鹿志偉 侯曉婉 高建明 張燕梅 楊子平 陸軍迎 李俊峰 趙艷龍 周文釗 易克賢
摘 要 以蘆筍“井崗701”胚狀體為試驗(yàn)材料,在構(gòu)建pCAMBIA3300-35S-hevein-NOS植物表達(dá)載體基礎(chǔ)上,采用農(nóng)桿菌介導(dǎo)的轉(zhuǎn)基因方法,探究菌液濃度、AS濃度、侵染時(shí)間和共培養(yǎng)時(shí)間等4個(gè)因素對(duì)蘆筍轉(zhuǎn)基因效率的影響,以期建立高效的蘆筍轉(zhuǎn)基因體系。結(jié)果表明:用菌液濃度OD600=0.6,AS終濃度為200 μmol/L的農(nóng)桿菌菌液進(jìn)行侵染,侵染10 min后,暗培養(yǎng)4 d的轉(zhuǎn)基因效率最佳,經(jīng)PCR檢測(cè),陽性轉(zhuǎn)化率達(dá)21%,獲得了轉(zhuǎn)基因幼苗。本實(shí)驗(yàn)構(gòu)建了完整的農(nóng)桿菌介導(dǎo)的蘆筍遺傳轉(zhuǎn)化體系。
關(guān)鍵詞 蘆筍;農(nóng)桿菌介導(dǎo);遺傳轉(zhuǎn)化體系
中圖分類號(hào) S644.6 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼 A
Abstract Embryoids derived from asparagus“Jinggang 701”were chosen as the experimental materials. With construction of plant expression vector-pCAMBIA3300-35S-hevein-NOS, the effects of liquid bacterial concentration, AS concentration, infection time and co-culture time on asparagus transgenic efficiency were explored by the agrobacterium-mediated transgenic method. The high-efficiency transgenic system of asparagus was expected to be established in this study. The result showed that the optimal infection conditions were liquid bacterial concentration OD600=0.6, adding AS up to final concentration of 200 μmol/L, infecting for 10min and culturing under darkness for 4 d, which made the transformation rate up to 21% and got transgenic plant.
Key words Asparagus(Asparagus officinalis L.);Agrobacterium-mediated;Genetic transformation system
doi 10.3969/j.issn.1000-2561.2016.08.009
蘆筍(Asparagus officinalis L.)屬于天門冬屬的多年生草本植物,在歐洲、亞洲、澳大利亞以及美洲的分布尤為廣泛,中國(guó)是蘆筍的主要生產(chǎn)國(guó)之一[1]。蘆筍除了具有重要的食用價(jià)值外,還對(duì)多種疾病具有良好的治療效果,如降血糖、抗癌等,享有“蔬菜之王”的美譽(yù)[2-4]。當(dāng)前市場(chǎng)上流行的蘆筍品種雖然高產(chǎn)但是均易感病,尤其是莖枯病嚴(yán)重影響著蘆筍的產(chǎn)量,高產(chǎn)、抗病蘆筍新品種的選育已成為當(dāng)務(wù)之急。新品種選育主要有雜交育種和轉(zhuǎn)基因育種2種方式,雜交育種的隨機(jī)性、過程繁瑣、育種周期長(zhǎng)等特征致使新品種培育具有很大的不可控性,短期內(nèi)難以得到抗病高產(chǎn)的蘆筍新品種。而轉(zhuǎn)基因育種則不同,其可以對(duì)植株性狀進(jìn)行定向的改變,品種選育周期短、可控性高,日益成為品種選育的首選方式。
