王震　龐妃　顧彩彩　王露蓉　邢永秀　楊麗濤　李楊瑞

摘要：【目的】建立和優(yōu)化固氮鏈霉菌Streptomyces chartreusi WZS021（簡(jiǎn)稱(chēng)菌株WZS021，下同）的接合轉(zhuǎn)移體系，以豐富固氮鏈霉菌基因片段轉(zhuǎn)移技術(shù)?！痉椒ā恳源竽c桿菌Escherichia coli ET12567（pUZ8002）為供體菌，攜帶整合型質(zhì)粒pSET152的菌株WZS021為受體菌，進(jìn)行菌株WZS021接合轉(zhuǎn)移?！窘Y(jié)果】選擇高氏一號(hào)培養(yǎng)基為菌株WZS021接合轉(zhuǎn)移培養(yǎng)基，50 ℃熱激10 min，供受比為1∶10，涂布20.0 mg/L安普霉素、接合轉(zhuǎn)移12 h后覆蓋抗生素，添加MgCl2終濃度為5.0 mmol/L時(shí)接合轉(zhuǎn)移效率最高，達(dá)3.24×10-6?！窘Y(jié)論】通過(guò)確定適用于菌株WZS021接合轉(zhuǎn)移條件建立的菌株WZS021遺傳轉(zhuǎn)化體系，有助于今后插入標(biāo)記基因確定該菌的固氮定殖位點(diǎn)及導(dǎo)入外源基因的操作。

關(guān)鍵詞： 固氮鏈霉菌WZS021；接合轉(zhuǎn)移；優(yōu)化；pSET152

中圖分類(lèi)號(hào)： Q939.113 文獻(xiàn)標(biāo)志碼：A 文章編號(hào)：2095-1191（2017）04-0581-06

Abstract：【Objective】The present study was conducted to establish and optimize transconjugation system of Streptomyces chartreusis WZS021（hereinafter referred to as strain WZS021），in order to enrich strain WZS021 gene fragment transfer technology. 【Method】As donor strain，Escherichia coli ET12567（pUZ8002） contained integrative plasmid pSET152. Strain WZS021 was recipient. Transconjugation was conducted on strain WZS021. 【Result】The optimal conditions were as follows：Gauzes medium No.1 as the transconjugation medium， heat shock at 50 ℃ for 10 min， donor-recipient ratio 1∶10，20.0 mg/L apramycin coverage 12 h post transconjugation， and adding MgCl2 till final concentration of 5.0 mmol/L. Under these conditions，the transconjugation efficiency was the highest， which was up to 3.24×10-6. 【Conclusion】The suitable transconjugation conditions for strain WZS021 are ascertained， and an effective genetic transformation system for strain WZS021 is established based on it. It is helpful to insert marker genes to detect nitrogen fixation sites of the strain and exogenous gene transfer.

Key words： Streptomyces chartreusi WZS021； transconjugation； optimization； pSET152

