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加工方式對羊乳中類胰島素生長因子I濃度的影響

2017-03-28 00:37:51徐連應侯院林王畢妮張富新
食品與發(fā)酵工業(yè) 2017年2期
關鍵詞:羊乳超高溫巴氏

徐連應,侯院林,王畢妮,張富新

(陜西師范大學 食品工程與營養(yǎng)科學學院,陜西 西安,710119)

加工方式對羊乳中類胰島素生長因子I濃度的影響

徐連應,侯院林,王畢妮,張富新*

(陜西師范大學 食品工程與營養(yǎng)科學學院,陜西 西安,710119)

采用雙抗體夾心酶聯(lián)免疫法測定羊乳中類胰島素生長因子I(IGF-I)的濃度,主要研究了巴氏殺菌、超高溫滅菌、攪拌、均質以及發(fā)酵等加工方式對羊乳中IGF-I濃度的影響。研究結果表明,巴氏殺菌可使羊乳中IGF-I的濃度降低,但72 ℃/15 s巴氏殺菌條件對羊乳中IGF-I濃度的影響相對較小;137 ℃/2 s超高溫滅菌條件對羊乳中IGF-I濃度的影響較大;均質和攪拌對羊乳中IGF-I的濃度基本無影響;發(fā)酵會使羊乳中IGF-I的濃度顯著降低。因此,在開發(fā)富含IGF-I的功能性羊奶產品時,可選擇72 ℃/15 s的巴氏殺菌條件,生產中均質和攪拌2種加工方式均可以采用,但不宜將其發(fā)酵成酸奶制品。

羊乳;IGF-I濃度;加工方式;雙抗體夾心酶聯(lián)免疫法

乳是人類營養(yǎng)物質的重要來源,不僅含有人體所需的各種營養(yǎng)成分,還含有多種生物活性物質,其中類胰島素生長因子(insulin-like growth factor, IGF)是乳中生物活性物質的重要組成成分,可以影響多種細胞的增殖與分化[1],具有細胞增生的長期性效應[2],對新生兒胃腸道的發(fā)育也具有重要的生理作用[3-5]。乳中IGF主要以IGF-I和IGF-II形式存在,其IGF-I濃度和生理活性遠大于IGF-II[2]。IGF-I是由70個氨基酸組成的分子質量為7.6 kDa的單鏈多肽,有3個二硫鍵。IGF-I對糖尿病具有一定的輔助療效[6-8],現(xiàn)代醫(yī)學顯示,IGF-I對機體血糖的下調作用相當顯著[9]。中國古代著名醫(yī)書《本草綱目》中也記載羊奶具有治療糖尿病的作用。目前,雖然有關IGF-I對哺乳動物的生理功能方面的研究報道較多[10-11],但有關乳品加工過程中,IGF-I變化的報道較少。由于IGF-I易受pH、溫度等環(huán)境因素的影響而發(fā)生氧化、變性、聚集或沉淀反應等不良反應;另外,乳品加工過程中常伴隨有均質、殺菌、噴霧干燥等不同工藝[12-13],這些加工方式也會造成乳制品中的IGF-I濃度降低,嚴重削弱乳制品的營養(yǎng)價值[14-15]。因此,本文主要研究和評估加工方式對羊乳中IGF-I濃度的影響。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

羊乳乳樣采集自西北農林科技大學試驗農場,奶山羊采食相同飼料及飲料,飼養(yǎng)條件一致。采集健康、飼養(yǎng)條件相同的奶山羊,人工擠奶方式采樣,采樣前用干凈毛巾對乳房清洗,并棄去前3把奶(約30 mL),然后用預先滅菌的取樣管采集擠奶中段的乳樣。每只羊收集50 mL乳樣,共收集20個奶樣,然后人工混勻制成混合樣,立即在-40 ℃下冷凍保存。

山羊乳IGF-I雙抗體夾心酶聯(lián)免疫試劑盒、IGF-II標準品,美國R&D公司;保加利亞乳桿菌、嗜酸乳桿菌(LA)、副干酪乳桿菌(LP-01),森博試劑有限公司。

