傷寒沙門菌質(zhì)粒pRST98對(duì)細(xì)菌生物膜形成能力及毒力的影響

劉珍，闕鳳霞，李嫄淵，吳淑燕，黃瑞

(蘇州大學(xué)醫(yī)學(xué)部病原生物學(xué)系，江蘇 蘇州 215123)

摘要：目的探討傷寒沙門菌質(zhì)粒pRST98對(duì)鼠傷寒沙門菌和大腸埃希菌生物膜形成能力及毒力的影響。方法將傷寒沙門菌質(zhì)粒pRST98接合轉(zhuǎn)移導(dǎo)入鼠傷寒沙門菌和大腸埃希菌，制備單個(gè)游離懸浮狀態(tài)下的細(xì)菌菌液；將接合導(dǎo)入質(zhì)粒pRST98前、后的受試菌分別在相同條件下形成生物膜，制備生物膜狀態(tài)下的菌液。浮游細(xì)菌與生物膜形成細(xì)菌調(diào)節(jié)至同一濃度后分別與CT26細(xì)胞進(jìn)行黏附侵襲、血清殺菌以及抗巨噬細(xì)胞吞噬實(shí)驗(yàn)，比較不同狀態(tài)下受試菌毒力的差異。結(jié)果傷寒沙門菌質(zhì)粒pRST98能夠促進(jìn)鼠傷寒沙門菌和大腸埃希菌形成生物膜；黏附實(shí)驗(yàn)顯示除大腸埃希菌外，鼠傷寒沙門菌在生物膜狀態(tài)下對(duì)CT26細(xì)胞的黏附力明顯增強(qiáng)，形成生物膜的細(xì)菌對(duì)CT26細(xì)胞的侵襲力明顯下降；生物膜狀態(tài)的鼠傷寒沙門菌和大腸埃希菌在兔血清和豚鼠血清中的存活率均高于浮游狀態(tài)；生物膜狀態(tài)下的鼠傷寒沙門菌在巨噬細(xì)胞內(nèi)的存活率明顯高于浮游狀態(tài)下的細(xì)菌。結(jié)論質(zhì)粒pRST98能夠促進(jìn)鼠傷寒沙門菌和大腸埃希菌形成生物膜；生物膜的形成能促進(jìn)細(xì)菌對(duì)細(xì)胞的黏附，同時(shí)抑制細(xì)菌對(duì)細(xì)胞的侵襲力；增強(qiáng)細(xì)菌抵抗血清殺菌及巨噬細(xì)胞吞噬的能力。

關(guān)鍵詞：傷寒沙門菌，質(zhì)粒pRST98；鼠傷寒沙門菌；大腸埃希菌；生物膜；毒力

中圖分類號(hào)：

文章編號(hào)：1673-8640(2015)10-1033-06R378.2

文獻(xiàn)標(biāo)志碼：A

DOI：10.3969/j.issn.1673-8640.2015.10.017

Abstract:ObjectiveTo investigate the influence of Salmonella typhi plasmid pRST98 on bacterial biofilm formation and virulence. MethodsSalmonella typhi plasmid pRST98 was conjugated into Salmonella typhimurium and Escherichia coli to form Salmonella typhimurium/pRST98 and Escherichia coli/pRST98. These bacteria were cultured under suitable conditions to form biofilm. The planktonic bacteria were prepared. Biofilm bacteria and planktonic bacteria were adjusted to the same concentration then carried on adhesion and invasion experiments with CT26，anti-serum killing experiments and anti-macrophage phagocytosis experiments to compare virulence in different states. ResultsSalmonella typhi plasmid pRST98 can advance biofilm formation of Salmonella typhimurium and Escherichia coli, and biofilm promoted all bacterium adhesion capabilities to CT26 except for Escherichia coli. The biofilm formation of Salmonella typhimurium and Escherichia coli decreased invasion capabilities to CT26 . The survival rates of Salmonella typhimurium and Escherichia coli in biofilm were higher than the bacteria in planktonic states for rabbit serum and guinea pig serum. Salmonella typhimurium survival rate within macrophages in biofilm state was significantly higher than that under planktonic state. Conclusions Plasmid pRST98 can promote the biofilm formation of Salmonella typhimurium and Escherichia coli. Biofilm formation promotes adhesion to cells while inhibiting invasion capability,and enhances anti-serum killing and anti-macrophage phagocytosis.

