王澤宇 張亮 陳濤 黃澤楠 馮新民
間充質(zhì)干細(xì)胞(mesenchymal stem cells,MSCs)是源于中胚層的成體干細(xì)胞的總稱,目前發(fā)現(xiàn)骨髓、臍帶、脂肪中均存在自身MSCs[1-2]。MSCs可以在體外形成脂肪、軟骨、骨骼、肌肉和皮膚等,因此在組織再生與修復(fù)中具有巨大潛力[1-2]。細(xì)胞自噬(autophagy)是胞質(zhì)內(nèi)生物大分子和細(xì)胞器被具有雙層膜的自噬體包裹,并送入溶酶體進(jìn)行降解的一種過程,廣泛存在于真核細(xì)胞生物和哺乳動物[3-4]。
近年來,自噬已成為研究熱點(diǎn),越來越多的研究表明,自噬是調(diào)節(jié)對細(xì)胞應(yīng)激的適應(yīng)性反應(yīng)并有助于維持生理?xiàng)l件下細(xì)胞穩(wěn)態(tài)的關(guān)鍵過程。本文就自噬在MSCs研究中的進(jìn)展做一綜述。
自噬是在缺氧、營養(yǎng)剝奪、代謝、氧化應(yīng)激和蛋白毒性等應(yīng)激下,由自噬相關(guān)基因(autophagy related gene,ATG)調(diào)控,細(xì)胞經(jīng)由溶酶體分解細(xì)胞器和蛋白等物質(zhì)的過程[3-4]。在這個過程當(dāng)中有最重要的2個步驟:首先是胞內(nèi)的靶向物被膜結(jié)構(gòu)包裹形成自噬小泡;然后所形成的自噬小泡與溶酶體結(jié)合,形成自噬溶酶體對胞內(nèi)靶向物質(zhì)進(jìn)行降解。
自噬的分解代謝和降解過程可分為3種不同形式:(1)分子伴侶介導(dǎo)的自噬(chaperone-mediated autophagy,CMA):這種自噬對細(xì)胞器無降解作用,一般只降解胞漿中蛋白質(zhì)成分,具有高度選擇性,往往在長時間饑餓的條件下出現(xiàn)[4];(2)微自噬(microautophagy):通過溶酶體主動吞噬的方式將胞質(zhì)內(nèi)的物質(zhì)直接吞入溶酶體進(jìn)行降解,在饑餓或雷帕霉素誘導(dǎo)時發(fā)生[5];(3)巨自噬(macroautophagy):當(dāng)外界刺激信號作用到細(xì)胞時,細(xì)胞內(nèi)可形成吞噬泡的雙層膜結(jié)構(gòu),并擴(kuò)張延伸最后包裹細(xì)胞質(zhì)和部分待降解的細(xì)胞器及蛋白質(zhì)[6]。
自噬的主要功能如下[3-6]:(1)維持細(xì)胞穩(wěn)態(tài):吞噬并降解從而達(dá)到更新線粒體和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)等一些細(xì)胞器的目的,并維持細(xì)胞內(nèi)環(huán)境穩(wěn)定;(2)維持細(xì)胞存活:當(dāng)外界環(huán)境變化時,自噬可以為細(xì)胞提供所需的游離脂肪酸、核苷酸、氨基酸等一些可再利用物質(zhì),從而適應(yīng)外界環(huán)境的變化;(3)參與部分組織的重構(gòu):自噬掃除細(xì)胞內(nèi)細(xì)胞器及某些代謝產(chǎn)物,并幫助細(xì)胞重構(gòu);(4)誘導(dǎo)細(xì)胞死亡:當(dāng)自噬機(jī)制被激活并開啟后可主動引起細(xì)胞死亡。
在多種MSCs的增殖、分化及干性基因維持等方面自噬都發(fā)揮著重要調(diào)節(jié)作用。哺乳動物的微管相關(guān)蛋白輕鏈3(light chain 3,LC3)是酵母菌ATG8的同源蛋白,包含LC3-Ⅰ和LC3-Ⅱ形式,其中LC3-Ⅱ是目前發(fā)現(xiàn)的唯一定位在自噬體和自噬溶酶體膜上的蛋白質(zhì),其含量多少與自噬泡數(shù)量成正比,是較特異的自噬指標(biāo)[7]。在MSCs中,在LC3-Ⅰ轉(zhuǎn)化為LC3-Ⅱ的過程中證實(shí)存在自噬的大量激活,并且其激活可能依賴于抗細(xì)胞凋亡蛋白Bcl-X1[8]。因此,大量研究致力于各種細(xì)胞內(nèi)外刺激因素誘導(dǎo)的自噬在干細(xì)胞干性維持及存活中的作用[9]。
