胡彥江++楊德翠
摘要:以摩西球囊霉(Funneliformis mosseae)侵染的花生植株為研究材料,測定了在苗期、花期、結(jié)莢期和飽果期4個不同時期花生葉片熒光動力學(xué)的變化,從而探索摩西球囊霉促進花生光合作用的機制。結(jié)果表明:與非菌根對照相比,菌根花生地上部干質(zhì)量、開花數(shù)、果莢數(shù)、果莢質(zhì)量均顯著或極顯著增加,葉綠素含量、凈光合速率Pn增加;基于光吸收的性能指數(shù)PI與實際光化學(xué)效率ΦPSⅡ均明顯升高;菌根與非菌根間的熒光差值ΔVt曲線變化最大處在30 ms 附近,Ⅰ相降低,而光系統(tǒng)線性電子傳遞速率ETR與電子傳遞的量子產(chǎn)額ΦEo升高,單位面積有活性反應(yīng)中心數(shù)量RC/CSo增加,光化學(xué)猝滅系數(shù)qP升高;PSⅠ的活性(ΔI/Io)明顯升高。摩西球囊霉侵染增強了花生葉片PSⅠ和PSⅡ的活性,促進了電子的傳遞,增強了對光能的利用,從而提高了花生生長量和產(chǎn)量。
關(guān)鍵詞:花生;摩西球囊霉(Funneliformis mosseae);葉綠素熒光;光系統(tǒng)Ⅰ;光系統(tǒng)Ⅱ
中圖分類號: S565.201文獻標志碼: A文章編號:1002-1302(2016)05-0145-04
叢枝菌根(arbuscular mycorrhiza,AM)是植物根系與某些種類的真菌形成的互惠共生,70%以上的陸生植物能夠形成這種共生體[1]。AM真菌不僅能改善植物營養(yǎng)、生長狀況[2],還能提高植物的抗逆性[3-5]。光合作用是高等植物合成有機物和獲得能量的基礎(chǔ),葉綠素是綠色植物進行光合作用的最主要色素,是植物光合作用時捕獲光能的重要物質(zhì)。AM真菌能夠通過提高葉綠素含量,改善葉片葉綠素熒光和光合作用[3,5-6]。玉米在高溫或低溫脅迫下對植株造成的傷害可通過接種AM真菌提高葉綠素含量及光合作用來減輕[3,6]。
葉綠素熒光技術(shù)是近年來應(yīng)用于光合作用機理研究的新技術(shù)[7],是研究光合器官的無損傷探針,通過熒光參數(shù)和熒光動力學(xué)曲線的變化量化分析光系統(tǒng)的性能。趙昕等報道,接種AM真菌能有效提高喜樹幼苗葉片的最大光能轉(zhuǎn)換效率(Fv/Fm),提高光化學(xué)猝滅系數(shù)(qP),有效降低非光化學(xué)猝滅系數(shù)(NPQ)[8];不同AM真菌對喜樹幼苗葉片葉綠素熒光參數(shù)影響不同。
花生產(chǎn)業(yè)在我國經(jīng)濟中占有重要的地位,2013年我國花生種植面積471萬hm2[9]。目前,我國花生栽培和其他作物栽培中遇到的同樣問題之一,是由于長期重施化肥,導(dǎo)致土壤板結(jié)、貧瘠、微生物活性降低。因此,如何利用有限的土壤資源,最大限度地提高作物產(chǎn)量,實現(xiàn)資源的可持續(xù)性發(fā)展顯得尤為重要。研究表明,AM真菌能夠促進花生生長,提高其產(chǎn)量,特別是在營養(yǎng)貧瘠土壤中效果尤為顯著[10-12]。本研究發(fā)現(xiàn),AM真菌侵染花生后,產(chǎn)量和光合速率均有提高,那么提高光合作用的機制是什么呢?AM真菌侵染對光合機構(gòu)又有怎樣的影響?
