国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

生姜中Salmonella enterica的分離與宿主氧化應(yīng)答

2016-11-14 08:38李泊寧劉奕清
食品科學(xué) 2016年7期
關(guān)鍵詞:姜塊沙門氏菌致病菌

黃 科,李泊寧,羅 潔,龐 敏,劉奕清,鄒 勇,

(1.重慶文理學(xué)院林學(xué)與生命科學(xué)學(xué)院,重慶 402160;2.重慶文理學(xué)院特色植物研究所,重慶市特色種苗工程技術(shù)研究中心,重慶高校園林花卉工程研究中心,重慶 402160)

生姜中Salmonella enterica的分離與宿主氧化應(yīng)答

黃 科1,2,李泊寧1,羅 潔1,2,龐 敏1,劉奕清1,2,鄒 勇1,2,*

(1.重慶文理學(xué)院林學(xué)與生命科學(xué)學(xué)院,重慶 402160;2.重慶文理學(xué)院特色植物研究所,重慶市特色種苗工程技術(shù)研究中心,重慶高校園林花卉工程研究中心,重慶 402160)

本研究對重慶榮昌采后發(fā)病姜塊進(jìn)行病原菌分離鑒定,分離到一株新的生姜致病菌。通過細(xì)菌形態(tài)、生理生化、16S rDNA遺傳分析鑒定為沙門氏菌(Salmonella enterica)。將沙門氏菌回接姜苗、姜塊,發(fā)現(xiàn)姜苗葉片失綠,褶皺;姜塊表面水漬并有分泌物;動態(tài)污染研究表明:沙門氏菌能在姜塊中迅速繁殖,顯著提高姜塊超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)、過氧化物酶(peroxidase,POD)、過氧化氫酶(catalase,CAT)的活性。該研究表明,沙門氏菌能以生姜為寄主存活。

生姜;分離;沙門氏菌;抗氧化應(yīng)答

生姜是一種重要的藥食同源經(jīng)濟(jì)作物,可鮮食,也可作為調(diào)味。但生姜在營養(yǎng)繁殖時體內(nèi)積累大量病原微生物(細(xì)菌和真菌)導(dǎo)致生姜在生產(chǎn)和貯藏過程中發(fā)生塊莖腐爛、葉片枯萎,葉斑、干枯病癥[1]。研究認(rèn)為生姜的主要病害包括:熒光假單胞桿菌(Pseudomonas fluorescens)引起的“姜溫病”[2];歐文氏桿菌(Erwinia chrysanthemi)引發(fā)的生姜莖腐病[3];腸桿菌(Enterobacter cloacae)引起的塊莖腐爛[4]。短小芽孢桿菌(Bacillus pumilus)也能引起生姜發(fā)病[5];真菌腐霉菌屬(Pythium myriotylum)引起生姜軟腐病[6];鐮刀菌屬(Fusarium oxysporum)可引起葉片變黃,幼芽腐化,長期感染,可致植株死亡[7]。

沙門氏菌包含乍得沙門氏菌(S. bongor)和腸桿沙門氏菌(S. enterica),兩者均能入侵宿主細(xì)胞,但只有S. enterica能引起致病[8]。S. enterica以水果和蔬菜蔬為寄主感染人后,引發(fā)胃腸疾病[9-11],如以番茄為寄主[12];S. enterica也能侵染植物引起發(fā)?。篠. enterica Typhimuriumjish寄生于萵苣葉柄周圍,隨著葉片的發(fā)育,感染加劇[13],S. typhimuriumjish感染可引起水果和蔬菜軟化腐爛[14],S. enterica通過番茄種子傳播,引發(fā)番茄在生長過程中發(fā)病[15]。還未見S. enterica引起生姜發(fā)病的報道,本研究從重慶榮昌采后生姜中分離一株生姜致病菌,對其進(jìn)行生理生化,16S rDNA遺傳分析鑒定,并將致病菌回接生姜,觀察致病菌在生姜中的增殖能力及感染癥狀。通過對生姜致病菌分離鑒定研究,以期為生姜病害及人類胃腸道疾病預(yù)防提供新的信息。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