0 引言

【研究意義】固氮微生物是近年來(lái)生物固氮研究的熱點(diǎn)，有效利用固氮微生物可減少化肥使用量，改善土壤和生態(tài)環(huán)境質(zhì)量，提高農(nóng)作物產(chǎn)量和品質(zhì)，有利于農(nóng)業(yè)結(jié)構(gòu)調(diào)整，提高經(jīng)濟(jì)效益、生態(tài)效益和社會(huì)效益（李楊瑞，2010；李劍鋒等，2015）。鏈霉菌是一種放線菌，全世界約2/3的抗生素產(chǎn)自該菌屬（莫宏波等，2004），在醫(yī)學(xué)和農(nóng)業(yè)等領(lǐng)域均有突出地位。固氮鏈霉菌Streptomyces chartreusi WZS021（簡(jiǎn)稱(chēng)菌株WZS021，下同）是一株具有高固氮能力的鏈霉菌（Wang et al.，2016），目前對(duì)該菌種接合轉(zhuǎn)移研究方面鮮有報(bào)道，其接合轉(zhuǎn)移的具體條件尚不清楚。因此，掌握固氮微生物的生物技術(shù)，建立并優(yōu)化固氮鏈霉菌S. chartreusi WZS021的接合轉(zhuǎn)移體系，對(duì)今后開(kāi)展菌株WZS021在農(nóng)業(yè)上的應(yīng)用研究具有重要意義。【前人研究進(jìn)展】鏈霉菌的遺傳轉(zhuǎn)化主要采用原生質(zhì)體轉(zhuǎn)化法、接合轉(zhuǎn)移法和電轉(zhuǎn)化法等（Veal et al.，1992；Christensen et al.，1996；吳勝和夏煥章，2002）。赫衛(wèi)清和王以光（2006）研究發(fā)現(xiàn)，鏈霉菌高度分化，遺傳背景復(fù)雜，不同菌株的接合轉(zhuǎn)移條件不完全相同。王航等（2014）研究表明，接合轉(zhuǎn)移法以其操作程序簡(jiǎn)單、時(shí)間成本小、轉(zhuǎn)化效率可觀和能使外源DNA避開(kāi)胞外核酸酶降解等優(yōu)點(diǎn)成為鏈霉菌轉(zhuǎn)化的主要遺傳技術(shù)。【本研究切入點(diǎn)】前人對(duì)鏈霉菌屬的接合轉(zhuǎn)移研究主要集中在抗生素產(chǎn)生菌上，如產(chǎn)雷帕霉素的吸水鏈霉菌NRRL5491（楊旻和陶美鳳，2007）、產(chǎn)放線紫紅素的阿維鏈霉菌NRRL8165（余姣姣和陶美鳳，2010）和產(chǎn)達(dá)托霉素的玫瑰孢鏈霉菌NRRL11379（王航等，2014）等，而關(guān)于固氮功能型鏈霉菌遺傳轉(zhuǎn)化體系的研究鮮見(jiàn)報(bào)道?！緮M解決的關(guān)鍵問(wèn)題】在不同培養(yǎng)基、熱激溫度、供受比、抗生素使用濃度和時(shí)間及Mg+濃度等條件下對(duì)菌株WZS021的接合轉(zhuǎn)移系統(tǒng)進(jìn)行優(yōu)化，以期獲得高效、便捷的接合轉(zhuǎn)移方法，以豐富菌株WZS021的基因片段轉(zhuǎn)移技術(shù)。

1 材料與方法

1. 1 試驗(yàn)材料

1. 1. 1 培養(yǎng)基 LB和高氏一號(hào)培養(yǎng)基購(gòu)自廣東環(huán)凱生物科技有限公司，MS、M10、YEME和2CM培養(yǎng)基參考Kieser等（2000）的方法使用，2×YT培養(yǎng)基參考Sambrook等（1989）的方法使用。

1. 1. 2 質(zhì)粒及菌種 質(zhì)粒pSET152（Bierman et al.，1992）、大腸桿菌Escherichia coli DH5α、E. coli ET12567（pUZ8002）和固氮鏈霉菌S. chartreusi WZS021（16S rRNA基因GenBank登錄號(hào)KX775948）均由亞熱帶農(nóng)業(yè)生物資源保護(hù)和利用國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室保存提供。

1. 1. 3 試劑及抗生素 所有抗生素均購(gòu)自北京索萊寶科技有限公司，PCR相關(guān)產(chǎn)品購(gòu)自北京康為世紀(jì)生物科技有限公司，其余試劑購(gòu)自國(guó)藥集團(tuán)。

1. 2 試驗(yàn)方法

1. 2. 1 鏈霉菌培養(yǎng)及DNA提取 參照劉志恒和姜成林（2004）的方法進(jìn)行鏈霉菌培養(yǎng)及總DNA和質(zhì)粒提取。

1. 2. 2 抗生素最小抑菌濃度測(cè)定 制備含0～10.0 mg/L（梯度為1.0 mg/L）安普霉素的高氏一號(hào)培養(yǎng)基，將約108個(gè)菌株WZS021的孢子均勻涂布在每個(gè)培養(yǎng)基上，28 ℃培養(yǎng)10 d，期間每天觀察，根據(jù)鏈霉菌的生長(zhǎng)情況確定最小抑菌濃度為3.0 mg/L。

