1楊麗娟,1蒲曉亞,1杜旭升, 2王廷璞*,2薛志強(qiáng)
(甘肅省產(chǎn)品質(zhì)量監(jiān)督檢驗(yàn)東部分中心2,天水師范學(xué)院1,甘肅 天水 74 001;)
航天紫花苜蓿葉蛋白正交提取工藝模式的研究
1楊麗娟,1蒲曉亞,1杜旭升, 2王廷璞*,2薛志強(qiáng)
(甘肅省產(chǎn)品質(zhì)量監(jiān)督檢驗(yàn)東部分中心2,天水師范學(xué)院1,甘肅 天水 74 001;)
優(yōu)選航天紫花苜蓿葉蛋白的提取工藝條件,對(duì)不同品系的苜蓿葉蛋白進(jìn)行差異性分析。用單因素極差分析,280nm紫外光測(cè)測(cè)定并計(jì)算提取率,L9 (33) 正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)確定最佳提取工藝。 結(jié)果表明,通過(guò)單因素實(shí)驗(yàn)確定的各因素影響能力大小為:pH>浸泡時(shí)間>料液比>溫度,正交實(shí)驗(yàn)最佳組合為A2B1C1。結(jié)果中三得利(蘭州)對(duì)照和MA-7中葉蛋白的含量相對(duì)較高,分別為21.91%和19.42%。
航天;紫花苜蓿;葉蛋白;正交設(shè)計(jì)
紫花苜蓿(Medicago sativa L.)又名苜蓿,紫苜蓿,素有“牧草之王”的美稱。紫花苜蓿在我國(guó)已有兩千多年的栽培歷史,全國(guó)各地均有種植,但主要分布在西北和華北地區(qū)[1]。苜蓿有許多營(yíng)業(yè)價(jià)值,其粗蛋白含量通常在22%左右,含有20種以上的氨基酸[2]。航天育種紫花苜蓿各方面因素均高于普通紫花苜蓿,本實(shí)驗(yàn)對(duì)航天紫花苜蓿中葉蛋白進(jìn)行正交提取工藝設(shè)計(jì),優(yōu)選出最佳提取方案,為今后的我國(guó)航天紫花苜蓿研究做了一些借鑒。
1.1 材料
1.1.1 藥材
航天紫花苜蓿(采自天水市國(guó)家級(jí)高新農(nóng)業(yè)園區(qū)神州綠鵬航天育種基地)。
1.1.2 儀器
UV-9200型紫外分光光度計(jì)(北京瑞利分析儀器公司)、HJ-3型恒溫磁力攪拌器(金壇市科興儀器廠)、PHS-3D型精密PH計(jì)(上海精密科學(xué)儀器有限公司)、TDZ5-W型多管架自動(dòng)平衡離心機(jī)(湘儀離心機(jī)儀器有限公司)、TG16-W型微量高速離心機(jī)(湘儀離心機(jī)儀器有限公司)、AUY220型電子天平、電熱恒溫水浴鍋、漩渦混合器等。
1.1.3 試劑
磷酸氫二鈉、磷酸二氫鉀、硫酸銨、牛血清白蛋白,其余試劑均為國(guó)產(chǎn)或進(jìn)口分析純。
1.2 方法
1.2.1 標(biāo)準(zhǔn)溶液配制及曲線繪制
準(zhǔn)確稱取25mg牛血清白蛋白,用無(wú)離子水定容至25mL,配制成1mg/mL的溶液[3]。另取12支試管,配制標(biāo)準(zhǔn)溶液梯度為0.00mg/mL、0.20mg/mL、0.40mg/mL、0.60mg/mL、0.80mg/mL、1.00mg/mL,平行做兩份。于280nm下測(cè)光吸值,以牛血清白蛋白的含量為橫坐標(biāo),OD280nm值為縱坐標(biāo),做出牛血清白蛋白標(biāo)準(zhǔn)曲線,得其回歸方程為:Y=0.3109X-0.0071,R2=0.9984。
1.2.2 單因素實(shí)驗(yàn)
通過(guò)查閱資料和單因素預(yù)實(shí)驗(yàn),初步擬選出影響苜蓿葉蛋白提取率的主要因素有:pH、溫度、料液比、浸泡時(shí)間,進(jìn)行以下實(shí)驗(yàn)[4]。
稱取5份樣品,每份2g,加入石英砂研磨,按料液比1∶7加入pH=5.0、6.0、7.0、8.0、9.0緩沖液[5],調(diào)pH=7.0,浸泡40min。40min后,在多管架自動(dòng)平衡離心機(jī)4000r/min離心10min,取上清液于兩個(gè)5mL離心管中,在微量高速離心機(jī)中12000r/min離心5min。將上清液轉(zhuǎn)入另兩個(gè)離心管中,按照硫酸銨飽和度50、60、70、80%分級(jí)分離苜蓿葉蛋白,將每次所得蛋白再溶解,總共體積為4mL,裝入同一離心管中,吸取0.4mL加入新的離心管中,再加入3.6mL的pH=7.0的緩沖液。經(jīng)測(cè)定OD280后固定pH,再依次選取15、20、25、30、35℃恒溫水浴加熱,1∶4、1∶7、1∶10、1∶13、1∶16 mL/g料液比,0.5、1.0、1.5、2.0、2.5h浸泡時(shí)間,逐次選取一個(gè)單因素后再固定,直至選取結(jié)束。