1.2 儀器與設備

MDF-U5411型低溫冰箱,日本三洋電機有限公司;ND-50型培養(yǎng)箱,寧波江南儀器有限公司;HDM-3000型數(shù)字控溫電熱套,江蘇榮華儀器有限公司;TGL-16B型臺式低溫高速離心機,海安亭科學儀器廠;GSP-9080MBE型隔水式恒溫培養(yǎng)箱,上海博迅實業(yè)有限公司醫(yī)療設備廠;Multiskan Go型全波長酶標儀,美國熱電公司;JJ-006/60均質機,廊坊通用機械有限公司;SW-CJ-1F型超凈工作臺,蘇州安泰空氣技術有限公司;XMTD型數(shù)顯恒溫水浴鍋,上海福瑪實驗設備有限公司;KQ3200B型超聲波清洗器,昆山市超聲儀器有限公司;移液器(量程:0.5~10、10~100、100~1 000 μL),德國Eppendorf公司;電子天平,北京賽多利斯儀器系統(tǒng)有限公司。

1.3 測定方法

1.3.1 樣品處理

樣品處理按CASTIGLIEGO[16]方法并加以改進。將冷凍的乳樣在室溫下緩慢解凍后,用移液器吸取1 mL乳樣置于2 mL離心管中,在3 000 g下離心15 min脫脂,吸取400 μL的脫脂乳,加入40 μL 2 mol/L的HCl,充分混合,室溫下靜置30 min后,在4 ℃,10 000 g下離心30 min。吸取100 μL的上清液,添加264 μL的緩沖溶液(由11.7 mmol/L KH2PO4; 36.2 mmol/L Na2HPO4; 60 mmol/L Tris-base; 體積分數(shù)0.07 %, Tween 20; 250 ng/mL IGF-II組成),充分混合后,再在4 ℃,10 000 g下離心10 min,取上清液,用于試劑盒檢測IGF-I濃度。

1.3.2 IGF-I的檢測

IGF-I濃度采用雙抗體夾心酶聯(lián)免疫(ELISA)試劑盒測定。將試劑盒在室溫25 ℃下平衡20 min后,取出試劑盒中板條。取10 μL處理后的乳樣加入板條反應孔中,然后加入樣品稀釋液40 μL,再加入辣根過氧化物酶(HRP)標記的抗體液50 μL,用封板膜封住反應孔后,在37 ℃下保溫60 min。保溫結束后棄去反應孔中液體,將板條翻轉,在濾紙上拍干。在反應后的反應孔中加入350 μL洗滌液,靜置1 min后,棄去洗滌液,在濾紙上拍干,如此重復5次。在洗滌后的板條反應孔中加入底物A、B各50 μL,37 ℃避光保溫15 min。最后在反應孔中加入終止液50 μL,15 min內在450 nm波長處測定各孔吸光度。每個樣品重復3次。

1.3.3 IGF-I濃度的計算

將山羊IGF-I酶聯(lián)免疫試劑盒中濃度為10 ng/mL的IGF-I標準品用試劑盒中的標準品稀釋液依次稀釋成濃度為0、0.625、1.25、2.5、5、10 ng/mL的溶液。用1.3.2方法檢測不同濃度IGF-I標準品的吸光度,然后以IGF-I標準品的濃度為橫坐標(x),OD值為縱坐標(y),繪制IGF-I標準曲線,計算線性回歸方程(Y=0.137 1X+0.017 2,R2=0.991 8),按回歸方程計算測試樣品中IGF-I濃度。