基金項(xiàng)目：江蘇省自然科學(xué)基金面上項(xiàng)目(BK2011286)

作者簡介：劉珍， 女， 1985年， 碩士， 技士，主要從事細(xì)菌生物膜形成的研究。

通訊作者：黃瑞， 聯(lián)系電話：0512-65880973。

收稿日期：(2014-12-10)

The influence ofSalmonellatyphiplasmid pRST98on bacterial biofilm formation and virulenceLIUZhen,QUEFengxia,LIYuanyuan,WUShuyan,HUANGRui.(DepartmentofPathogenicBiology,MedicalCollege,SoochowUniversity,JiangsuSoochow215123,China)

Key words:Salmonellatyphi; Plasmid pRST98;Salmonellatyphimurium;Escherichiacoli; Biofilm; Virulence

細(xì)菌生物膜(biofilm，BF)是指細(xì)菌在生長過程中，附著在有生命或無生命體表面形成的由細(xì)菌及其分泌的水合性基質(zhì)所組成的膜樣復(fù)合物[1]。在微生物感染的防治和研究領(lǐng)域，細(xì)菌生物膜已引起臨床醫(yī)生和科研人員的極大關(guān)注。據(jù)美國國家健康研究所報(bào)道，大約80%人類細(xì)菌性感染由生物膜中的細(xì)菌引起[2]。

鼠傷寒沙門菌是一種常見的人畜共患病原菌[3]。有數(shù)據(jù)顯示沙門菌生物膜與肝癌和膽囊癌的發(fā)生有相關(guān)性[4]；大腸埃希菌黏附于導(dǎo)尿管表面或尿道上皮細(xì)胞表面形成生物膜，是導(dǎo)尿管相關(guān)尿路感染(catheter-associated urinary tract infection，CAUTI)最重要的原因[5]。

傷寒沙門菌質(zhì)粒pRST98是本實(shí)驗(yàn)室在一次暴發(fā)于我國的傷寒流行中分離鑒定的一個(gè)獨(dú)有的傷寒沙門菌質(zhì)粒。既往研究證實(shí)該質(zhì)粒除編碼抗藥性外還能增強(qiáng)宿主菌的毒力[6]。此外pRST98還是一種接合性質(zhì)粒，在自然環(huán)境和實(shí)驗(yàn)室條件下均可以進(jìn)入到鼠傷寒沙門菌和大腸埃希菌內(nèi)，對(duì)疾病和耐藥性的傳播具有非常重要的作用[6]。因此，我們選取這2種細(xì)菌作為宿主菌，探索此質(zhì)粒對(duì)宿主細(xì)菌生物膜形成能力的影響，同時(shí)比較2種細(xì)菌在形成生物膜后細(xì)菌毒力的差異。

材料和方法

一、菌株與細(xì)胞株

鼠傷寒沙門菌標(biāo)準(zhǔn)毒株χ3306(簡稱χ3306)及弱毒株χ3337(簡稱χ3337，由χ3306消除其質(zhì)粒后得到)由美國亞利桑那州立大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院的Roy Curtiss Ⅲ教授惠贈(zèng)；鼠傷寒沙門菌χ3337/pRST98(簡稱χ3337/pRST98)是將傷寒沙門菌質(zhì)粒pRST98接合轉(zhuǎn)移導(dǎo)入χ3337中形成的接合子；本實(shí)驗(yàn)室保存的大腸埃希菌K12W1485不含質(zhì)粒，系經(jīng)實(shí)驗(yàn)室誘變僅在染色體上有利福平耐藥基因的、無性菌毛的雌性菌(以E.coli表示)；將傷寒沙門菌質(zhì)粒pRST98經(jīng)接合轉(zhuǎn)移導(dǎo)入E.coli中得到的接合子E.coliK12W1485/pRST98(以E.coli/pRST98表示)。