本研究旨在通過熒光動力學(xué)技術(shù)研究AM真菌促進花生光合作用的機制,為AM真菌在農(nóng)業(yè)中的應(yīng)用提供理論支持,為花生的高產(chǎn)栽培提供指導(dǎo)。
1材料與方法
1.1試驗材料
1.1.1供AM真菌摩西球囊霉[Funneliformis mosseae (Nicoll. & Gerd.) Gerd. & Trappe],分離自山東省花生研究所萊西花生試驗田花生根際土。接種前進行擴大培養(yǎng):將園土和河沙按1 ∶1體積比混合,121 ℃、0.1 MPa蒸汽滅菌2 h,放置1周后裝入花盆(23 cm×20 cm),每盆先裝2 000 g培養(yǎng)土、50 g AM真菌菌劑,上面撒三葉草種子,最后用1 cm厚滅菌河沙覆蓋。每周澆1次Hoagland營養(yǎng)液,其他均按常規(guī)管理。播種3個月后,用土壤鉆隨機挖取三葉草根系,剪成 1 cm 長根段,用Phillips & Hayman染色方法[13]對根段染色,檢查菌根形成情況。待形成泡囊、叢枝及孢子時,剪去三葉草地上部,將盆土及剪碎的根系混合均勻,裝入布袋,保存在陰涼、干燥的地方。
1.1.2供試植物供試花生品種為花育22號,是目前山東省主栽品種之一,由植物病理生理研究室提供。
1.1.3接種及管理栽培基質(zhì)由園土和河沙按2 ∶1體積比混合,高壓蒸汽滅菌2 h后混合均勻,每個花盆(23 cm×20 cm)裝入2 000 g?;ㄉシN時先將50 g摩西球囊霉菌劑平鋪于滅菌栽培基質(zhì)上,然后撒花生種子,用厚度為1 cm的栽培基質(zhì)覆蓋。待種子發(fā)芽出土后露天放置,并定苗至每盆4株。對照不接AM菌劑。每個處理9盆,每3盆1個重復(fù),不同處理間隨機放置。每周澆1次Hoagland營養(yǎng)液,其他按常規(guī)管理。
1.2花生菌根侵染率測定
播種后1個月,用土壤鉆隨機挖取花生根樣,流水輕輕洗掉黏附在根部的沙土,剪成1 cm長根段,用Phillips等的方法[13]對根進行染色。菌根侵染率測定參考劉潤進等的方法[2]。
1.3花生生長量的測定
待花生生長至開花下針期時測量株高,統(tǒng)計開花數(shù);收獲后將花生地上、地下部分分開,在80 ℃烘箱烘至恒質(zhì)量后稱其干質(zhì)量。
1.4花生葉片氣體交換參數(shù)的測定
使用便攜式光合儀CIRAS-1(英國,PP-Systems公司),分別在花生生長的苗期、花期、結(jié)莢期、飽果期,取花生的功能葉測定氣體交換參數(shù)。以儀器自帶二極管提供光源,設(shè)置光照度1 200 μmol/(m2·s),溫度25 ℃,相對濕度45%,CO2為大氣濃度。09:00至11:00測定凈光合速率(Pn)、氣孔導(dǎo)度(Gs)和細胞間隙CO2濃度(Ci),重復(fù)6次。
1.5花生葉片葉綠素含量的測定
花生葉綠素含量測定參考Arnon的方法[14]。稱取花生功能葉片0.1 g,置于10 mL 80%丙酮中暗處浸提48 h后,用U-2900分光光度計(日立、日本)分別測定663、645 nm處的吸光度,計算總?cè)~綠素含量,重復(fù)3次。
1.6花生葉片葉綠素熒光參數(shù)的測定
Fo、Fm、Fm′、Fs 等熒光參數(shù)用FMS-2脈沖調(diào)制式熒光儀(Hansatech,英國)測定。在生長不同時期取花生功能葉,將葉片暗適應(yīng)30 min后,測定最大熒光Fm及PSⅡ最大光化學(xué)效率Fv/Fm。光適應(yīng)下PSⅡ?qū)嶋H光化學(xué)效率按ФPSⅡ=(Fm′-Fs)/Fm′計算;電子傳遞速率ETR=PFD×0.84×0.5,PFD為測定時的照度;光適應(yīng)下熒光參數(shù)Fm′和Fs的測定參考陳大印等的方法[15]。
1.7花生葉片快速葉綠素熒光誘導(dǎo)動力學(xué)曲線測定以及PSⅠ活性的測定
花生葉片快速葉綠素熒光誘導(dǎo)動力學(xué)曲線(OJIP曲線)測定參考Schansker等方法[16],利用M-PEA(Hansatech,英國)測定光吸收曲線表示PSⅡ活性的變化,利用820 nm光吸收相對差值(ΔI/Io)表示PSⅠ活性變化。在花生苗期、花期、結(jié)莢期、飽果期,測定菌根花生和非菌根花生功能葉葉綠素熒光。用暗適應(yīng)夾夾住葉片暗適應(yīng)20 min,再用M-PEA進行測定,測定方法參照楊德翠等的方法[17],參數(shù)計算公式參考Strasser等的方法[18-20]。