1. 2. 3 大腸桿菌與鏈霉菌屬間接合轉(zhuǎn)移 參照Flett等（1997）的方法進(jìn)行大腸桿菌與鏈霉菌屬間的接合轉(zhuǎn)移。將質(zhì)粒pSET152轉(zhuǎn)入大腸桿菌ET12567（pUZ8002），得到轉(zhuǎn)化子ET12567（pUZ8002/pSET152），菌株保存于-80 ℃冰箱。使用時(shí)將轉(zhuǎn)化子ET12567（pUZ8002/pSET152）取出培養(yǎng)過(guò)夜，再將培養(yǎng)物轉(zhuǎn)接至新鮮的100.0 mL LB培養(yǎng)基（含50.0 mg/L卡那霉素、25.0 mg/L氯霉素和50.0 mg/L安普霉素）中，37 ℃培養(yǎng)至OD600為0.4～0.6時(shí)收集菌體。用等體積的新鮮LB洗滌菌體兩次以去除抗生素，再以10.0 mL LB懸浮備用。取新鮮的鏈霉菌孢子，使其懸浮于5.0 mL 0.05 mol/L TES（pH=8.0）中，50 ℃水浴熱激10 min，冷卻至室溫后加入等體積2×YT培養(yǎng)基，37 ℃搖床分別培養(yǎng)2～3 h，離心收集孢子并重新懸浮于適量水或TES中，在振蕩器上打散孢子后與收集到的轉(zhuǎn)化子ET12567（pUZ8002/pSET152）混合并涂布，于28 ℃培養(yǎng)10～20 h，用適當(dāng)濃度的安普霉素和萘啶酮酸覆蓋，再于28 ℃培養(yǎng)6～8 d可得到接合轉(zhuǎn)移子。受體孢子數(shù)采用平板計(jì)數(shù)法（趙斌和何紹江，2002）計(jì)數(shù)，接合轉(zhuǎn)移頻率為接合子數(shù)目除以受體孢子數(shù)，取3次平行試驗(yàn)的平均值。

1. 2. 4 接合轉(zhuǎn)移子驗(yàn)證 將1.2.3獲得的接合轉(zhuǎn)移子在含安普霉素和萘啶酮酸的培養(yǎng)基上劃線，反復(fù)幾次以驗(yàn)證接合轉(zhuǎn)移子的穩(wěn)定性，再轉(zhuǎn)接于液體培養(yǎng)基，2～3 d后收集菌體，提取總DNA作為PCR驗(yàn)證的模板。以pSET152質(zhì)粒DNA為陽(yáng)性對(duì)照模板，野生型菌株WZS021 DNA為陰性對(duì)照。擴(kuò)增引物（楊旻等，2007）為Apr1（5′-CAGTTGACCCAGGGCTGTC-3′）和Apr2（5′-GCAATACGAATGGCGAAAA-3′）。PCR擴(kuò)增程序：94 ℃預(yù)變性，5 min；94 ℃ 50 s，55 ℃ 50 s，72 ℃ 1 min，進(jìn)行30個(gè)循環(huán)；72 ℃終延伸10 min，擴(kuò)增出694 bp安普霉素抗性基因。

2 結(jié)果與分析

2. 1 培養(yǎng)基對(duì)菌株WZS021接合轉(zhuǎn)移效率的影響

選用MS、2CM、M10、YEME和高氏一號(hào)等5種培養(yǎng)基為大腸桿菌與鏈霉菌接合轉(zhuǎn)移培養(yǎng)基。從圖1可看出，高氏一號(hào)培養(yǎng)基的接合轉(zhuǎn)移效率為1.69×10-6，高于MS和2CM培養(yǎng)基的接合轉(zhuǎn)移效率，而使用M10和YEME培養(yǎng)基時(shí)接合轉(zhuǎn)移效率低至無(wú)法計(jì)算或得不到接合轉(zhuǎn)移子，因此對(duì)固氮放線菌進(jìn)行接合轉(zhuǎn)移操作時(shí)選擇高氏一號(hào)培養(yǎng)基為接合轉(zhuǎn)移培養(yǎng)基。