由糖尿病和代謝綜合征引起的高血糖會導(dǎo)致血管和器官功能障礙,已成為危害人類健康的主要問題。Zhao等[10]研究證實(shí)骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(bone marrow mesenchymal stem cells,BMSCs)可以顯著緩解胰腺INS-1細(xì)胞的葡萄糖源性的細(xì)胞毒性,但自噬的激活顯著抑制了BMSCs對β細(xì)胞的保護(hù)作用。此外,臍帶MSCs可能通過誘導(dǎo)受損細(xì)胞自噬加速糖尿病患者創(chuàng)面愈合過程[11]。Chang等[12]發(fā)現(xiàn)高糖可以誘導(dǎo)BMSCs衰老,導(dǎo)致細(xì)胞數(shù)目減少,從而影響干細(xì)胞微環(huán)境的功能使得造血功能受損;同時高糖誘導(dǎo)的BMSCs衰老可以釋放促炎性因子,從而誘發(fā)局部炎癥及組織損傷。
高糖環(huán)境下培養(yǎng)的BMSCs會出現(xiàn)細(xì)胞早衰、基因組不穩(wěn)定及端粒改變,自噬對處于應(yīng)激狀態(tài)的細(xì)胞具有保護(hù)作用[12]。通過上調(diào)Beclin-1、ATG5及ATG7表達(dá)實(shí)現(xiàn)的自噬激活,以及增加的LC3-Ⅱ轉(zhuǎn)化與BMSCs衰老相關(guān);通過3-甲基腺嘌呤抑制自噬可以減少細(xì)胞衰老。當(dāng)細(xì)胞衰老時,細(xì)胞在形態(tài)上變大變平,最終停止分裂;同時失去干細(xì)胞特征,從而影響干細(xì)胞的臨床應(yīng)用[13]。雖然在干細(xì)胞衰老過程中明確存在自噬過程,但自噬在干細(xì)胞穩(wěn)態(tài)及干性維持上的作用仍存在爭議。研究發(fā)現(xiàn)敲除ATG基因會加速細(xì)胞衰老,而致癌應(yīng)激可以通過激活自噬誘導(dǎo)干細(xì)胞衰老[14-15]。自噬是一種應(yīng)激適應(yīng)反應(yīng),可以避免細(xì)胞死亡及抑制細(xì)胞凋亡,構(gòu)成可替代的細(xì)胞死亡途徑。因此一定范圍的自噬可以預(yù)防細(xì)胞衰老,而過量的自噬激活則可縮短細(xì)胞壽命。
干細(xì)胞衰老的潛在分子機(jī)制,尤其是與自噬相互疊加的部分仍不明確。細(xì)胞周期調(diào)節(jié)因子及抑癌因子p53的增加與BMSCs的衰老相關(guān),并且可以調(diào)控BMSCs的細(xì)胞周期、細(xì)胞凋亡及基因穩(wěn)定性[16]。敲除p53基因?qū)е翷C3-Ⅱ轉(zhuǎn)化減少及mTOR表達(dá)上調(diào),因此p53基因是BMSCs的體外擴(kuò)增自噬過程中必不可少的因素[17]。盡管目前細(xì)胞衰老方面的研究已取得重要進(jìn)展,但在細(xì)胞壽命研究中的自噬及具體的分子機(jī)制仍有待于進(jìn)一步研究。
為維持干細(xì)胞的干性,干細(xì)胞通過建立局部低氧微環(huán)境來主動延緩衰老[18]?;钚匝酰╮eactive oxygen species,ROS)的主要來源是受損的線粒體,可以通過干細(xì)胞的線粒體自噬途徑去除ROS[19]。研究表明饑餓及雷帕霉素誘導(dǎo)的自噬可以減少由放射損傷導(dǎo)致的ROS及DNA損傷,從而實(shí)現(xiàn)干細(xì)胞的干性維持;而抑制自噬將導(dǎo)致ROS集聚及DNA損傷,最終導(dǎo)致干細(xì)胞的干性丟失[20]。另外,對于放射損傷對MSCs的影響,研究發(fā)現(xiàn)抑制放射誘導(dǎo)的自噬后,BMSCs凋亡明顯增加;增強(qiáng)放射誘導(dǎo)的自噬后,盡管凋亡比例未下降,但自噬向凋亡的轉(zhuǎn)化被拮抗,因而自噬可能對BMSCs具有放射保護(hù)作用[21]。因此自噬增加可能減少氧化應(yīng)激等損傷造成的MSCs凋亡,延長干細(xì)胞的存活。