1.2.3 不同品系航天育種紫花苜蓿葉蛋白的提取
按照前面單因素和正交設(shè)計(jì)所確定的工藝來(lái)提取紫花苜蓿葉蛋白。在待測(cè)的40個(gè)樣品中,選擇長(zhǎng)勢(shì)較好的26個(gè)樣品,清洗后晾干,準(zhǔn)確稱取2.00g,研磨,裝入寫(xiě)有標(biāo)簽的50mL的離心管,按料液比1:7加入Ph=5.0的緩沖液14mlL,浸泡2h。平衡后,在多管架自動(dòng)平衡離心機(jī)4000r/min離心10min,取上清液于兩個(gè)5mL離心管中,微量高速離心機(jī)中12000r/min離心5 min,將上清液轉(zhuǎn)到另兩支離心管中,按硫酸銨飽和度50%、60%、70%、80%分級(jí)分離苜蓿葉蛋白,將每次所得蛋白再溶解,使總共體積增至4mL,裝入同一離心管中,吸取0.4mLz轉(zhuǎn)入新的離心管中,再加入3.6mL的 pH=5.0的緩沖液,測(cè)其OD280。
2.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制
牛血清白蛋白標(biāo)準(zhǔn)曲線,見(jiàn)圖1所示。
圖1 牛血清白蛋白標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.1 The standard curve of BSA
由上圖可知,牛血清白蛋白在0-1.0mg/mL范圍內(nèi)呈良好的線性關(guān)系。
2.2 單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果與分析
2.2.1 不同pH值對(duì)苜蓿葉蛋白的提取率的影響
表1 不同pH值對(duì)提取效果的影響Tab.1 The different pH for the extraction effect
由表1可知,苜蓿葉蛋白的提取率在pH=5.0、6.0和7.0時(shí)提取率較高,且在pH=6.0時(shí)提取率最高,結(jié)合實(shí)驗(yàn)時(shí)的觀察記錄,在pH=5.0和pH=6.0時(shí)所提的葉蛋白含的綠色粉末非常少,故pH在6.0時(shí)提取效果較好。
2.2.1 不同溫度對(duì)苜蓿葉蛋白的提取率的影響
表2 不同溫度對(duì)提取效果的影響Tab.2 The different temperature for the extraction effect
由表2可知,溫度對(duì)提取率的影響不顯著,在30℃時(shí)提取率最小,所以一般選擇室溫即可,而且加熱會(huì)增加實(shí)驗(yàn)的成本,加熱將耗費(fèi)大量的電。因此不選擇加熱或保溫,一般在室溫下進(jìn)行。
2.2.3 不同料液比對(duì)苜蓿葉蛋白的提取率的影響
表3 不同液料比對(duì)提取效果的影響Tab.3 The different liquid to solid ratio for the extraction effect
由表3可知,苜蓿葉蛋白的提取率在料液比1:7時(shí)最大,和參考文獻(xiàn)一致[6]。隨著料液比增大提取率不再增加,緩沖液加入太少,葉蛋白不能充分溶解,加緩沖液加入太多,又會(huì)增加提取體積,加大工作量,降低生產(chǎn)效率。故料液比在1:7~1:13時(shí)最佳。
2.2.4 不同浸泡時(shí)間對(duì)苜蓿葉蛋白的提取率的影響
表4 不同浸泡時(shí)間對(duì)提取效果的影響Tab. 4 The different macerating time for the extraction effect
由表4可知,在浸泡時(shí)間為0.5h、2.0h和2.5h下的提取率較高,從經(jīng)濟(jì)的角度考慮,0.5h的提取率和其他的水平差異不太顯著,故選擇浸泡時(shí)間為0.5h較為理想。
2.3 正交實(shí)驗(yàn)的結(jié)果與分析
將優(yōu)選后的pH、料液比、浸泡時(shí)間等三種因素,采用L9(33)正交表,進(jìn)行實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì),并通過(guò)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算提取液中蛋白的含量,其結(jié)果見(jiàn)表5-7所示[7]。
表5 正交提取實(shí)驗(yàn)因素水平表Tab. 5 The factor level table of orthogonal extraction