2. 2 熱激溫度對(duì)菌株WZS021接合轉(zhuǎn)移效率的影響

在鏈霉菌的接合轉(zhuǎn)移操作中，熱激溫度對(duì)不同鏈霉菌的孢子萌發(fā)效果不同，對(duì)鏈霉菌接合轉(zhuǎn)移效率也有一定影響（孔會(huì)利等，2006）。本研究選取45、50和55 ℃3個(gè)熱激溫度對(duì)鏈霉菌孢子進(jìn)行熱激處理，每處理熱激10 min，結(jié)果（圖2）表明，熱激溫度為50 ℃時(shí)接合轉(zhuǎn)移效率高于45和55 ℃兩個(gè)處理，因此熱激溫度為50 ℃時(shí)孢子萌發(fā)情況更適于接合轉(zhuǎn)移操作要求。

2. 3 供體菌與受體菌比例對(duì)菌株WZS021接合轉(zhuǎn)移效率的影響

在大腸桿菌與鏈霉菌屬間的接合轉(zhuǎn)移中，供體菌數(shù)量過(guò)多會(huì)造成供體菌與受體菌同時(shí)在培養(yǎng)基上生長(zhǎng)，無(wú)法進(jìn)行下一步操作；受體菌數(shù)量過(guò)多則轉(zhuǎn)化子假陽(yáng)性的概率會(huì)升高。因此，選擇適當(dāng)?shù)墓┦鼙仁墙雍限D(zhuǎn)移操作中的重要一步。本研究選擇供受比1000∶1、100∶1、10∶1、1∶1、1∶10、1∶100和1∶1000進(jìn)行比較，結(jié)果（圖3）表明，供受比為1∶10時(shí)，接合轉(zhuǎn)移效率最高，供受比為10∶1、1∶1和1∶100時(shí)可長(zhǎng)出少量轉(zhuǎn)化子，供受比為1000∶1、100∶1和1∶1000時(shí)出現(xiàn)大腸桿菌生長(zhǎng)或無(wú)轉(zhuǎn)化子現(xiàn)象。

2. 4 抗生素濃度對(duì)菌株WZS021接合轉(zhuǎn)移效率的影響

由表1可知，選用20.0和50.0 mg/L兩種濃度安普霉素和萘啶酮酸對(duì)接合轉(zhuǎn)移子進(jìn)行抗生素濃度篩選，當(dāng)培養(yǎng)基上萘啶酮酸濃度為20.0 mg/L時(shí)，20.0和50.0 mg/L安普霉素均無(wú)法抑制大腸桿菌生長(zhǎng)，出現(xiàn)大腸桿菌與轉(zhuǎn)化子同時(shí)生長(zhǎng)現(xiàn)象；當(dāng)萘啶酮酸濃度為50.0 mg/L時(shí)，20.0 mg/L安普霉素的接合轉(zhuǎn)移效率約為50.0 mg/L安普霉素接合轉(zhuǎn)移效率的3倍，為2.79×10-6。

2. 5 抗生素覆蓋時(shí)間對(duì)菌株WZS021接合轉(zhuǎn)移效率的影響

通常情況下鏈霉菌接合轉(zhuǎn)移過(guò)程中抗生素覆蓋時(shí)間為16～20 h，覆蓋時(shí)間過(guò)長(zhǎng)，大腸桿菌生長(zhǎng)出的菌落會(huì)與鏈霉菌混在一起，無(wú)法進(jìn)行下一步試驗(yàn)；時(shí)間過(guò)短則接合轉(zhuǎn)移不完全，效率低下。本研究分別在涂布大腸桿菌與鏈霉菌混合菌液10、12、14、16、18和20 h后覆蓋抗生素，以涂布混合菌液12 h后覆蓋抗生素的接合轉(zhuǎn)移效率最高，涂布混合菌液14 h后覆蓋抗生素也能獲得可觀數(shù)量的接合轉(zhuǎn)移子，涂布混合菌液10 和16 h后覆蓋抗生素僅獲得少量的轉(zhuǎn)移子，而在涂布混合菌液18和20 h后覆蓋抗生素?zé)o法抑制大腸桿菌生長(zhǎng)（圖4）。