小鼠結(jié)腸癌細(xì)胞系CT26細(xì)胞購自上海中國科學(xué)院細(xì)胞庫。J774A.1細(xì)胞購自上海中國科學(xué)院細(xì)胞庫。

二、主要儀器和試劑

PHILIPS xL-20型掃描電子顯微鏡(荷蘭菲利浦公司)；TCS-SP2型共聚焦激光掃描顯微鏡(德國Leica公司)。兔血清(nomal rabbit serum, NRS)和豚鼠血清(guinea pig serum, GPS)分別分離自5只健康雌兔和5只健康豚鼠的血液，取血后4 ℃靜置過夜，離心收集血清，混合過濾除菌并做無菌試驗(yàn)后分裝備用。

三、實(shí)驗(yàn)方法

1. 傷寒沙門菌質(zhì)粒pRST98的接合轉(zhuǎn)移質(zhì)粒pRST98的接合轉(zhuǎn)移參照文獻(xiàn)[7]進(jìn)行。以攜帶pRST98的耐藥傷寒桿菌為供體，χ3337和E.coli為受體，選擇培養(yǎng)基為中國藍(lán)培養(yǎng)基含100 μg/mL利福平和供體菌上某一耐藥標(biāo)志的抗菌藥物，如20 μg/mL克拉霉素 、15 μg/mL卡那霉素、25 μg/mL四環(huán)素、25 μg/mL氨芐西林和25 μg/mL萘夫西林等。將供、受體菌分別接種于3 mL LB肉湯中，37 ℃振蕩培養(yǎng)6 h，按等比例接種于0.5 mL新鮮LB肉湯中。由于接合性質(zhì)粒具有在不同溫度時(shí)接合頻率不同的特點(diǎn)，故選擇37 ℃和26 ℃ 2種溫度混合培養(yǎng)3 h，取0.1 mL此菌液做適當(dāng)稀釋后均勻涂布于上述相應(yīng)的選擇性中國藍(lán)培養(yǎng)基，并同時(shí)作供、受體菌對(duì)照。37 ℃培養(yǎng)24或48 h后選擇接合子并進(jìn)行血清學(xué)、生化反應(yīng)鑒定并作藥敏試驗(yàn)和質(zhì)粒電泳檢測(cè)。比較pRST98結(jié)合前、后細(xì)菌生物膜的形成情況以及有無生物膜對(duì)待檢菌毒力和抵抗力的影響。受試菌為導(dǎo)入質(zhì)粒pRST98前、后的同一株細(xì)菌。

2. 浮游細(xì)菌的制備將保存于-80 ℃的受試菌接種于3 mL LB液體培養(yǎng)基，37 ℃培養(yǎng)過夜后轉(zhuǎn)移至血平板活化。將細(xì)菌接種至SS培養(yǎng)基37 ℃培養(yǎng)過夜，用接種環(huán)挑取無色傷寒沙門菌單菌落，分區(qū)劃線接種于LB固體培養(yǎng)基平板，37 ℃培養(yǎng)過夜，做生化和血清學(xué)鑒定后用于實(shí)驗(yàn)。每次使用前在LB平板上劃線接種后，挑取單個(gè)菌落至3 mL LB液體培養(yǎng)基，培養(yǎng)至對(duì)數(shù)生長期。細(xì)菌定量方法參照文獻(xiàn)[8]進(jìn)行。

3. 生物膜狀態(tài)菌液的制備LB肉湯培養(yǎng)過夜至對(duì)數(shù)生長期后，在600 nm下測(cè)定吸光度(A600 nm)值，檢測(cè)菌液濃度；同時(shí)做平板菌落計(jì)數(shù)，計(jì)算菌落形成單位(colony-forming unit，CFU)。將菌液濃度調(diào)整致1×1010CFU/mL，分別將等量待測(cè)菌加入含0.1%葡萄糖的LB肉湯后， 加入24孔板，每孔1 mL，24孔板用封口膜密封后培養(yǎng)3 d形成成熟生物膜。

