(山東綠都生物科技有限公司,山東 濱州 256600)
環(huán)介導(dǎo)等溫擴(kuò)增技術(shù)及其在豬病病原檢測中的應(yīng)用研究進(jìn)展
于新友,李天芝
(山東綠都生物科技有限公司,山東 濱州 256600)
環(huán)介導(dǎo)等溫擴(kuò)增(LAMP)技術(shù)是一門新興的分子生物學(xué)檢測技術(shù),因其具有特異性強(qiáng)、靈敏度高、快速、準(zhǔn)確和操作簡便和成本低等特點(diǎn),越來越受到獸醫(yī)相關(guān)工作者的關(guān)注。目前,該方法己被廣泛應(yīng)用各種豬病病原的檢測。通過綜述LAMP 技術(shù)在豬傳染病檢測中的應(yīng)用研究進(jìn)展情況,以期為今后豬病的診斷和防控工作提供參考。
LAMP技術(shù);豬??;病原;檢測;應(yīng)用
豬傳染病對養(yǎng)豬業(yè)的威脅時刻存在,目前養(yǎng)殖場主要是將病料送專業(yè)檢測實驗室進(jìn)行病原分離鑒定或PCR檢測,一旦出現(xiàn)疫情,由于條件所限,很難實現(xiàn)對疫病的快速檢測。日本學(xué)者Notomi 等[1]開發(fā)了一種新型核酸擴(kuò)增技術(shù),即環(huán)介導(dǎo)等溫擴(kuò)增 (loopmediated isothermal amplification,LAMP) 技術(shù),該技術(shù)不需要模板的熱變性[2]、長時間溫度循環(huán)、繁瑣的電泳和紫外觀察等過程,整個反應(yīng)在恒溫條件下進(jìn)行,反應(yīng)結(jié)束后,結(jié)果可用肉眼直接觀察[3],在疫病診斷領(lǐng)域顯示了廣闊的應(yīng)用前景,本文就LAMP技術(shù)及其在豬病病原檢測中的應(yīng)用研究進(jìn)展綜述如下。
1.1 LAMP擴(kuò)增原理
LAMP技術(shù)是針對靶基因6個區(qū)域設(shè)計4條特殊引物,利用具有鏈置換活性的BstDNA聚合酶,在65 ℃左右溫度下,啟動循環(huán)鏈置換反應(yīng),完成對目標(biāo)DNA的大量擴(kuò)增。在LAMP反應(yīng)中,內(nèi)引物雜交在目標(biāo)DNA區(qū),啟動互補(bǔ)鏈合成,導(dǎo)致啞鈴狀DNA產(chǎn)生。這種結(jié)構(gòu)很快以自身為板,進(jìn)行DNA合成延伸,形成莖-環(huán)DNA結(jié)構(gòu),然后以此結(jié)構(gòu)作為LAMP循環(huán)的起始結(jié)構(gòu)。由于內(nèi)引物雜交在莖-環(huán)的環(huán)上,引物鏈置換合成的DNA產(chǎn)生一個有缺口的莖-環(huán)DNA中間媒介,在莖上附有目標(biāo)序列。再通過外引物,在莖的末端形成環(huán)狀結(jié)構(gòu),結(jié)果在同一鏈上互補(bǔ)序列周而復(fù)始形成有很多環(huán)的花椰菜結(jié)構(gòu)的莖-環(huán)DNA混合物。
圖1 LAMP的引物組成及對應(yīng)區(qū)域
1.2 LAMP引物設(shè)計
首先在靶基因的3’末端設(shè)定F3c、F2c、F1c三個區(qū)段,在5’末端設(shè)定B1、B2、B3三個區(qū)段。針對這6個區(qū)段設(shè)計4條引物,包括一對內(nèi)部引物和一對外部引物。上游內(nèi)部引物FIP:在3’末端含有與F2c互補(bǔ)的F2區(qū)段,在5’末端含有與F1c相同序列的區(qū)段下游內(nèi)部引物BIP:在3’末端含有與B2c互補(bǔ)的B2區(qū)段,在5’末端含有與B1c相同序列的區(qū)段。上游外部引物F3:含有與目標(biāo)DNA上的F3序列相同的區(qū)段。下游外部引物B3:含有與目標(biāo)DNA的B3相同序列的區(qū)段,各引物組成及對應(yīng)區(qū)域如圖1所示。引物的設(shè)計要注意以下幾個問題:1)擴(kuò)增領(lǐng)域為F2-B2區(qū)段間,應(yīng)該在200 bp以內(nèi);2)包含F(xiàn)2/B2在內(nèi)的環(huán)狀部分的長度在40~60 bp范圍內(nèi);3)各區(qū)段的Tm值應(yīng)該在60~65 ℃之間;4)若只是為了鑒定靶基因存在與否,F(xiàn)1-B1的間距可以為零;5)引物應(yīng)避免二次結(jié)構(gòu)發(fā)生;6)各引物的3’端不可含有與其他引物互補(bǔ)的序列。
1.3 LAMP技術(shù)特點(diǎn)
