宋　慧，耿志明，任　雙，王道營，張牧焓，孫　沖，徐為民，3，*

（1.南京農業(yè)大學 肉品加工與質量控制教育部重點實驗室，江蘇 南京 210095；2.江蘇省農業(yè)科學院農產品加工研究所，江蘇 南京 210014；3.江蘇省肉類生產與加工質量安全控制協(xié)同創(chuàng)新中心， 江蘇 南京 210095）

腌臘肉制品中13-HODE、9，10-DHODE、9，10-EPODE、9，10，13-THODE的HPLC-MS/MS檢測

宋慧1，2，耿志明2，任雙1，2，王道營2，張牧焓2，孫沖2，徐為民1，2，3，*

（1.南京農業(yè)大學 肉品加工與質量控制教育部重點實驗室，江蘇 南京 210095；2.江蘇省農業(yè)科學院農產品加工研究所，江蘇 南京 210014；3.江蘇省肉類生產與加工質量安全控制協(xié)同創(chuàng)新中心， 江蘇 南京 210095）

采用高效液相色譜-串聯質譜法對腌臘肉制品中13-羥基-9，11-十八碳二烯酸（13-hydroxy-9，11-octadecadienoic acid，13-HODE）、9，10-二羥基-12-十八碳烯酸（9，10-dihydroxy-12-octadecenoic acid，9，10-DHODE）、9，10-環(huán)氧-12-十八碳烯酸（9，10-epoxyoctadec-12-enoic acid，9，10-EPODE）及9，10，13-三羥基-11-十八碳烯酸（9，10，13-trihydroxy-11-octadecenoic acid，9，10，13-THODE）進行檢測。腌臘肉制品中13-HODE、9，10-DHODE、9，10-EPODE、9，10，13-THODE用甲醇提取，經固相萃取柱去凈化濃縮，然后以0.1%甲酸與乙腈為流動相，在XBridge色譜柱上進行梯度分離，采用電噴霧源負離子多反應監(jiān)測模式進行分析。結果表明，13-HODE、9，10-DHODE、9，10-EPODE、9，10，13-THODE分別在質量濃度為0.05～2.0、0.01～0.5、0.05～1.0、0.01～0.5 μg/mL的范圍內具有較好的線性關系（R2＞0.999）；檢出限分別為0.120、0.008、0.200、0.016 μg/g；不同添加水平的平均回收率分別為95.1%、85.2%、86.8%、86.2%。對26 種腌臘肉制品含量分析表明，所有樣本都含有13-HODE、9，10-DHODE、9，10，13-THODE，含量分別在1.4～100.7、0.1～3.9、0.4～10.2 μg/g范圍內，21 種樣本中含有9，10-EPODE，含量范圍為0.8～6.9 μg/g。結果表明，腌臘肉制品中存在目標分析物的異構體，羥基脂肪酸實際含量可能大大高于檢測的量。