2. 6 MgCl2濃度對(duì)菌株WZS021接合轉(zhuǎn)移效率的影響

在接合轉(zhuǎn)移培養(yǎng)基中加入適量的MgCl2可提高接合轉(zhuǎn)移效率。為確定接合轉(zhuǎn)移的最佳MgCl2濃度，本研究選取終濃度為0、5.0、10.0、20.0、30.0、40.0和50.0 mmol/L的培養(yǎng)基以觀察接合轉(zhuǎn)移子生長(zhǎng)情況。觀察結(jié)果（圖5）表明，在終濃度為0～30.0 mmol/L的培養(yǎng)基上均可產(chǎn)生數(shù)量可觀的接合轉(zhuǎn)移子，終濃度為50.0 mmol/L的培養(yǎng)基上未產(chǎn)生接合轉(zhuǎn)移子。其中，終濃度為5.0、10.0和20.0 mmol/L培養(yǎng)基上產(chǎn)生轉(zhuǎn)化子的數(shù)量明顯多于其他濃度。

2. 7 甘氨酸對(duì)菌株WZS021接合轉(zhuǎn)移效率的影響

在培養(yǎng)基中加入MgCl2使其終濃度為5.0 mmol/L的前提下，添加甘氨酸使培養(yǎng)基甘氨酸終濃度分別為0、1%、2%、3%、4%、5%和6%，以檢測(cè)甘氨酸對(duì)菌株WZS021接合轉(zhuǎn)移效率的影響。檢測(cè)結(jié)果（圖6）顯示，甘氨酸終濃度為0～3%時(shí)，接合轉(zhuǎn)移效率變化無(wú)明顯差異，其中添加1%甘氨酸接合轉(zhuǎn)移效率最高（3.24×10-6），甘氨酸濃度大于3%時(shí)接合轉(zhuǎn)移效率降低，說(shuō)明不添加甘氨酸對(duì)接合轉(zhuǎn)移效率無(wú)影響。

2. 8 接合轉(zhuǎn)移子的穩(wěn)定性及PCR驗(yàn)證

將1.2.3獲得的接合轉(zhuǎn)移子轉(zhuǎn)接至無(wú)抗性的高氏一號(hào)培養(yǎng)基上，生長(zhǎng)出菌落后再接種于含50.0 mg/L萘啶酮酸和20.0 mg/L安普霉素的高氏一號(hào)培養(yǎng)基上，傳代培養(yǎng)6～8次，隨機(jī)挑選4株單菌落分別置于YEME液體培養(yǎng)基中以提取DNA，進(jìn)行PCR擴(kuò)增均獲得大小約700 bp的條帶（圖7），表明質(zhì)粒pSET152已轉(zhuǎn)入鏈霉菌中并在鏈霉菌中遺傳穩(wěn)定，而以野生型菌株WZS021的DNA為陰性對(duì)照未擴(kuò)增出條帶。將PCR產(chǎn)物膠回收送往生工生物工程（上海）股份有限公司測(cè)序，獲得的測(cè)序結(jié)果在NCBI上進(jìn)行比對(duì)分析，證實(shí)其為目的基因片段。