LAMP技術(shù)特點(diǎn)具有以下特點(diǎn):1)操作簡便、耗時短、成本低,擴(kuò)增反應(yīng)在等溫下持續(xù)進(jìn)行,只需在恒溫水浴鍋中幾十分鐘即可完成,不需要特殊試劑,不需要預(yù)先進(jìn)行雙鏈DNA的變性,適合在基層養(yǎng)殖場的推廣應(yīng)用;2)擴(kuò)增的效率高,沒有PCR反應(yīng)中溫模板的退火、復(fù)性過程,在15~60 min內(nèi)可擴(kuò)增109~1010倍,能滿足臨床病料樣本快速檢測的需要;3)特異性高,由于是針對靶序列6個區(qū)域設(shè)計的4種特異性引物,6個區(qū)域中任何區(qū)域與引物不匹配均不能進(jìn)行核酸擴(kuò)增,故其特異性極高。針對6個區(qū)段使用4種不同的引物,可特異性擴(kuò)增靶基因序列;4)靈敏度高,檢測的敏感性是常規(guī)PCR的10倍,擴(kuò)增模板可達(dá)10拷貝或更少;5)僅使用一種鏈置換型BstDNA聚合酶,因BstDNA聚合酶是一種不耐熱的DNA聚合酶,因此必須在模板預(yù)變性以后再加樣;6)擴(kuò)增產(chǎn)物是在同一條DNA鏈上互補(bǔ)序列周而復(fù)始形成大小不一的結(jié)構(gòu);7)當(dāng)模板是RNA時,僅需加入逆轉(zhuǎn)錄酶即可與DNA一樣進(jìn)行擴(kuò)增。
1.4 反應(yīng)產(chǎn)物的檢測
LAMP反應(yīng)產(chǎn)物的檢測方法主要有5種:1)以2%的瓊脂糖凝膠電泳觀察是否有典型的梯狀條帶泳判定結(jié)果;2)以擴(kuò)增產(chǎn)生的副產(chǎn)物焦磷酸鎂白色沉淀的產(chǎn)生用肉眼直接判斷擴(kuò)增反應(yīng)是否進(jìn)行;3)反應(yīng)體系中加入溴化乙錠、SYBR Green Ⅰ等染料,通過觀察擴(kuò)增結(jié)果是否產(chǎn)生相應(yīng)顏色來判定是否有目的片段擴(kuò)增;4)通過恒溫擴(kuò)增微流控芯片實時觀察反應(yīng)結(jié)果;5)運(yùn)用實時濁度儀監(jiān)測反應(yīng)結(jié)果。
2.1 豬霍亂沙門氏菌檢測
豬霍亂沙門氏菌是引起豬沙門氏菌病的主要血清型,主要感染斷奶期仔豬,引發(fā)仔豬副傷寒,臨床上以急性敗血癥、慢性壞死性腸炎、頑固性下痢等為特征,當(dāng)并發(fā)或繼發(fā)感染其他疾病或治療不及時時,死亡率較高,給養(yǎng)豬業(yè)造成重大的經(jīng)濟(jì)損失,嚴(yán)重困擾著養(yǎng)豬業(yè)的健康發(fā)展。時建立等[4]根據(jù)豬霍亂沙門氏菌lacZ基因設(shè)計特異性引物,通過優(yōu)化各種反應(yīng)條件,建立了檢測豬霍亂沙門氏菌的LAMP快速檢測方法,該法特異性好,靈敏度高,將細(xì)菌DNA稀釋到10-8仍可檢出,是PCR方法的1 000倍。
2.2 豬鏈球菌血清2型檢測
豬鏈球菌2型(SS2)是一種重要的人獸共患病病原菌,它能引起豬腦膜炎、關(guān)節(jié)炎、心內(nèi)膜炎、敗血癥、肺炎和突然死亡,各年齡段豬均可感染豬鏈球菌病,但以3~12周齡豬,尤其斷奶仔豬最易感[5],該病已成為嚴(yán)重影響各國養(yǎng)豬業(yè)發(fā)展的一種重要疫病[6]。張九州等[7]根據(jù)GenBank登錄的豬鏈球菌2型特異的莢膜多糖(cps2 H)基因序列作為檢測靶標(biāo),在其序列的保守區(qū)域設(shè)計LAMP引物,利用參考菌株S735基因組DNA為模板進(jìn)行擴(kuò)增,優(yōu)化了LAMP的反應(yīng)條件和反應(yīng)體系,并進(jìn)行了敏感性、特異性和重復(fù)性試驗。結(jié)果顯示,該法對SS2進(jìn)行擴(kuò)增,擴(kuò)增產(chǎn)物顯色呈現(xiàn)陽性反應(yīng),電泳出現(xiàn)階梯狀條帶,最低檢測量為0.186fg/μL模板DNA,比常規(guī)PCR高1 000倍,且與其他常見的細(xì)菌無交叉反應(yīng)。
2.3 副豬嗜血桿菌檢測
副豬嗜血桿菌(Hps)可引起豬的副豬嗜血桿菌病,該病以纖維素性漿膜炎、多發(fā)性關(guān)節(jié)炎和腦膜炎為特征。近幾年來,世界各地均有發(fā)生副豬嗜血桿菌病的報道,并且發(fā)病率呈上升的趨勢,已經(jīng)成為一個全球性的重要豬病[8]。隨著我國規(guī)?;B(yǎng)豬業(yè)的不斷發(fā)展,該病發(fā)生呈加速流行趨勢并成為多病原呼吸道疾病綜合征中的重要一員,危害日漸嚴(yán)重,對養(yǎng)豬業(yè)造成了巨大的經(jīng)濟(jì)損失。車勇良等[9]建立了Hps可視化LAMP檢測方法,在55 ℃水浴1h即可對Hps核酸進(jìn)行高效擴(kuò)增,反應(yīng)結(jié)束后加入SYBR Green Ⅰ即可通過肉眼觀察對結(jié)果進(jìn)行判斷。該方法具有很強(qiáng)的特異性,其對DNA核酸的最低檢測限為40fg,是常規(guī)PCR檢測最低限的100倍,顯示出較高的敏感性。
2.4 豬傳染性胸膜肺炎放線桿菌檢測
