錢靜亞++張正沛+季蓉蓉+馬真+陳菊++李佳少++張志才+葛才林
摘要:對菌株JS-1008、米曲霉CGMCC5992、黃孢原毛平革菌CICC40719等3株真菌固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)木質(zhì)素降解酶、纖維素酶、半纖維素酶進(jìn)行了研究。結(jié)果表明,3株菌株中,米曲霉發(fā)酵產(chǎn)木質(zhì)素降解酶活性最高,木質(zhì)素過氧化物酶和錳過氧化物酶活性可達(dá)2.08、1.79 U/g DS,產(chǎn)纖維素酶、半纖維素酶活性則相對較低,分別為1.69、4.19 U/g DS,木質(zhì)素降解率為7.23%;菌株JS-1008產(chǎn)木質(zhì)素降解酶、纖維素酶、半纖維素酶的活性均較低,木質(zhì)素降解率最低;黃孢原毛平革菌產(chǎn)木質(zhì)素降解酶的水平最低,木質(zhì)素過氧化物酶、錳過氧化物酶的活性分別為0.40、0.51 U/g DS,但產(chǎn)纖維素酶、半纖維素酶的活性最高,分別達(dá)到2.54、10.86 U/g DS,木質(zhì)素降解率達(dá)11.7%。
關(guān)鍵詞:菌株JS-1008;米曲霉;黃孢原毛平革菌;木質(zhì)素過氧化物酶;錳過氧化物酶
中圖分類號: S182文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A
文章編號:1002-1302(2017)05-0277-04
木質(zhì)素是自然界中除纖維素外的第2大聚合物,由苯丙烷單元通過醚鍵、碳碳鍵連接形成聚酚類三維網(wǎng)狀結(jié)構(gòu),由于其復(fù)雜、穩(wěn)定、多樣的無定形三維體型而成為農(nóng)作物秸稈中比纖維素更難降解的成分,導(dǎo)致秸稈營養(yǎng)價值、利用率低[1]。要徹底降解纖維素,關(guān)鍵在于降解包裹在纖維素晶體外面的木質(zhì)素以及半纖維素。因此,秸稈利用研究從過去的降解纖維素的研究轉(zhuǎn)向了木質(zhì)素降解研究[2]。
木質(zhì)素降解過程中的關(guān)聯(lián)酶系主要有3類:H2O2產(chǎn)生酶系(如葡萄糖氧化酶、乙二醛氧化酶等)、木質(zhì)素氧化酶系(木質(zhì)素過氧化物酶、錳過氧化物酶、漆酶等)、其他酶系(甲基化酶、纖維二糖脫氫酶等)[3]。在木質(zhì)素氧化酶系中,研究較多的酶主要有木質(zhì)素過氧化物酶、錳過氧化物酶、漆酶[4]。木質(zhì)素過氧化物酶是降解木質(zhì)素酶系的主要成分,在木質(zhì)素降解中起關(guān)鍵作用[5]。錳過氧化物酶在Mn2+、H2O2存在時,能氧化分解芳香環(huán)多聚體,被認(rèn)為是木質(zhì)素降解的關(guān)鍵酶之一[6]。
自然界中產(chǎn)生降解木質(zhì)素降解酶的微生物有真菌、放線菌、細(xì)菌等,其中可徹底將木質(zhì)素降解為CO2、H2O的是白腐真菌,如黃孢原毛平革菌(Phanerochaete chrysosporium)[7]、紅色毛癬菌(Trichophyton rubrum)[8]、栓菌屬(Trametes)[9]、側(cè)耳屬(Pleurotus)[10]、糖單孢菌屬(Saccharomonospora)[11]、不動細(xì)菌屬菌株B-2(Acinetobacter sp. B-2.)、Pandoraea sp.B-6、纖孔菌屬菌株(Inonotus sp.)[12]等。但是白腐真菌在人工培養(yǎng)條件下產(chǎn)生的木質(zhì)素降解酶活性較低,造成木質(zhì)素酶生產(chǎn)成本較高,因此有必要探索木質(zhì)素降解酶活性高的真菌。