生姜樣品 重慶市榮昌縣盤龍鎮(zhèn)四川竹根姜栽培主產(chǎn)區(qū)。

酶聯(lián)免疫吸附試劑盒 南京建成生物工程研究所;脫毒生姜營養(yǎng)袋苗 重慶市天沛農(nóng)業(yè)科技有限公司饋贈。

1.2 培養(yǎng)基

營養(yǎng)肉湯瓊脂(nutrient agar,NA)培養(yǎng)基:NaCl 5 g、蛋白胨10 g、牛肉膏3 g、瓊脂15 g,加水1 000 mL,調(diào)節(jié)pH值至7.3;肉湯(nutrient broth,NB)培養(yǎng)基:NaCl 5 g、蛋白胨10 g、牛肉膏3 g,加水1 000 mL,調(diào)節(jié)pH值至7.3。

1.3 儀器與設(shè)備

S3400N掃描電子顯微鏡 日本Hitachi公司;酶標(biāo)儀美國Bio-Rad公司;聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)基因擴(kuò)增儀 德國Eppendorf公司。

1.4 細(xì)菌的分離與純化

發(fā)病樣品用清水沖洗,去除表面污漬,然后用無菌水沖洗2 min,重復(fù)3 次,用0.6% NaClO浸泡3 min,用無菌水沖洗5 min,重復(fù)3 次。用無菌刀挑出生姜腐爛組織,無菌水中浸泡15 min。將浸泡液劃線接種于NA培養(yǎng)基,25 ℃無菌培養(yǎng)48 h后觀察菌落生長狀況。挑取單個菌落,NA培養(yǎng)基上連續(xù)傳代培養(yǎng)3 代,純化菌株。將純化后的菌株置于NB培養(yǎng)基25 ℃培養(yǎng)24 h,致病菌株用20%甘油于-80 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

1.5 致病菌形態(tài)觀察

致病菌形態(tài)鑒定參照Akin等[16]方法,細(xì)菌經(jīng)NB培養(yǎng)基25 ℃培養(yǎng)24 h。經(jīng)12 000 r/min離心1 min收集菌體,樣品用2.5%戊二醛(pH 7.4磷酸鹽緩沖溶液(phosphate buffered solution,PBS))固定1 h,然后經(jīng)30%、50%、70%、80%、90%、100%乙醇脫水、噴金,樣品用S3400N掃描電子顯微鏡在15 kV觀察。

1.6 細(xì)菌生理生化實驗

菌株的生理生化特征通過以下實驗來測定:革蘭氏染色、鞭毛染色、莢膜染色、明膠實驗、V.P.實驗、甲基紅實驗、吲哚反應(yīng)、三糖三醇實驗、賴氨酸脫羧酶實驗、尿素酶實驗、三糖鐵瓊脂實驗[17]。其中,三糖三醇實驗將乳糖、麥芽糖、纖維二糖,甘露醇、山梨醇、甜醇配制為質(zhì)量濃度10 g/100 mL溶液滅菌后分別加入培養(yǎng)基中,三糖三醇最終質(zhì)量濃度為1 g/100 mL,培養(yǎng)基配方為NH4H2PO41 g、MgSO4g7H2O 0.2 g、KCl 0.2 g、酵母膏0.2 g、瓊脂5 g,質(zhì)量濃度0.04 g/100 mL溴甲酚紫乙醇溶液20 mL,蒸餾水1 000 mL,pH 7.2,將菌株穿刺接入培養(yǎng)基中37 ℃培養(yǎng)24 h,觀察菌株生長情況,每個實驗設(shè)3 個重復(fù)。

1.7 致病菌16S rDNA遺傳分析

采用細(xì)菌基因組DNA小提試劑盒提取致病菌基因組DNA。用E. coli 16S rDNA保守序列,正向引物P1:5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3′,反向引物P2:5′-ACGGCTACCTTGTTACGACTT-3′[18],進(jìn)行致病菌的16S rDNA擴(kuò)增。PCR反應(yīng)體系為10hBuffer 5 μL,2.5 mmol/L dNTP 3 μL,P1引物1 μL,P2引物1 μL,2.5 mmol/L MgCl23.5 μL,Taq酶(5 U/μL)0.5 μL,總DNA 1 μL,加入ddH2O 35 μL,總反應(yīng)體積為50 μL。PCR擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行電泳檢測、回收、克隆、測序鑒定。測序后16S rDNA在美國國立生物技術(shù)信息中心(National Center for Biotechnology Information,NCBI,http://blast. ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi)中進(jìn)行比對。使用MEGA 5.1軟件中的鄰接法(neighbor joining,NJ)[19],以E. coli為外群建立系統(tǒng)發(fā)育樹。