豬傳染性胸膜肺炎放線桿菌(APP)作為豬傳染性胸膜肺炎的病原菌,可引起嚴(yán)重的傳染性呼吸道疾病,該病具有高發(fā)病率和致死率,廣泛分布于中國、美國、日本等全世界所有養(yǎng)豬的國家,主要感染生長肥育豬,可引起發(fā)燒、腹瀉以及嚴(yán)重的呼吸窘迫。劉亞娟等[10]根據(jù)APP ApxIVA基因的保守區(qū)設(shè)計6條-LAMP引物,建立了APP的 LAMP方法。結(jié)果顯示,該法在64 ℃下反應(yīng)15 min DNA即可出現(xiàn)擴(kuò)增,擴(kuò)增后2~3 min內(nèi)即可判定結(jié)果,最低檢測限為0.307 ng/L,具有良好的重復(fù)性及穩(wěn)定性,與其他病原菌無交叉反應(yīng),同時,試驗結(jié)果可實現(xiàn)肉眼可視化觀察。
2.5 豬多殺性巴氏桿菌檢測
豬多殺性巴氏桿菌(Pm)為豬呼吸道綜合征的主要病原之一,可原發(fā)或繼發(fā)豬呼吸道綜合征,降低飼料利用率,嚴(yán)重影響?zhàn)B豬業(yè)的經(jīng)濟(jì)效益。孫建華等[11]根據(jù)豬多殺性巴氏桿菌Plp B基因序列為靶基因設(shè)計特異性引物,建立了豬Pm特異性的LAMP快速檢測方法。經(jīng)反應(yīng)條件優(yōu)化,確定反應(yīng)條件為63 ℃、20 min。檢測結(jié)果顯示,建立的LAMP檢測方法具有良好的特異性,靈敏度為25 cfu/mL,與大腸桿菌、Hps、APP、沙門氏菌無任何交叉反應(yīng)。
2.6 金黃色葡萄球菌檢測
金黃色葡萄球菌感染可造成豬的急性、亞急性或慢性乳腺炎,壞死性葡萄球菌皮炎及乳房的膿皰病。蔡克周等[12]以金黃色葡萄球菌(CMCC10201)的femA基因作為靶序列,設(shè)計LAMP和PCR引物,通過凝膠電泳,判斷檢測結(jié)果。對8株常見致病菌進(jìn)行LAMP特異性實驗,表明對金黃色葡萄球菌的檢測具有很高的特異性,LAMP檢測金黃色葡萄球菌的靈敏度為8.7 CFU/ mL,直接檢測豬血中金黃色葡萄球菌的檢出限為8.7×102CFU/mL,PCR法的檢出限為8.7×103CFU/mL。
3.1 豬瘟病毒檢測
豬瘟是黃病毒科瘟病毒屬的豬瘟病毒(CSFV)引起的一種豬急性、熱性、高度接觸性傳染病,在世界范圍內(nèi)廣泛流行,其發(fā)病率和死亡率均高,對養(yǎng)豬業(yè)危害十分嚴(yán)重[13]。張改平等[14]比較分析了CSFV標(biāo)準(zhǔn)強(qiáng)毒株、疫苗株、不同基因亞型的野毒株的全基因組序列差異,設(shè)計一套分別針對豬瘟強(qiáng)毒與弱毒NS5B基因的LAMP引物,建立特異性的豬瘟強(qiáng)毒株與疫苗株的LAMP檢測方法。該方法特異性好,比RT-PCR靈敏度高出1 000倍,且重復(fù)性穩(wěn)定性良好,為快速準(zhǔn)確地鑒別CSFV野毒感染和疫苗接種提供了有效的方法。鄭新添等[15]針對CSFV的NS3基因設(shè)計LAMP引物,建立了快速檢測CSFV的LAMP方法,并對LAMP反應(yīng)體系、反應(yīng)條件進(jìn)行優(yōu)化,評定其特異性和敏感性。結(jié)果表明:該方法可在65 ℃、50 min內(nèi)快速擴(kuò)增CSFV,擴(kuò)增結(jié)果可通過可視的顏色判斷,LAMP反應(yīng)對豬偽狂犬病病毒、豬圓環(huán)病毒2型、豬繁殖與呼吸綜合征病毒等無交叉反應(yīng),其檢測CSFV的最低濃度為13.6 fg/μL,對臨床樣品的檢出率高于RT-PCR技術(shù)。
3.2 豬繁殖與呼吸綜合征病毒檢測
豬繁殖與呼吸綜合征是由豬繁殖與呼吸綜合征病毒(PRRSV)引起的豬的一種接觸性傳染病,各日齡豬均可感染,臨床上主要表現(xiàn)為母豬繁殖障礙和仔豬呼吸癥狀。PRRSV具有高度傳染性,既能垂直傳播又能水平傳播,在世界各國蔓延,造成重大的經(jīng)濟(jì)損失,引起了各國政府的高度重視。蒲靜等[16]針對PRRSV美洲型ORF6基因的6個區(qū)域,利用2對引物建立檢測PRRSV的RTLAMP快速檢測方法,該方法具有高靈敏度,高特異性的優(yōu)點(diǎn),在2 h左右即可得出結(jié)果,其靈敏度與PRRSV熒光RT-PCR檢測方法相近,高于普通RT-PCR檢測方法。將滅活的PRRSV美洲型培養(yǎng)物作10倍系列稀釋,結(jié)果顯示建立的熒光RT-PCR的檢測極限可達(dá)10-7,RT-PCR檢測方法的檢測極限為10-5,RT-LAMP檢測方法達(dá)到10-8。羅忠永等[17]根據(jù)PRRSVM蛋白基因保守區(qū)設(shè)計的LAMP引物,建立了PRRSV的快速檢測方法,結(jié)果表明,該法能在64.5 ℃、60 min內(nèi)實現(xiàn)對目標(biāo)核酸片段的大量擴(kuò)增,檢測結(jié)果可通過直接觀察反應(yīng)副產(chǎn)物(焦磷酸鎂)進(jìn)行判讀,該檢測系統(tǒng)具有很高的特異性,與CSFV、豬乙型腦炎病毒等均無交叉反應(yīng),通過PRRSV不同毒株疫苗、模擬樣品和臨床樣品確定,該檢測系統(tǒng)具有很好的穩(wěn)定性,通過質(zhì)粒確定該檢測系統(tǒng)可以檢測到10拷貝/μL的病毒核酸模板。