Hevein基因又稱為橡膠樹凝集因子基因,其表達(dá)產(chǎn)生的橡膠樹凝集因子是一個(gè)富含Cys和Gly的小分子單鏈蛋白質(zhì),具有結(jié)合幾丁質(zhì)的作用,是乳膠中橡膠粒子凝集的主要影響因素,也是乳膠中黃色物質(zhì)的主要蛋白質(zhì)之一[5]。后來從甜菜葉片、小麥等植物種子中也發(fā)現(xiàn)了類似的hevein-like蛋白,經(jīng)研究發(fā)現(xiàn)hevein和hevein-like蛋白在植物體內(nèi)和體外還表現(xiàn)出廣譜的抗菌性,對(duì)細(xì)菌、真菌等病原菌都具有良好的抑菌性能[6-8]。
目前,國(guó)內(nèi)外有關(guān)蘆筍轉(zhuǎn)基因育種的相關(guān)研究較少,在國(guó)內(nèi)尚未有相關(guān)報(bào)道,而國(guó)外僅3人對(duì)蘆筍轉(zhuǎn)基因有過報(bào)道:Hernalsteens等[9]將空的根癌農(nóng)桿菌轉(zhuǎn)入蘆筍莖中,并成功地在轉(zhuǎn)化植株中檢測(cè)到胭脂堿和農(nóng)桿菌素堿,證明根癌農(nóng)桿菌成功地轉(zhuǎn)入了蘆筍中。Bytebier等[10]將含有NOS-APHⅡ基因的根癌農(nóng)桿菌成功轉(zhuǎn)入蘆筍中;Limanton-Grevet等[11]將含有uidA和nptⅡ基因農(nóng)桿菌AGL1成功轉(zhuǎn)入蘆筍胚性系中,并對(duì)后代進(jìn)行了遺傳分析。雖然研究人員已成功將外源基因轉(zhuǎn)入蘆筍植株中,但是轉(zhuǎn)化體系中轉(zhuǎn)化率均較為低下,轉(zhuǎn)化周期長(zhǎng),且均無目的基因轉(zhuǎn)入。筆者在前人研究的基礎(chǔ)上,以蘆筍胚狀體作為外植體,在構(gòu)建含有35S-hevein-NOS表達(dá)元件的pCAMBIA3300植物表達(dá)載體基礎(chǔ)上,探究菌液濃度、AS濃度、侵染時(shí)間和共培養(yǎng)時(shí)間等4個(gè)因素對(duì)農(nóng)桿菌介導(dǎo)的蘆筍轉(zhuǎn)基因效率的影響,以期進(jìn)一步完善農(nóng)桿菌介導(dǎo)的蘆筍遺傳轉(zhuǎn)化體系,提高遺傳轉(zhuǎn)化率,并導(dǎo)入目的基因,為后期蘆筍轉(zhuǎn)基因抗病高產(chǎn)新品種選育奠定研究基礎(chǔ)。
1 材料與方法
1.1 材料
植物表達(dá)載體:pBI121、pCAMBIA3300,均由中國(guó)熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué)院熱帶生物技術(shù)研究所張樹珍實(shí)驗(yàn)室惠贈(zèng)。農(nóng)桿菌EHA105菌株和Puc57-hevein由本實(shí)驗(yàn)室保存。限制性內(nèi)切酶均為fermentas公司產(chǎn)品,DNA聚合酶和連接酶為NEB公司產(chǎn)品,其它分析純藥品及試劑盒。蘆筍“井崗701”購(gòu)自江西省農(nóng)業(yè)科學(xué)院。
1.2 方法
1.2.1 外植體制備 外植體制備方法參照鹿志偉等[12]的研究方法。
1.2.2 植物表達(dá)載體構(gòu)建 設(shè)計(jì)5′TGCTCTAGAAT