1.8 S. enterica回接生姜姜塊、姜苗

致病菌經(jīng)NB培養(yǎng)基25 ℃培養(yǎng)12 h,測定OD600nm值約為1.0時,制備109CFU/mL的細(xì)胞懸液。將成熟健康生姜用清水洗凈,用70%乙醇對塊莖表面消毒5 min,用無菌水沖洗,晾干。用無菌刀片將塊莖塊切割為2.5 cmh1.5 cm的小塊。在姜塊上接種1 mL 109CFU/mL的細(xì)胞懸液,無菌水作對照,25 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。脫毒生姜組培苗經(jīng)穴盤移栽后[20]轉(zhuǎn)至10 cmh10 cm營養(yǎng)袋;穿刺接種0.5 mL 109CFU/mL的細(xì)胞懸液,無菌水作對照,溫室培養(yǎng)。

1.9 生姜動態(tài)污染

將成熟健康生姜用清水洗凈,用70%乙醇對塊莖表面消毒5 min,之后無菌水沖洗,晾干。用無菌刀片將塊莖切割為1.5 cmh1.5 cm的小塊,在塊莖上劃5 mm深,3 mm寬傷口,在傷口上接種10 μL 109CFU/mL的細(xì)胞懸液,S. enterica在生姜上污染動態(tài)測定實驗參照Liu Jia等[21]的研究報道。細(xì)胞懸液接種在生姜2 h為起始點,每隔24 h從傷口上切取1 cm2、1 cm深樣品,每次切取20 塊樣品,樣品經(jīng)研磨,10 mL無菌水混合均勻后,200 μL涂布于NA培養(yǎng)基25 ℃,70%濕度培養(yǎng)2 d。測定每個傷口的菌落數(shù),每個實驗重復(fù)3 次,每次實驗含20 個姜塊。

1.10 宿主抗氧化酶活性測定

細(xì)菌經(jīng)NB培養(yǎng)基,25 ℃培養(yǎng)12 h后,OD600nm值約1.0時,制備109CFU/mL的細(xì)胞懸液。將成熟健康生姜用清水洗凈,用70%乙醇對塊莖表面消毒5 min,之后無菌水沖洗,晾干。用無菌刀將塊莖切割為2.5 cmh1.5 cm的小塊。在姜塊上接種1 mL 109CFU/mL的細(xì)胞懸液,每次接種60 塊生姜,實驗重復(fù)3 次。接種后于25.5 ℃、70%相對濕度連續(xù)培養(yǎng)6 d。每隔24 h取樣品一次,每次取10 塊生姜,-80 ℃保存。連續(xù)取樣6 d。分別取2 g材料于預(yù)冷的研缽中,加入8 mL預(yù)冷的50 mmol/L、pH 7.8 PBS(先加2 mL,在冰浴下研磨成勻漿后,將勻漿轉(zhuǎn)入10 mL離心管,再用6 mL沖洗),10 000 r/min離心15 min,取上清液定容至10 mL后于4 ℃保存。上清液用于過氧化氫酶(catalase,CAT)、超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)及過氧化物酶(peroxidase,POD)活性測定。采用雙抗一步夾心法酶聯(lián)免疫吸附試劑盒測定氧化酶活性。