3.3 豬偽狂犬病病毒檢測
豬偽狂犬病病毒(PRV)主要引起母豬繁殖障礙、流產(chǎn)、產(chǎn)木乃伊胎、死胎和產(chǎn)弱仔,初生仔豬表現(xiàn)為腹瀉及神經(jīng)癥狀,感染率和死亡率可達(dá)100%,給養(yǎng)豬業(yè)造成了嚴(yán)重的經(jīng)濟(jì)損失。張莉等[18]針對PRVgE基因保守區(qū)域設(shè)計并合成了4條引物,建立了PRV的環(huán)介導(dǎo)等溫擴(kuò)增檢測方法,并進(jìn)行了特異性、敏感性和重復(fù)性試驗。結(jié)果顯示,該方法可特異性地檢測PRV強(qiáng)毒株,不能檢測PRRSV、豬細(xì)小病毒、CSFV、豬流感病毒和PRVgE基因缺失疫苗株,該方法的最低檢測量可達(dá)100個拷貝質(zhì)粒DNA,比常規(guī)PCR方法的敏感性高10倍。王樹芬等[19]設(shè)計并合成3對LAMP引物,以羅丹明B衍生物作指示劑(該指示劑在反應(yīng)前加到反應(yīng)緩沖液里),通過優(yōu)化反應(yīng)條件,建立了可視化LAMP快速檢測PRV的方法,該法在63 ℃恒溫反應(yīng)40 min可得到肉眼可視結(jié)果,顏色變成藍(lán)色判定為陽性,仍然保持紫色判定為陰性。
3.4 豬圓環(huán)病毒2型檢測
豬圓環(huán)病毒2型(PCV2)是引起仔豬斷奶后多系統(tǒng)衰竭綜合征的主要病原,此外,PCV2還與豬呼吸道綜合征、豬皮炎與腎炎綜合征和繁殖障礙以及腸炎等疾病有關(guān),是一種免疫抑制性疾病,給世界養(yǎng)豬業(yè)造成嚴(yán)重的經(jīng)濟(jì)損失。楊澤曉等[20]建立了快速檢測PCV2的LAMP方法,在64 ℃、45 min條件下可擴(kuò)增出大于1 345 bp的特異性梯狀DNA條帶,檢測限度可達(dá)10 拷貝/μL,用它對PCV1、PPV、PRV、PRRSV和CSFV的核酸進(jìn)行擴(kuò)增,但結(jié)果均為陰性。用建立的LAMP方法進(jìn)行的樣品檢測結(jié)果顯示,6株受檢PCV2毒株的檢出率為100%,60份臨床檢樣PCV2的陽性率為20%(12/60),與PCR方法平行檢測的結(jié)果相一致。胡瑞麗等[21]根據(jù)PCV2的ORF2基因設(shè)計出3對特異性引物,擴(kuò)增PCV2基因的最佳溫度和時間優(yōu)化到59 ℃孵育55 min。用該方法對臨床樣品進(jìn)行檢測,LAMP檢測對PCV2的檢測限為10拷貝/μL,而常規(guī)PCR檢測法的檢測限為1 000拷貝/μL,表明LAMP檢測法靈敏度高。該檢測法不會與豬圓環(huán)病毒Ⅰ型、PRRSV、豬流行性腹瀉病毒、傳染性胃腸炎病毒和輪狀病毒發(fā)生交叉反應(yīng)。
3.5 PPV檢測
豬細(xì)小病毒(PPV)可引起母豬發(fā)生流產(chǎn)、產(chǎn)死胎、產(chǎn)畸形胎、胎兒木乃伊化和不孕等,初產(chǎn)母豬受到的危害最為嚴(yán)重。劉業(yè)兵等[22]據(jù)GenBank公布的PPV序列,在其保守序列區(qū)域設(shè)計了多套LAMP引物,建立了對PPV LAMP檢測方法,結(jié)果顯示,該法在63 ℃恒溫下作用45 min,PPV病毒DNA獲得了高效率的特異性擴(kuò)增,其檢出限量為0.23TCID50,敏感性高,在反應(yīng)結(jié)束后加入SYBR Green I以肉眼判斷結(jié)果,與Real Time Turbidimeter LA-320儀監(jiān)測結(jié)果一致。陳星瑤等[23]建立了快速檢測PPV的LAMP方法,通過優(yōu)化反應(yīng)條件,擴(kuò)增的溫度60 ℃、62 ℃、64 ℃和66 ℃均可以,最佳擴(kuò)增時間為45 min,最低可檢測10拷貝的PPV核酸模板量,特異性良好,對SS2、豬水泡病病毒、PRV、CSFV、豬流感病毒、O型口蹄疫病毒、PRRSV和水?dāng)U增結(jié)果均為陰性,不需要電泳檢測反應(yīng)結(jié)果,只需向產(chǎn)物管內(nèi)加SYBR Green Ⅰ熒光染料,肉眼觀察,陽性反應(yīng)管顏色立刻變?yōu)辄S綠色,且模板濃度不同顏色有深淺變化,結(jié)果容易判定,適于臨床推廣。
3.6 豬乙型腦炎病毒檢測