亞油酸；腌臘肉制品；13-HODE；9，10-DHODE；9，10-EPODE；9，10，13-THODE；高效液相色譜-串聯質譜法

亞油酸（linoleic acid，LA，C18∶2）是人類飲食中必需的脂肪酸。作為細胞膜結構與功能的基本成分，LA在許多生理過程中起到了重要的作用，例如介導細胞信號轉導、調控基因表達［1］。LA也是類花生酸的前體，例如前列腺素與白三烯［2］。與花生四烯酸類似，LA在脂肪氧合酶、細胞色素P450［3-5］、金屬離子［6］、游離自由基［7］的存在下，極易受到氧化。在酶促或者非酶促的條件下，LA主要氧化生成十八碳烯酸的氫過氧化物（hydroperoxyoctadecadienoic acids，HPODEs）［8］，HPODEs不穩(wěn)定可進一步轉化為單羥基十八碳烯酸（hydroxyoctadecadienoic acids，HODEs）［9］。HODE有兩種異構體，9-HODE和13-羥基-9，11-十八碳二烯酸（13-hydroxy-9，11-octadecadienoic acid，13-HODE）。LA在非酶促作用下產生等物質的量13-HODE與9-HODE的混合物，而在15-脂肪氧合酶作用下只產生13-HODE［10］。除了HODEs，LA還可氧化生成二羥基十八碳烯酸（dihydroxyoctadecenoic acids，DHODEs）與三羥基十八碳烯酸（trihydroxyoctadecenoic acids，THODEs）。在細胞色素P450作用下，LA可產生其環(huán)氧化物環(huán)氧化十八碳烯酸（epoxyoctadecenoic acids，EPODE），EPODE存在9，10-環(huán)氧-12-十八碳烯酸（9，10-epoxyoctadec-12-enoic acid，9，10-EPODE）和12，13-EPODE兩種異構體。EPODEs在可溶性環(huán)氧化物水解酶（soluble epoxide hydrolase，sEH）的存在下，被水解為DHODEs，分別為9，10-二羥基-12-十八碳烯酸（9，10-dihydroxy-12-octadecenoic acid，9，10-DHODE）和12，13-DHODE［11］。由于EPODEs可在白細胞中形成［12］，9，10-EPODE，12，13-EPODE也被稱為白細胞毒素及異白細胞毒素，相應的9，10-DHODE和12，13-DHODE被稱為白細胞毒素二醇及異白細胞毒素二醇。THODE也有很多異構體，例如9，10，11-THODE、9，10，13-三羥基-11-十八碳烯酸（9，10，13-trihydroxy-11-octadecenoic acid，9，10，13-THODE）、9，12，13-THODE和12，13，16-THODE等，脂肪氧合酶、細胞色素P450、羥化酶與水解酶都與其形成有關［13］，形成機制較為復雜。研究表明，羥基十八碳烯酸具有多重病理生理學作用。例如，HODEs與動脈粥樣硬化的形成有關［10］。酒精與HODEs共存的條件下，可加劇Caco-2細胞腸道屏障的損壞［14］。病理生理學研究發(fā)現，EPODEs與DHODEs可導致肺水腫［15］、抑制線粒體呼吸［16］，造成多器官功能衰竭（例如狗與大鼠的心臟停搏）［17-18］。關于THODEs生物重要性的研究很少，但是相關研究表明啤酒中存在的THODEs對啤酒品質有一定的影響［19-21］。

目前，有關羥基十八碳烯酸的研究主要集中于其體內代謝產生途徑、內源性羥基十八碳烯酸的病理生理學意義、體液（血液、尿液等）中含量的分析方法等。例如Penny等［22］采用高效液相色譜-串聯質譜（high performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry，HPLC-MS/MS）法對血液中9，10-DHODE與9，10-EPODE進行了檢測，Newman等［23］采用同種方法對尿液中的9，10-DHODE與9，10-EPODE進行了檢測，檢出限低達0.1、0.3 ng/mL。Wu等［24］采用氣相色譜-質譜對吸附在硅膠上的脂肪酸單分子層，包括EPODE，進行了分析。然而有關外源性（如膳食）羥基十八碳烯酸的生物學作用、膳食中羥基十八碳烯酸的檢測方法以及含量分布等研究報道很少。

腌臘肉制品是原料肉經過預處理、腌制、醬制、晾曬（或烘烤）等工藝加工而成的肉類制品，是我國傳統(tǒng)的肉制品之一，深受廣大消費者喜愛。腌臘肉制品主要包括臘肉類、咸肉類、風干肉類、火腿、香腸等，普遍加工周期較長，期間的脂質氧化對于腌臘肉制品的特征風味物質的產生至關重要。本實驗以腌臘肉制品中LA的氧化產物——羥基脂肪酸為研究對象，建立13-HODE、9，10-DHODE、9，10-EPODE和9，10，13-THODE的HPLCMS/MS分析方法，并研究不同腌臘肉制品中13-HODE、9，10-DHODE、9，10-EPODE和9，10，13-THODE的含量分布情況，為進一步開展腌臘肉制品的羥基十八碳烯酸的相關研究提供一定的參考依據。

1　材料與方法

1.1材料與試劑

腌臘肉制品 市購。

13-HODE 美國Cayman Chemicals公司；9，10-DHODE、9，10-EPODE及9，10，13-THODE 瑞典Larodan公司；乙腈及甲醇 德國Merk公司；水由純水儀制備美國Millipore公司；Sep-Pak C18固相萃取柱（500 mg/3 mL）美國Waters公司；其他試劑均為分析純。

1.2儀器與設備

1290-6460QQQ HPLC-MS/MS儀（配有電噴霧離子源） 美國安捷倫公司；多頭抽真空裝置 美國Alltech公司；Biofuge stratos高速離心機 德國Heraeus公司；T25高速勻漿機 德國IKA公司。