GAAATACTGTACTATGTTTAT3′(添加XbaⅠ酶切位點(diǎn))和5′CGAGCTCTCAGTTGGCACCGC3′(添加SacⅠ酶切位點(diǎn))引物對(duì)hevein基因進(jìn)行擴(kuò)增,隨后對(duì)擴(kuò)增得到的目的片段進(jìn)行電泳檢測(cè)。準(zhǔn)確無誤后,對(duì)擴(kuò)增得到的目的基因和pBI121進(jìn)行XbaⅠ和SacⅠ雙酶切,分別使用PCR產(chǎn)物回收試劑盒和膠回收試劑盒對(duì)二者進(jìn)行目的片段回收,將回收得到的目的基因和pBI121大片段進(jìn)行T4 DNA連接酶連接,獲得含hevein基因的pBI121載體(圖1)。隨后分別對(duì)改造后的pBI121載體和pCAMBIA3300進(jìn)行HindⅢ和EcoRⅠ雙酶切,使用膠回收試劑盒對(duì)pBI121進(jìn)行小片段回收,而對(duì)pCAMBIA3300則進(jìn)行大片段回收,對(duì)得到的2個(gè)片段進(jìn)行T4 DNA連接酶連接,從而完成含有35S-hevein-NOS基因表達(dá)元件的pCAMBIA3300植物表達(dá)載體構(gòu)建(圖2),最后采用凍融法將構(gòu)建好的植物表達(dá)載體轉(zhuǎn)入農(nóng)桿菌EHA105中,-20 ℃?zhèn)溆谩?/p>
1.2.3 蘆筍胚狀體對(duì)PPT的抗性實(shí)驗(yàn) 將蘆筍胚狀體切成0.6 cm2大小,添加至含0、5、10、20、40、80 mg/L PPT的轉(zhuǎn)化培養(yǎng)基中,每組實(shí)驗(yàn)添加20塊外植體,重復(fù)3次,培養(yǎng)20 d后,觀察蘆筍胚狀體生長(zhǎng)狀況并統(tǒng)計(jì)死亡率。
1.2.4 預(yù)培養(yǎng) 將培養(yǎng)好的蘆筍胚狀體切成0.6 cm2左右的小塊,置于預(yù)培養(yǎng)基上,26 ℃光培養(yǎng)2 d。預(yù)培養(yǎng)培養(yǎng)基:MS+4%蔗糖+800 mg/L谷氨酰胺+500 mg/L酸水解酪素+0.70 mg/L嘧啶醇+0.10 mg/L NAA+0.50 mg/L kinetin,pH5.8。
1.2.5 轉(zhuǎn)化菌液的制備 取-70 ℃保存含pCAMBI
A3300-35S-Hevein-NOS質(zhì)粒的轉(zhuǎn)化農(nóng)桿菌菌液20 μL,置于YEP固體培養(yǎng)基(含Kanamycin 50 mg/L和Rifampicin100 mg/L)中,涂布均勻。靜置30 min,28 ℃倒置培養(yǎng)2 d。挑取單菌落接種至含Kanamycin 50 mg/L和Rifampicin 100 mg/L 的YEP液體培養(yǎng)基中,28 ℃、250 r/min震蕩培養(yǎng)直至對(duì)數(shù)期(OD600約為0.55左右),5 500 r/min,-4 ℃離心8 min,收集菌體,液體轉(zhuǎn)化培養(yǎng)基懸浮。
1.2.6 侵染和共培養(yǎng) 使用液體轉(zhuǎn)化培養(yǎng)基將上述菌體OD600值分別調(diào)節(jié)為0.2、0.4、0.6、0.8。將預(yù)培養(yǎng)2d蘆筍胚狀體置于150 mL無菌錐形瓶中,同時(shí)錐形瓶中添加50 mL含轉(zhuǎn)化農(nóng)桿菌菌體和乙酰丁香酮(濃度分別為0、50、100、200 μmol/L)的液體轉(zhuǎn)化培養(yǎng)基,從而對(duì)胚狀體進(jìn)行農(nóng)桿菌侵染,侵染時(shí)間為5、10、20、40 min,26 ℃ 150 r/min振蕩。無菌濾紙擦干蘆筍胚狀體表面液體,轉(zhuǎn)移至固體轉(zhuǎn)化培養(yǎng)基中,26 ℃,暗培養(yǎng)2、4、6、8 d。
1.2.7 脫菌與選擇培養(yǎng) 使用200 mg/L Timentin對(duì)共培養(yǎng)后的蘆筍胚狀體進(jìn)行脫菌10 min,100 r/min輕輕振蕩,然后無菌水清洗3次。重復(fù)3次。無菌濾紙擦干蘆筍胚狀體表面液體。最后轉(zhuǎn)移至含Timentin和PPT的固體轉(zhuǎn)化培養(yǎng)基中,26 ℃,光培養(yǎng),直至原有胚狀體表面有新的胚狀體生成,上述每組實(shí)驗(yàn)添加80塊胚狀體,重復(fù)3次,統(tǒng)計(jì)抗性胚狀體轉(zhuǎn)化率,抗性胚狀體轉(zhuǎn)化率/%=抗性胚狀體個(gè)數(shù)/胚狀體處理總個(gè)數(shù)×100。