乙型腦炎是由乙型腦炎病毒(JEV)引起的一種人畜共患的自然疫源性傳染病,JEV主要通過蚊蟲叮咬傳播,豬是其主要傳染來源和擴(kuò)散宿主,可導(dǎo)致妊娠母豬流產(chǎn)、產(chǎn)死胎或弱仔,公豬睪丸炎,育肥豬持續(xù)高熱,新生仔豬呈神經(jīng)癥狀等,給養(yǎng)豬業(yè)造成巨大的經(jīng)濟(jì)損失。盧冰霞等[24]根據(jù)豬JEV E基因序列的保守區(qū)6個位點(diǎn)設(shè)計了4條特異性LAMP引物,以JEV陽性樣品RNA為模板進(jìn)行一步法擴(kuò)增,并對反應(yīng)條件和反應(yīng)體系進(jìn)行了優(yōu)化。結(jié)果顯示該方法具有較高的靈敏度,其檢測極限為0.5 pg,特異性試驗表明其具有較高的特異性,對其他病毒性病原體均無擴(kuò)增反應(yīng)。與RT-Nested-PCR相比,2種方法檢出率的符合率為90.9%。反應(yīng)結(jié)束后可以通過添加化學(xué)發(fā)光劑進(jìn)行可視化觀察,大大縮短了檢測時間。周玉鵬等[25]根據(jù)Gen Bank中登錄的基因Ⅰ型和基因Ⅲ型JEV毒株基因序列,分別設(shè)計了1套基因Ⅰ型和基因Ⅲ型特異性RT-LAMP引物,并以此引物分別建立了基因Ⅰ型和基因Ⅲ型特異性RTLAMP方法。結(jié)果顯示,基因Ⅰ型和基因Ⅲ型特異性RT-LAMP方法均能在1 h內(nèi)完成對相應(yīng)基因型JEV的RNA擴(kuò)增,并與CSFV、PRRSV、PCV2、PPV和PRV無交叉反應(yīng)。靈敏性試驗結(jié)果顯示,基因Ⅰ型和基因Ⅲ型JEV特異性RT-LAMP方法均能擴(kuò)增出24拷貝的JEV RNA。
3.7 豬流行性腹瀉病毒檢測
豬流行性腹瀉病毒 (PEDV)可感染豬而導(dǎo)致豬流行性腹瀉,該病的主要特征是豬嘔吐、脫水和水樣腹瀉,是一種高度接觸性腸道傳染病,多發(fā)生于冬、春季節(jié),但夏季也可發(fā)病。該病最初于發(fā)生在英國,隨后世界各地均有相關(guān)報道,我國于1976年最初報道該病。各日齡的豬均可感染PEDV發(fā)病,其中哺乳仔豬受到的危害最嚴(yán)重,給養(yǎng)豬業(yè)造成了巨大的經(jīng)濟(jì)損失。Gou等[26]建立了PEDV的LAMP檢測方法,該方法在62℃水浴條件下,40 min即可完成反應(yīng),結(jié)果顯示,該法最低可檢測10 pg的RNA量,該法特異性好,對常見豬病毒的擴(kuò)增結(jié)果均為陰性,且不與其他常見豬病毒核酸發(fā)生交叉反應(yīng)。湯小真等[27]針對PEDV的NP基因設(shè)計1套LAMP引物,在反應(yīng)體系中添加鈣黃綠素/氯化錳指示劑代替?zhèn)鹘y(tǒng)的反應(yīng)后添加SYBR GreenⅠ染料,建立了基于鈣黃綠素的可視化LAMP檢測PEDV的方法。該方法能在65℃、1 h內(nèi)特異性擴(kuò)增PEDV,與CSFV、豬傳染性胃腸炎病毒、豬輪狀病毒及大腸桿菌等均無交叉反應(yīng),檢測下限為3.73 pg/μL,其結(jié)果可用肉眼判斷,快捷方便。
3.8 豬傳染性胃腸炎病毒檢測
傳染性胃腸炎病毒(TGEV)可引起豬傳染性胃腸炎,該病是一種以嘔吐、水樣腹瀉、脫水為主要特征高度傳染性疾病,秋始、冬春為該病高發(fā)期。目前我國大部分地區(qū)都有該病發(fā)生流行,各種不同品種和月齡的豬都能感染TGEV發(fā)病,2周齡受到的危害最為嚴(yán)重,一旦感染后,其死亡率可高達(dá)100%。5周齡以上的豬感染后雖然死亡率不高,但生長緩慢,飼料利用率低,給養(yǎng)豬業(yè)造成了嚴(yán)重的經(jīng)濟(jì)損失。高睿澤等[28]建立針對豬TGEV N基因RT-LAMP快速檢測方法,并對該檢測方法的特異性與靈敏性進(jìn)行了評價。該方法在63 ℃恒溫下作用50 min,使豬TGEV的 N基因獲得了高效率特異性擴(kuò)增,與PEDV等其他豬易感病毒無交叉反應(yīng),具有很好的特異性,同時該方法具有極高的靈敏性,可檢測到131.4 fg/ μL的目標(biāo)病毒RNA,比普通PCR的靈敏度高3個數(shù)量級,反應(yīng)結(jié)束后加入SYBR GreenⅠ在紫外燈下觀察顏色變化,結(jié)果顯示陽性擴(kuò)增產(chǎn)物呈現(xiàn)綠色熒光。
3.9 豬流感病毒檢測
豬流感病毒(SIV) 可引起豬流感,該病一種急性、熱性、高度接觸性呼吸道傳染病,有明顯的季節(jié)性,深秋、早春和冬季多發(fā),各種年齡、性別和品種的豬均易感,臨床上主要表現(xiàn)為發(fā)病急、呼吸困難、咳嗽、流淚、鼻液增多、衰竭、低死亡率等。目前,已經(jīng)分離到多種血清型,在我國豬群中流行較廣的主要是H1N1、H1N2和H3N2。蘇霞等[29]從GenBank中獲得H1N1 SIV血凝素、神經(jīng)氨酸酶基因序列,應(yīng)用DNAStar軟件MegAlign程序分析其序列,利用Primer ExplorerV4軟件在序列保守區(qū)域設(shè)計LAMP引物,即外引物和內(nèi)引物,同時以H1N1 SIV的cDNA作為陽性模板,對試驗中的幾個反應(yīng)條件進(jìn)行優(yōu)化。建立H1N1 SIV LAMP快速檢測方法。結(jié)果顯示,該法對H1N1 SIV的靈敏度達(dá)到4~6個拷貝,其引物對于H9亞型禽流感病毒、CSFV和PCV2均無非特異性擴(kuò)增,表現(xiàn)出良好的特異性。張莉等[30]針對SIV NP基因保守區(qū)域設(shè)計并合成6條引物,建立了SIV的LAMP檢測方法,并進(jìn)行了特異性、敏感性和重復(fù)性試驗。結(jié)果顯示,該方法可特異性檢測H1N1、H1N2、H3N2、類禽H1N1亞型SIV及甲型H1N1流感病毒,但不能檢測PRRSV、PRV、CSFV、PPV、PCV2、JEV,該方法的最低檢測量為100拷貝/μL質(zhì)粒DNA。