在調(diào)節(jié)干細(xì)胞存活及維持干細(xì)胞干性的細(xì)胞外因素中,干細(xì)胞微環(huán)境的理化性質(zhì)如氧張力、滲透壓及pH值對干細(xì)胞的生物學(xué)行為及分化具有重要影響[22]。低氧誘導(dǎo)因子1(hypoxia-inducible factor 1,HIF-1)是細(xì)胞適應(yīng)低氧環(huán)境的關(guān)鍵性調(diào)節(jié)因子[23],通過影響血管的形成和功能改善局部微環(huán)境,通過糖酵解途徑調(diào)節(jié)O2的利用。
低氧可以通過AMPK/mTOR信號通路激活BMSCs的自噬。在自噬抑制劑3甲基腺嘌呤存在下,干細(xì)胞自噬的激活將會導(dǎo)致TUNEL陽性細(xì)胞減少,從而出現(xiàn)低氧誘導(dǎo)的凋亡,而雷帕霉素則可促進(jìn)自噬[8,24-25]。但Zhang等[26]研究發(fā)現(xiàn),在3甲基腺嘌呤存在下低氧誘導(dǎo)的凋亡增加,而雷帕霉素則可減少自噬,說明自噬可能在低氧誘導(dǎo)的MSCs凋亡中發(fā)揮保護(hù)作用;另有研究表明低氧通過自噬及apelin(一種線粒體源性的神經(jīng)肽)促進(jìn)BMSCs增殖[27]。以上研究結(jié)果不同的原因可能是由于干細(xì)胞的部位特異性決定的,如脛骨來源的BMSCs具有更強(qiáng)的干細(xì)胞干性基因表面標(biāo)志Nanog、Oct-4 及Sox2表達(dá),在常氧及低氧狀態(tài)下具有更強(qiáng)的自噬和抗衰老能力[28]。
干細(xì)胞微環(huán)境的pH值影響MSCs的增殖、分化及旁分泌活性。生理?xiàng)l件下外周血pH值約為7.35 ~ 7.4,而細(xì)胞內(nèi)液及細(xì)胞外液pH值較低,且pH值容易因細(xì)胞代謝而改變。細(xì)胞糖酵解和氧化代謝增加產(chǎn)生大量碳酸和乳酸,導(dǎo)致細(xì)胞外酸中毒,細(xì)胞將代謝產(chǎn)生的酸性物質(zhì)排出細(xì)胞外維持細(xì)胞內(nèi)pH值在正常范圍。因此在細(xì)胞膜內(nèi)外出現(xiàn)了pH梯度變化:細(xì)胞外pH值低于細(xì)胞內(nèi)pH[29]值。研究發(fā)現(xiàn)腫瘤細(xì)胞可以通過自噬機(jī)制適應(yīng)酸中毒[30]。雖然細(xì)胞外酸中毒可以促進(jìn)腫瘤干細(xì)胞的干細(xì)胞表型維持,但局部酸性環(huán)境能夠誘導(dǎo)正常干細(xì)胞維持干性未被證實(shí)。因此,細(xì)胞外酸中毒與MSCs生物學(xué)行為的關(guān)系仍有待于進(jìn)一步研究。
酸性微環(huán)境可以調(diào)節(jié)MSCs的干性及再生能力。自噬與干細(xì)胞的干性特征、細(xì)胞衰老及死亡的調(diào)節(jié)相關(guān),而酸性環(huán)境可以誘導(dǎo)自噬發(fā)生[31]。Sbrana等[32]在酸性條件下培養(yǎng)MSCs,通過檢測pH6.8的酸性環(huán)境或pH7.4中性環(huán)境下LC3-Ⅱ、p62及Beclin1等典型的自噬標(biāo)志蛋白的表達(dá)來評估BMSCs的自噬,結(jié)果發(fā)現(xiàn)兩種培養(yǎng)環(huán)境中均檢測到BMSCs的自噬,且兩種環(huán)境下無明顯差別,說明自噬并不是MSCs面對酸性微環(huán)境的主要調(diào)節(jié)適應(yīng)機(jī)制。