筆者前期從污泥中分離得到了菌株JS-1008和米曲霉CGMCC5992,但未對其降解木質(zhì)素進(jìn)行系統(tǒng)研究。本研究比較菌株JS-1008、米曲霉CGMCC5992、黃孢原毛平革菌產(chǎn)木質(zhì)素降解酶、纖維素酶、半纖維素酶的能力,試圖找到1株產(chǎn)高活性木質(zhì)素降解酶活性的菌株,以期為降低木質(zhì)素酶的生產(chǎn)成本,實(shí)現(xiàn)其工業(yè)化生產(chǎn)應(yīng)用奠定基礎(chǔ),也為真菌降解秸稈木質(zhì)纖維素并用于秸稈的資源化利用提供依據(jù)。
1材料與方法
1.1材料
1.1.1菌種
JS-1008,分離自江蘇大學(xué)玉帶河污泥樣品中,初步鑒定為匍枝根霉。米曲霉,分離自江蘇大學(xué)玉帶河污泥樣品中,現(xiàn)保存于中國微生物菌種保藏管理委員會普通微生物中心,保存編號為CGMCC5992。黃孢原毛平革菌CICC40719,購自中國工業(yè)微生物菌種保藏中心。
1.1.2培養(yǎng)基
玉米芯粉固體發(fā)酵培養(yǎng)基:稱取一定量玉米芯粉和水,按照質(zhì)量比1 ∶[KG-*3]3混合,分裝在直徑15 cm、無熱力學(xué)應(yīng)變性的塑料盤中,每盤60 g,并在121 ℃滅菌1 h。[HJ]
1.2方法
1.2.1玉米秸稈、玉米芯預(yù)處理
將同一批次、產(chǎn)地、采收季節(jié)的玉米秸稈、玉米芯,用小型藥物粉碎機(jī)粉碎成粉末,并將粉末過100目篩,密封于塑料保鮮袋中,于背光、干燥處儲藏備用。
1.2.2固態(tài)發(fā)酵
在無菌條件下,將試管斜面中的菌種接種到已滅菌的含15 g麥麩、20 mL水的250 mL三角瓶中,28 ℃培養(yǎng)4~7 d后轉(zhuǎn)接到玉米芯粉的發(fā)酵培養(yǎng)基中,每盤接種 6 g,混勻后28 ℃培養(yǎng)30 d。為在發(fā)酵過程中能保持培養(yǎng)基濕度,所有塑料盤均用保鮮膜密封。
1.2.3粗酶液制備
發(fā)酵結(jié)束后,稱取5 g固態(tài)發(fā)酵基質(zhì)于250 mL三角瓶中,加入100 mL蒸餾水,28 ℃、150 r/min振蕩提取1 h,-4 ℃冷凍離心后獲得的上清液即為粗酶液,置于1.5 mL的離心管中-18 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.4.3纖維素酶活性的測定
采用測定羧甲基纖維素酶活性(CMC)的方法測定纖維素酶活性。
葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作:稱取1 g于105 ℃烘至恒質(zhì)量的葡萄糖,加水定容至1 L,得1 g/L的葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液。分別移取上述標(biāo)準(zhǔn)溶液0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、1.2 mL,加水補(bǔ)至2 mL,加入2 mL DNS試劑,加塞后在沸水浴中加熱 10 min,冷卻后定容至15 mL,用分光光度計測550 nm波長下的吸光度,以濃度-吸光度繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