3.10 其他病毒
LAMP技術(shù)還用于口蹄疫病毒[31]、非洲豬瘟病毒[32]、豬腦心肌炎病毒[33]和豬巨細(xì)胞病毒[34]、豬細(xì)環(huán)病毒[35]、水皰性口炎病毒[36]等多種病毒的檢測,試驗結(jié)果都表明LAMP是一種簡便、快速、高靈敏和高特異的核酸擴(kuò)增方法。
豬肺炎支原體(Mhp)可引起豬支原體肺炎,該病是一種慢性呼吸道傳染病,臨床上以咳嗽、氣喘和肺部典型的“蝦肉”樣變?yōu)樘卣鳎哂薪佑|傳染性高、死亡率低和誘發(fā)性強(qiáng)的特點(diǎn)。Mhp是重要的豬支原體病原之一,可導(dǎo)致豬地方性肺炎。不同年齡、性別、品種的豬群均可感染,以咳嗽和氣喘為主要癥狀。李鵬[37]等根據(jù)GenBank中登錄的Mhp的核苷酸序列,設(shè)計4條特異性引物,用外引物進(jìn)行PCR反應(yīng),對內(nèi)外引物濃度、dNTP+和MgSO4濃度及Bst DNA聚合酶用量等進(jìn)行優(yōu)化,建立MhpLAMP檢測方法,應(yīng)用該方法檢測Pm、APP、肺炎雙球菌、支氣管敗血波氏桿菌、Hps和鏈球菌均呈陰性,當(dāng)Mhp的拷貝數(shù)高于3時,均可檢測到該病原體。
剛地弓形蟲可引起豬弓形蟲病,弓形蟲通過口、眼、鼻、呼吸道、腸道及皮膚等途徑侵入豬體,以高熱、呼吸及神經(jīng)癥狀及繁殖障礙為特征。王玉嬌等[38]建立了豬弓形蟲病LAMP檢測方法,結(jié)果顯示,該法在樣本DNA稀釋3×105倍后仍可檢出,該方法擴(kuò)增不出新孢子蟲、瑟氏泰勒蟲及豬附紅細(xì)胞體等病原體DNA,表明建立的LAMP方法具有靈敏、特異、快速等優(yōu)點(diǎn),適合于豬弓形蟲病的檢測。豬附紅細(xì)胞體病是由豬附紅細(xì)胞體寄生于豬紅細(xì)胞表面或游離在血漿中引起豬的以貧血、黃疸、發(fā)熱等為主要臨床特征的豬附紅細(xì)胞體病,該病也是一種人畜共患病。李月梅等[39]建立了豬附紅細(xì)胞體的LAMP檢測方法,結(jié)果顯示,用10倍系列稀釋的DNA樣品對該檢測方法的靈敏度進(jìn)行了測試,結(jié)果表明:利用LAMP技術(shù)成功檢測到豬附紅細(xì)胞體基因區(qū),該法最低可檢測5×105倍稀釋的DNA量,并且特異性強(qiáng),對新孢子蟲、弓形蟲、瑟氏泰勒蟲病原體檢測均為陰性。
LAMP技術(shù)作為一種快速基因擴(kuò)增技術(shù),自發(fā)明以來,在國內(nèi)外疾病、衛(wèi)生、食品及環(huán)境等多個領(lǐng)域都取得了重大成就,近年來受到了越來越多的關(guān)注,LAMP是整個過程均在恒溫條件下進(jìn)行,不需要昂貴儀器設(shè)備,而易在基層部門普及的檢測技術(shù),避免了常規(guī)PCR對于溫度循環(huán)的特殊要求所帶來的各種不便,可快速、準(zhǔn)確地做出傳染性病病原學(xué)診斷,從而及時有效控制疫情,使養(yǎng)殖場損失降到最低。但LAMP檢測技術(shù)同樣存在一些不足,一是LAMP對于引物設(shè)計要求很高,需要設(shè)計的引物數(shù)目多,結(jié)構(gòu)復(fù)雜。二是檢測靈敏度太高,易因空氣中的氣溶膠污染而產(chǎn)生假陽性結(jié)果。三是在LAMP擴(kuò)增結(jié)果判定方面也存在一定的問題,當(dāng)以瓊脂糖凝膠電泳法判定結(jié)果時,結(jié)果為梯形條帶,不易鑒別非特異性擴(kuò)增。當(dāng)焦磷酸鎂白色沉淀和體系中添加染料法判定結(jié)果時,可能存在因結(jié)果顏色不明顯而造成肉眼觀察不便捷及誤判,另外,當(dāng)有非特異擴(kuò)增時,染料也可結(jié)合,影響結(jié)果判定。當(dāng)采用微流控芯片和實時濁度儀法判定結(jié)果時,則需要購置昂貴的分析儀器。隨著研究的不斷深入,研究人員還將其與原位雜交、免疫捕獲、核酸雜交等技術(shù)進(jìn)行聯(lián)合,開發(fā)了很多有效的檢測方法,尤其是將環(huán)介導(dǎo)等溫擴(kuò)增與橫向流動試紙條技術(shù)結(jié)合,發(fā)展起來的新的將環(huán)介導(dǎo)等溫擴(kuò)增技術(shù)(LAMP)與橫向流動試紙條(LFD)聯(lián)合應(yīng)用,建立一種新的病原快速檢測技術(shù),即LAMP-LFD技術(shù)。