4. 細(xì)菌黏附、侵襲力的檢測(cè)CT26細(xì)胞用含10% 胎牛血清的RPMI1640常規(guī)培養(yǎng)，胰酶消化后離心，調(diào)整細(xì)胞濃度為1.5×105CFU/mL，24孔板1 mL/孔，5% CO2、37 ℃平衡12 h待用。浮游細(xì)菌在A600 nm下測(cè)定菌液濃度，同時(shí)做平板菌落計(jì)數(shù)，計(jì)算CFU，調(diào)整菌液濃度。生物膜中的細(xì)菌使用超聲作用20 min，將其中的細(xì)菌釋放出來，并調(diào)整細(xì)菌濃度。將受試菌按感染復(fù)數(shù)(multiplicity of infection，MOI)=100∶1加入細(xì)胞培養(yǎng)板，450×g離心10 min，繼而在5% CO2、37 ℃條件下共培養(yǎng)1 h，用磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered saline，PBS)洗3次，加入預(yù)冷的細(xì)胞裂解液裂解細(xì)胞。裂解后的各組細(xì)胞做平板菌落計(jì)數(shù)檢測(cè)CFU，48 h后觀察并計(jì)數(shù)。細(xì)菌黏附力(%)=黏附細(xì)菌數(shù)/每孔加入細(xì)菌總數(shù)×100。細(xì)菌的侵襲力檢測(cè)方法基本同上，只是細(xì)菌與細(xì)胞共同孵育1 h后，棄去菌液并用PBS輕柔洗3遍，然后每孔加入含100 μg/mL阿米卡星的RPMI1640培養(yǎng)液，以殺死未侵入胞內(nèi)的細(xì)菌，作用3 h后按上法進(jìn)行細(xì)胞內(nèi)活菌計(jì)數(shù)。細(xì)菌侵襲率(%)=細(xì)胞內(nèi)細(xì)菌數(shù)/細(xì)胞內(nèi)外細(xì)菌總數(shù)×100。

5. 血清殺菌實(shí)驗(yàn)為區(qū)別血清殺菌過程中補(bǔ)體經(jīng)典途徑與旁路途徑的不同作用，將血清置于50 ℃水浴15 min，以滅活大多數(shù)參與旁路途徑(another complement pathway, ACP)的成分，并將全血清和1∶10稀釋的血清用于實(shí)驗(yàn)。將浮游細(xì)菌和生物膜狀態(tài)的細(xì)菌調(diào)整濃度至1×104CFU/mL。分別吸取浮游菌和來自生物膜中的菌液20 μL，各自加入含0.2 mL相應(yīng)血清的試管和不含血清的普通肉湯管。根據(jù)預(yù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果，選37 ℃ 2 h為殺菌的作用條件。用CFU計(jì)算存活細(xì)菌數(shù)。以上實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次，每份樣品均做2次，取其平均值。細(xì)菌存活率(%)=血清作用后CFU/對(duì)照組CFU×100。

6. 抗巨噬細(xì)胞吞噬實(shí)驗(yàn)將生物膜狀態(tài)和浮游狀態(tài)下的受試菌濃度調(diào)整至1×107CFU/mL待用。J774A.1細(xì)胞用含10%胎牛血清的RPMI1640培養(yǎng)基維持培養(yǎng)(含100 μg/mL鏈霉素和100 μg/mL青霉素)。實(shí)驗(yàn)時(shí)用胰酶消化貼壁生長的J774A.1細(xì)胞，使其分散，用不含抗菌藥物的培養(yǎng)液洗滌細(xì)胞3次，血細(xì)胞計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù)后將細(xì)胞濃度調(diào)整至5×105個(gè)/mL，分別加入6孔板，每孔1 mL。37 ℃、5% CO2條件下平衡1 h。將1 mL不同狀態(tài)的受試菌加入到各孔中，在37℃、5% CO2條件下與細(xì)胞共作用1 h。用含100 μg/mL阿米卡星的RPMI1640培養(yǎng)液離心洗滌3次以除去胞外菌，重新懸浮于含100 μg/mL阿米卡星的培養(yǎng)液中，此時(shí)定為“0”點(diǎn)，分別于0、10、30和60 min加入預(yù)冷的細(xì)胞裂解液裂解細(xì)胞，做細(xì)菌CFU計(jì)數(shù)。