3 討論

pSET152是一種基因整合型質(zhì)粒，只有整合到染色體上才能穩(wěn)定存在于受體菌中（朱云霞等，2012）。不同鏈霉菌種導(dǎo)入外源基因的方法不同，接合轉(zhuǎn)移效率差異也很明顯（劉雪嬌等，2012）。本研究結(jié)果表明，菌株WZS021可在M10和YEME培養(yǎng)基上生長(zhǎng)，但在接合轉(zhuǎn)移系統(tǒng)中無(wú)接合子出現(xiàn)，其具體機(jī)制尚不清楚，不排除其他培養(yǎng)基更適合該菌接合轉(zhuǎn)移操作的可能性，下一步研究應(yīng)選取更多培養(yǎng)基進(jìn)行檢測(cè)；選用的3個(gè)熱激溫度中，55 ℃促進(jìn)孢子預(yù)萌發(fā)的效率明顯低于45和50 ℃處理，與一般接合轉(zhuǎn)移操作（Kieser et al.，2000）中熱激溫度處理結(jié)果相同。王芬等（2012）研究發(fā)現(xiàn)，供受比為10∶1時(shí)最適合Streptomyces griseochromogenes的接合轉(zhuǎn)移操作；楊卓等（2016）報(bào)道供受比為100∶1對(duì)肉色吸水鏈霉菌 SH121的接合轉(zhuǎn)移效率更高。在本研究中，菌株WZS021的接合轉(zhuǎn)移操作更適合在供受比1∶10條件下完成，說(shuō)明不同鏈霉菌種在接合轉(zhuǎn)移操作中與大腸桿菌的競(jìng)爭(zhēng)情況存在差異。在對(duì)安普霉素最小抑菌濃度的測(cè)定中發(fā)現(xiàn)，3.0 mg/L抗生素足以抑制鏈霉菌生長(zhǎng)，但為了避免接合子出現(xiàn)菌落連成一片不利于驗(yàn)證的情況，本研究選擇50.0 mg/L萘啶酮酸和20.0 mg/L安普霉素進(jìn)行抗生素濃度篩選?？股馗采w時(shí)間對(duì)接合轉(zhuǎn)移影響的研究結(jié)果表明，鏈霉菌在接合轉(zhuǎn)移操作中最佳抗生素覆蓋時(shí)間為12 h，抗生素覆蓋時(shí)間偏長(zhǎng)會(huì)導(dǎo)致大腸桿菌出現(xiàn)，推測(cè)菌株WZS021的次生代謝產(chǎn)物中較少或沒(méi)有抑制大腸桿菌生長(zhǎng)的物質(zhì)，有別于王航等（2014）對(duì)玫瑰孢鏈霉菌NRRL11379接合轉(zhuǎn)移系統(tǒng)研究中抗生素覆蓋時(shí)間最佳為20 h的結(jié)果。Mg2+是酶活中心的組成部分，大量研究（楊卓等，2016；張萬(wàn)垚等，2012；朱云霞等，2012）表明，在一定范圍內(nèi)Mg2+濃度的增加能提高接合轉(zhuǎn)移效率。本研究中加入5.0～20.0 mmol/L MgCl2后可較大幅度提高接合轉(zhuǎn)移效率，但MgCl2濃度大于20.0 mmol/L后接合轉(zhuǎn)移效率并未隨之升高，推測(cè)與高氏一號(hào)培養(yǎng)基本身含有少量MgSO4有關(guān)，Mg2+濃度過(guò)高反而會(huì)影響孢子形成。有報(bào)道稱(chēng)適量的甘氨酸可提高S. griseochromogenes（劉雪嬌等，2012）和S. pulveraceus（王芬等，2012）的接合轉(zhuǎn)移效率，本研究結(jié)果與其存在差異，0～3%甘氨酸未影響菌株WZS021的接合轉(zhuǎn)移效率，甘氨酸濃度大于3%時(shí)反而會(huì)降低接合轉(zhuǎn)移效率。

4 結(jié)論

本研究確定了適用于固氮鏈霉菌S. chartreusi WZS021的接合轉(zhuǎn)移條件，建立了一套行之有效的固氮鏈霉菌S. chartreusi WZS021遺傳轉(zhuǎn)化體系，有助于今后插入標(biāo)記基因確定該菌株的固氮定殖位點(diǎn)及導(dǎo)入外源基因的操作。

參考文獻(xiàn)：

赫衛(wèi)清，王以光. 2006. 吸水鏈霉菌17997 格爾德霉素部分生物合成基因簇的克隆和分析[J]. 生物工程學(xué)報(bào)，22（6）：902-906.

He W Q，Wang Y G. 2006. Cloning and analysis of geldanamycin partial biosynthetic gene cluster of Streptomyces hygrosco-

picus 17997[J]. Chinese Journal of Biotechnology，22（6）：902-906.

孔會(huì)利，王超，肖亮，李文成. 2007. 高G+C含量模板進(jìn)行擴(kuò)增的高效緩沖液體系的建立[J]. 華中農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào)，25（2）：106-109.