1.3方法

1.3.1標準溶液的配制

取適量體積質量濃度分別為0.5、1.0、0.1、0.1 mg/mL的13-HODE、9，10-DHODE、9，10-EPODE、9，10，13-THODE標準溶液，用甲醇稀釋至質量濃度分別為5 μg/mL，取適量體積質量濃度為5 μg/mL的13-HODE、9，10-DHODE、9，10-EPODE、9，10，13-THODE混合制備系列標準工作溶液，使得13-HODE、9，10-DHODE、9，10-EPODE、9，10，13-THODE的質量濃度范圍分別為0.05～2.0、0.01～0.5、0.05～1.0、0.01～0.5 μg/mL，將標準工作溶液儲存于-40 ℃?zhèn)溆谩?/p>

1.3.2樣品處理

將腌臘肉制品切碎裝入密封袋中，儲存于-18 ℃?zhèn)溆谩７Q取2 g的肉樣于100 mL離心管中，加入16 mL甲醇后5 000 r/min均質2 min，隨后3 200×g離心10 min，將2.5 mL上清液過C18固相萃取柱（C18固相萃取柱用3 mL甲醇、3 mL水進行活化與平衡），棄去最初的0.5 mL洗脫液，收集的剩余洗脫液于-40 ℃儲存?zhèn)溆谩?/p>

1.3.3儀器工作條件

HPLC條件：色譜柱：XBridge C18（150 mm× 4.6 mm，5 μm）；流動相：A為0.1%甲酸，B為乙腈；流速：0.6 mL/min；柱溫：30 ℃；梯度洗脫程序：0 min、50% B；10 min、90% B；20 min、90% B；25 min、50% B；30 min、50% B；進樣量：10 μL。

MS條件：離子源：電噴霧源負離子模式；離子化條件：氣溫與流速分別為300 ℃、8 L/min；鞘流氣溫度與流速分別為280 ℃、11 L/min；霧化氣壓45 psi；毛細管電壓3.5 kV；定量模式：多反應監(jiān)控模式；離子轉變：13-HODE、9，10-DHODE、9，10-EPODE、9，10，13-THODE分別為m/z 295.5→m/z 277.3、m/z 313.4→m/z 201.3、m/z 295.3→m/z 277.3、m/z 329.4→m/z 171.3（表1）；所有數據通過安捷倫MassHunter工作站中的軟件進行分析，包括優(yōu)化軟件、數據獲取軟件以及定性分析軟件。

表1　優(yōu)化的轉變離子及碰撞條件Table1　Optimized transition ions and collision energy

1.3.4方法驗證

1.3.4.1標準曲線

將13-HODE、9，10-DHODE、9，10-EPODE、9，10，13-THODE配制成質量濃度分別為0.05～2.0、0.01～0.5、0.05～1.0、0.01～0.5 μg/mL的系列混合標準工作溶液，進行HPLC-MS/MS分析，每個質量濃度重復測定3 次。以標準品質量濃度為橫坐標x，以對應峰面積為縱坐標y，繪制標準曲線。按照3 倍信噪比（RSN=3）和10 倍信噪比（RSN=10）計算方法的檢出限和定量限。

1.3.4.2精密度實驗

選擇不同的腌臘肉制品，按照1.3.2節(jié)的步驟進行處理，每種樣本進行6 個重復處理，在1 d內進行HPLC-MS/ MS分析，將其中3 個重復連續(xù)3 d每天測定1 次，以測得的結果分別計算日內和日間的精密度（以相對標準偏差表示）。

1.3.4.3回收率實驗

選擇與添加水平相近的腌臘肉制品，根據添加水平向樣本中添加13-HODE、9，10-DHODE、9，10-EPODE、9，10，13-THODE的標準品，按照1.3.2節(jié)的步驟進行處理，每個添加水平做3 個重復處理，測定分析物的含量，計算回收率。