1.8數(shù)據(jù)處理
用SAS 8.1數(shù)據(jù)分析軟件對各處理間的數(shù)據(jù)進行方差分析。
2結(jié)果與分析
2.1花生根系摩西球囊霉侵染率
花生菌根侵染率為70%,根內(nèi)形成叢枝、泡囊結(jié)構(gòu),根外外延菌絲發(fā)達。未接種AM菌劑的花生根部未觀察到叢枝、泡囊、根內(nèi)和根外外延菌絲。這說明菌根菌與花生根系已建立了良好的共生關(guān)系。
2.2摩西球囊霉對花生生長量和產(chǎn)量的影響
從表1看出,在測定時間內(nèi),菌根花生株高、地下部干質(zhì)量與非菌根花生相比無顯著差異,但地上部干質(zhì)量、開花數(shù)、果莢數(shù)或果莢質(zhì)量與非菌根相比有顯著或極顯著的差異。菌根花生地上部干質(zhì)量、開花數(shù)、果莢數(shù)、果莢質(zhì)量分別比非菌根花生分別增長了100%、33%、60%、37%。
2.3 摩西球囊霉對花生葉片凈光合速率(Pn)和葉綠素含量的影響
花生凈光合速率和葉綠素含量如圖1所示,在不同測定時期,凈光合速率和葉綠素含量曲線均表現(xiàn)為先升高后降低的趨勢,高峰值均在花期,且二者在菌根花生葉片中高于非菌根花生葉片。
這說明AM真菌侵染增加了花生葉片葉綠素含量,從而促進了花生的光合作用。
2.4摩西球囊霉對花生PSⅡ活性的影響
2.4.1摩西球囊霉對花生葉片熒光動力學(xué)曲線(OJIP)的影響菌根花生與非菌根花生OJIP曲線的熒光差值ΔVt 曲線變化如圖2所示。Ⅰ相反應(yīng)了PQ庫的異質(zhì)性,即快還原型PQ庫和慢還原型PQ庫的大小。二者最大差值出現(xiàn)在約30 ms 處,說明AM真菌侵染最大程度地影響了曲線上I點的變化。Ⅰ相降低,說明AM真菌侵染加快了電子傳遞速度。
2.4.2摩西球囊霉對花生葉片PI和ФPSⅡ的影響PI是基于光吸收的性能指數(shù),能靈敏地反映PSⅡ的活性變化。從圖3-a可知,在不同測定時期,F(xiàn)M處理PI值分別比對照升高44.36%、39.31%、22.70%、37.90%,說明AM真菌侵染使PSⅡ的活性增強。ΦPSⅡ為實際光化學(xué)效率,它能反映在照光下PSⅡ反應(yīng)中心部分關(guān)閉的情況下,實際光化學(xué)效率。與非菌根對照相比,在不同測定時期,菌根花生葉片ΦPSⅡ均明顯增強(圖3-b),在苗期、花期分別升高28.12%、21.83%。說明菌根花生PSⅡ的光合機構(gòu)活性增強。
2.4.3摩西球囊霉對花生葉片光系統(tǒng)電子傳遞的影響ETR表示整個光系統(tǒng)線性電子傳遞速率,用來衡量植物體內(nèi)總光合電子傳遞能力。菌根花生葉片ETR明顯高于對照(圖4-a),在4個時期分別升高51.8%、26.8%、23.1%、26.0%。ΦEo表示用于電子傳遞的量子產(chǎn)額。從圖4-b可知,菌根花生葉片ΦEo均有升高,說明電子傳遞能力增強。
上述結(jié)果說明,菌根花生葉片吸收的光能用于電子傳遞的能量增加,整個光系統(tǒng)電子傳遞速率加快。
2.4.4摩西球囊霉對花生反應(yīng)中心活性的影響RC/CSo表示單位面積有活性反應(yīng)中心數(shù)量。由圖5-a可知,與對照相比,在各測定時期菌根花生葉片RC/CSo明顯升高。光化學(xué)猝滅系數(shù)qP(圖5-b)反映PSⅡ反應(yīng)中心的開放程度,與對照相比,菌根花生葉片反應(yīng)中心的開放程度加大。
上述結(jié)果說明,F(xiàn)M處理植株葉片不但反應(yīng)中心數(shù)量增加,而且反應(yīng)中心的開發(fā)程度增加,利用光能的效率增加。
2.5摩西球囊霉對花生PSⅠ活性的影響
利用花生葉片820nm光吸收相對差值(ΔI/Io)代表PSⅠ的活性。從圖6看出,菌根花生葉片PSⅠ的活性顯著上升,在不同測定時期,菌根與非菌根對照相比在苗期沒有明顯差異,但在花期、結(jié)莢期和飽果期分別上升了30.31%、1422%、4219%。這說明摩西球囊菌侵染提高了PSⅠ的活性。