成骨細(xì)胞系的MSCs通常具備成骨、成軟骨及成脂分化能力。不同局部微環(huán)境(細(xì)胞形態(tài)、細(xì)胞骨架張力、細(xì)胞黏附性及機(jī)械或結(jié)構(gòu)細(xì)胞性質(zhì))可以調(diào)節(jié)干細(xì)胞向不同譜系細(xì)胞分化。低密度干細(xì)胞傾向于向成骨細(xì)胞分化,高密度細(xì)胞使得細(xì)胞易凝結(jié)并向成脂細(xì)胞分化。細(xì)胞形態(tài)通過調(diào)節(jié)內(nèi)源性Rho GTP酶(RhoA)活性來調(diào)節(jié)成脂—成骨分化轉(zhuǎn)換,RhoA陰性使MSCs向脂肪細(xì)胞轉(zhuǎn)化,而RhoA陽性則向成骨細(xì)胞分化[33]。
自噬在MSCs的分化(尤其是成骨分化)中發(fā)揮重要作用。Nuschke等[34]發(fā)現(xiàn)在未分化的MSCs中存在未退變的自噬泡的集聚及少量自噬轉(zhuǎn)化,而促進(jìn)成骨分化則可以使得自噬轉(zhuǎn)化持續(xù)增加。因此,自噬可能在MSCs的成骨分化調(diào)控中發(fā)揮關(guān)鍵作用。通過牙髓MSCs的AMP依賴的蛋白激酶(adenosine 5-monophosphate-activated protein kinase,AMPK)、mTOR、蛋白激酶B(Akt)和自噬標(biāo)記物等基因敲除的研究發(fā)現(xiàn),MSCs的成骨分化調(diào)控與早期mTOR抑制及Akt/mTOR信號軸的晚期激活有關(guān)[35]。特異AT序列結(jié)合蛋白2(SATB2)通過上調(diào)多能基因及自噬相關(guān)基因可以促進(jìn)BMSCs的成骨分化和骨缺損再生,而多能基因及自噬相關(guān)基因又可以激活雷帕霉素信號通路[28]。盡管mTOR信號可能影響MSCs的成骨分化,但雷帕霉素是否可以降低或增加成骨分化的結(jié)果存在爭論。雷帕霉素對大鼠BMSCs無自發(fā)的成骨作用,但可以抑制地塞米松誘發(fā)的成骨分化[36]。
在MSCs的成脂分化研究方面,已知再生障礙性貧血患者BMSCs可由雷帕霉素誘導(dǎo)發(fā)生自噬和凋亡,并且明顯促進(jìn)G1期細(xì)胞周期阻滯,從而抑制細(xì)胞增殖和降低成脂分化,這些現(xiàn)象的機(jī)制或許與雷帕霉素通過抑制mTOR信號通路從而激活自噬有關(guān)[37]。在MSCs早期分化期間改變自噬體平衡的藥物治療可以導(dǎo)致MSCs成脂分化效率的變化,雷帕霉素(自噬激活劑)處理可以抑制脂肪細(xì)胞形成,巴弗洛霉素(自噬抑制劑)處理可以加速脂肪積累[34]。
MSCs通過自分泌方式分泌的各種生長因子很大程度上可以促進(jìn)MSCs的增殖和分化潛能。其中,成纖維細(xì)胞生長因子(fi broblast growth factor,F(xiàn)GF)、表皮細(xì)胞生長因子(epidermal growth factor,EGF)和肝細(xì)胞生長因子(hepatocyte growth factor,HGF)可以促進(jìn)MSCs的增殖,而HGF可以促進(jìn)MSCs的成脂分化[31]。
研究發(fā)現(xiàn)炎癥微環(huán)境可以影響牙髓MSCs促進(jìn)的血管化功能,其機(jī)制可能是自噬促進(jìn)牙髓骨髓MSCs中的LC3表達(dá),細(xì)胞質(zhì)膜上LC3-Ⅱ增加激活Raf-MEK-ERK信號通路,促使ERK進(jìn)一步發(fā)生磷酸化,并加速牙髓MSCs旁分泌血管內(nèi)皮細(xì)胞生長因子,從而使得血管內(nèi)皮細(xì)胞生長因子促進(jìn)內(nèi)皮細(xì)胞發(fā)生血管化,進(jìn)而促進(jìn)傷口的愈合[38]。Ni等[39]發(fā)現(xiàn)過表達(dá)血管內(nèi)皮細(xì)胞生長因子及Bcl-2,可以通過抑制細(xì)胞凋亡及自噬,增強(qiáng)細(xì)胞的旁分泌途徑來保護(hù)缺血環(huán)境下的MSCs。