1.4數據分析

采用SPSS statistics 17.0進行單因素方差分析與相關性分析，均值采用鄧肯多重范圍檢驗（P＜0.05）。

2　結果與分析

2.1樣品處理

色譜分析常用的樣品提取方法包括液液萃取、超臨界流體萃取、超聲波輔助萃取以及微波萃取等［25］。13-HODE、9，10-DHODE、9，10，13-THODE為羥基類脂肪酸，極性較大，可用有機溶劑進行提取，例如乙酸乙酯、甲醇、乙腈等，隨后利用固相萃取柱進行凈化濃縮［22］或者直接進行色譜分析［23］。通常采用液液提取方法對內源性（如血液、尿液）的13-HODE、9，10-DHODE、9，10-EPODE、9，10，13-THODE進行提?。?2-23］。對于飲食中的羥基脂肪酸，本實驗采取超聲波輔助、機械振蕩以及均質勻漿等方式，觀察了乙酸乙酯、乙腈、甲醇以及40%～90%的甲醇的提取效果，隨后利用固相萃取柱對分析物進行凈化濃縮。結果表明，采用乙酸乙酯提取的回收率最低，約為50%，40%～90%的甲醇提取回收率約為60%～80%，乙腈與甲醇的提取效果相似，回收率均大于80%～95%。由于乙腈價格較高且毒性較大，綜合考慮，本實驗選取甲醇為溶劑進行均質提取，并與提取后直接進行色譜分析進行了比較，結果發(fā)現固相萃取柱起到了很好的濃縮效果，去除大量疏水性的化合物，降低了干擾。本實驗確定的樣品處理方法可以滿足HPLC-MS/ MS法同時分析腌臘肉制品中13-HODE、9，10-DHODE、9，10-EPODE、9，10，13-THODE含量的要求。

2.2HPLC-MS/MS分析結果

圖1　混標與樣本總離子流圖Fig.1　Total ion chromatograms for mixed standard solution and sample

13-HODE、9，10-DHODE、9，10，13-THODE為羥基類十八碳烯酸，9，10-EPODE為環(huán)氧十八碳烯酸，它們所帶羥基基團數量不同，故在中性或者酸性條件下的響應不相同。本實驗研究了中性以及酸性條件下4 種分析物的離子化情況。結果表明，9，10-EPODE在中性條件下不能離子化，酸性條件下13-HODE、9，10-DHODE、9，10，13-THODE、9，10-EPODE均可離子化，且信噪比高于中性條件，確定流動相A為0.1%甲酸，流動相B為乙腈，并進一步優(yōu)化了梯度洗脫條件。由圖1可見，目標分析物與雜質峰實現了基線分離。

通過保留時間以及MS/MS對13-HODE、9，10-DHODE、9，10，13-THODE、9，10-EPODE進行鑒定。4 種分析物標準品的全掃模式顯示，13-HODE、9，10-DHODE、9，10-EPODE、9，10，13-THODE母離子分別為m/z 295.5、m/z 313.4、m/z 295.3、m/z 329.4（圖2A、2C、2E、2G）。MS/MS 結果顯示，13-HODE產生了兩個特征離子峰m/z 277.3（丟失一分子H2O）、m/z 195.5（丟失HO—CH=CH（CH2）3CH3）；9，10-DHODE產生的特征離子峰分別為m/z 295.2（丟失一分子H2O）、m/z 277.4（丟失兩分子H2O）、m/z 201.3（丟失CH3（CH2）4CH=CHCH2—）、m/z 171.2（丟失CH3（CH2）4CH=CHCH2CHOH—）；9，10-EPODE產生的特征離子峰為m/z 277.3（丟失一分子H2O）、m/z 171.2（丟失CH3（CH2）4CH=CHCH2CH—）；9，10，13-THODE產生的子離子為m/z 171.3（HCO—（CH2）7—COO）、m/z 139.4（CH3（CH2）4C（O—）=CH—CH=CH2）。4 種分析物的MS/MS與其他研究是一致的［22-23，26-28］。

在實際樣本分析時，發(fā)現4 種目標分析物有異構體同時存在（圖1B）。通過樣本中各個峰的MS/ MS驗證發(fā)現，圖1B中峰1的母離子為m/z 329.4，這與9，10，13-THODE的母離子一致，產生的子離子峰為m/z 229.3、m/z 211.3、m/z 171.3、m/z 139.3（圖2H）；峰3的母離子為m/z 313.3，這與9，10-DHODE的母離子一致，產生的子離子有m/z 295.4、m/z 195.4、m/z 183.2、m/z 129.3（圖2D）；峰6的母離子為m/z 295.4，與13-HODE的母離子一致，產生的子離子峰分別是m/z 277.4、m/z 171.3（圖2B）；峰7的母離子為m/z 295.2，這與9，10-EPODE的母離子一致，產生的碎片離子為m/z 277.4、m/z 195.1、m/z 181.2（圖2F）。通過與相關文獻［23，26-28］比較發(fā)現，母離子為m/z 329.4的峰1應為9，10，13-THODE的異構體，可能為9，10，11-THODE或者9，12，13-THODE；母離子為m/z 313.3的峰3為9，10-DHODE的異構體12，13-DHODE；母離子為m/z 295.4的峰6是13-HODE的異構體9-HODE；母離子為m/z 295.2的峰7為9，10-EPODE的異構體12，13-EPODE。

