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異體骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞對EAE大鼠神經(jīng)再生保護(hù)作用的研究

2015-12-18 07:32:18何展文劉木金李平甘羅向陽李棟方梁立陽
中國實用神經(jīng)疾病雜志 2015年14期
關(guān)鍵詞:脫髓鞘髓鞘陽性細(xì)胞

何展文 劉木金 孟 哲 李平甘 羅向陽 李棟方 梁立陽

中山大學(xué)孫逸仙紀(jì)念醫(yī)院兒科 廣州 510120

炎癥性脫髓鞘疾病是以神經(jīng)髓鞘脫失為主要或始發(fā)病變的神經(jīng)系統(tǒng)疾病,近來研究顯示軸索損害和神經(jīng)功能損傷同樣參與其病理生理過程,而且可能是疾病后期導(dǎo)致持續(xù)不可逆神經(jīng)功能障礙的主要原因[1-2]。如何能取得更滿意的治療效果,治療上不僅需要免疫調(diào)節(jié),更需要神經(jīng)保護(hù)再生治療。骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(bone marrow mesenchymal stem cells,BMSCs)不僅具有免疫調(diào)節(jié)功能,而且具有多向分化能力,可分化成神經(jīng)系統(tǒng)的神經(jīng)元和神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞,為細(xì)胞移植治療炎癥性脫髓鞘疾病開拓了新道路。本實驗研究擬在實驗性自身免疫性腦脊髓炎(experimental autoimmune encephalomyelitis,EAE)大鼠模型免疫后早期靜脈輸注BMSCs,觀察輸注后大鼠臨床癥狀和神經(jīng)功能變化,利用免疫組化方法檢測神經(jīng)元特異性烯醇化酶(NSE)、膠質(zhì)纖維酸性蛋白(GFAP)、2’,3’-環(huán)腺苷酸-3’-磷酸二酯酶(CNPase)表達(dá),觀察移植后的BMSCs在EAE 大鼠體內(nèi)存活、增殖、分化為神經(jīng)元、星形膠質(zhì)細(xì)胞和少突膠質(zhì)細(xì)胞情況,了解BMSCs對EAE的神經(jīng)再生的修復(fù)作用。

1 材料與方法

1.1 實驗動物 健康雌性SD 大鼠,體質(zhì)量190~220g,購自廣東省醫(yī)學(xué)動物實驗中心,合格證號:廣東省實驗動物檢測所合格證2008-0002號。本校北校區(qū)動物實驗中心按SPF級飼養(yǎng),環(huán)境溫度25 ℃,濕度70%,適應(yīng)性喂養(yǎng)1周,除實驗時間外,可自由攝食和飲水。健康Wistar大鼠,200g左右,購自中山大學(xué)實驗動物中心,合格證號:廣東省實驗動物檢測所合格證2008-0562號。

1.2 主要實驗材料 胎牛血清、DMEM 培養(yǎng)基購自美國HyClone公司,胰蛋白酶購置上海吉泰科技有限公司。FITC mouse IgG1 購 自BD pharmingen 公 司;Mouse anti-rat CD44、PE anti-rat CD3、PE mouse IgG1、PE anti-rat CD4、PE anti-rat CD8、PE anti-mouse/rat CD25 購 自Serotec 公 司;FITC anti-rat CD90、PE anti-rat CD106、PE anti-rat CD45、PE mouse IgG2a、PE anti-rat CD11b/c、PE Armenlan Hamster和PE anti-mouse/rat CD29 購 自Biolegend 公 司;CD34 PE 購 自Santa Cruz Biotechnology 公 司。MBP68-86(bs-0380p)購自北京博奧森生物技術(shù)有限公司。完全佐劑購自廣州捷倍斯生物科技有限公司。百日咳疫苗購自河北石家莊偉天科學(xué)儀器設(shè)備有限公司。NSE 鼠多克隆抗體、GFAP鼠多克隆抗體、CNPase鼠多克隆抗體購自英國Abcam 公司。SA1022 兔IgG 試劑盒、SA1021 小 鼠IgG 試劑盒 和AR1022DAB顯色試劑盒購自武漢博士德生物工程有限公司。