有研究表明,脂肪干細(xì)胞(adipose derived stem cells,ADSCs)在一定外界條件下可分化為軟骨細(xì)胞、成骨細(xì)胞、神經(jīng)細(xì)胞等。雷帕霉素可通過誘導(dǎo)細(xì)胞自噬水平增加明顯提高ADSCs向軟骨細(xì)胞的分化能力,并且自噬相關(guān)基因Atg5被抑制后ADSCs向軟骨細(xì)胞的分化能力顯著下降[40]。另一方面,在臍帶MSCs中自噬可促進(jìn)CXCR4分泌,通過少量的免疫抑制劑他克莫司及西羅莫司抑制Pl3K/AKt/mTOR信號通路并激活自噬系統(tǒng)。此時,Becline1、Atg5及LC3B自噬相關(guān)蛋白表達(dá)明顯增加,最終導(dǎo)致CXCR4分泌上調(diào)[41]。
自噬在MSCs干性維持的作用為更好的理解及維持干細(xì)胞的活力指明了新的方向,說明MSCs在組織修復(fù)及再生中的應(yīng)用具有巨大潛力。但對于自噬和MSCs之間的關(guān)系及其調(diào)控的分子機(jī)制仍尚不清楚,有待于進(jìn)一步研究,而這些研究必將會對MSCs的臨床應(yīng)用提供重要的價值。
1 肖漓, 白劍, 陳文, 等. 臍帶間充質(zhì)干細(xì)胞外泌體的分離和鑒定[J/CD]. 中華細(xì)胞與干細(xì)胞雜志(電子版), 2016, 6(4):236-239.
2 馬錫慧, 肖漓, 馮凱, 等. 人臍帶和骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞體外分離培養(yǎng)及生物學(xué)特性比較[J/CD]. 中華細(xì)胞與干細(xì)胞雜志(電子版), 2015,5(2):10-13.
3 Wang S, Xia P, Rehm M, et al. Autophagy and cell reprogramming[J].Cell Mol Life Sci, 2015, 72(9):1699-1713.
4 孫英煥, 吳茜, 李春蒔, 等. 巨自噬及分子伴侶介導(dǎo)自噬在類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎中的相互作用及其聯(lián)系[J]. 中國免疫學(xué)雜志, 2016,32(10):1566-1569.
5 Lapaquette P, Guzzo J, Bretillon L, et al. Cellular and molecular connections between autophagy and inflammation[J]. Mediators Infl amm, 2015, 2015:398483.
6 Klionsky DJ, Schulman BA. Dynamic regulation of macroautophagy by distinctive ubiquitin-like proteins[J]. Nat Struct Mol Biol, 2014,21(4):336-345.
7 Lee YK, Lee JA. Role of the mammalian ATG8/LC3 family in autophagy: differential and compensatory roles in the spatiotemporal regulation of autophagy[J]. BMB Rep, 2016, 49(8):424-430.
