濃度為7.0×10-3mol/L[22]。
2.2 線性范圍及檢出限、定量限
分別移取500 μg/mL標(biāo)準(zhǔn)單一儲(chǔ)備液,用超純水稀釋至0.05、 10、 20、30、40、50 μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)系列混合溶液。將系列標(biāo)準(zhǔn)混合溶液分別用0.22 μm微孔濾膜過(guò)濾至進(jìn)樣瓶中, 在1.3.1所述的色譜條件下,各進(jìn)樣10 μL,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
采用外標(biāo)法對(duì)進(jìn)樣的系列標(biāo)準(zhǔn)溶液的峰面積和相應(yīng)質(zhì)量濃度進(jìn)行線性回歸計(jì)算,得峰面積(Y)與質(zhì)量濃度(X)的線性方程和相關(guān)系數(shù)。按3倍信噪比計(jì)算檢出限(LOD),10倍信噪比計(jì)算定量限(LOQ)。數(shù)據(jù)結(jié)果見表1。
表1 四種嘌呤和尿酸的回歸方程和線性范圍
表1數(shù)據(jù)結(jié)果顯示:4種嘌呤和尿酸的質(zhì)量濃度和峰面積在0.05~50 μg/mL線性范圍內(nèi)線性關(guān)系良好,相關(guān)系數(shù)(R)在0.999 6~0.999 9之間,檢出限在0.010~0.024 μg/mL之間。說(shuō)明此方法適合實(shí)際樣品的測(cè)定。
2.3 精密度考察
將20 μg/mL的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液在日內(nèi)連續(xù)進(jìn)樣6次,根據(jù)定量的質(zhì)量濃度分別計(jì)算4種嘌呤和尿酸的精密度。數(shù)據(jù)結(jié)果見表2。
表2數(shù)據(jù)結(jié)果顯示:尿酸、鳥嘌呤、次黃嘌呤、黃嘌呤和腺嘌呤的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為0.25%~0.81%,精密度良好。
表2 精密度實(shí)驗(yàn)結(jié)果
2.4 回收率考察
采用牛肚作為實(shí)驗(yàn)樣品進(jìn)行添加回收率實(shí)驗(yàn),取已知4種嘌呤和尿酸含量的牛肚樣品18份,每份0.200 0 g,加入3個(gè)不同濃度水平的四種嘌呤和尿酸的標(biāo)準(zhǔn)混合溶液,每個(gè)濃度水平平行6份,按照1.3.2節(jié)中的前處理方法進(jìn)行處理后,根據(jù)添加的標(biāo)準(zhǔn)樣品質(zhì)量濃度和測(cè)定出的加標(biāo)樣品質(zhì)量濃度計(jì)算4種嘌呤和尿酸的回收率,尿酸、鳥嘌呤、次黃嘌呤、黃嘌呤、腺嘌呤的平均加標(biāo)回收率分別為99.1%、99.0%、105.0%、92.0%、92.6%,根據(jù)實(shí)驗(yàn)測(cè)得的18份加標(biāo)樣品中4種嘌呤和尿酸的回收率,計(jì)算出方法精密度RSD為6.27%~11.09%,均符合分析測(cè)定的要求。
2.5 樣品測(cè)定結(jié)果
將牛羊雜碎等肉類樣品按1.3.3節(jié)進(jìn)行處理,按1.3.1節(jié)的色譜條件下進(jìn)樣分析。采用外標(biāo)法對(duì)實(shí)測(cè)樣品的4種嘌呤和尿酸進(jìn)行定性定量分析。部分樣品色譜圖見圖3~圖5。樣品測(cè)定數(shù)據(jù)結(jié)果見表3。
1-尿酸;2-鳥嘌呤;3-次黃嘌呤;4-黃呤;5-腺嘌呤圖3 牛肚色譜圖Fig.3 Chromatogram of tripe
1-尿酸;2-鳥嘌呤;3-次黃嘌呤;4-黃嘌呤;5-腺嘌呤圖4 牛肉色譜圖Fig.4 Chromatogram of beef
1-尿酸;2-鳥嘌呤;3-次黃嘌呤;4-黃嘌呤;5-腺嘌呤圖5 羊肝色譜圖Fig.5 Chromatogram of Sheep liver
表3 樣品中4種嘌呤和尿酸的含量 單位:mg/kg
注:4種嘌呤折算為尿酸的量是根據(jù)相對(duì)分子質(zhì)量計(jì)算4種嘌呤轉(zhuǎn)化為尿酸的理論含量值。
表3結(jié)果顯示:青藏高原牛羊雜碎等風(fēng)味肉制品中總尿酸含量為89.12~3 750.26 mg/kg,總嘌呤含量為67.44~2 659.75 mg/kg。在實(shí)測(cè)樣品中羊肝的尿酸和總嘌呤含量最高,其總嘌呤含量達(dá)到2 659.75 mg/kg,牦牛肉、黃牛肉、牛肉和學(xué)府巷-羊排中總嘌呤含量次之;牛羊雜碎湯中總嘌呤含量最低,牛羊肚次之。采用本方法在羊肺和學(xué)府巷-羊排中未檢測(cè)到尿酸;在羊心、羊肚、冷湖-羊排、羊腸、牛雜碎肉和羊雜碎肉和湯中尿酸含量較低。
在牛肉和牛雜碎中總嘌呤含量順序?yàn)椋狐S牛肉>牛肉>牦牛肉>牛腩>牛筋>牛頭肉>牛排>牛雜碎肉>牛雜碎肉和湯>牛肚>牛雜碎湯;在羊肉和羊雜碎中總嘌呤含量順序?yàn)椋貉蚋?羊肺>學(xué)府巷-羊排>羊心>手抓羊肉>五四大街-羊排>羊雜碎肉>羊腸>冷湖路-羊排>羊雜碎肉和湯>羊肚>羊雜碎。