四、統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

結(jié)果

一、 傷寒沙門菌質(zhì)粒pR ST98對(duì)宿主細(xì)菌生物膜形成的影響

結(jié)晶紫染色實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示，將傷寒沙門菌質(zhì)粒pRST98接合導(dǎo)入到鼠傷寒沙門菌和大腸埃希菌后，宿主細(xì)菌形成生物膜的能力明顯增強(qiáng)。與接合前比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)，見圖1。

圖1　傷寒沙門菌質(zhì)粒pR ST98對(duì)宿主細(xì)菌生物膜形成的影響

二、傷寒沙門菌質(zhì)粒pR ST98對(duì)不同狀態(tài)下受試菌黏附CT26細(xì)胞的影響

分別將浮游狀態(tài)和生物膜狀態(tài)下的實(shí)驗(yàn)菌株χ3306、χ3337、χ3337/pRST98、E.coli和E.coli/pRST98按MOI=100∶1與CT26細(xì)胞共培養(yǎng)，1 h后收集細(xì)胞用PBS洗滌，破膜后用平板菌落計(jì)數(shù)法檢測(cè)CFU，比較受試菌對(duì)細(xì)胞的黏附力。結(jié)果顯示在生物膜狀態(tài)和浮游狀態(tài)下，傷寒沙門菌質(zhì)粒pRST98對(duì)宿主細(xì)菌的黏附力無明顯差異(P>0.05)。除E.coli外，其余幾種受試菌在生物膜狀態(tài)下對(duì)細(xì)胞的黏附力明顯增強(qiáng)，與浮游狀態(tài)比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。與大腸埃希菌相比，鼠傷寒沙門菌對(duì)CT26細(xì)胞的黏附力更強(qiáng)，見圖2。

圖2　傷寒沙門菌質(zhì)粒pR ST98對(duì)不同狀態(tài)下受試菌黏附CT26細(xì)胞的影響

三、傷寒沙門菌質(zhì)粒pR ST98對(duì)不同狀態(tài)下受試菌侵襲CT26細(xì)胞的影響

傷寒沙門菌質(zhì)粒pRST98在生物膜和浮游狀態(tài)下對(duì)宿主菌侵襲CT26細(xì)胞的能力均無明顯影響，生物膜的形成能抑制各受試菌對(duì)CT26細(xì)胞的侵襲能力。生物膜狀態(tài)的鼠傷寒沙門菌對(duì)細(xì)胞的侵襲力與浮游狀態(tài)相比明顯下降(P<0.01)，大腸埃希菌在生物膜狀態(tài)下對(duì)細(xì)胞的侵襲力也低于浮游狀態(tài)(P<0.05)。見圖3。

圖3　傷寒沙門菌質(zhì)粒pR ST98對(duì)不同狀態(tài)下受試菌侵襲CT26細(xì)胞的影響

四、傷寒沙門菌質(zhì)粒pR ST98對(duì)不同狀態(tài)下受試菌抗血清殺菌能力的影響

χ3337/pRST98無論是浮游狀態(tài)還是生物膜狀態(tài)，其抗兔血清和豚鼠血清殺菌能力均明顯高于χ3337(P均<0.05)。由此可見，傷寒沙門菌質(zhì)粒pRST98能明顯提高宿主細(xì)菌不同狀態(tài)下的抗血清殺傷能力。生物膜狀態(tài)下的χ3306、χ3337和χ3337/pRST98在兔血清和豚鼠血清中的存活率均高于浮游狀態(tài)的細(xì)菌(P<0.05)，見圖4、圖5。