1.4 實驗方法

1.4.1 巴氏殺菌對羊乳中IGF-I濃度的影響

將乳樣分別在65 ℃/30 min、72 ℃/15 s和85 ℃/10 s巴氏殺菌后,測定其IGF-I的濃度。

1.4.2 超高溫滅菌對羊乳中IGF-I濃度的影響

將乳樣分別在121 ℃/4 s、137 ℃/2 s超高溫滅菌后,測定其IGF-I的濃度。

1.4.3 均質對羊乳中IGF-I濃度的影響

在室溫條件下,取300 mL乳樣,分別在10、20、30、40 MPa的壓力下均質后,測定其IGF-I的濃度。

1.4.4 攪拌對羊乳中IGF-I濃度的影響

取50 mL乳樣,在室溫條件下,分別在800 r/min和3 500 r/min轉速下攪拌15 min,測定其IGF-I的濃度。

1.4.5 發(fā)酵對羊乳中IGF-I濃度的影響

取乳樣殺菌,冷卻到45 ℃后,分別接種保加利亞乳桿菌、嗜酸乳桿菌(LA)、副干酪乳桿菌(LP-01),按照酸奶的生產工藝分別進行發(fā)酵和后發(fā)酵,測定其IGF-I的濃度。

1.5 數(shù)據(jù)處理

試驗數(shù)據(jù)均采用DPS統(tǒng)計分析軟件進行處理,采用Duncan新復極差法對數(shù)據(jù)進行顯著性檢驗分析。

2 結果與分析

2.1 巴氏殺菌對羊乳中IGF-I濃度的影響

將乳樣分別在65 ℃/30 min、72 ℃/15 s和85 ℃/10 s巴氏殺菌后,測定其IGF-I的濃度,結果如圖1所示。

圖1 巴氏殺菌對羊乳IGF-I濃度的影響Fig.1 Effects of pasteurization on the concentration of IGF-I in goat milk注:不同小寫字母表示處理間差異顯著(P<0.05)。

由圖1可以看出,巴氏殺菌可使羊乳中IGF-I的濃度降低(P<0.05),但不同的殺菌條件對羊乳中IGF-I濃度的影響不同。在72 ℃/15 s巴氏殺菌條件下,羊乳中IGF-I濃度為(28.85±1.14) ng/mL,顯著高于65 ℃/30 min和85 ℃/10 s巴氏殺菌條件下的IGF-I濃度(P<0.05)。表明72 ℃/15 s巴氏殺菌條件能最大限度保護羊乳中IGF-I的濃度。巴氏殺菌強度取決于殺菌溫度和殺菌時間兩個方面[17],在65 ℃/30 min殺菌條件下,盡管殺菌溫度較低,但由于殺菌時間較長,乳中IGF-I的結構會遭到破壞,使其活性降低;在85 ℃/10 s殺菌條件下,盡管殺菌時間較短,但殺菌溫度較高,也會破壞IGF-I的結構,使其活性降低。

2.2 超高溫滅菌對羊乳中IGF-I濃度的影響

將乳樣分別在121 ℃/4 s、137 ℃/2 s超高溫滅菌后,測定其IGF-I的濃度,結果如圖2所示。

由圖2可以看出,超高溫滅菌可使羊乳中IGF-I的濃度降低(P<0.05)。采用121 ℃/4 s的超高溫滅菌條件時,羊乳中IGF-I濃度為(28.35±1.56) ng/mL,比對照組下降12.4%,而采用137 ℃/2 s滅菌條件時,羊乳中IGF-I濃度為(26.64±1.56) ng/mL,比對照組下降了17.7%,但這2種殺菌條件對羊乳中IGF-I濃度影響無明顯差異(P>0.05)。乳中IGF-I的濃度與其結構密切相關,IGF-I是一個分子質量為7.6 kDa的活性多肽,其結構中含有二硫鍵,熱處理會引起多肽結構中二硫鍵的斷裂,致使其結構遭到破壞,可能會造成IGF-I發(fā)生變異或變性等,導致羊乳中IGF-I濃度的下降[18-24]。

2.3 均質對羊乳中IGF-I濃度的影響

將羊乳分別在10、20、30、40 MPa的壓力下均質3 min后,測定其IGF-I的濃度,結果如圖3所示。

圖3 均質壓力對羊乳IGF-I濃度的影響Fig.3 Effects ofhomogenating pressure on the concentration of IGF-I in goat milk注:相同小寫字母表示處理間差異不顯著(P>0.05)。