3結(jié)論與討論
AM真菌能夠促進植物的生長,增加其生物量[10,21]。本研究中,摩西球囊菌侵染花生植株,在花生的苗期、花期、結(jié)莢期和飽果期4個時期中,菌根花生與非菌根花生相比地上部干質(zhì)量、開花數(shù)、果莢數(shù)、果莢質(zhì)量均有顯著或極顯著增加,光合速率與葉綠素含量明顯升高。葉綠素含量的高低在一定程度上反映了植物光合能力的大小。AM真菌侵染后,宿主葉綠素含量增加,并伴隨著生物量的增加[3,6,8,21]。
僅用葉綠素含量的變化很難對光合性能的改變作出準確的解釋。本研究中用葉綠素熒光動力學(xué)技術(shù)對摩西球囊菌侵染花生植株后的光合機構(gòu)進行研究。基于菌根花生葉片光吸收性能指數(shù)PI與實際光化學(xué)效率ΦPSⅡ顯著升高,說明摩西球囊霉侵染后光合機構(gòu)性能增強。菌根花生葉片光系統(tǒng)線性電子傳遞速率ETR與電子傳遞的量子產(chǎn)額ΦEo也顯著升高,單位面積有活性反應(yīng)中心數(shù)量RC/CSo增加,光化學(xué)猝滅系數(shù)qP升高,這也說明菌根花生葉片對光能的利用率增強。Pinior等在研究干旱脅迫下根內(nèi)球囊霉(Glomus intraradices)對月季的影響時發(fā)現(xiàn),與AM共生的植株在水分脅迫下有更高的PI值,有較高的活性反應(yīng)中心數(shù)量,ΦEo也顯著升高,PSⅡ向PSⅠ電子傳遞加快[22]。Rathod等的研究發(fā)現(xiàn),F(xiàn). mosseae 可促進侵染大豆在水份脅迫下的生長,大豆葉片熒光參數(shù)RC/ABS 和 ETo/ABS 都顯著升高,故認為在AM菌存在時減少了反應(yīng)中心的失活[23]。姚娟等研究發(fā)現(xiàn),菌根煙苗的PSⅡ?qū)嶋H光合效率、光化學(xué)猝滅系數(shù)、最大相對電子傳遞速率均高于無菌根煙苗[21]。歐靜等發(fā)現(xiàn),桃葉杜鵑接菌苗的ETR、Fv/Fm和光化學(xué)猝滅 qP 均顯著提高[24]。以上參數(shù)反映出PSⅡ活性的變化,對PSⅠ活性鮮有研究。本研究中利用820 nm光吸收相對差值(ΔI/Io)代表PSⅠ的活性,發(fā)現(xiàn)與非菌根相比,菌根花生葉片PSⅠ活性顯著升高,促進了電子由PSⅡ向PSⅠ的傳遞。另外,研究還發(fā)現(xiàn)菌根花生葉片與非菌根葉片之間的熒光差值ΔVt的變化在30 ms 附近,Ⅰ相降低,這說明AM真菌侵染使花生葉片電子傳遞速度加快,目前還未見這方面的研究報道。
參考文獻:
[1]Parniske M. Arbuscular mycorrhiza:the mother of plant root endosymbioses[J]. Nature Reviews Microbiology,2008,6(10):763-775.
[2]劉潤進,陳應(yīng)龍.菌根學(xué)[M]. 北京:科學(xué)出版社,2007.
[3]Zhu X C,Song F B,Xu H W. Arbuscular mycorrhizae improves low temperature stress in maize via alterations in host water status and photosynthesis[J]. Plant and Soil,2010,331(1/2):129-137.
[4]Hajiboland R,Aliasgharzadeh N,Laiegh S F,et al. Colonization with arbuscular mycorrhizal fungi improves salinity tolerance of tomato (Solanum lycopersicum L.) plants[J]. Plant and Soil,2010,331(1/2):313-327.
[5]陳笑瑩,宋鳳斌,朱先燦,等. 高溫脅迫下叢枝菌根真菌對玉米光合特性的影響[J]. 華北農(nóng)學(xué)報,2013,28(2):108-113.