表6 正交提取實(shí)驗(yàn)結(jié)果分析表Tab.6 The result analysis table of orthogonal extraction實(shí)驗(yàn)號(hào)
表7 正交提取實(shí)驗(yàn)方差分析表Tab.7 The variance analytical table of orthogonal extraction
從上表中可以看出,影響蛋白得率的因素主次順序?yàn)椋毫弦罕?pH>浸泡時(shí)間,各因素差異均呈顯著(P<0.05)[8]。其正交實(shí)驗(yàn)最佳提取工藝為:A2B1C1,即浸泡時(shí)間2.0h、料液比1:7、pH=5.0。
4 不同品系航天育種紫花苜蓿葉蛋白的提取結(jié)果
不同品系航天育種紫花苜蓿葉蛋白的提取結(jié)果見(jiàn)圖2所示。
圖2 不同品系苜蓿葉蛋白提取率Fig. 2 Alfalfa leaf protein extraction rate of different strains
經(jīng)過(guò)對(duì)不同品系航天育種紫花苜蓿葉蛋白的測(cè)定可知,三得利(蘭州)和MA-7中所提的蛋白含量相對(duì)較高,分別為21.91%和19.42%。
在正交實(shí)驗(yàn)中,pH并不是影響實(shí)驗(yàn)結(jié)果的最大因素,而料液比影響則比較顯著,說(shuō)明在各因素共同作用時(shí),與單因素的情況不同,存在一定的協(xié)同效應(yīng)。提取苜蓿葉蛋白的方法多為酸熱法,即通過(guò)調(diào)節(jié)苜蓿葉蛋白的等電點(diǎn)和加熱,使蛋白質(zhì)變性以利于測(cè)定,本實(shí)驗(yàn)使用硫酸銨沉淀蛋白,在蛋白質(zhì)不變性的情況下提取到有活性的蛋白質(zhì),操作簡(jiǎn)單,花費(fèi)較少。通過(guò)正交提取實(shí)驗(yàn),得到了航天育種紫花苜蓿葉蛋白的最佳提取工藝為:浸泡時(shí)間2.0h、料液比1:7、pH=5.0,提取不同品系航天育種紫花苜蓿葉蛋白后發(fā)現(xiàn),三得利(蘭州)和MA-7葉蛋白的含量相對(duì)較高,分別為21.91%和19.42%。本實(shí)驗(yàn)為我國(guó)航天育種紫花苜蓿的深層次開(kāi)發(fā)和利用提供了一定的理論參考。
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Study on Orthogonal Design Mode of Leaf Protein from Space Breeding Alfalfa
YANG Lijuan2,PU Xiaoya2,WANG Tingpu1*, XUE ZhiQiang1
(Product Quality Supervision and Inspect Center of The Eastern Branch of Gansu2, Tianshui Normal University1, Tianshui Gansu, 741001, China)
To select the alfalfa leaf protein extraction process conditions, To different strains of alfalfa leaf protein use difference analysis. After use the single factor analysis of range, measuring leaf protein extraction rate in 280nm by uv spectrophotometry, identify the best extraction technology by the result of L9(33) orthogonal experiment design. The results show that through the single factor to determine the influence of various factors are pH > macerating time > Liquid to solid ratio >temperature,the best combination of orthogonal test is A2B1C1. Conclusion: Through the experiments of San Deli (Lan Zhou) contrast and MA- 7 extracted relatively high leaf protein, 21.91% and 19.42% respectively.
space flight; alfalfa; leaf protein; orthogonal design