8 Oliver L, Hue E, Rossignol J, et al. Distinct roles of Bcl-2 and Bcl-Xl in the apoptosis of human bone marrow mesenchymal stem cells during differentiation[J]. PLoS One, 2011, 6(5):e19820.
9 Molaei S, Roudkenar MH, Amiri F, et al. Down-regulation of the autophagy gene, ATG7, protects bone marrow-derived mesenchymal stem cells from stressful conditions[J]. Blood Res, 2015, 50(2):80-86.
10 Zhao K, Hao H, Liu J, et al. Bone marrow-derived mesenchymal stem cells ameliorate chronic high glucose-induced β-cell injury through modulation of autophagy[J]. Cell Death Dis, 2015, 6(9):e1885.
11 Han YF, Sun TJ, Han YQ, et al. Clinical perspectives on mesenchymal stem cells promoting wound healing in diabetes mellitus patients by inducing autophagy[J]. Eur Rev Med Pharmacol Sci, 2015,19(14):2666-2670.
12 Chang TC, Hsu MF, Wu KK. High glucose induces bone marrowderived mesenchymal stem cell senescence by upregulating autophagy[J]. PLoS One, 2015, 10(5):e0126537.
13 馬洋, 劉文佳, 戚朦, 等. 自然衰老小鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞增齡性改變的研究[J]. 牙體牙髓牙周病學(xué)雜志, 2014, 24(4):187-191.
14 Capasso S, Alessio N, Squillaro T, et al. Changes in autophagy,proteasome activity and metabolism to determine a specifi c signature for acute and chronic senescent mesenchymal stromal cells[J].Oncotarget, 2015, 6(37):39457-39468.
15 Madeo F, Zimmermann A, Maiuri MC, et al. Essential role for autophagy in Life span extension[J]. J Clin Invest, 2015, 125(1):85-93.16 Radogna F, Dicato M, Diederich M. Cancer-type-specific crosstalk between autophagy, necroptosis and apoptosis as a pharmacological target[J]. Biochem Pharmacol, 2015, 94(1):1-11.
17 Zheng Y, Lei Y, Hu C, et al. p53 regulates autophagic activity in senescent rat mesenchymal stromal cells[J]. Exp Gerontol, 2016, 75:64-71.
18 Angelova PR, Abramov AY. Functional role of mitochondrial reactive Oxygen species in physiology[J]. Free Radic Biol Med, 2016, 100:81-85.
19 Ghanta S, Tsoyi K, Liu X, et al. Mesenchymal stromal cells defi cient in autophagy proteins are susceptible to oxidative injury and mitochondrial dysfunction[J]. Am J Respir Cell Mol Biol, 2017, 56(3):300-309.
20 Chen H, Ge HA, Wu GB, et al. Autophagy prevents oxidative Stress-Induced loss of Self-Renewal capacity and stemness in human tendon stem cells by reducing ROS accumulation[J]. Cell Physiol Biochem,2016, 39(6):2227-2238.
21 陳哲, 劉潔, 張斌. 自噬與骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞放射損傷的關(guān)系[J]. 中國組織工程研究, 2014, 18(28):4474-4478.
22 Robey PG, Kuznetsov SA, Riminucci M, et al. Bone marrow stromal cell assays:in vitroandin vivo[J]. Methods Mol Biol, 2014, 1130:279-293.
23 Ratcliffe P, Koivunen P, Myllyharju J, et al. Update on hypoxiainducible factors and hydroxylases in Oxygen regulatory pathways:from physiology to therapeutics[J]. Hypoxia (Auckland, N.Z.), 2017,5(5):11-20.
24 Zhang Z, Yang M, Wang Y, et al. Autophagy regulates the apoptosis of bone marrow-derived mesenchymal stem cells under hypoxic condition via AMP-activated protein kinase/mammalian target of rapamycin pathway[J]. Cell Biol Int, 2016, 40(6):671-685.
25 Li N, Zhang Q, Qian H, et al. Atorvastatin induces autophagy of mesenchymal stem cells under hypoxia and serum deprivation conditions by activating the mitogen-activated protein kinase/extracellular signal-regulated kinase pathway[J]. Chin Med J (Engl),2014, 127(6):1046-1051.