圖2　羥基類十八碳烯酸極其異構體的二級質譜圖Fig.2　MS/MS spectra for hydroxy（s） octadecenoic acids and the isomers

2.3方法驗證

2.3.1線性范圍及檢出限

將適量13-HODE、9，10-DHODE、9，10-EPODE和9，10，13-THODE的標準溶液混合，配制4 種目標分析物的質量濃度分別為0.05～2.0、0.01～0.5、0.05～1.0 μg/mL和0.01～0.5 μg/mL的混合標準工作溶液，然后進行HPLC-MS/MS分析。以標準品質量濃度為橫坐標x，以對應峰面積為縱坐標y，繪制標準曲線。按照3倍信噪比（RSN=3）和10倍信噪比（RSN=10）計算方法的檢出限和定量限，檢出限分別為0.120、0.008、0.200、0.016 μg/g，定量限分別為0.40、0.02、0.64、0.05 μg/g（表2）。4 種分析物的相關系數（R2）均大于0.999，由此可見在相應線性范圍內，標準品的質量濃度與峰面積有良好的線性關系。

表2　方法的線性、檢出限以及定量限Table2　Linearity， limits of detection， and limits of quantification of the proposed method

2.3.2精密度實驗結果

方法的精密度通過兩種典型的腌臘肉制品的日內與日間實驗驗證，分別是含有分析物含量相對較多的農家臘腸以及含量相對較低的板鴨，結果見表3。13-HODE、9，10-DHODE、9，10-EPODE、和9，10，13-THODE的精密度（相對標準偏差）范圍分別為2.3%～5.7%、4.2%～9.0%、3.8%～6.8%和2.0%～8.6%，表明本實驗建立的檢測方法具有較好的精密度。

表3　精密度實驗結果（n=3）Table3　Precision of the method for determination of the analytes （n= 3）

2.3.3準確性實驗結果

按照低、中、高含量選擇雙匯熏煮火腿、雨潤牛肉火腿以及火腿進行添加回收實驗，添加與樣本中目標分析物含量相近的標準品，分析添加前后的4 種目標分析物的含量，并計算添加回收率，結果見表4。由表4可知，13-HODE、9，10-DHODE、9，10-EPODE、9，10，13-THODE的回收率范圍分別為90.8%～97.5%、82.0%～88.0%、84.0%～89.0%、82.0%～89.0%，不同添加水平的平均回收率分別為95.1%、85.2%、86.8%、86.2%。表明本實驗所建立的檢測方法可較準確的定量腌臘肉制品中的分析物。

表4　不同添加水平回收率測定結果（n=3）Table4　Recoveries of the analytes at different spiked?levels （n=3）

2.3.4實際樣本分析

13-HODE、9，10-DHODE、9，10-EPODE、9，10，13-THODE具有重要的生理與病理作用，但在腌臘肉制品中的含量分布卻鮮為人知。為了了解傳統(tǒng)腌臘肉制品中4 種分析物的含量，本實驗選取了超市中26 種腌臘肉制品，包括9 種生制腌臘肉制品（例如蘇式香腸、農家臘腸），17 種即食制腌臘肉制品（例如雨潤烤腸、荷爾美切片火腿），分析4 種目標分析物的含量分布情況（表5）。

表5　生制腌臘肉制品與即食腌臘肉制品中13-HODE、9，10-DHODE、9，10-EPODE及9，10，13-THODE的含量（x±s，n=3）Table5　Contents of 13-HODE， 9，10-DHODE， 9，10-EPODE and 9，10，13-THODE in raw cured meat products and instant foods from cured meat （x ± s， n= 3）

由表5可知，所有樣本均檢測出13-HODE、9，10-DHODE和9，10，13-THODE，21 個樣本檢測出9，10-EPODE。在生制腌臘肉制品中，13-HODE、9，10-DHODE、9，10-EPODE和9，10，13-THODE的含量范圍分別為1.40～100.77、0.13～1.82、0.77～6.9 μg/g和0.82～10.12 μg/g；即食腌臘肉制品中4 種目標分析物的含量范圍分別為2.87～77.56、0.11～3.93、0.77～6.20 μg/g和0.26～6.57 μg/g。