1.3 BMSCs的分離培養(yǎng)和表型鑒定 斷頸處死Wistar大鼠,放置超凈臺上,剪開大鼠后肢皮膚,充分暴露剝離腿部肌肉,取出股骨和脛骨。剪去其兩端骨骺,于10cm2培養(yǎng)皿內(nèi)使用含10%胎牛血清的DMEM 培養(yǎng)液沖洗骨髓。用骨髓間質(zhì)干細(xì)胞完全培養(yǎng)基反復(fù)吹打使之形成單細(xì)胞懸液,加入含10%胎牛血清的DMEM 培養(yǎng)液,接種于培養(yǎng)瓶中,37 ℃、5%CO2培養(yǎng)。貼壁3d后換液,每隔3d換液直至傳代,待細(xì)胞80%~90%融合的時候傳代,第4代(P4)用于實驗。用0.25%胰蛋白酶消化收集細(xì)胞移入離心管中,1 100r/min離心4min,棄去上清。加PBS溶液重懸細(xì)胞,吸取100μL 細(xì)胞懸液(約3.0×105個細(xì)胞)加入EP管內(nèi)。按量加入與PE或FITC標(biāo)記的IgG1、CD34、CD44、CD45、CD11b/c、CD29、CD90、CD105單克隆抗體,避光孵育30min,上機檢測。

1.4 方法

1.4.1 實驗分組:SPF 級SD 大 鼠45 只,按體質(zhì)量大小編號,隨機分為3組,分別為EAE模型組、正常對照組、EAE模型BMSCs移植組。EAE模型組:每只大鼠用10%水合氯醛按體質(zhì)量0.3mL/100g經(jīng)腹腔注射麻醉至四肢松弛,75%酒精消毒足墊,四足墊皮下注射含有100μg(0.4 mL)的MBP68-86-CFA 混合免疫乳劑,免疫當(dāng)日及2d后分別在兩側(cè)腹股溝皮下注射百日咳疫苗0.1mL(約1×109個菌體);免疫當(dāng)天分別在尾靜脈靜注0.4mL等量生理鹽水。以免疫當(dāng)天為第0天。正常對照組:方法和步驟同上,但免疫誘導(dǎo)劑采用生理鹽水制成的混合乳劑,注射后當(dāng)日及2d后分別在兩側(cè)腹股溝皮下注射0.1 mL 生理鹽水。EAE 模型BMSCs移植組:采用上述方法建立EAE 模型,免疫后第5天在尾靜脈靜注CFSE標(biāo)記后BMSCs(4×106/只,0.4mL),大鼠共20只,隨機分為4組,分別在移植后第7天、15天、21天及30天處死。

1.4.2 神經(jīng)功能評價:免疫后所有動物每天稱體質(zhì)量并進(jìn)行神經(jīng)功能評分:0分:正常;1分:鼠尾張力障礙;2分:部分后肢癱瘓或步態(tài)不穩(wěn);3分:完全后肢癱瘓;4分:完全后肢癱瘓加部分或完全前肢癱瘓;5分:瀕死狀態(tài)或死亡;癥狀介于兩條標(biāo)準(zhǔn)之間者用±0.5分表示。

1.4.3 免疫組織化學(xué)檢測:各組大鼠按相應(yīng)的時間點以10%水合氯醛腹腔注射麻醉后,用100mL 預(yù)冷的多聚甲醛經(jīng)主動脈灌流至無血液流出時,小心取出脊髓及腦組織于10%福爾馬林中保存。冠狀位切取小段頸髓及部分腦組織,石蠟包埋,連續(xù)切片,片厚5μm。分別進(jìn)行NSE、GFAP、CNPase免疫組織化學(xué)檢測,觀察輸注后大鼠腦內(nèi)及脊髓處的神經(jīng)元、星形膠質(zhì)細(xì)胞和少突膠質(zhì)細(xì)胞的表達(dá)情況。組織切片置于二甲苯中浸泡10min,更換后再PBS浸泡10min;無水乙醇中浸泡5min;95%乙醇中浸泡5min;90%乙醇中浸泡5min;80%乙醇中浸泡5min;70%乙醇中浸泡5min;蒸餾水中浸泡5min。用3%H2O2,室溫封閉10min,蒸餾水洗3次,PBS洗2次。滴加5%BSA 封閉液,室溫20min,甩去多余液體。滴加NSE(1∶100)、GFAP(1∶4 000)和CNPase(1∶1 600)一抗,4℃過夜,PBS洗3次。滴加相應(yīng)的生物素化二抗,37 ℃20min,PBS洗3次。滴加鏈霉素化親和素試 劑,37 ℃20 min,PBS 洗4 次。DAB 顯色試劑盒顯色。蘇木素復(fù)染2 min、飽和磷酸氫二鈉分化。脫水、透明、封片。光學(xué)顯微鏡下觀察,胞漿中有棕黃色顆粒的為陽性細(xì)胞。每張切片選擇10個表達(dá)最強的視野,計數(shù)陽性細(xì)胞數(shù)后取平均值。