26 Zhang Q, Yang YJ, Wang H, et al. Autophagy activation: a novel mechanism of atorvastatin to protect mesenchymal stem cells from hypoxia and serum deprivation via AMP-Activated protein kinase/mammalian target of rapamycin pathway[J]. Stem Cells Dev, 2012,21(8):1321-1332.
27 Li L, Li L, Zhang Z, et al. Hypoxia promotes bone marrowderived mesenchymal stem cell proliferation through apelin/APJ/autophagy pathway[J]. Acta Biochim Biophys Sin (Shanghai), 2015,47(5):362-367.
28 Dong W, Zhang P, Fu Y, et al. Roles of SATB2 in site-specifi c stemness,autophagy and senescence of bone marrow mesenchymal stem cells[J].J Cell Physiol, 2015, 230(3):680-690.
29 Han L, Liu M, Ye D, et al. Tumor cell membrane-targeting pH-dependent electron donor-acceptor fluorescence systems with low background signals[J]. Biomaterials, 2014, 35(9):2952-2960.
30 Pellegrini P, Dyczynski M, Sbrana FV, et al. Tumor acidosis enhances cytotoxic effects and autophagy inhibition by salinomycin on cancer cell lines and cancer stem cells[J]. Oncotarget, 2016,7(24):35703-35723.
31 Eom YW, Oh JE, Lee JI, et al. The role of growth factors in maintenance of stemness in bone marrow-derived mesenchymal stem cells[J]. Biochem Biophys Res Commun, 2014, 445(1):16-22.
32 Sbrana FV, Cortini M, Avnet S, et al. The role of autophagy in the maintenance of stemness and differentiation of mesenchymal stem cells[J]. Stem Cell Rev, 2016, 12(6):621-633.
33 Ejaz A, Mitterberger MC, Lu Z, et al. Weight loss upregulates the small GTPase DIRAS3 in human white adipose progenitor cells, which negatively regulates adipogenesis and activates autophagy via AktmTOR inhibition[J]. EBioMedicine, 2016, 6:149-161.
34 Nuschke A, Rodrigues M, Stolz DB, et al. Human mesenchymal stem cells/multipotent stromal cells consume accumulated autophagosomes early in differentiation[J]. Stem Cell Res Ther, 2014, 5(6):140.
35 陳海璇. 干細(xì)胞因子SCF通過抑制AKT/mTOR信號通路促進(jìn)脂肪干細(xì)胞的成骨分化[D]. 廣州: 暨南大學(xué), 2016.
36 Lee KW, Yook JY, Son MY, et al. Rapamycin promotes the osteoblastic differentiation of human embryonic stem cells by blocking the mTOR pathway and stimulating the BMP/Smad pathway[J]. Stem Cells Dev,2010, 19(4):557-568.
37 王昕, 馬鳳霞, 盧士紅, 等. 雷帕霉素對再生障礙性貧血患者骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞生物學(xué)功能的影響[J]. 中國實(shí)驗(yàn)血液學(xué)雜志, 2014,22(3):762-766.
38 安瑩. 自噬調(diào)控人頜骨骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞旁分泌功能的機(jī)制研究[D]. 西安: 第四軍醫(yī)大學(xué), 2016 .
39 Ni X, Ou C, Guo J, et al. Lentiviral vector-mediated co-overexpression of VEGF and Bcl-2 improves mesenchymal stem cell survival and enhances paracrine effectsin vitro[J]. Int J Mol Med, 2017,40(2):418-426.
40 陳全剛, 陳仁金, 袁紅花. 細(xì)胞自噬促進(jìn)脂肪干細(xì)胞向軟骨細(xì)胞分化[J]. 黑龍江醫(yī)藥科學(xué), 2016, 39(6):1-3, 8.
41 雷艷, 趙紅州, 李榮春, 等. 低劑量免疫抑制劑誘導(dǎo)人臍帶間充質(zhì)干細(xì)胞自噬并促進(jìn)CXCR4的分泌[J]. 中華器官移植雜志, 2017,38(1):39-44.