2 結(jié)果與分析

2.1 S. enterica的形態(tài)及生理生化特性

分離的S. enterica經(jīng)NA培養(yǎng)基25 ℃培養(yǎng)2 d后的形態(tài)如圖1A所示,菌落為不規(guī)則圓形,表面光滑、凸起、白色。掃描電鏡結(jié)果(圖1B)表明,單個克隆直徑約1.5 μm,長約13 μm。致病菌生理生化研究表明S. enterica為G-,含鞭毛,無莢膜,V.P.實驗為陰性,不產(chǎn)生吲哚,甲基紅實驗為陽性,不能液化明膠,不分解尿素,不發(fā)酵乳糖,但能利用麥芽糖、纖維二糖、甘露醇、甜醇、山梨醇,三糖鐵瓊脂實驗為陽性,賴氨酸脫羧酶反應(yīng)為陽性結(jié)果如表1所示,生姜來源致病菌與已有S. enterica生理生化特性研究報道一致[22]。

圖1S. enterica 單個克隆在LB培養(yǎng)基形態(tài)(A)和掃描電鏡形態(tài)(×30 000)(B)Fig.1 Morphology of S. enterica colonies on NA agar medium (A) and morphology of a single cell of S. enterica observed with SEM (×30 000) (B)

表1S. enterica 的生理生化鑒定結(jié)果Table 1 Physiological and biochemical characteristics of S. enterica

2.2 S. enterica的16S rDNA遺傳分析鑒定

以致病菌菌株的總DNA為模板,以16S通用引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增,PCR產(chǎn)物經(jīng)克隆、測序序列與GenBank中的核酸數(shù)據(jù)進(jìn)行對比分析,結(jié)果表明致病菌序列與S. enterica屬細(xì)菌相似度達(dá)到99%,在此基礎(chǔ)上利用MEGA5.1的鄰近相接法構(gòu)建S. enterica的系統(tǒng)發(fā)育樹,見圖2。對于構(gòu)建的系統(tǒng)發(fā)育樹,采用Bootstrap方法500 個重復(fù)進(jìn)行可靠性檢驗。它和S. enterica亞種具有較近的進(jìn)化距離。

圖2 菌株16S rDNA系統(tǒng)進(jìn)化樹分析Fig.2 Phylogenetic relationships of S. enterica based on partial 16S rDNA sequences

2.3 S. enterica對生姜的回接及侵染動態(tài)

S. enterica回接姜塊經(jīng)25 ℃、70%濕度培養(yǎng)10 d以后,姜塊表面水漬,并有分泌物滲出,而對照無上述現(xiàn)象(圖3A)。S. enterica經(jīng)穿刺回接生姜苗3 d后,約30%生姜幼苗葉片發(fā)黃,葉片褶皺(圖3B)。S. enterica在回接生姜后,在25 ℃培養(yǎng)時增殖較快(圖4),從接種后到第2天細(xì)菌增殖是接種后2 h的3 倍,第3天是第2天的3 倍,然后進(jìn)入平臺期。這一結(jié)果表明S. enterica能以生姜為寄主,并迅速繁殖。

圖3S. enterica回接生姜姜塊(A)和幼苗(B)Fig.3 S. enterica inoculated on ginger rhizome (A) and plant seedlings (B)

圖4S. enterica對姜塊的動態(tài)污染Fig.4 Population dynamics of S. enterica in ginger rhizomes that were wounded, inoculated, and stored at 25 ℃

2.4 S. enterica侵染生姜后對其產(chǎn)生的抗氧化活性

抗氧化酶在激發(fā)宿主主動防御系統(tǒng)中起主要作用,由圖5可知,S. enterica侵染宿主24 h后,宿主抗氧化酶SOD、POD、CAT活性均顯著升高,SOD活性升高約3 倍,POD、CAT活性升高約1 倍,隨著侵染時間的增加,SOD、POD活性呈上升趨勢,而CAT活性經(jīng)1、2、3 d平臺期后再升高。

圖5侵染莖塊5 d中SOD(A)、POD(B)和CAT(C)酶活性Fig.5 SOD (A), POD (B) and CAT (C) enzyme activities in ginger rhizomes wounded and inoculated with either S. enterica or sterile,distilled water S. enterica