由圖3可以看出,均質對羊乳中IGF-I的濃度基本無影響(P>0.05)。當均質壓力從10 MPa升高到40 MPa時,羊乳中IGF-I的濃度從(30.33±0.42) ng/mL變化到(30.53±1.26) ng/mL,隨著均質壓力的增大,IGF-I的濃度基本保持穩(wěn)定,變化幅度不大(P>0.05)。盡管隨著均質壓力的增大,乳中會逐漸形成大小均一且形狀規(guī)則的小顆粒,但由于IGF-I是一個分子質量僅為7.6 kDa的活性多肽,相較于乳中的蛋白質、脂類等其他物質,其分子質量較小[25],屬于小顆粒類物質,均質并不會對乳中IGF-I的空間結構造成影響,與云振宇等人的研究結果基本相似[26]。

2.4 攪拌對羊乳中IGF-I濃度的影響

將羊乳分別在800 r/min和3 500 r/min轉速下攪拌15 min,測定其IGF-I的濃度,結果如圖4所示。

圖4 攪拌對羊乳IGF-I濃度的影響Fig.4 Effects of agitation onthe concentration of IGF-I in goat milk注:相同小寫字母表示處理間差異不顯著(P>0.05)。

由圖4可以看出,攪拌對羊乳中IGF-I的濃度基本無影響(P>0.05)。當攪拌速度從低速升高到高速時,IGF-I的濃度從(30.31±1.90) ng/mL變化到(30.96±1.37) ng/mL,隨著攪拌速度的增大,IGF-I的濃度基本保持穩(wěn)定,變化幅度不大(P>0.05)。這表明攪拌可能并不會使IGF-I在乳中的分布發(fā)生變化,因此不會對乳中IGF-I的濃度有影響。

2.5 發(fā)酵劑對羊乳中IGF-I濃度的影響

采用接種保加利亞乳桿菌、嗜酸乳桿菌(LA)、副干酪乳桿菌(LP-01),按照酸奶的生產工藝分別制作酸奶,測定其IGF-I的濃度,結果如圖5所示。

由圖5可以看出,發(fā)酵會使羊乳中IGF-I的濃度顯著降低(P<0.01),但不同種發(fā)酵劑之間IGF的濃度差異不大(P>0.05)。當在羊乳中分別添加保加利亞乳桿菌、嗜酸乳桿菌、副干酪乳桿菌3種發(fā)酵劑,經發(fā)酵后,IGF-I的濃度從原料乳中的(32.37±1.38) ng/mL分別降低到(8.35±1.35)、(9.90±1.45)、(9.84±0.96) ng/mL,說明發(fā)酵可降低羊乳中IGF-I濃度。在羊乳發(fā)酵的過程中,羊乳中的IGF-I會被作為乳酸菌生長繁殖所需的營養(yǎng)物質而進行分解利用,導致乳中的IGF-I濃度急劇下降,而添加不同發(fā)酵劑的羊乳中,IGF-I的濃度有差異可能是由于不同發(fā)酵劑分解利用IGF-I作為其生長所需營養(yǎng)物質的能力不同而導致的[27]。

圖5 發(fā)酵劑對羊乳IGF-I濃度的影響Fig.5 Effects of fermentation onthe concentration of IGF-I in goat milk注:不同小寫字母表示處理間差異極顯著(P<0.01)。

3 結論

本文研究了加工方式對羊乳中IGF-I濃度的影響,結果表明,巴氏殺菌可使羊乳中IGF-I的濃度降低,但72 ℃/15 s巴氏殺菌對羊乳中IGF-I濃度的影響相對較??;137 ℃/2 s超高溫滅菌對羊乳中IGF-I濃度的影響較大;均質和攪拌對羊乳中IGF-I的濃度基本無影響;發(fā)酵會使羊乳中IGF-I的濃度顯著降低。因此,在開發(fā)富含IGF-I的功能性羊奶產品時,可選擇72 ℃/15 s的巴氏殺菌條件,生產中均質和攪拌兩種加工方式均可以采用,但不宜將其發(fā)酵成酸奶制品。

[1] FROESCH E R, SCHMID C, SCHWANDER J, et al.Actions of insulin-like growth factor[J]. Annual Review of Physiology, 1985, 47(1): 443-467.

