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大孔吸附樹脂純化薄荷總黃酮工藝優(yōu)選

2016-09-28 01:36:02劉雪輝張思張志旭康信聰李堅(jiān)謝紅旗4劉東波
食品與機(jī)械 2016年8期
關(guān)鍵詞:樣液大孔薄荷

劉雪輝張 思張志旭康信聰李 堅(jiān)謝紅旗,3,4劉東波,3,4

(1. 湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝園林學(xué)院,湖南 長(zhǎng)沙 410128;2. 國(guó)家中醫(yī)藥管理局亞健康干預(yù)技術(shù)實(shí)驗(yàn)室,湖南 長(zhǎng)沙 410128;3. 湖南省作物種質(zhì)創(chuàng)新與資源利用重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,湖南 長(zhǎng)沙 410128;4. 國(guó)家植物功能成分利用工程技術(shù)研究中心,湖南 長(zhǎng)沙 410128)

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大孔吸附樹脂純化薄荷總黃酮工藝優(yōu)選

劉雪輝1,2張思1,2張志旭1,2康信聰1,2李堅(jiān)2謝紅旗1,2,3,4劉東波1,2,3,4

(1. 湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝園林學(xué)院,湖南 長(zhǎng)沙410128;2. 國(guó)家中醫(yī)藥管理局亞健康干預(yù)技術(shù)實(shí)驗(yàn)室,湖南 長(zhǎng)沙410128;3. 湖南省作物種質(zhì)創(chuàng)新與資源利用重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,湖南 長(zhǎng)沙410128;4. 國(guó)家植物功能成分利用工程技術(shù)研究中心,湖南 長(zhǎng)沙410128)

以吸附—解吸率和總黃酮含量為考察指標(biāo),采用靜態(tài)和動(dòng)態(tài)吸附兩種方法,進(jìn)行大孔吸附樹脂純化薄荷總黃酮工藝優(yōu)選。試驗(yàn)考察ADS-7、ADS-17、NKA-9、AB-8、D101、HPD-100 六種大孔吸附樹脂對(duì)薄荷總黃酮的純化能力。結(jié)果表明:AB-8對(duì)薄荷總黃酮吸附與分離性能最佳,確定純化薄荷總黃酮的最佳工藝條件為:流速1 mL/min,上樣液中薄荷總黃酮質(zhì)量濃度為2.56 mg/mL,上樣量3 BV,解析液為4 BV 30%乙醇,最終得到含量90.35%的薄荷總黃酮。上述工藝對(duì)薄荷總黃酮的分離高效、穩(wěn)定、可靠,為薄荷資源的綜合利用提供理論依據(jù)。

薄荷;黃酮;分離;吸附;解析

薄荷(MenthahaplocalyxBrip.)又稱“銀丹草”、“魚香草”,為唇形科(Lamiaceae)薄荷屬(GenusMentha)多年生藥食兩用草本植物[1]。

現(xiàn)代研究發(fā)現(xiàn),薄荷含有機(jī)酸、黃酮、揮發(fā)油、萜類等化學(xué)成分,對(duì)消化、呼吸、神經(jīng)中樞等生理系統(tǒng)的藥理作用顯著[2],其中的黃酮類物質(zhì)具有較強(qiáng)的抗菌[3]、抗氧化[4-5]及抗腫瘤[6]能力,故被廣泛應(yīng)用于醫(yī)藥、食品、化妝品等行業(yè)[7-8]。薄荷總黃酮顯著的生理活性催生了極大的市場(chǎng)需求,也對(duì)其產(chǎn)業(yè)化研究提出了更高的要求。傳統(tǒng)的硅膠柱分離以及溶劑萃取方式存在有機(jī)溶劑用量大、溶劑殘留等缺點(diǎn),而制備色譜、高速逆流等分離方法也受到有機(jī)溶劑殘留以及無(wú)法大規(guī)模產(chǎn)業(yè)化生產(chǎn)等弊端的限制[9-10],而現(xiàn)有的關(guān)于薄荷總黃酮產(chǎn)業(yè)化分離純化方面的研究不多。鐘昆芮等[11]采用聚酰胺樹脂分離純化了薄荷總黃酮,其方法雖然操作簡(jiǎn)單、重復(fù)性好,但所得薄荷總黃酮純度僅達(dá)50%,在分離效果效率以及經(jīng)濟(jì)成本等方面稍有不足,無(wú)法滿足其后續(xù)針對(duì)性的藥理藥效研究和市場(chǎng)推廣的需求,制約了薄荷資源的綜合開發(fā)利用。 大孔吸附樹脂是一種可重復(fù)利用的新型分離材料,具有對(duì)目標(biāo)組分針對(duì)性吸附能力強(qiáng)、分離方法簡(jiǎn)單、高效,溶劑無(wú)毒副作用等優(yōu)點(diǎn),常用于藥用植物中活性化合物的分離[12],本研究擬通過(guò)對(duì)不同極性的樹脂進(jìn)行篩查,并結(jié)合工廠大生產(chǎn)設(shè)備條件,對(duì)薄荷總黃酮純化工藝進(jìn)行優(yōu)化,旨在探索出綠色、高效、穩(wěn)定、經(jīng)濟(jì)的適用于產(chǎn)業(yè)化大生產(chǎn)的工藝路線。