1.2.8 分子水平檢測(cè) PCR檢測(cè)是一種非常簡(jiǎn)單、快速和直接的轉(zhuǎn)基因苗檢測(cè)方法,本實(shí)驗(yàn)用此方法對(duì)抗性胚狀體進(jìn)行檢測(cè)。胚狀體經(jīng)PPT篩選后進(jìn)行PCR驗(yàn)證以及植株再生。采用OMEGA植物DNA提取試劑盒對(duì)抗性胚狀體進(jìn)行DNA提取,并進(jìn)行PCR檢測(cè),統(tǒng)計(jì)陽性轉(zhuǎn)化率。
1.2.9 抗性植株再生 將選擇培養(yǎng)后新長(zhǎng)出的胚狀體轉(zhuǎn)移到生苗培養(yǎng)基中,進(jìn)行苗誘導(dǎo)。
1.3 數(shù)據(jù)分析
使用SPSS19.0和Excel2007軟件對(duì)試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析[13-14]。
2 結(jié)果與分析
2.1 植物表達(dá)載體構(gòu)建
2.1.1 pBI121-Hevein載體的構(gòu)建 對(duì)pBI121-hevein植物表達(dá)載體進(jìn)行PCR擴(kuò)增以及電泳分析,發(fā)現(xiàn)有且僅有一條約276 bp目的基因條帶,與目的基因hevein相符(圖3)。
2.1.2 植物表達(dá)載體pCAMBIA3300-35S-Hevein-NOS的構(gòu)建 對(duì)pCAMBIA3300-35S-Hevein-NOS植物表達(dá)載體進(jìn)行雙酶切以及電泳分析,發(fā)現(xiàn)經(jīng)雙酶切后載體被分為2個(gè)片段,其中小片段大小為1 100 bp左右,與目的基因表達(dá)元件35S-Hevein-NOS相符(圖4)。
2.1.3 植物表達(dá)載體pCAMBIA3300-35S-Hevein-NOS轉(zhuǎn)化農(nóng)桿菌及其驗(yàn)證 對(duì)pCAMBIA3300-35S-Hevein-NOS植物表達(dá)載體進(jìn)行菌落PCR驗(yàn)證,發(fā)現(xiàn)在PCR目的條帶大小為1 100 bp左右,與目的基因表達(dá)元件35S-Hevein-NOS相符(圖5)。
2.2 蘆筍胚狀體對(duì)PPT抗性的研究
由表1和圖6可以看出,隨著PPT濃度的增加,蘆筍胚狀體發(fā)生萎縮、變黃直至死亡,死亡率逐漸增加,PPT濃度為20 mg/L時(shí)胚狀體全部死亡。
2.3 不同農(nóng)桿菌菌液濃度和侵染時(shí)間對(duì)蘆筍遺傳轉(zhuǎn)化的影響
由表2可知,不同菌體濃度對(duì)抗性胚狀體的轉(zhuǎn)化率存在顯著性差異(p<0.05),當(dāng)菌體濃度為0.6時(shí),轉(zhuǎn)化率最高。由表3可知,不同侵染時(shí)間對(duì)抗性胚狀體的轉(zhuǎn)化率不存在顯著性差異(p<0.05),為達(dá)到侵染時(shí)間最短以及轉(zhuǎn)化率較高的目標(biāo),侵染時(shí)間選擇10 min為佳。因此,農(nóng)桿菌菌液濃度OD600=0.6,侵染時(shí)間10 min時(shí)為最佳作用條件。
2.4 不同共培養(yǎng)時(shí)間對(duì)蘆筍遺傳轉(zhuǎn)化的影響
由表4可知,當(dāng)共培養(yǎng)時(shí)間為4 d和6 d時(shí),抗性胚狀體轉(zhuǎn)化率與其它處理相比差異顯著,轉(zhuǎn)化率分別為15.0%和14.0%。為了節(jié)省培養(yǎng)時(shí)間,同時(shí)又使轉(zhuǎn)化率達(dá)到最高,共培養(yǎng)時(shí)間選擇4 d為佳。
2.5 不同濃度AS對(duì)蘆筍遺傳轉(zhuǎn)化的影響
由表5可知,不同AS濃度對(duì)抗性胚狀體轉(zhuǎn)化率存在顯著性差異(p<0.05)。當(dāng)AS濃度為100、200 μmoL/L時(shí),抗性胚狀體轉(zhuǎn)化率與其它處理相比差異顯著,轉(zhuǎn)化率分別為16.0%和20.0%。為了使轉(zhuǎn)化率達(dá)到最高,AS添加濃度選擇200 μmoL/L作為最佳。