[2] FRANCIS G L, UPTON F M, BALLARD F J, et al. Insulin-like growth factors 1 and 2 in bovine colostrums. Sequences and biological activities compared with those of a potent truncated form[J]. Biochemical Journal, 1988, 251(1): 95-103.

[3] YOUNG G P, TARANTO T M, JONAS H A, et al. Insulin-like growth factor and the developing and mature rat small intestine: receptor and biogical actions[J]. Digestion, 1990, 46(Suppl 2): 240-252.

[4] ZHANG Wei, FRANKEL W L, ADAMSON W T, et al. Insulin-like growth factors-I improves mucosal structure and function in transplanted rat small intestine[J]. Transplantation, 1995, 59(5): 755-761.

[5] ZUMKELLER W. Relationship between insulin-like growth factor-I and -II and IGF-binding proteins in milk and the gastrointestinal tract: growth and development of the gut[J]. Journal of Pediatric Gastroenterology and Nutrition, 1992, 15(4): 357-369.

[6] PAKKANEN R, AALTO J. Growth factors and antimicrobial factors of bovine colostrum[J]. International Dairy Journal, 1997, 7(5): 285-297.

[7] CLEMMONS D R, UNDERWOOD L E. Nutritional regulation of IGF-I and IGF binding proteins[J]. Annual Review of Nutrition, 1991, 11(1): 393-412.

[8] SIMPSON H L, UMPLEBY A M, RUSSELL-JONES D L. Insulin-like growth factor-I and diabetes.A review[J]. Growth Hormone and IGF Research, 1998, 8(2): 83-95.

[9] MCGRATH M F, GREGG B, FABELLAR A C, et al. Measurement of bovine somatotropin (bST) and insulin-like growth factor-1 (IGF-1) in bovine milk using an electrochemiluminescent assay[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2008, 56(16): 7 044-7 048

[10] XIAN C J, SHOUBRIGE C A, READ L C. Degradation of IGF-I in the adult rat gastrointestinal tract is limited by a specific antiserum or the dietary protein casein[J]. Journal of Endocrinology, 1995, 146(2): 215-225.

[11] KIMURA T, MURAKAWA Y, OHNO M, et al. Gastrointestinal absorption of recombinant human insulin- like growth factor-I in rats[J]. Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics, 1997, 283(2): 611-628.

[12] ELFSTRAND L, LINDMARK-MANSSON L, PAULSSON M, et al. Immunoglobulins,growth factors and growth hormone in bovine colostrum and the effects of processing[J]. International Dairy Journal, 2002, 12(11): 879-887.

[13] OLLIKAINEN P, MUURONEN K. Determination of insulin-like growth factor-1 and bovine insulin in raw milk and its casein and whey fractions after microfiltration and ultrafiltration[J]. International Dairy Journal, 2013, 28(2): 83-87.

[14] HANSEN P J. To be or not to be—determinants of embryonic survival following heat shock[J]. Theriogenology, 2007, 68(Suppl 2): 40-48.

[15] JOUSAN F D, HANSEN P J. Insulin-like growth factor-I as a survival factor for the bovine preimplantation embryo exposed to heat shock[J]. Biology of Reproduction, 2004, 71(5): 1 665-1 670.

[16] CASTIGLIEGO L, LI Xiao-ning, ARMANI A, et al. An immunoenzymatic assay to measure insulin-like growth factor 1 (IGF-1) in buffalo milk with an IGF binding protein blocking pre-treatment of the sample[J]. International Dairy Journal, 2011, 21(6): 421-426.

[17] 謝愛英, 黨亞麗, 李芳芳, 等. 不同巴氏殺菌條件對酸奶品質的影響[J]. 食品科學, 2011, 32(9): 14-17.