Kong H L，Wang C，Xiao L，Li W C. 2007. Establishment of efficient buffer of PCR for template with high G+C content[J]. Journal of Huazhong Agricultural University，25（2）：106-109.

李劍峰，楊鑫，張淑卿，杜建雄，劉健. 2015. 2種植物內(nèi)生固氮菌對(duì)燕麥種子萌發(fā)及幼苗生長(zhǎng)的效果[J]. 西南農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào)，28（6）：2465-2468.

Li J F，Yang X，Zhang S Q，Du J X，Liu J. 2015. Effects of two endophytic diazotrophs（Klepsiella oxytoca Msp2c and Pseudomonas fluorescence LM531） on seed germination and seedling growth in avena sativa[J]. Southwest China Journal of Agricultural Sciences，28（6）：2465-2468.

李楊瑞. 2010. 現(xiàn)代甘蔗學(xué)[M]. 北京：中國(guó)農(nóng)業(yè)出版社.

Li Y R. 2010. Modern Sugarcane Science[M]. Beijing：China Agriculture Press.

劉雪嬌，牛銘山，邱榮國(guó)，唐莉. 2012. Fostriecin產(chǎn)生菌Streptomyces pulveraceus遺傳轉(zhuǎn)化體系的建立與優(yōu)化[J]. 微生物學(xué)通報(bào)，39（3）：371-377.

Liu X J，Niu M S，Qiu R G，Tang L. 2012. Establishment and optimization of the conjugal transfer system of fostriecin producer Streptomyces pulveraceus[J]. Microbiology China，39（3）：371-377.

劉志恒，姜成林. 2004. 放線菌現(xiàn)代生物學(xué)與生物技術(shù)[M]. 北京：科學(xué)出版社.

Liu Z H，Jiang C L. 2004. Actinobacteria in Modern Biology and Biotechnology[M]. Beijing：Science Press.

莫宏波，白林泉，王勝蘭，楊克. 2004. 大腸桿菌—鏈霉菌高效接合載體的構(gòu)建及其應(yīng)用[J]. 生物工程學(xué)報(bào)，20（5）：662-666.

Mo H B，Bai L Q，Wang S L，Yang K. 2004. Construction of effi-

cient conjugal plasmids between Escherichia coli and streptomycetes[J]. Chinese Journal of Biotechnology，20（5）：662-666.

王芬，邱榮國(guó)，唐莉. 2012. 變構(gòu)菌素產(chǎn)生菌S. griseochromogenes接合轉(zhuǎn)移體系建立與優(yōu)化[J]. 大連理工大學(xué)學(xué)報(bào)，53（3）：338-342.

Wang F，Qiu R G，Tang L. 2012. Establishment and optimization for conjugal transfer system of tautomycetin-producing strain S. griseochromogenes[J]. Journal of Dalian University of Technology，53（3）：338-342.

王航，王文軼，吳旻，彭冉，王旻. 2014. 達(dá)托霉素產(chǎn)生菌玫瑰孢鏈霉菌NRRL11379接合轉(zhuǎn)移系統(tǒng)的建立與優(yōu)化[J]. 藥物生物技術(shù)，21（3）：194-198.

Wang H，Wang W Y，Wu M，Peng R，Wang M. 2014. Establishment and optimization of a conjugation system for the daptomycin producer Streptomyces roseosporus NRRL11379[J]. Pharmaceutical Biotechnology，21（3）：194-198.

吳勝，夏煥章. 2002. 鏈霉菌基因轉(zhuǎn)移的方法[J]. 生物工程進(jìn)展，22（1）：91-95.

Wu S，Xia H Z. 2002. The methods of gene transfer in Streptomyces[J]. China Biotechnology，22（1）：91-95.

楊旻，陶美鳳. 2007. 雷帕霉素產(chǎn)生菌吸水鏈霉菌NRRL5491 接合轉(zhuǎn)移系統(tǒng)的建立[J]. 華中農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào)，26（5）：637-641.