由表3可知,不同地方購(gòu)買的牛羊雜碎等肉類中總嘌呤和尿酸含量差異較大,尤其是不同地的羊排中總嘌呤和尿酸含量有著顯著的差異,羊排中總嘌呤含量學(xué)府巷-羊排>五四大街-羊排>冷湖路-羊排,三個(gè)地區(qū)結(jié)果差異較大。嘌呤含量差異大可能是由于生物體生長(zhǎng)環(huán)境和自身生長(zhǎng)情況不一樣,造成同一部位的肉中嘌呤含量差異較大。
在痛風(fēng)發(fā)病率高的青藏高原地區(qū),為預(yù)防和治療痛風(fēng)癥,建議人們少量食用高嘌呤含量的黃牛肉、牦牛肉、牛肉、羊肺、羊排,尤其是嘌呤含量特高的羊肝;可合理食用牛羊肚和牛羊雜碎等嘌呤含量較低的食物。
本研究建立的方法對(duì)尿酸、鳥嘌呤、次黃嘌呤、黃嘌呤和腺嘌呤分離效果好,能快速、準(zhǔn)確的檢測(cè)定量肉類食品中4種嘌呤和尿酸的含量。此方法在線性范圍0.05~50 μg/mL內(nèi)線性關(guān)系良好,相關(guān)系數(shù)(R)在0.999 6~0.999 9之間,方法檢出限在0.010~0.024μg/mL之間,精密度RSD為0.25%~0.81%,各組分回收率在92.0%~105.0%之間,方法精密度RSD為6.27%~11.09%,適用于4種嘌呤和尿酸的同時(shí)分析測(cè)定。應(yīng)用此方法測(cè)定的青藏高原牛羊雜碎等特色肉類食品中嘌呤和尿酸的含量數(shù)據(jù),可為通風(fēng)發(fā)病率高的青藏高原地區(qū)消費(fèi)者提供科學(xué)健康的飲食指導(dǎo)。
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Determination of purine and uric acid in cooked cow and sheep offal by high performance liquid
WANG Jing-ying1, BO Hai-bo1*, JI Sheng-jun1, CHENG Zi-yu1, CHEN Xiu-hong2
1(Department of Chemistry, Qinghai Normal University, Xining 810008, China) 2(Qinghai Entry-Exit Inspection and Quarantine Bureau, Xining 810008, China)
A high performance liquid Chromatography method for the determination of uric acid, guanine, hypoxanthine, xanthine and adenine in meat was established and applied. The detecting method for Chromatography was: Shiseido CAPCELL PAK-C18(4.6 mm×250 mm, 5 μm)column, column temperature was at 30 ℃.The mobile phase was 7×10-3mol/L KH2PO4-H3PO4(pH=3.83)at a flow rate of 1.0 mL/min. The UV detector was used and the wavelength was set at 254 nm and the Sample volume was 10 μL. Result: Under the above conditions, good separation was obtained and four kinds of purines and uric acid was showed in the range of 0.05-50 μg/mL; a good linear relation was observed between the concentration and peak area,and all the correlation coefficients are higher than 0.9996, the limit of detection was between 0.010-0.024 g/mL, precision detection of RSD% was between 0.25%-0.81%,the recovery rate of each component was between 92.0%-105.0%, the precision RSD% was between6.27%-11.09%. Conclusion: The method was simple, rapid and reliable,had a good separation for each component, and can be used for the analysis and determination of purine and uric acid in meat products.
HPLC; cooked chopped entrails of cattle and sheep; purine; uric acid
10.13995/j.cnki.11-1802/ts.201704037
碩士研究生(薄海波教授為通訊作者,E-mail:1025104004@qq.com)。
青藏高原特色風(fēng)味食品中危害物質(zhì)高通量篩查及快速檢測(cè)技術(shù)研究(2014-ZJ-722)
2016-08-23,改回日期:2016-10-16