[18] OLLIKAINEN P, RIIHIMAKI A M. Effects of heat-treatment on insulin-like growth factor-1 in bovine milk[J]. International Dairy Journal, 2012, 23(2): 73-78.

[19] HIRAYAMA T, KATOH K, OBARA Y. Effects of heat exposure on nutrient digestibility, rumen contraction and hormone secretion in goats[J]. Animal Science Journal, 2004, 75(3): 237-243.

[20] DONOVAN S M, HINTZ R L, ROSENFELD R G. Insulin-like growth factors I and II and their binding proteins in human milk: effect of heat treatment on IGF and IGF binding protein stability[J]. Journal of Pediatric Gastroenterology and Nutrition, 1991, 13(3): 242-253.

[21] GOELZ R, HIHN E, HAMPRECHT K, et al. Effects of different CMV-heat-inactivation-methods on growth factors in human breast milk[J]. Pediatric Research, 2009, 65(4): 458-461.

[22] MCGUIRE M A, BEEDE D K, COLLIER R J, et al. Effects of acute thermal stress and amount of feed intake on concentrations of somatotropin, insulin-like growth factor (IGF)-I and IGF-II, and thyroid hormones in plasma of lactating Holstein cows[J]. Journal of Animal Science, 1991, 69(5): 2050-2056.

[23] SETTIVARI R S, SPAIN J N, ELLERSIECK M R, et al. Relationship of thermal status to productivity in heat-stressed dairy cows given recombinant bovine somatotropin[J]. Journal of Dairy Science, 2007, 90(3): 1265-1280.

[24] RHOADS M L, RHOADS R P, VANBAALE M J, et al. Effects of heat stress and plane of nutrition on lactating Holstein cows: I. Production, metabolism, and aspects of circulating somatotropin[J]. Journal of Dairy Science, 2009, 92(5): 1 986-1 997.

[25] 郭樺, 郭祀遠. 均質條件對無脂攪打奶油品質的影響[J]. 中國食品添加劑, 2009(1): 118-121.

[26] 云振宇, 蔡曉湛, 王安平, 等. 牛初乳IGF-I在常用乳品加工條件下的穩(wěn)定性研究[J]. 食品工業(yè)科技, 2009, 30(1): 72-74.

[27] KANG S H, KIM J U, IMM J Y, et al. The effects of dairy processes and storage on insulin-like growth factor-I (IGF-I) content milk and in model IGF-I-fortified dairy products[J]. International Dairy Journal, 2006, 89(2): 402-409.

Effects of processing modes on the concentration of insulin-like growth factor-I in goat milk

XU Lian-ying, HOU Yuan-lin, WANG Bi-ni, ZHANG Fu-xin*

(College of Food Engineering and Nutritional Science, Shaanxi Normal University, Xi’an 710119, China)

Effects of pasteurization, UHT, stirring, homogenizing and fermentation on the concentration of insulin-like growth factor-I (IGF-I) in goat milk were studied by double antibody sandwich enzyme-linked immunosorbent assay. The result showed that pasteurization caused the decrease of IGF-I concentration, but pasteurization at 72 ℃ for 15 s had a relatively mild effect on IGF-I. UHT at 137 ℃ for 2 s had a relatively strong effect on the concentration of IGF-I. Besides, homogenizing and stirring had little effect, and fermentation could significantly reduce the concentration of IGF-I. Therefore, when developing new functional foods rich with IGF-I, pasteurization at 72 ℃ for 15 s, homogenizing and stirring can be adopted, but fermentation products should be avoided.

goat milk; the concentration of insulin-like growth factor I (IGF-I); processing modes; double antibody sandwich enzyme-linked immunosorbent assay

10.13995/j.cnki.11-1802/ts.201702011

碩士研究生(張富新教授為通訊作者,E-mail: 757443051@qq.com)。

陜西省重大科技成果轉化引導專項(2016KTCG01-12)

2016-06-08,改回日期:2016-07-22

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