1.4.4 腦和脊髓的病理組織學(xué)檢查:動物處死后,取腦室周圍及脊髓腰膨大部位組織標(biāo)本,石蠟包埋,切片5μm 厚,行HE染色和髓鞘染色,并在光鏡下進(jìn)行組織學(xué)評分,0:無炎癥變化;1:炎癥細(xì)胞浸潤僅限于血管周圍和脊膜周圍;2:脊髓內(nèi)輕微的炎癥細(xì)胞浸潤(1~10個細(xì)胞/片子);3:脊髓內(nèi)中度的炎癥細(xì)胞浸潤(11~100個細(xì)胞/片子);4:脊髓內(nèi)嚴(yán)重的炎癥細(xì)胞浸潤(>100個細(xì)胞/片子)。

1.5 統(tǒng)計學(xué)處理 所有數(shù)據(jù)均采用SPSS 16.0軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計。計量資料采用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示。采用單因素方差分析,兩兩比較采用LSD-t法。檢驗水準(zhǔn)α=0.05,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 BMSCs分離培養(yǎng)與表型鑒定結(jié)果 原代培養(yǎng)的骨髓細(xì)胞接種第3天,部分貼壁生長,多呈長梭形、三角形和多角形,即為BMSCs;于第7~12天開始增長明顯加快,具有一定的方向性,呈束狀或放射狀排列;第14天左右,單種細(xì)胞數(shù)量多,細(xì)胞貼壁率達(dá)90%。傳代培養(yǎng)的BMSCs形態(tài)多為長梭形,較原代細(xì)胞體積增大,增殖速度加快,貼壁能力增強,約7d貼壁率達(dá)80%~90%。通過流式檢測第4代Wistar大鼠BMSCs的表型,結(jié)果顯示:強 表 達(dá)CD29、CD44 和CD90,少量表達(dá)CD34 和CD106,幾乎不表達(dá)CD11b 和CD45。

2.2 BMSCs對EAE大鼠神經(jīng)功能評分的影響 所有EAE模型大鼠未治療時均出現(xiàn)不同程度的臨床癥狀,表現(xiàn)為精神反應(yīng)欠差,活動及進(jìn)食減少,體質(zhì)量下降,毛發(fā)疏松或脫毛,失去光澤,全身縮成一團(tuán),弓背,腹脹,尾巴無力,后肢、前肢、偏癱或全身癱瘓,部分出現(xiàn)共濟(jì)失調(diào),瀕死甚至死亡。我們在免疫后第5天靜脈輸注BMSCs,BMSCs移植組大鼠高峰期評分及整個病程的平均評分較EAE模型組顯著降低(P<0.05)(表1),且發(fā)病時間延遲,發(fā)病率降低。

2.3 免疫組織化學(xué)檢測 EAE 模型組和BMSCs移植組NSE陽性細(xì)胞較正常對照組明顯減少,其中在移植后第15天和第21天減少最明顯(P<0.05)。BMSCs移植組在第7天陽性細(xì)胞數(shù)較EAE 模型組表達(dá)水平增多,但并無顯著性差異,而第15天、第21天和第30天NSE陽性細(xì)胞數(shù)明顯高于EAE模型組的表達(dá)水平(P<0.05)(表2、圖1)。各個時間點GFAP陽性細(xì)胞數(shù)無論是EAE 模型組還是BMSCs移植組,與正常對照組的表達(dá)水平并無顯著性差異(表3、圖2)。EAE模型組CNPase染色陽性細(xì)胞數(shù)較正常對照組明顯減少(P<0.05)。BMSCs移植組在第7天陽性細(xì)胞數(shù)較正常對照組表達(dá)水平降低(P<0.05),隨著時間遷移,BMSCs移植組CNPase染色陽性細(xì)胞數(shù)表達(dá)逐漸增加,各時間點CNPase染色陽性細(xì)胞數(shù)明顯高于EAE 模型組的表達(dá)水平(P<0.05)(表4、圖3)。

2.4 BMSCs對EAE腦脊髓病理檢查的影響 腦脊髓病理檢查示EAE組大鼠腦和脊髓內(nèi)多處血管“袖套”樣改變,表現(xiàn)為血管周圍大量炎癥細(xì)胞浸潤,神經(jīng)元變性,部分出現(xiàn)膠質(zhì)細(xì)胞結(jié)節(jié)。BMSCs移植組與EAE 模型組比較,各時間點病理示炎癥細(xì)胞浸潤顯著減少,脫髓鞘改變也顯著減輕,神經(jīng)元變性數(shù)目明顯減少。

表1 各組大鼠神經(jīng)功能評分

表2 不同時間大鼠腦組織切片NSE染色陽性細(xì)胞數(shù)比較 (±s,n=5)