統(tǒng)計分析顯示，13-HODE的含量顯著高于9，10-DHODE、9，10-EPODE、9，10，13-THODE（P＜0.05），9，10，13-THODE的含量顯著高于9，10-DHODE、9，10-EPODE（P＜0.05），在檢測出9，10-EPODE的樣本中，其含量顯著高于9，10-DHODE（P＜0.05）。但在生制腌臘肉制品和即食腌臘制品中，4 種分析物含量并不存在顯著差異（P＞0.05）。統(tǒng)計分析還顯示，13-HODE、9，10-DHODE和9，10，13-THODE三者顯著相關（P＜0.01），9，10-DHODE與9，10-EPODE顯著相關（P＜0.01）。由于不飽和脂肪酸（LA）在酶促或者非酶促條件下氧化［8］，先生成氫過氧化物（HPODE），然后轉化為羥基化合物（HODE），再進一步轉化為其他氧化產物［29］，這可能是13-HODE含量顯著高于其他氧化產物并且具有顯著相關性的原因。同樣地，9，10-EPODE在可溶性環(huán)氧化物水解酶的作用下生成9，10-DHODE，腌臘肉制品中加工過程中酶活性的逐漸下降應該是導致9，10-EPODE大于9，10-DHODE的主要原因；而某些樣本中未檢出9，10-EPODE但卻有微量9，10-DHODE存在，表明可能存在9，10-DHODE的非酶促形成途徑。生制腌臘肉制品與即食腌臘肉制品中的含量不存在顯著差異，說明上述4 種LA的氧化產物有較強的熱穩(wěn)定性，一般食品加工溫度對它們含量的影響很小。新鮮肉（豬肉、魚肉、牛肉、雞肉等）中4 種目標分析物的含量極其低（數據未列出），表明腌臘肉制品中羥基脂肪酸主要來源于加工過程。腌臘肉制品的加工過程中羥基脂肪酸的形成規(guī)律、以及影響因素等值得進一步深入研究。

13-HODE與9-HODE的峰面積相似，由此可推知腌臘肉制品中二者的含量相似，說明在腌臘肉制品中，非酶促氧化生成HODEs占據主導地位。在實際樣本分析時發(fā)現，所有的樣本均存在3 個以上的目標分析物的異構體，由于缺少標準物質，本實驗未能對其進行定量分析，但可以推測，樣本中羥基十八碳烯酸的含量應比本實驗結果高得多。需關注的是，腌臘肉制品中9，10-DHODE與9，10-EPODE的含量總和在2～8 μg/g間，由于異構體的存在使得腌臘肉制品中DHODEs與EPODEs的實際含量會更高，由于人體組織中可溶性環(huán)氧化物水解酶的廣泛分布［30］，使得隨食物攝入人體的EPODEs經消化后生成的DHODEs要遠遠高于腌臘肉制品中檢測出的DHODEs。許多研究表明，HODEs與多種心血管疾病的形成有關，例如導致動脈粥樣硬化；DHODEs可促進有絲分裂以及胸部MCF-7癌細胞的增值，并可擾亂老鼠的內分泌、發(fā)情周期與性行為，所用劑量僅是植物雌激素的1/200［31-32］。因此，腌臘肉制品中廣泛存在的HODEs、DHODEs、EPODEs的形成機制、加工方式影響及其潛在健康風險有待進一步研究。

3　結 論

本實驗通過樣本處理條件以及色譜條件的優(yōu)化，建立了腌臘肉制品中13-HODE、9，10-DHODE、9，10-EPODE和9，10，13-THODE的HPLC-MS/MS檢測方法。腌臘肉制品中13-HODE、9，10-DHODE、9，10-EPODE和9，10，13-THODE用甲醇提取，經固相萃取柱凈化濃縮，然后在XBridge色譜柱上進行梯度分離，流動相為0.1%甲酸與乙腈，采用電噴霧源負離子模式以及多反應監(jiān)測模式進行定性定量分析。結果表明，13-HODE、9，10-DHODE、9，10-EPODE和9，10，13-THODE分別在質量濃度為0.05～2.0、0.01～0.5、0.05～1.0、0.01～0.5 μg/mL的范圍內具有較好的線性關系（R2＞0.999），檢出限分別為0.120、0.008、0.200、0.016 μg/g，不同添加水平的平均回收率分別為95.1%、85.2%、86.8%、86.2%。對26 種腌臘肉制品含量分析表明，所有樣本都含有13-HODE、9，10-DHODE、9，10，13-THODE，含量分別在1.4～100.7、0.1～3.9、0.4～10.2 μg/g范圍內，21 種樣本中含有9，10-EPODE，含量范圍為0.8～6.9 μg/g。4 種分析物異構體的存在，提高了腌臘肉制品中來源于LA的羥基脂肪酸的實際含量。腌臘肉制品中羥基脂肪酸的相關研究值得關注。