圖4　傷寒沙門菌質(zhì)粒pR ST98對(duì)不同狀態(tài)下受試菌兔血清殺菌抵抗力的影響

圖5　傷寒沙門菌質(zhì)粒pR ST98對(duì)不同狀態(tài)下受試菌豚鼠血清殺菌抵抗力的影響

無論是在浮游狀態(tài)還是生物膜狀態(tài)下，E.coli/pRST98抗兔血清和豚鼠血清殺菌能力均明顯高于E.coli，說明傷寒沙門菌質(zhì)粒pRST98能明顯提高大腸埃希菌抗血清殺傷能力。生物膜狀態(tài)的E.coli和E.coli/pRST98在兔血清和豚鼠血清中的存活率均高于浮游狀態(tài)(P<0.05)，見圖6。

圖6　傷寒沙門菌質(zhì)粒pR ST98對(duì)不同狀態(tài)下 E. coli抗血清殺菌能力的影響

五、傷寒沙門菌質(zhì)粒pR ST98對(duì)不同狀態(tài)下的受試菌抗巨噬細(xì)胞吞噬作用的影響

在不同時(shí)間點(diǎn)，巨噬細(xì)胞內(nèi)鼠傷寒沙門菌數(shù)量不一；且隨著時(shí)間延長，細(xì)胞內(nèi)的活菌數(shù)量下降。生物膜狀態(tài)下的鼠傷寒沙門菌在巨噬細(xì)胞內(nèi)的存活率明顯高于浮游狀態(tài)(P<0.05)。說明在生物膜狀態(tài)下，細(xì)菌抗巨噬細(xì)胞吞噬能力增強(qiáng)。在不同狀態(tài)下和各時(shí)間點(diǎn)，χ3337/pRST98在巨噬細(xì)胞內(nèi)的存活率均高于χ3337(P<0.05)。說明傷寒沙門菌質(zhì)粒pRST98在浮游狀態(tài)和生物膜狀態(tài)下均能促進(jìn)宿主菌抵抗巨噬細(xì)胞吞噬的能力。見圖7。

圖7　傷寒沙門菌質(zhì)粒pR ST98對(duì)不同狀態(tài)下鼠傷寒沙門菌抵抗巨噬細(xì)胞吞噬殺傷的影響

討論

傷寒沙門菌質(zhì)粒pRST98能明顯促進(jìn)鼠傷寒沙門菌和大腸埃希菌在實(shí)驗(yàn)室條件下形成生物膜。既往研究已經(jīng)證實(shí)接合性質(zhì)粒能促進(jìn)多種細(xì)菌形成生物膜。本研究首次在鼠傷寒沙門菌中證實(shí)此聯(lián)系。另外與大腸埃希菌相比，鼠傷寒沙門菌形成生物膜的能力較強(qiáng)。宿主菌的遺傳背景影響了接合性質(zhì)粒促進(jìn)細(xì)菌形成生物膜的過程。

傷寒沙門菌質(zhì)粒pRST98不僅能促進(jìn)游離狀態(tài)宿主細(xì)菌的毒力，也能促進(jìn)生物膜狀態(tài)下宿主細(xì)菌抗血清殺菌和抗巨噬細(xì)胞吞噬的能力。有文獻(xiàn)[9]報(bào)道，除傷寒沙門菌外所有致病沙門菌均有約8 Kb的與細(xì)菌血清抗性、黏附和定居有關(guān)的高度保守序列——沙門菌質(zhì)粒毒力(Salmonellaplasmid virulence，spv)基因。傷寒沙門菌質(zhì)粒pRST98上存在與spv基因中spvR和spvB同源性達(dá)99.6%的毒力基因片段。既往研究證實(shí)傷寒沙門菌質(zhì)粒pRST98能促進(jìn)宿主細(xì)菌形成生物膜，生物膜的形成有利于接合性質(zhì)粒在不同宿主菌之間的接合轉(zhuǎn)移[10]。 這兩方面可以互相影響，彼此促進(jìn)，加劇感染和疾病。