測定步驟:取0.5 mL粗酶液,再分別吸取1.5 mL CMC溶液,50 ℃水浴保溫30 min;對照樣用0.5 mL稀釋酶液,加入1.5 mL醋酸緩沖液,50 ℃水浴30 min,再吸取DNS試劑 2 mL,搖勻后具塞,沸水浴反應(yīng)10 min,冷卻后補(bǔ)加水至 15 mL,振蕩混勻,用對照調(diào)零點(diǎn),于550 nm下測吸光度[16]。1 min內(nèi)由底物生成1 μmol葡萄糖所需的酶量定義為1個酶活性單位(U)。纖維素酶(CMC)活性計算方法如下:
[JZ(]CMC酶活性=[SX(]葡萄糖質(zhì)量×2×1 00060[SX)](U/g)。[JZ)][JY](3)
1.2.4.4半纖維素(木聚糖酶)酶活性的測定
木糖標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作:稱取1 g于105 ℃烘至恒質(zhì)量的木糖,加水定容至1 L,得1 g/L木糖標(biāo)準(zhǔn)溶液。分別移取上述標(biāo)準(zhǔn)溶液0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、1.2 mL,加水補(bǔ)至2 mL,加入2 mL DNS試劑,加塞后在沸水浴中加熱10 min,冷卻后補(bǔ)水定容至 15 mL,用分光光度計在550 nm波長下測吸光度,以濃度-吸光度繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
測定步驟:取粗酶液0.5 mL,再吸取1%木聚糖溶液 1.5 mL,搖勻,50 ℃水浴1 h,取出后,再吸取2 mL DNS試劑搖勻,加塞立即沸水浴反應(yīng)10 min,冷卻后補(bǔ)加水定容到 15 mL,輕輕上下?lián)u勻,對照用0.5 mL稀釋酶液加1.5 mL醋酸緩沖液,不加木聚糖溶液。按上述步驟,用對照調(diào)零點(diǎn),于550 nm下測吸光度[17]。1 min內(nèi)水解木聚糖生成相當(dāng)于 1 μmol 木糖等還原物質(zhì)的量為1個酶活性單位,以U/g表示。半纖維素(木聚糖酶)酶活性計算方法如下:
[HS2][JZ(]半纖維素酶活性=[SX(]木糖質(zhì)量×2×1 00050[SX)](U/g)。[JZ)][JY](4)
1.2.5木質(zhì)素降解率的測定
稱取一定量(G)樣品(過40目篩)置于圓底燒瓶中,加入2 mol/L鹽酸100 mL,5~10 min內(nèi)煮沸,并持續(xù)保持微沸60 min。趁熱用已知質(zhì)量的玻璃坩堝抽濾,并用沸水反復(fù)沖洗玻璃坩堝及殘渣,至濾液呈中性。用少量丙酮沖洗殘渣至抽下的丙酮液呈無色,并抽凈丙酮。將玻璃坩堝置于105 ℃烘箱中烘2 h后,在干燥器中冷卻 30 min 稱質(zhì)量G1,直至恒質(zhì)量。將酸性洗滌纖維加入72%硫酸,在20 ℃消化3 h后過濾,并沖洗至中性。將殘渣烘干稱質(zhì)量(G2),并灼燒灰化稱質(zhì)量(G3),G3與G2的差值即為木質(zhì)素含量。木質(zhì)素降解率計算方法如下:
[HT9.,6"][JP2]木質(zhì)素降解率=[SX(]未發(fā)酵秸稈中木質(zhì)素含量-發(fā)酵后秸稈中木質(zhì)素含量未發(fā)酵秸稈中木質(zhì)素含量[SX)]×100%。[HT][JY](5)[JP]
2結(jié)果與分析