3 結(jié)論與討論

本研究從發(fā)病姜塊中分離出S. enterica。人類食物中毒主要是因食入受污染的食物或水,而S. enterica則是引起食物中毒的主要原因。許多研究表明,沙門氏菌可以感染許多植物,主要包括:卷心菜、萵苣、擬南芥、番茄、辣椒、苜蓿、大麥、土豆[11]。但未見沙門氏菌侵染生姜的研究報道。本研究從發(fā)病生姜中分離S. enterica,沙門氏菌易在環(huán)境中存活,在水和食品中能存活幾月,生姜栽培和生長發(fā)育中需大量水和肥,特別是在春季栽培時,畝施用大量農(nóng)家肥,沙門氏菌可能是在田間施肥、施水時污染姜田,再加上適宜的溫度、濕度加速了沙門氏菌的繁殖,并污染生姜;同時,本研究表明S. enterica回接生姜和姜苗后,姜苗3 d后出現(xiàn)黃葉、褶皺;姜塊回接10 d后表面腐水漬,有分泌物。已有研究報道認(rèn)為,假單胞菌、腸桿菌、歐文氏桿菌感染生姜塊莖后均能引起發(fā)病生姜出現(xiàn)水漬、葉片萎黃變色、塊腐爛等癥狀[2-4]。生姜在生產(chǎn)和貯藏過程中易感染真菌、細(xì)菌而發(fā)病,特別是在西南地區(qū)長江流域高溫高濕天氣,特別是在大雨后,土壤濕度飽和,溫度在25~30 ℃,這種微環(huán)境最易使生姜染病[2,23]。而濕度是影響S. enterica繁殖侵染宿主的重要因素,濕度越大,S. montevideo[24]和S. enterica[25]的繁殖速率越快。本研究結(jié)果表明S. enterica在姜塊繁殖速率較快,接種1 d后可繁殖3 倍。此外,致病菌侵染宿主通常引起宿主抗氧化酶活性升高,抗氧化酶在激發(fā)宿主主動防御系統(tǒng)中起主要作用[26],S. enterica侵染生姜以后,宿主抗氧化酶活力明顯升高。因此,綜合以上結(jié)果,本研究從發(fā)病生姜中分離S. enterica,這一研究結(jié)果將為我國西南地區(qū),特別是重慶地區(qū)高溫、高濕的竹根姜產(chǎn)地對生姜病害防治提供了新的信息。此外,S. enterica能引發(fā)胃腸疾病,因此本研究也為人類疾病的預(yù)防提供了新的信息。

[1] PRABHAKARAN NAIR K P. The agronomy and economy of turmeric and ginger: the invaluable medicinal spice crops. Chapter 21: the diseases of ginger[M]. Boston, Massachusetts, United States: Elsevier, 2013: 409-426. DOI:10.1016/B978-0-12-394801-4.00028-4.

[2] TRUJILLO E E. Diseases of ginger (Zingiber officinɑle) in Hawaii[M]. Hawaii, United States: University of Hawaii, 1964: 1-14.

[3] STIRLING A. Erwinia chrysanthemi, the cause of soft rot in ginger (Zingiber officinɑle) in Australia[J]. Plant Pathology, 2002, 31(4): 419-420. DOI:10.1071/AP02046.

[4] JOLAD S D, LANTZ R C, CHEN G J, et al. Commercially processed dry ginger (Zingiber officinale): composition and effects on LPS-stimulated PGE production[J]. Phytochemistry, 2005, 66: 1614-1635. DOI:10.1016/j.phytochem.2005.05.007.

[5] PENG Q, YUAN Y, GAO M. Bacillus pumilus, a novel ginger rhizome rot pathogen in China[J]. Plant Disease, 2013, 97(10): 1308-1315. DOI:10.1094/PDIS-12-12-1178-RE.

[6] STIRLING G, TURAGANIVALU U, STIRLING A, et al. Rhizome rot of ginger (Zingiber officinɑle) caused by Pythium myriotylum in Fiji and Australia[J]. Australiasian Plant Pathology, 2009, 38(5): 453-460. DOI:10.1071/AP09023.

[7] NISHIJIMA K, ALVAREZ A, HEPPERLY P, et al. Association of Enterobacter cloacae with rhizome rot of edible ginger in Hawaii[J]. Plant Disease, 2004, 88(12): 1318-1327. DOI:10.1094/ PDIS.2004.88.12.1318.

[8] HENSEL M. Salmonella pathogenicity island 2[J]. Molecular Microbiology, 2000, 36(5): 1015-1023. DOI:10.1046/j.1365-2958.2000.01935.x.