Yang M，Tao M F. 2007. Establishment of a conjugation system for the rapamycin producer Streptomyces hygroscopicus NRRL5491[J]. Journal of Huazhong Agricultural University，26（5）：637-641.

楊卓，李佳麗，肖樂(lè)，何璟. 2016. 肉色吸水鏈霉菌SH121接合轉(zhuǎn)移系統(tǒng)的建立[J]. 華中農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào)，35（4）：49-55.

Yang Z，Li J L，Xiao L，He J. 2016. Establishing intergeneric conjugation system in Streptomyces carneohygroscopicus SH121[J]. Journal of Huazhong Agricultural University，35（4）：49-55.

余姣姣，陶美鳳. 2010. 無(wú)機(jī)鹽對(duì)阿維鏈霉菌接合轉(zhuǎn)移及異源表達(dá)放線紫紅素的影響[J]. 微生物學(xué)報(bào)，50（11）：1556-1561.

Yu J J，Tao M F. 2010. Effect of inorganic salts on the conjugation and heterologous expression of actinorhodin in Streptomyces avermitilis[J]. Acta Microbiologica Sinica，50（11）：1556-1561.

張萬(wàn)垚，魯慧囡，何璟. 2012. 酪蛋白水解物對(duì)雷帕霉素產(chǎn)生菌Streptomyces hygroscopicus ATCC29253接合轉(zhuǎn)移效率的影響[J]. 微生物學(xué)報(bào)，52（2）：198-205.

Zhang W Y，Lu H N，He J. 2012. Effect of casamino acid on intergeneric conjugation in rapamycin-producing Streptomyces hygroscopicus ATCC29253[J]. Acta Microbiologica Sinica，52（2）：198-205.

趙斌，何紹江. 2002. 微生物學(xué)實(shí)驗(yàn)[M]. 北京：科學(xué)出版社.

Zhao B，He S J. 2002. Microbiology Experiment[M]. Beijing：Science Press.

朱云霞，廖思懿，葉江，張惠展. 2012. 抗生素Bagremycin生產(chǎn)菌Streptomyces sp. Tü 4128 接合轉(zhuǎn)移系統(tǒng)的建立[J]. 華東理工大學(xué)學(xué)報(bào)（自然科學(xué)版），38（2）：160-164.

Zhu Y X，Liao S Y，Ye J，Zhang H Z. 2012. Development of an intergeneric conjugal transfer system for Streptomyces sp. Tü 4128，a producer of bagremycins[J]. Journal of East China University of Science and Technology（Natural Science Edition），38（2）：160-164.

Bierman M，Logan R，OBrien K，Seno E T，Rao R N，Schoner B E. 1992. Plasmid cloning vectors for the conjugal transfer of DNA from Escherichia coli to Streptomycess spp.[J]. Gene，116（1）：43-49.

Christensen B B，Sternberg C，Molin S. 1996. Bacterial plasmid conjugation on semi-solid surfaces monitored with the green fluorescent protein（GFP） from Aequoreavictoria as a mar-

ker[J]. Gene，173（1）：59-65.

Flett F，Mersinias V，Smith C P. 1997. High efficiency intergeneric conjugal transfer of plasmid DNA from Escherichia coli to methyl DNA restricting Streptomyces[J]. FEMS Microbiology Letters，155：223-229.

Kieser T，Bibb M J，Buttner M J，Chater K F，Hopwood D A. 2000. Practical Streptomyces Genetics[M]. Norwich：The John Innes Foundation，UK.

Sambrook J，F(xiàn)ritsch E F，Maniatis T. 1989. Molecular Cloning：A Laboratory Manual[M]. New York：Cold Spring Harbor Labo-

ratory Press.

Veal D A，Stokes H W，Daggard G. 1992. Genetic exchange in natural microbial communities[J]. Advances in Microbial Ecology，12：383-430.

Wang Z，Solanki M K，Pang F，Singh R K，Yang L T，Li Y R，Li H B，Zhu K，Xing Y X. 2016. Identification and efficiency of a nitrogen-fixing endophytic actinobacterial strain from sugarcane[J]. Sugar Technology，doi：10.1007/s12355-016-0498-y.

（責(zé)任編輯 思利華）