使得LAMP現(xiàn)場檢測結(jié)果的觀察更加方便、直觀和準(zhǔn)確。并解決了擴(kuò)增產(chǎn)物形成氣溶膠污染環(huán)境,導(dǎo)致樣品間交叉污染的問題,開啟了基因檢測技術(shù)步入了基層養(yǎng)殖場的應(yīng)用新時代,極具推廣前景。目前已經(jīng)有科研人員在CSFV的檢測方面[40]進(jìn)行了一些探索,并取得了一定的成績,筆者認(rèn)為LAMP-LFD技術(shù)是未來LAMP檢測技術(shù)將來的發(fā)展的方向,在一些基層實驗室和流行病學(xué)調(diào)查等領(lǐng)域具有廣闊的應(yīng)用前景。
[1] NOTOMI T,OKAYAMA H,MASUBUCHI H,et al. Loop- mediated isothermal amplification of DNA[J].Nucleic Acids Research,2000,28(12):63.
[2] NAGAMINE K,WATANAGE K,OHTSUKA K,et al.Loop-mediated isothermal amplification reaction using a nondenatured template[J].Clin Chem,2001,47(9):1742-1743.
[3] MORI Y,NAGAMINE K,TMITA N,et al.Detection of Loop-mediated isothermal amplification reaction by turbidity derived from magne?sium pyrophosphate formation[J].Bioch and Bioph ResCom,2001,289(1):150-154.
[4] 時建立,彭喆,郭立輝,等.豬霍亂沙門氏菌LAMP檢測方法的建立與應(yīng)用[J].中國動物檢疫,2015,32(8):68-71,75.
[5] REAMS R Y,GLICKMAN L T,HARRINGTON D D,et a1.Streptococcus suis infection in swine:a retrospective study of 256 cases.PartⅡ.Clinical signs,gross and microscopic lesions,and coexisting microorganisms[J].J Vet Diagn Invest,1994,6(3):326-334.
[6] 江定豐,陳靈芝.豬鏈球菌2型感染豬和人的現(xiàn)狀及研究進(jìn)展[J].動物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2008,29(5):82-85.
[7] 張九州,李歡,楊霞,等.豬鏈球菌血清2型環(huán)介導(dǎo)等溫擴(kuò)增快速檢測方法的建立[J].中國獸醫(yī)科學(xué),2012,42(4):384-389.
[8] 李凱年,逯德山.副豬嗜血桿菌病防治研究的新進(jìn)展[J].豬業(yè)科學(xué),2007,24(12):32-33.
[9] 車勇良,陳如敬,王隆柏,等.副豬嗜血桿菌可視化LAMP檢測方法的建立與應(yīng)用[J].西北農(nóng)林科技大學(xué)學(xué)報(自然科學(xué)版),2013,41(12):61-66.
[10] 劉亞娟,聶福平,楊俊,等.豬傳染性胸膜肺炎放線桿菌LAMP方法的建立[J].中國獸醫(yī)學(xué)報,2016(2):200-205.
[11] 孫建華,蔣惠婷,朱玉欣,等.豬多殺性巴氏桿菌環(huán)介導(dǎo)等溫擴(kuò)增檢測方法的建立[J].中國預(yù)防獸醫(yī)學(xué)報,2014,36(12):957-960.
[12] 蔡克周,薛崇浪,張旻,等.環(huán)介導(dǎo)等溫擴(kuò)增檢測豬血中金黃色葡萄球菌[J].肉類研究,2012,26(11):27-30.
[13] 于新友,李天芝,苗立中,等.分子生物學(xué)技術(shù)在豬瘟野毒與兔化弱毒鑒別診斷方法中的研究進(jìn)展[J].豬業(yè)科學(xué),2015,32(1):76-78.
[14] 張改平,何文博,王德國,等.豬瘟強(qiáng)毒株與兔化弱毒疫苗株的LAMP鑒別檢測[J].鄭州大學(xué)學(xué)報(理學(xué)版),2014,46(3):85-90.
[15] 鄭新添,黃其春,黃翠琴,等.豬瘟病毒環(huán)介導(dǎo)等溫擴(kuò)增快速檢測方法的建立[J].黑龍江畜牧獸醫(yī),2015(9):166-168,270.
[16] 蒲靜,汪琳,尹羿,等.豬繁殖與呼吸綜合征病毒美洲型RT-LAMP檢測方法建立[J].中國動物檢疫,2015,32(2):57-62.