[HTK]2.13株菌株產(chǎn)木質(zhì)素降解酶、纖維素酶、半纖維素酶的比較[HT]
2.1.1葡萄糖和木糖標(biāo)準(zhǔn)曲線如圖1所示,葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線方程為y=0.953 7x-0.090 3,r2為0.999 2;如圖2所示,木糖標(biāo)準(zhǔn)曲線為y=1.026x-0.022 5,r2為0.999 0。說明其適合用于葡萄糖、木糖含量的測定。
2.1.23株菌株產(chǎn)木質(zhì)素過氧化物酶的分析
如圖3所示,米曲霉在固態(tài)培養(yǎng)18 d時木質(zhì)素過氧化物酶活性達(dá)到最大值,為1.79 U/g DS。JS-1008菌株產(chǎn)酶活性較低,在培養(yǎng) 9 d 時酶活性達(dá)到最大值,為0.39 U/g DS。黃孢原毛平革菌培養(yǎng)15 d時產(chǎn)酶活性最大, 為0.40 U/g DS。米曲霉產(chǎn)木質(zhì)
素過氧化物酶能力高于菌株JS-1008、黃孢原毛平革菌,但是米曲霉產(chǎn)酶活性出現(xiàn)最大值的時間較JS-1008菌株、黃孢原毛平革菌明顯滯后,這可能是因?yàn)槟举|(zhì)素降解酶是次生代謝產(chǎn)物,米曲霉菌在生長后期限氮的條件下利于酶的產(chǎn)生,生長前期米曲霉菌體利用培養(yǎng)基中的氮等營養(yǎng)成分進(jìn)行細(xì)胞快速生長,后期氮源消耗到一定程度才進(jìn)入產(chǎn)酶期。而該培養(yǎng)基對于JS-1008菌株、黃孢原毛平革菌沒有產(chǎn)生限制作用,產(chǎn)酶時期提前。
2.1.33株菌株產(chǎn)錳過氧化物酶的分析
如圖4所示,米曲霉能產(chǎn)生較高的錳過氧化物酶活性,在發(fā)酵12 d時酶活性最高,為2.27 U/g DS,而菌株JS-1008、黃孢原毛平革菌產(chǎn)錳過氧化物酶活性相對較低,最高僅分別為0.52、0.51 U/g DS。JS-1008菌株不能促進(jìn)產(chǎn)酶的原因可能是匍枝根霉能分泌大量淀粉酶,這種酶降解秸稈中的淀粉后產(chǎn)生部分β-環(huán)糊精,有研究表明β-環(huán)糊精對錳過氧化物酶的產(chǎn)生有一定抑制作用[18],此外淀粉酶會降解淀粉,產(chǎn)生大量葡萄糖,造成碳源過剩抑制菌體生長,從而也抑制了錳過氧化物酶的分泌。
2.1.43株菌株產(chǎn)纖維素酶的分析
纖維素酶是使纖維素
降解生成葡萄糖的酶的總稱,主要有葡聚糖內(nèi)切酶、葡聚糖外切酶、β-葡萄糖苷酶,這3種酶協(xié)同作用可將天然纖維素降解為葡萄糖。如圖5所示,在發(fā)酵20 d時,黃孢原毛平革菌、米曲霉產(chǎn)纖維素酶活性都達(dá)到最大值,分別為2.54、1.69 U/g DS,JS-1008菌株在發(fā)酵8 d時酶活性最高,為218 U/g DS。黃孢原毛平革菌在發(fā)酵6 d時酶活性迅速上升,12~20 d時酶活性趨于穩(wěn)定。米曲霉在發(fā)酵12 d后到達(dá)酶活性迅速增長期,16~20 d是酶的穩(wěn)定生產(chǎn)期,但酶活性并不高,是3株菌株中產(chǎn)酶活最低且產(chǎn)酶時間最遲的菌株,這種現(xiàn)象可能是由于米曲霉能產(chǎn)生葡聚糖內(nèi)切酶、外切酶,但產(chǎn)生β-葡萄糖苷酶能力弱,使纖維二糖積累造成產(chǎn)物抑制。JS-1008 菌株的產(chǎn)酶能力較米曲霉強(qiáng),且產(chǎn)酶時間明顯提前,但酶活性達(dá)到最高后很快降低,并沒有出現(xiàn)產(chǎn)酶的穩(wěn)定期。