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Simultaneous Determination of 13-HODE， 9，10-DHODE， 9，10-EPODE and 9，10，13-THOD in Cured Meat Products by HPLC-MS/MS

SONG Hui1，2， GENG Zhiming2， REN Shuang1，2， WANG Daoying2， ZHANG Muhan2， SUN Chong2， XU Weimin1，2，3，*
（1. Key Laboratory of Meat Processing and Quality Control， Ministry of Education， Nanjing Agricultural University， Nanjing 210095， China； 2. Institute of Agricultural Products Processing， Jiangsu Academy of Agricultural Sciences， Nanjing 210014， China；3. Collaborative Innovation Center of Meat Production and Processing， Nanjing 210095， China）

13-Hydroxy-9，11-octadecadienoic acid （13-HODE）， 9，10-dihydroxy-12-octadecenoic acid （9，10-DHODE），9，10-epoxyoctadec-12-enoic acid （9，10-EPODE） and 9，10，13-trihydroxy-11-octadecenoic acid （9，10，13-THODE） in cured meat products were detected with high performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry （HPLC-MS/MS）. The analytes， extracted with methanol and cleaned by solid phase extraction， were separated on an XBridge C18column with a mobile phase consisting of 0.1% formic acid in water and acetonitrile， followed by ionization and quantification with an electrospray ionization source in negative ion mode and multiple reaction monitoring mode （MRM）. The results indicated that the calibration curves for 13-HODE， 9，10-DHODE， 9，10-EPODE and 9，10，13-THODE exhibited good linearity（R2＞ 0.999） in the ranges of 0.05-2.0， 0.01-0.5， 0.05-1.0 and 0.01-0.5 μg/mL， respectively. The limits of detection （LODs）for the four analytes were 0.120， 0.008， 0.200， and 0.016 μg/g， and the recoveries were 95.1%， 85.2%， 86.8% and 86.2%，respectively. The method was successfully employed to detect the analytes in 26 cured meat products and the resultsshowed that all the samples contained 13-HODE， 9，10-DHODE and 9，10，13-THODE ranging from 1.4-100.7， 0.1-3.9 and 0.4-10.2 μg/g， respectively， and out of these samples， 21 contained 9，10-EPODE ranging from 0.8-6.9 μg/g. Since some isomers of the analytes were detected in samples as well， the real content of fatty acids with hydroxyl group （s） from oxidation of linoleic acid （LA） might be much higher.

linoneic acid； cured meat products； 13-HODE； 9，10-DHODE； 9，10-EPODE； 9，10，13-THODE； high performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry （HPLC-MS/MS）

10.7506/spkx1002-6630-201618022

TS201.6

A

1002-6630（2016）18-0133-08

宋慧， 耿志明， 任雙， 等. 腌臘肉制品中13-HODE、9，10-DHODE、9，10-EPODE、9，10，13-THODE的HPLC-MS/MS檢測［J］.食品科學， 2016， 37（18）: 133-140. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201618022. http://www.spkx.net.cn

SONG Hui， GENG Zhiming， REN Shuang， et al. Simultaneous determination of 13-HODE， 9，10-DHODE， 9，10-EPODE and 9，10，13-THOD in cured meat products by HPLC-MS/MS［J］. Food Science， 2016， 37（18）: 133-140. （in Chinese with English abstract） DOI:10.7506/spkx1002-6630-201618022. http://www.spkx.net.cn

2015-11-19

國家自然科學基金青年科學基金項目（31401560）；江蘇省農業(yè)科技自主創(chuàng)新資金項目（CX（13）3081）

宋慧（1992—），女，碩士研究生，研究方向為肉品加工與質量控制。E-mail：1562275871@qq.com

徐為民（1969—），男，研究員，博士，研究方向為肉品加工與質量控制。E-mail：weiminxu2002@aliyun.com