[9] BERGER C N, SODHA S V, SHAW R K, et al. Fresh fruit and vegetables as vehicles for the transmission of human pathogens[J]. Environmental Microbiology, 2010, 12(9): 2385-2397. DOI:10.1111/ j.1462-2920.2010.02297.x.

[10] HEATON J, JONES K. Microbial contamination of fruit and vegetables and the behaviour of enteropathogens in the phyllosphere: a review[J]. Journal of Applied Microbiology, 2008, 104(3): 613-626. DOI:10.1111/j.1365-2672.2007.03587.x.

[11] SCHIKORA A, GARCIA A V, HIRT H. Plants as alternative hosts for Salmonella[J]. Trends in Plant Science, 2012, 17(5): 245-249. DOI:10.1016/j.tplants.2012.03.007.

[12] CUMMINGS K, BARRETT E, MOHLE-BOETANI J C, et al. A multistate outbreak of Salmonella enterica serotype Baildon associated with domestic raw tomatoes[J]. Emerging Infectious Diseases, 2001, 7(6): 1046-1048. DOI:10.3201/eid0706.010625.

[13] KROUPITSKI Y, PINTO R, BELAUSOV E, et al. Distribution of Salmonella typhimurium in romaine lettuce leaves[J]. Food Microbiology, 2011, 28(5): 990-997. DOI:10.1016/j.fm.2011.01.007.

[14] WELLS J, BUTTERFIELD J. Salmonella contamination associated with bacterial soft rot of fresh fruits and vegetables in the marketplace[J]. Plant Disease, 1997, 81(8): 867-872. DOI:10.1094/ PDIS.1997.81.8.867.

[15] BARAK J D, LIANG A S. Role of soil, crop debris, and a plant pathogen in Salmonella enterica contamination of tomato plants[J]. Vaccine, 2008, 3(2): 665-671. DOI:10.1016/j.vaccine.2004.11.029.

[16] AKIN D E, BURDICK D, MICHAELS G E. Rumen bacterial interrelationships with plant tissue during degradation revealed by transmission electron microscopy[J]. Applied and Environmental Microbiology, 1974, 27(6): 1149-1156.

[17] 布坎南R E, 吉本斯N E. 伯杰細(xì)菌鑒定手冊[M]. 中國科學(xué)院微生物研究所《伯杰細(xì)菌鑒定手冊》翻譯組, 譯. 8版. 北京: 科學(xué)出版社, 1984: 792-812.

[18] SONG J. Phylogenetic analysis of Streptomyces spp. isolated from potato scab lesions in Korea on the basis of 16S rRNA gene and 16S-23S rDNA internally transcribed spacer sequences[J]. International Journal of Systematic & Evolutionary Microbiology, 2004, 54(1): 203-209. DOI:10.1099/ijs.0.02624-0.

[19] TAMURA K, PETERSON D, PETERSON N, et al. MEGA5: molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood, evolutionary distance, and maximum parsimony methods[J]. Molecular Biology & Evolution, 2011, 28(10): 2731-2739. DOI:10.1093/molbev/ msr121.

[20] 劉奕清, 陳澤雄, 吳中軍. 生姜脫毒種苗移栽基質(zhì)篩選及肥水調(diào)控研究[J]. 北方園藝, 2010(2): 36-37.

[21] LIU J, WISNIEWSKI M, DROBY S, et al. Effect of heat shock treatment on stress tolerance and biocontrol efficacy of Metschnikowia fructicola[J]. FEMS Microbiology Ecology, 2011, 76(1): 145-155. DOI:10.1111/j.1574- 6941.2010.01037.x.

[22] 張河戰(zhàn). 沙門氏菌的分類、命名及中國沙門氏菌菌型分布[J].微生物學(xué)免疫學(xué)進(jìn)展, 2002, 30(2): 74-76. DOI:10.3969/ j.issn.1005-5673.2002.02.018.

[23] STIRLING A M. The causes of poor establishment of ginger (Zingiber officinɑle) in Queensland, Australia[J]. Australasian Plant Pathology, 2004, 33(2): 203-210. DOI:10.1071/AP04003.