2.1.53株菌株產(chǎn)半纖維素酶(木聚糖酶)的分析
微生物產(chǎn)生的半纖維素酶主要是指β-D-l,4-木聚糖酶、β-木糖苷酶,β-D-1,4-木聚糖酶的主要水解產(chǎn)物為木二糖及其以上的低木聚糖,β-木糖苷酶可以作用于低聚木糖的末端,釋放木糖。如圖6所示,與米曲霉、菌株JS-1008相比,黃孢原毛平革菌產(chǎn)半纖維素酶的酶活性最高,在固態(tài)發(fā)酵16 d產(chǎn)生高達(dá)10.86 U/g DS的木聚糖酶活性。菌株JS-1008在發(fā)酵8 d時即達(dá)到酶活性最大值,為5.64 U/g DS,但菌株 JS-1008 無產(chǎn)酶的穩(wěn)定期;米曲霉酶活性最低,12~20 d是產(chǎn)酶較為穩(wěn)定的時期,但酶活性最高時也僅為4.42 U/g DS。木聚糖酶是一種誘導(dǎo)酶,需要將秸稈中的淀粉降解為小分子物質(zhì)后才能誘導(dǎo)菌株產(chǎn)生,3株菌株產(chǎn)木聚糖酶的趨勢與產(chǎn)纖維素酶的趨勢大致相同。
2.23株菌株降解木質(zhì)素的比較
[CM(24]如圖7所示,米曲霉木質(zhì)素降解率達(dá) 7.23%;菌株
JS-1008 木質(zhì)素降解率僅為4.14%;而黃孢原毛平革菌對木質(zhì)素的降解率最高,達(dá)到11.00%。米曲霉能產(chǎn)生活性較高的與降解木質(zhì)素有關(guān)的酶,因此降解率較高;而黃孢原毛平革菌能產(chǎn)生高活性的纖維素酶、半纖維素酶,破壞木質(zhì)素與半纖維素之間緊密結(jié)合的化學(xué)鍵,使木質(zhì)素游離被降解,所以木質(zhì)素降解率最高,雖然黃孢原毛平革菌分泌錳過氧化物酶和木質(zhì)素過氧化物酶的酶活性不高,但能分泌葡萄糖氧化酶和乙二醇氧化酶等產(chǎn)H2O2的酶,這可能也是造成黃孢原毛平革菌降解率最高的原因。
3結(jié)論
米曲霉CGMCC5992產(chǎn)木質(zhì)素過氧化物酶、錳過氧化物酶等與降解木質(zhì)素有關(guān)的酶的活性最高,但產(chǎn)纖維素酶、半纖維素酶的能力較弱,對木質(zhì)素的降解率為7.17%,可認(rèn)為米曲霉是產(chǎn)酶專一性較強(qiáng)的菌株,具有用于生產(chǎn)木質(zhì)素降解酶的潛力,也可考慮與產(chǎn)纖維素酶、半纖維素酶活性高的菌株進(jìn)行混菌發(fā)酵,降解秸稈木質(zhì)素和纖維素。
菌株JS-1008雖然具有一定的降解木質(zhì)素的能力,但與黃孢原毛平革菌、米曲霉CGMCC5992相比,產(chǎn)降解木質(zhì)素相關(guān)的酶及纖維素酶、半纖維素酶的活性較低,且降解木質(zhì)素的能力較差,對菌株JS-1008的應(yīng)用范圍需要進(jìn)一步研究。
黃孢原毛平革菌產(chǎn)木質(zhì)素過氧化物酶、錳過氧化物酶的水平低于米曲霉,但產(chǎn)纖維素酶、半纖維素酶的活性最高,且木質(zhì)素降解率也最高。因此,黃孢原毛平革菌常被廣泛應(yīng)用于纖維素和木質(zhì)素材料的降解中。
參考文獻(xiàn):
[1]范寰,梁軍鋒,趙潤,等. 碳氮比對復(fù)合木質(zhì)素降解菌產(chǎn)酶活力和木質(zhì)素降解能力的影響[J]. 中國飼料,2010(14):23-25,29.