[17] 羅忠永,王印,楊澤曉.豬繁殖與呼吸綜合征病毒LAMP檢測方法的建立[J].動物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2016,37(3):1-5.
[18] 張莉,鄢明華,王東,等.豬偽狂犬病病毒環(huán)介導(dǎo)等溫擴(kuò)增檢測方法的建立[J].中國獸醫(yī)科學(xué),2011,41(7):723-727.
[19] 王樹芬,工德國,薛白,等.可視化LAMP快速檢測豬偽狂犬病毒[J].河南農(nóng)業(yè)科學(xué),2012,41 (6):140-143.
[20] 楊澤曉,侯義宏,曾輝,等.豬圓環(huán)病毒2型LAMP檢測方法的建立與應(yīng)用[J].中國獸醫(yī)科學(xué),2014,44(2):152-158.
[21] 胡瑞麗,倪建平,趙笑,等.豬圓環(huán)病毒2型LAMP可視化快速檢測方法的研究[J].上海農(nóng)業(yè)學(xué)報,2016,32(1):23-28.
[22] 劉業(yè)兵,張磊,寧宜寶,等.豬細(xì)小病毒LAMP檢測方法的建立[J].中國農(nóng)業(yè)科學(xué),2010,43(14):3012-3018.
[23] 陳星瑤,張子群,王曉龍.豬細(xì)小病毒LAMP檢測方法的建立[J].中國動物保健,2014,16(8):9-12.
[24] 盧冰霞,劉磊,秦毅斌,等.豬流行性乙型腦炎RT-LAMP方法的建立與初步應(yīng)用[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2013,41(12):5359-5361,5365.
[25] 周玉鵬,張亮,伍銳,等.基因Ⅰ型和基因Ⅲ型日本腦炎病毒RT-LAMP鑒別檢測方法的建立[J].中國獸醫(yī)科學(xué),2016,46(2):135-141.
[26] GOU H,DENG J,WANG J,et al.Rapid and sensitive detection of porcine epidemic diarrhea virus by reverse transcription lamp-mediated isothermal amplification combined with a vertical flow visualization strip[J]Mol Cell Probes,2015,29(1):48-53.
[27] 湯小真,陳露薇,盧榮彬,等.基于鈣黃綠素顯色的可視化LAMP檢測豬流行性腹瀉病毒的研究[J].中國畜牧獸醫(yī),2015,42(2):331-336.
[28] 高睿澤,白云云,李訓(xùn)良,等.豬傳染性胃腸炎病毒RT-LAMP檢測方法的建立及應(yīng)用[J].中國獸醫(yī)科學(xué),2015,5(6):572-577.
[29] 蘇霞,楊兵,周宏專,等.H1N1豬流感病毒環(huán)介導(dǎo)等溫擴(kuò)增快速檢測方法的建立[J].中國動物檢疫,2010,27(5):24-27.
[30] 張莉,鄢明華,李秀麗,等.豬流感病毒LAMP檢測方法的建立[J].中國畜牧獸醫(yī),2014,41(7):64-68.
[31] 李健,陳沁,熊煒,等.口蹄疫病毒RT-LAMP檢測方法的建立[J].病毒學(xué)報,2009,25(2):137-142.
[32] 王彩霞,劉建,林祥梅,等.環(huán)介導(dǎo)恒溫擴(kuò)增技術(shù)快速檢測非洲豬瘟病毒[J].動物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2010(2):15-19.
[33] 張嶺嶺,王金鳳,李巍,等.豬腦心肌炎病毒RT-LAMP檢測方法的建立[J].中國獸醫(yī)學(xué)報,2012,32(1):44-47.
[34] 廖春燕,徐志文,周遠(yuǎn)成,等.豬巨細(xì)胞病毒環(huán)介導(dǎo)等溫擴(kuò)增方法的建立[J].中國獸醫(yī)學(xué)報,2015,35(1):11-15.
[35] 向海洋,聶福平,楊俊,等.豬細(xì)環(huán)病毒LAMP檢測方法的建立[J].中國預(yù)防獸醫(yī)學(xué)報,2013,35(9):747-751.
[36] 羅瓊,田純見,林志雄,等.水皰性口炎病毒RT-LAMP快速檢測方法的研究[J].畜牧與獸醫(yī),2009,41(7):24-28.
[37] 李鵬,馬艷嬌,于劍,等. 豬肺炎支原體環(huán)介導(dǎo)等溫擴(kuò)增檢測方法的建立[J].中國生物制品學(xué)雜志,2011,24(4):480-483.
[38] 王玉嬌,賈立軍.應(yīng)用環(huán)介導(dǎo)等溫擴(kuò)增技術(shù)(LAMP)檢測豬弓形蟲病[J].畜牧與獸醫(yī),2014,46(11):90-92.
[39] 李月梅,薛書江,邢瑩,等.豬附紅細(xì)胞體環(huán)介導(dǎo)等溫擴(kuò)增快速檢測方法的建立[J].黑龍江畜牧獸醫(yī),2010(5):104-105.
[40] 朱俊靈,葉佐東,鄧潔汝,等.豬瘟病毒RT-LAMP-LFD檢測方法的建立與應(yīng)用[J].華南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2016,37(1):1-7.
2016-06-01)
山東省現(xiàn)代農(nóng)業(yè)產(chǎn)業(yè)技術(shù)體系生豬產(chǎn)業(yè)創(chuàng)新團(tuán)隊項目(SDAIT-06-022-15);山東省自然科學(xué)基金(ZR2013CQ006);山東省自然科學(xué)基金項目(ZR2014CQ010)
于新友(1983-),男,漢族,執(zhí)業(yè)獸醫(yī)師,碩士,主要從事動物傳染病診斷技術(shù)研究.