1 材料與方法

1.1材料與試劑

薄荷干燥莖葉:北京同仁堂藥材公司;

蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品:含量>98%,中國(guó)藥品生物制品檢定所;

ADS-7樹脂、ADS-17樹脂、NKA-9樹脂、AB-8樹脂、D101樹脂、HPD-100樹脂:滄州寶恩吸附材料科技有限公司;

氫氧化鈉、無(wú)水乙醇、硝酸鋁:分析純,國(guó)藥集團(tuán)上?;瘜W(xué)試劑有限公司。

1.2主要儀器設(shè)備

紫外可見(jiàn)分光光度計(jì):UV-1800型,島津儀器(蘇州)有限公司;

電子分析天平:Mettler Toledo XS205型,上海梅特勒—托利多儀器有限公司;

恒溫培養(yǎng)震蕩器:ZHWY-2102C型,上海合恒儀器設(shè)備有限公司;

旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀:RE-52型,上海雅榮生化儀器設(shè)備有限公司。

1.3方法

1.3.1上樣液制備稱取薄荷干燥莖葉500 g,加入60%乙醇置80 ℃恒溫水浴鍋中回流提取1.0 h,料液比分別為1∶10和1∶8(g/mL)提取2次,合并提取液,60 ℃真空濃縮回收乙醇至無(wú)醇味,加水分散溶解,定容至2 000 mL,采用亞硝酸鈉—硝酸鋁—?dú)溲趸c顯色法測(cè)定提取液中黃酮含量[13],作為上樣液備用。

1.3.2靜態(tài)吸附與解析試驗(yàn)準(zhǔn)確稱取預(yù)處理好的ADS-7、ADS-17、NKA-9、AB-8、D101、HPD-100樹脂各1.0 g,裝入50 mL錐形瓶中,分別加入上樣液25 mL,置恒溫振蕩搖床上(溫度30 ℃,轉(zhuǎn)速100 r/min)振蕩吸附,每隔1 h吸取上層清液1 mL進(jìn)行黃酮含量測(cè)定,按式(1)計(jì)算吸附量,優(yōu)選出最佳吸附樹脂。

(1)

式中:

X——吸附量,mg/g;

a——上樣液中總黃酮濃度,mg/mL;

b——吸附后溶液中總黃酮濃度,mg/mL;

v——上樣液體積,mL;

m——樹脂質(zhì)量,g。

將充分吸附薄荷總黃酮的大孔樹脂過(guò)濾后分別加入25 mL 80%乙醇,置恒溫振蕩搖床上(溫度30 ℃,轉(zhuǎn)速100 r/min)振蕩解吸24 h,充分解吸后取1 mL上層清液測(cè)定總黃酮含量,按式(2)、(3)計(jì)算解吸量和解吸率,并綜合吸附率與解析率優(yōu)選出最佳樹脂型號(hào)進(jìn)行動(dòng)態(tài)吸附試驗(yàn)。

(2)

(3)

式中:

a——上樣液中總黃酮濃度,mg/mL;

b——吸附后溶液中總黃酮濃度,mg/mL;

Y——解吸量,mg/g;

Z——解吸率,%;

c——解吸液中總黃酮濃度,mg/mL;

V——解吸液體積,mL;

1.3.3上樣液濃度及上樣量的篩選準(zhǔn)確量取已預(yù)處理好的AB-8型大孔吸附樹脂各30 mL濕法裝柱,取一系列質(zhì)量濃度(1.53,1.92,2.56,3.84 mg/mL)的上樣液分別上柱,以流出液中黃酮濃度達(dá)到上樣液中黃酮濃度的10%作為泄漏點(diǎn),測(cè)定不同上樣濃度下樹脂的飽和吸附量,從而優(yōu)先出最佳上樣濃度及上樣量。