[24] ITURRIAGA M H, TAMPLIN M L, ESCARTIN E F. Colonization of tomatoes by Salmonella montevideo is affected by relative humidity and storage temperature[J]. Journal of Food Protection, 2007, 70(1): 30-34.

[25] KINSELLA K J, PRENDERGAST D M, McCANN M S, et al. The survival of Salmonella enterica serovar Typhimurium DT104 and total viable counts on beef surfaces at different relative humidities and temperatures[J]. Journal of Applied Microbiology, 2009, 106(1): 171-180. DOI:10.1111/j.1365-2672.2008.03989.x.

[26] SOTO M J, SANJUáN J, OLIVARES J. Rhizobia and plantpathogenic bacteria: common infection weapons[J]. Microbiology, 2006, 152(6): 3167-3174. DOI:10.1099/mic.0.29112-0.

Salmonella enterica Causes Bacterial Disease in Ginger and Induces Host Antioxidant Response

HUANG Ke1,2, LI Boning1, LUO Jie1,2, PANG Min1, LIU Yiqing1,2, ZOU Yong1,2,*
(1. College of Forestry and Life Sciences, Chongqing University of Arts and Sciences, Chongqing 402160, China; 2. Chongqing Engineering Research Center for Special Plant Seedlings, Garden Flower Engineering Research Center of Chongqing Colleges, Research Institute of Special Plant, Chongqing University of Arts and Sciences, Chongqing 402160, China)

Ginger is an important economic crop with high medicinal and nutritional value. Diseases caused by pathogenic bacteria in ginger have negative impacts on its growth and storage postharvest quality, and often result in significant profit reduction. In the present study, a novel bacterial pathogen, Salmonella enterica, was isolated from postharvest rhizomes in Rongchang, Chongiqng city. The bacterium was identified by 16S rDNA sequence analysis, and morphological, physiological and biochemical tests. After being inoculated with S. enterica, ginger leaves were found to suffer from chlorosis and wrinkle and water and secretion appeared on the surface of rhizomes. Analysis of the population dynamics of S. enterica indicated that the bacterium colonized and grew well on ginger rhizomes. Biochemical analyses indicated that S. enterica activated antioxidant enzyme activities including superoxide dismutase, peroxidase and catalase in host tissues. These results reveal that S. enterica has the capacity to parasitize ginger.

ginger; isolate; Salmonella enterica; antioxidant response

10.7506/spkx1002-6630-201607028

Q93.331

A

1002-6630(2016)07-0152-05

黃科, 李泊寧, 羅潔, 等. 生姜中Salmonella enterica的分離與宿主氧化應(yīng)答[J]. 食品科學(xué), 2016, 37(7): 152-156. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201607028. http://www.spkx.net.cn

HUANG Ke, LI Boning, LUO Jie, et al. Salmonella enterica causes bacterial disease in ginger and induces host antioxidant response[J]. Food Science, 2016, 37(7): 152-156. (in Chinese with English abstract) DOI:10.7506/spkx1002-6630-201607028. http://www.spkx.net.cn

2015-06-08

永川區(qū)自然科學(xué)基金項目(Ycstc2013nc8009);重慶文理學(xué)院引進(jìn)人才項目(Z2011RCY02);國家星火計劃項目(2013GA81102)

黃科(1980—),男,講師,博士,研究方向為病原微生物學(xué)。E-mail:shanbnm@126.com

*通信作者:鄒勇(1982—),男,講師,博士,研究方向為病原微生物學(xué)。E-mail:nevernever107@126.com

猜你喜歡
姜塊沙門氏菌致病菌
生姜貯藏主要影響因素及技術(shù)要點
歐盟擬制定與爬行動物肉中沙門氏菌相關(guān)
SSEL結(jié)合多重PCR同時快速檢測生菜中4種食源性致病菌
兔沙門氏菌病的診斷報告
食品中致病菌快速檢測方法的探討
缺血性腦卒中患者齦下菌斑中牙周致病菌檢測
怎樣窖藏生姜
MSL抗菌肽對鼠傷寒沙門氏菌感染的預(yù)防作用
《食品中致病菌限量》(GB29921—2013)解析
商品肉鴨沙門氏菌分離鑒定及藥敏試驗