2.6 轉(zhuǎn)基因植株的PCR檢測(cè)
由圖7可知,陽性對(duì)照和再生蘆筍植株P(guān)CR結(jié)果中目的條帶大小一致,約為1 100 bp,大小與基因表達(dá)元件35S-Hevein-NOS相符。整個(gè)轉(zhuǎn)基因過程見圖8。
3 討論與結(jié)論
農(nóng)桿菌介導(dǎo)的植物遺傳轉(zhuǎn)化是一個(gè)非常復(fù)雜的過程,受外植體類型、菌液濃度、菌株類型、侵染時(shí)間、共培養(yǎng)時(shí)間、以及乙酰丁香酮濃度等多種因素影響,而且不同植物基因型、外植體其對(duì)應(yīng)的農(nóng)桿菌最佳侵染條件不同,轉(zhuǎn)化率也具有很大差異。農(nóng)桿菌作為轉(zhuǎn)化效果最好的植物轉(zhuǎn)化方式之一,目前為止已有很多相關(guān)研究,如周月等[15]通過農(nóng)桿菌介導(dǎo)法將LJAMP2基因成功導(dǎo)入“紅陽”泥猴桃中,其使用的最佳農(nóng)桿菌侵染條件為:共培養(yǎng)時(shí)間為2 d,農(nóng)桿菌菌液濃度為OD600=0.5,侵染時(shí)間為10 min,AS濃度為100 μmol/L,轉(zhuǎn)化率達(dá)到5.11%;Gnasekaran等[16]農(nóng)桿菌介導(dǎo)的蘭花轉(zhuǎn)基因中,最佳的農(nóng)桿菌侵染條件為:OD600=0.8,侵染時(shí)間30 min,共培養(yǎng)4 d,AS濃度為200 μmol/L,轉(zhuǎn)化率高達(dá)33.6%。
農(nóng)桿菌介導(dǎo)的蘆筍遺傳轉(zhuǎn)化體系的研究已有部分工作,如Bytebier等[17]使用愈傷組織作為外植體,經(jīng)過侵染、選擇培養(yǎng)以及植株再生等得到了轉(zhuǎn)基因蘆筍植株,但是轉(zhuǎn)化周期較長(zhǎng)。Bruno等[18]使用C58農(nóng)桿菌菌株,同時(shí)對(duì)3個(gè)基因型的蘆筍體細(xì)胞進(jìn)行轉(zhuǎn)化,檢測(cè)得到陽性植株,但是轉(zhuǎn)化率較低,為0.6%~4%。Limanton-Grevet等[19]使用AGL1Gin農(nóng)桿菌菌株,選用5個(gè)胚性系作為侵染對(duì)象,結(jié)果發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)化率為0.8%~12.8%,轉(zhuǎn)化率得到提高。本研究在綜合對(duì)比分析前人研究的基礎(chǔ)上,以蘆筍胚狀體作為侵染對(duì)象,采用EHA105農(nóng)桿菌菌株,并對(duì)菌體濃度、侵染時(shí)間、共培養(yǎng)時(shí)間等侵染條件進(jìn)行優(yōu)化。結(jié)果表明,蘆筍轉(zhuǎn)化率大大提高,最高可達(dá)21%。轉(zhuǎn)化周期得到有效地縮短,遺傳效率得到極大地提高。另外,實(shí)驗(yàn)中成功將hevein基因和bar基因轉(zhuǎn)入蘆筍植株中,有利于后期抗病、抗除草劑蘆筍新品種的選育。
參考文獻(xiàn)
[1] Huang X F, Lin Y Y, Kong L Y. Steroids from the roots of Asparagus officinalis and their cytotoxic activity[J]. Journal of Integrative Plant Biology, 2008, 50(6): 717-722.
[2] Nindo C I, Sun T, Wang S W, et al. Evaluation of drying technologies for retention of physical quality and antioxidants in Asparagus(Asparagus officinalis L.)[J]. Food Science and Technology, 2003, 36(5): 507.