本研究結(jié)果顯示細(xì)菌生物膜的形成能明顯影響細(xì)菌的黏附侵襲、抗血清殺菌和抵抗巨噬細(xì)胞吞噬能力。菌毛是細(xì)菌生物膜的重要組分，這可能導(dǎo)致本研究中生物膜狀態(tài)下的鼠傷寒沙門菌χ3306、χ3337、χ3337/pRST98和E.coli/pRST98對(duì)CT26細(xì)胞的黏附力明顯增高。但是E.coli在兩種狀態(tài)下對(duì)細(xì)胞的黏附力無明顯差異，這可能與E.coli的弱毒性相關(guān)。

有研究報(bào)道，細(xì)菌csgD基因的表達(dá)能抑制沙門菌1型Ⅲ型分泌系統(tǒng)效應(yīng)蛋白如SopE2 和 SipA的表達(dá)，而csgD基因是細(xì)菌生物膜形成的關(guān)鍵基因[11]。CRULL等[12]在小鼠模型中發(fā)現(xiàn)，生物膜的形成能抑制鼠傷寒沙門菌侵襲腫瘤細(xì)胞。本研究在體外細(xì)胞模型中也證實(shí)了鼠傷寒沙門菌和大腸埃希菌在生物膜狀態(tài)對(duì)細(xì)胞的侵襲力明顯降低。在兩種不同的狀態(tài)下，與大腸埃希菌相比，鼠傷寒沙門菌對(duì)CT26細(xì)胞的侵襲力更高。這是因?yàn)镃T26細(xì)胞是小鼠結(jié)腸癌細(xì)胞，鼠傷寒沙門菌對(duì)其親和力較強(qiáng)。探討不同狀態(tài)下細(xì)菌對(duì)細(xì)胞黏附及侵襲性的差異在利用細(xì)菌作為工具開發(fā)抗腫瘤治療方案的領(lǐng)域具有重要的意義。

生物膜的形成可以誘導(dǎo)微生物某些重要基因的表達(dá)發(fā)生改變，以適應(yīng)不利的環(huán)境壓力[13]。大腸埃希菌的基因表達(dá)分析顯示，生物膜能促進(jìn)細(xì)菌中某些毒力基因的表達(dá)[14]。位于鼠傷寒沙門菌2型毒力島上的毒力基因sipA的表達(dá)隨著生物膜的形成而增加。而此基因突變會(huì)影響沙門菌生物膜的形成量。這說明了生物膜與細(xì)菌毒力之間有密切的聯(lián)系。銅綠假單胞菌作為研究生物膜的代表細(xì)菌，已有充分?jǐn)?shù)據(jù)說明生物膜狀態(tài)和浮游狀態(tài)下的銅綠假單胞菌的表型有明顯差異[15]。

細(xì)菌生物膜形成導(dǎo)致毒力產(chǎn)生變化，使人體的免疫系統(tǒng)不能有效地清除相關(guān)病原菌，導(dǎo)致某些部位出現(xiàn)遷延難治的感染癥狀?；蛩降难芯拷Y(jié)果顯示，與浮游狀態(tài)相比，生物膜狀態(tài)下某些毒力基因的表達(dá)增加；而且在生物膜形成進(jìn)程中可以發(fā)現(xiàn)，隨著生物膜的成熟，毒力基因的表達(dá)量呈上升趨勢(shì)[16]。另一種解釋是細(xì)菌生物膜的形成可能導(dǎo)致細(xì)菌某些病原相關(guān)抗體的隱藏，從而導(dǎo)致機(jī)體免疫系統(tǒng)不能及時(shí)發(fā)現(xiàn)病原菌并對(duì)其進(jìn)行攻擊殺傷。研究從慢性生物膜感染患者體內(nèi)分離到的細(xì)菌發(fā)現(xiàn)，這些細(xì)菌失去了鞭毛和菌毛等。在體外成熟的銅綠假單胞菌生物膜中分離到的銅綠假單胞菌也具有同樣的特征。細(xì)菌的這些變異是導(dǎo)致毒力差異的原因[17]。

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(本文編輯：龔曉霖)