1.3.4洗脫溶劑的篩選按上述確定的最佳吸附條件進(jìn)行上樣,先水洗至流出液無(wú)色,然后依次用10%,20%,30%,40%,50%,60%,70%,80%,90%,100%的乙醇各1 BV進(jìn)行解析,流速1 mL/min,分別收集各段解析液進(jìn)行黃酮含量檢測(cè),繪制洗脫曲線并優(yōu)選出最佳洗脫溶劑。

1.3.5洗脫量的篩選選用上述確定好的洗脫溶劑,流速1 mL/min,分別用1,2,3,4,5,6 BV的溶劑進(jìn)行解析,計(jì)算解析量,并繪制解析曲線并優(yōu)選出最佳解析體積。

2 結(jié)果與分析

2.1不同樹脂對(duì)薄荷黃酮的靜態(tài)吸附量與解析率

ADS-7、ADS-17、NKA-9、AB-8、D101、HPD-100 六種吸附材料對(duì)薄荷黃酮的靜態(tài)吸附量與解析量見(jiàn)表1,ADS-7樹脂對(duì)薄荷黃酮的吸附量最大,AB-8樹脂次之,但在靜態(tài)解析試驗(yàn)中,AB-8樹脂的解析率最高,達(dá)到63.57%,具有較好的吸附解析效果,而同樣條件下ADS-7樹脂對(duì)薄荷黃酮的死吸附較多以致解析率只有15.8%,推測(cè)可能是薄荷黃酮類化合物極性較強(qiáng),根據(jù)“相似相吸引”原則,ADS-7樹脂作為強(qiáng)極性樹脂,與薄荷黃酮極性相似度較高,具有較強(qiáng)的吸附效應(yīng),從而形成了死吸附。而AB-8樹脂相對(duì)極性較弱,在針對(duì)薄荷黃酮類化合物時(shí)能夠達(dá)到一種較佳的吸附—解析效應(yīng),因此綜合吸附量與解析率兩個(gè)因素,最終選擇AB-8樹脂作為薄荷總黃酮的純化填料。

2.2不同上樣液濃度下樹脂對(duì)薄荷總黃酮的吸附量

將薄荷提取濃縮液稀釋至黃酮含量分別為3.84,2.56,1.92,1.53 mg/mL,以泄露點(diǎn)為終點(diǎn)進(jìn)行最大吸附量測(cè)定,結(jié)果見(jiàn)圖1。當(dāng)薄荷黃酮濃度為2.56 mg/mL時(shí),樹脂對(duì)薄荷總黃酮的吸附量最大,隨著濃度的減少,吸附量逐漸降低,而濃度增大也會(huì)導(dǎo)致泄露點(diǎn)提前而吸附量減少,且樹脂容易堵塞。因此選擇濃度為2.56 mg/mL的上樣液進(jìn)行上柱試驗(yàn)。

表1不同樹脂對(duì)薄荷黃酮的靜態(tài)吸附量與解析率

Table 1Static adsorption capacities and desorption rates of total flavonoids inMenthahaplocalyxby various macroporous adsorption resins

樹脂名稱極性吸附量/mg解析量/mg解析率%ADS-7強(qiáng)極性67.6210.6815.80ADS-17中極性41.8419.4746.54NKA-9極性 47.3024.3651.53AB-8弱極性48.5830.8863.57D101非極性47.2625.0352.96HPD-100非極性48.0328.4559.22

圖1 不同上樣液濃度下樹脂對(duì)薄荷總黃酮的吸附量

2.3上樣量的確定

按上述確定好的上樣濃度進(jìn)行上柱,分別接收各段上樣流出液,檢測(cè)其中黃酮含量,見(jiàn)圖2,當(dāng)上樣量達(dá)到3 BV時(shí),流出液中薄荷總黃酮濃度達(dá)到上樣液濃度的10%,并且泄露量逐漸增大,參考前人[14]研究結(jié)果并綜合薄荷原料價(jià)格、薄荷總黃酮產(chǎn)業(yè)化生產(chǎn)成本、品價(jià)格等經(jīng)濟(jì)因素,最終選擇上樣體積為3 BV。