[3] Hafizur R M, Kabir N,Chishti S. Asparagus officinalis extract controls blood glucose by improving insulin secretion and β-cellfunction in streptozotocin -induced type 2 diabetic rats[J]. British Journal of Nutrition, 2012, 108: 1 586-1 595.
[4] Jang D S, Cuendet M, Fong H H S, et al. Constituents of Asparagus officinalis evaluated for inhibitory activity against cyclooxygenase-2[J]. J Agric Food Chem, 2004, 52: 2 218-2 222.
[5] Gidrol X, Chrestin H, Tan H L, et al. Hevein, a lectin-like protein from Hevea brasiliensis (rubber tree) is involved in the coagulation of latex[J]. J BIOl Chem, 1994, 269: 9 278.
[6] 刁現(xiàn)民, 王永芳, 李 偉, 等. 抗除草劑基因Bar轉(zhuǎn)化谷子研究[C]. 全國(guó)作物遺傳育種學(xué)術(shù)研討會(huì)論文集, 2003: 613-618. [7] Davis E G, Sang Y M, Blecha F. Equine β-defensin-1:full-length cDNA sequence and tissue expression[J]. Vet Immunol Immunopathol, 2004, 99: 127-132.
[8] De Leeuw E, Li C Q, Zeng P Y, et al. Functional interaction of human neutrophil peptide-1 with the cell wall precursor lipidⅡ[J]. FEBS Lett, 2010, 584(8): 1 543-1 548.
[9] Hernalsteens J P, Thia-Toong L, Schell J, et al. An Agrobacterium-transformed cell culture from the monocot Asparagus officinalis[J]. The EMBO Journal, 1984, 3(13): 3 039-3 041.
[10] Bytebier B, Deboeck F, Greve H D, et al. T-DNA organization in tumor cultures and transgenic plants of the monocotyledon Asparagus officinalis[J]. Proc Nati Acad Sci, 1987, 84(15): 5 345-5 349.
[11] Limanton-Grevet A, Jullien M. Agrobacterium-mediated transformation of Asparagus officinalis L.: molecular and genetic analysis of transgenic plants[J]. Molecular Breeding, 2001, 7(2): 141-150.
[12] 鹿志偉, 高建明, 侯曉婉,等. 蘆筍組培快繁體系的建立[J]. 北方園藝, 2015(9): 83-86.
[13] 劉瑞江, 張業(yè)旺,聞崇煒,等. 正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)和分析方法研究[J]. 實(shí)驗(yàn)技術(shù)與管理, 2010, 27(9): 52-55.
[14] 高忠江, 施樹良, 李 鈺. SPSS方差分析在生物統(tǒng)計(jì)的應(yīng)用[J]. 現(xiàn)代生物醫(yī)學(xué)進(jìn)展, 2008, 8(11): 2 116-2 120.
[15] 周 月, 趙許朋, 吳秀華,等. 農(nóng)桿菌介導(dǎo)LJAMP2基因?qū)搿t陽獼猴桃及分子鑒定[J]. 生物工程學(xué)報(bào), 2014, 30(6):931-942.
[16] Gnasekaran P, Uddain J, Subramaniam S, et al. Agrobacterium-mediated transformation of the recalcitrant Vanda Kasems Delight Orchid with higher efficiency[J/OL]. The Scientific World Journal, 2014: http://dx.doi.org/10.1155/2014/583934.
[17] Bytebier B, Deboeck F, Greve H D, et al. T-DNA organization in tumor cultures and transgenic plants of the monocotyledon Asparagus officinalis[J]. Proc Nati Acad Sci, 1987, 84(15): 5 345-5 349.
[18] Bruno Delbreil, Phifippe Guerche t, M. Jullien. Agrobacterium-mediated transformation of Asparagus officinalis L. long-term embryogenic callus and regeneration of transgenic plants[J]. Plant Cell Reports, 1993, 12: 129-132.
[19] Limanton-Grevet A, Jullien M. Agrobacterium-mediated transfo-
rmation of Asparagus officinalis L.: molecular and genetic analysis of transgenic plants[J]. Molecular Breeding, 2001, 7(2): 141-150.