[6]何躍軍,鐘章成,劉錦春,等. 石灰?guī)r土壤基質(zhì)上構(gòu)樹幼苗接種叢枝菌根(AM)真菌的光合特征[J]. 植物研究,2008,28(4):452-457.
[7]李鵬民,高輝遠,Strasser R J.快速葉綠素熒光誘導(dǎo)動力學(xué)分析在光合作用研究中的應(yīng)用[J]. 植物生理與分子生物學(xué)學(xué)報,2005,31(6):559-566.
[8]趙昕,宋瑞清,閻秀峰. 接種AM真菌對喜樹幼苗生長及光合特性的影響[J]. 植物生態(tài)學(xué)報,2009,33(4):783-790.
[9]2014—2019中國花生行業(yè)市場深度調(diào)研及投資價值分析研究報告[EB/OL]. (2014-06-30)[2015-03-01]. http://www.chinairn.com/report/20140630/090737890.html.
[10]Krishna K R,Bagyaraj D J. Growth and nutrient uptake of peanut inoculated with the mycorrhizal fungus Glomus fasciculatum compared with non-inoculated ones[J]. Plant and Soil,1984,77:405-408.
[11]Carling D E,Roncadori R W,Hussey R S. Interactions of arbuscular mycorrhizae,Meloidogyne arenaria,and phosphorus fertilization on peanut[J]. Mycorrhiza,1996,6:9-13.
[12]Abdalla M E,Abdel-Fattah G M. Influence of the endomycorrhizal fungus Glomus mosseae on the development of peanut pod rot disease in Egypt[J]. Mycorrhiza,2000,10(1):29-35.
[13]Phillips J M,Hayman D S. Improved procedures for clearing roots and staining parasitic and vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi for rapid assessment of infection[J]. Transactions of the British Mycological Society,1970,55(1):158-163.
[14]Arnon D I. Copper enzymes in isolated chloroplasts. Polyphenoloxidase in Beta vulgaris[J]. Plant Physiology,1949,24(1):1-15.
[15]陳大印,劉春英,袁野,等. 不同光強與溫度處理對“肉芙蓉”牡丹葉片PSⅡ光化學(xué)活性的影響[J]. 園藝學(xué)報,2011,38(10):1939-1946.
[16]Schansker G,Srivastava A,Strasser R J. Characterization of the 820 nm transmission signal paralleling the chlorophyll a fluorescence rise (OJIP) in pea leaves[J]. Functional Plant Biology,2003,30:785-796.
[17]楊德翠,劉超,蓋樹鵬,等. 牡丹柱枝孢葉斑?。–ylindrocladium canadense)對葉片光合系統(tǒng)功能的影響[J]. 園藝學(xué)報,2013,40(3):515-522.
[18]Strasser R J,Srivastava A,Govindjee. Ployphasic chlorophyll a fluorescence transients in plants and cyanobacteria[J]. Photochemistry and Photobiology,1995,61(1):32-42.
[19]Strasser R J,Srivastava A,Tsimilli-Michael M. The fluorescence transient as a tool to characterize and screen photosynthetic samples[M]. London:Taylor and Francis Press,2000:445-483.
[20]Strasser R J,Tsimill-Michael M,Srivastava A. Analysis of the chlorophyll a fluorescence transient[M]. Netherlands:Kap Press,2004:1-47.
[21]姚娟,王茂勝,石俊雄,等. AM真菌對煙苗生長及葉綠素熒光特性的影響[J]. 貴州農(nóng)業(yè)科學(xué),2012,40(9):109-114.
[22]Pinior A,Grunewaldt-Stcker G,Alten H,et al. Mycorrhizal impact on drought stress tolerance of rose plants probed by chlorophyll a fluorescence,proline content and visual scoring[J]. Mycorrhiza,2005,15:596-605.
[23]Rathod D P,Brestic M,Shao H B. Chlorophyll a fluorescence determines the drought resistance capabilities in two varieties of mycorrhized and non-mycorrhized Glycine max Linn.[J]. African Journal of Microbiology Research,2011,5(24):4197-4206.
[24]歐靜,何躍軍,劉仁陽,等. 杜鵑花類菌根真菌對桃葉杜鵑幼苗光合性能及葉綠素熒光參數(shù)的影響[J]. 微生物學(xué)通報,2013,40(8):1423-1436.徐安陽,段維,吳慧,等. 3種植物生長調(diào)節(jié)劑對向日葵產(chǎn)量與品質(zhì)的影響[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2016,44(5):149-151.