[2]張愛武,董斌,康偉. 白腐真菌對秸稈的降解效果及影響因素[J]. 飼料研究,2011(5):15-17.[HJ1.65mm]
[3]張力,邵喜霞,韓大勇. 白腐真菌木質(zhì)素降解酶系研究進(jìn)展[J]. 吉林畜牧獸醫(yī),2009,30(2):9-12.
[4]Iandolo D,Amore A,Birolo L,et al. Fungal solid state fermentation on agro-industrial wastes for acid wastewater decolorization in a continuous flow packed-bed bioreactor[J]. Bioresource Technology,2011,102(16):7603-7607.
[5]楊暖,張妙直,宋洪英. 木質(zhì)素過氧化物酶應(yīng)用研究進(jìn)展[J]. 現(xiàn)代農(nóng)業(yè)科學(xué),2009,16(4):19-20.
[6]吳會廣,Cai Y J,苑博華,等. 錳過氧化物酶產(chǎn)生菌的發(fā)酵優(yōu)化及酶學(xué)性質(zhì)研究[J]. 食品與機(jī)械,2008,24(4):17-21.
[7]張歡,柴立元,朱詠華,等. 3株細(xì)菌降解木質(zhì)素的條件調(diào)控研究[J]. 中南大學(xué)學(xué)報(自然科學(xué)版),2011,42(10):2922-2928.
[8]Bermek H,Yazici H,Ozturk H,et al. Purification and characterization of manganese peroxidase from wood-degrading fungus Trichophyton rubrum LSK-27[J]. Enzyme and Microbial Technology,2004,35(1):87-92.
[9]Zouari-Mechichi H,Mechichi T,Dhouib A,et al. Laccase purification and characterization from Trametes trogii isolated in Tunisia:decolorization of textile dyes by the purified enzyme[J]. Enzyme and Microbial Technology,2006,39(1):141-148.[ZK)]
[10]Liu L H,Lin Z W,Zheng T,et al. Fermentation optimization and characterization of the laccase from Pleurotus ostreatus strain 10969[J]. Enzyme and Microbial Technology,2009,44(6/7):426-433.
[11]丁夢璇,劉炳梅,張國慶,等. 綠色糖單孢菌木質(zhì)素過氧化物酶的分離純化及鑒定[J]. 生物技術(shù)通報,2011(8):198-202.
[12]賀新生,楊朝惠,趙春花. 三種白腐菌對木質(zhì)纖維素降解規(guī)律的初步研究[J]. 纖維素科學(xué)與技術(shù),2013,20(1):33-38.
[13]莢榮,湯必奎,張曉賓,等. 藜蘆醇和吐溫80對白腐菌產(chǎn)木質(zhì)素降解酶的影響及在偶氮染料脫色中的作用[J]. 生物工程學(xué)報,2004,20(2):302-305.
[14]Ramirez D A,Munoz S V,Atehortua L,et al. Effects of different wavelengths of light on lignin peroxidase production by the white-rot fungi Phanerochaete chrysosporium grown in submerged cultures[J]. Bioresource Technology,2010,101(23):9213-9220.
[15]Li N J,Zeng G M,Huang D L,et al. Oxalate production at different initial Pb2+ concentrations and the influence of oxalate during solid-state fermentation of straw with Phanerochaete chrysosporium[J]. Bioresource Technology,2011,102(17):8137-8142.
[16]Acharya B K,Mohana S,Jog R,et al. Utilization of anaerobically treated distillery spent wash for production of cellulases under solid-state fermentation[J]. Journal of Environmental Management,2010,91(10):2019-2027.
[17]Bailey M J,Biely P,Poutanen K. Interlaboratory testing of methods for assay of xylanase activity[J]. Journal of Biotechnology,1992,23(3):257-270.
[18]阮久莉,王勐,毛亮,等. 白腐菌錳過氧化物酶對2,2′,4,4′-四溴聯(lián)苯醚的降解[J]. 環(huán)境科學(xué)與技術(shù),2012,35(1):20-24.