2.4不同濃度的乙醇對(duì)薄荷總黃酮的解析率

如圖3所示,隨著醇濃度的增大,洗脫液中薄荷總黃酮的洗脫率也依次增大,當(dāng)洗脫劑醇濃度達(dá)30%時(shí),洗脫率達(dá)到了60%,繼續(xù)增加乙醇濃度,洗脫率增加趨勢(shì)減緩,且部分醇溶性雜質(zhì)被洗脫下來(lái)而導(dǎo)致黃酮純度降低(圖4)。因此綜合經(jīng)濟(jì)、效率等因素最終選擇先用水洗除去多糖、蛋白質(zhì)等雜質(zhì),再用體積分?jǐn)?shù)為30%的乙醇作為洗脫劑,并考慮通過(guò)增加洗脫量來(lái)提高洗脫率。

圖2 泄漏曲線

圖3 乙醇梯度洗脫曲線

圖4 乙醇梯度解析液中黃酮純度

2.5洗脫溶劑用量的篩選

選擇30%的乙醇作為洗脫溶劑,依次增加洗脫劑的用量,并分別接收每個(gè)BV的解析液,進(jìn)行黃酮含量檢測(cè)。由圖5可知,當(dāng)洗脫劑用量達(dá)到4 BV時(shí),絕大部分黃酮已經(jīng)被洗脫下來(lái),因此選擇4 BV的洗脫劑用量。

圖5 洗脫劑用量與洗脫率的關(guān)系

3 結(jié)論

本試驗(yàn)通過(guò)靜態(tài)吸附及解吸試驗(yàn)進(jìn)行樹脂型號(hào)的篩選,確定AB-8型樹脂對(duì)薄荷總黃酮的吸附量較大且解析率最高,且AB-8樹脂再生工藝簡(jiǎn)單、重復(fù)利用批次可達(dá)數(shù)百次,因此選擇AB-8型樹脂做后續(xù)動(dòng)態(tài)吸附試驗(yàn)并優(yōu)化其工藝參數(shù),篩選出的最佳工藝條件為:上樣濃度2.56 mg/mL,上樣體積3 BV,水洗至流出液澄清透亮,再用4 BV 30%的乙醇

進(jìn)行洗脫,洗脫率為79.49%,將解析液濃縮冷凍干燥,測(cè)得干粉中黃酮含量為90.35%。本試驗(yàn)建立的AB-8型大孔吸附樹脂分離純化薄荷總黃酮的工藝,具有綠色環(huán)保、操作簡(jiǎn)便、穩(wěn)定可靠、高效經(jīng)濟(jì)等優(yōu)點(diǎn),適合大規(guī)模產(chǎn)業(yè)化生產(chǎn)。

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Optimization of purification technology for total flavonoids from Mentha haplocalyx by macroporous resin

LIU Xue-hui1,2ZHANGSi1,2ZHANGZhi-xu1,2KANGXin-cong1,2LIJian2XIEHong-qi1,2,3,4LIUDong-bo1,2,3,4

(1.CollegeofHorticultureandLandscape,Hunanagriculturaluniversity,Changsha,Hunan410128,China; 2.StateKeyLaboratoryofSubhealthInterventionTechnology,Changsha,Hunan410128,China; 3.HunanProvincialKeyLaboratoryofCropGermplasmInnovationandUtilization,Changsha,Hunan410128,China; 4.NationalresearchCenterofEngineeringTechnologyForUtilizationofFunctionalIngredientsFromBotanicals,Changsha,Hunan410128,China)

Based on the adsorption-desorption rate and the content of total flavonoids, static and dynamic adsorption methods were adopted to evaluate the purification ability of 6 macroporous resins, including ADS-7, ADS-17, NKA-9, AB-8, D101, and HPD-100, for purifying total flavonoids from ofMenthahaplocalyx. The results showed that AB-8 was adsorbed best among all the candidates. The optimum purification condition was as follows. The flow rate was 1 mL/min, and the loading volume of sample was 3 BV containing flavonoids 2.56 mg/mL in it, desorbed by 4 BV 30% ethanol. Finally, 90.35% total flavonoids fromMenthahaplocalyxwere obtained. The method above is characteristic of high separation efficiency, convenient operation and reliable stability. This study could provide theory support for the comprehensive utilization ofMenthahaplocalyx.

Menthahaplocalyx; flavonoids; separation; adsorp-tion; desorption

國(guó)家國(guó)際科技合作專項(xiàng)項(xiàng)目(編號(hào):2013DFA31790)

劉雪輝,女,湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)在讀碩士研究生。

劉東波(1970-),男,湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)教授,博士。

E-mail:chinasaga@163.com

2015—10—22

10.13652/j.issn.1003-5788.2016.08.038

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