表2 不同時間大鼠腦組織切片NSE染色陽性細(xì)胞數(shù)比較 (±s,n=5)

注:EAE group 比 較,* P <0.05,與Negative control group,△P<0.05

組別7d 15d 21d 30d EAE group 14.63±6.36△ 8.34±4.22△ 6.25±2.59△ 6.85±3.25△Negative control 24.37±4.12 BMSCs group 17.28±4.62 15.47±3.78△16.78±4.59*△18.41±4.25*

圖1 NSE在大鼠腦中表達(dá)情況

表3 不同時間大鼠腦組織切片GFAP染色陽性細(xì)胞數(shù)比例 (±s,n=5)

表3 不同時間大鼠腦組織切片GFAP染色陽性細(xì)胞數(shù)比例 (±s,n=5)

組別7d 15d 21d 30d EAE group 15.31±4.08 16.19±3.84 15.87±3.53 15.01±4.3 5 Negative control 14.48±3.53 BMSCs group 13.73±4.66 14.53±2.99 15.45±4.55 16.09±3.2 2

圖2 GFAP在大鼠腦中表達(dá)情況

表4 不同時間大鼠腦組織切片CNPase染色陽性細(xì)胞數(shù)比較 (±s,n=5)

表4 不同時間大鼠腦組織切片CNPase染色陽性細(xì)胞數(shù)比較 (±s,n=5)

注:與EAE group 比 較,*P<0.05,與Negative control group比較,△P<0.05

組別7d 15d 21d 30d EAE group 10.66±4.53△ 11.87±4.0△ 10.27±3.97△ 12.47±3.29△Negative control 22.65±5.79 BMSCs group 16.35±4.74△ 19.25±3.95* 20.21±4.32* 25.43±5.04*

圖3 CNPase在大鼠腦中表達(dá)情況

3 討論

炎癥性脫髓鞘疾病本身可能是炎癥反應(yīng)和神經(jīng)退行性損傷的參與發(fā)病過程。炎癥反應(yīng)、髓鞘脫失和軸突損害是中樞神經(jīng)系統(tǒng)炎癥性脫髓鞘疾病三個重要病理改變。炎癥反應(yīng)導(dǎo)致脫髓鞘改變,炎癥反應(yīng)和髓鞘破壞損傷軸突,最終導(dǎo)致神經(jīng)退行性損傷。目前對于炎癥性脫髓鞘疾病主要是免疫調(diào)節(jié)治療,但由于缺乏有效髓鞘再生機制,軸突損害或神經(jīng)元不可逆的損傷,導(dǎo)致其治療效果往往并不理想。近年來,不少神經(jīng)病學(xué)學(xué)者致力研究脫髓鞘疾病神經(jīng)損傷機制及如何促進(jìn)神經(jīng)保護(hù)再生,發(fā)現(xiàn)通過細(xì)胞生物治療可以改善局部損傷微環(huán)境,從而促進(jìn)髓鞘或神經(jīng)再生,促進(jìn)形成新的突觸聯(lián)系和信息傳導(dǎo)恢復(fù)。

BMSCs作為骨髓造血干細(xì)胞的基質(zhì)支持細(xì)胞,是一群多功能的干細(xì)胞,在特定的培養(yǎng)條件下分化為骨、脂肪、軟骨和肌肉等結(jié)締組織,也可分化成神經(jīng)系統(tǒng)的神經(jīng)元和神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞。Priller等[3]在大鼠紋狀體注射人BMSCs細(xì)胞,發(fā)現(xiàn)有20%移植的細(xì)胞能長時間在大鼠腦中存活并廣泛分布于腦中,遷移路徑和神經(jīng)干細(xì)胞及星形細(xì)胞的遷移路徑相同;同時移植后BMSCs失去BMSCs在培養(yǎng)中的典型特征而表現(xiàn)許多神經(jīng)細(xì)胞的特征。Akiyama等[4]在脊髓損傷大鼠動物模型通過靜脈輸注BMSCs能顯著改善脊髓損傷后髓鞘再生。同樣Satake等[5]在脊髓橫斷損傷動物模型中鞘內(nèi)注射BMSCs也能促進(jìn)脊髓損傷后髓鞘再生和運動功能恢復(fù)。研究結(jié)果表明,BMSCs生物治療有利于神經(jīng)系統(tǒng)損傷疾病修復(fù),顯示出可觀的神經(jīng)再生可塑性。本實驗在EAE 免疫后早期靜脈輸注CFSE標(biāo)記的BMSCs,觀察輸注后大鼠神經(jīng)功能變化及病變部位的標(biāo)記細(xì)胞分布,利用免疫組化方法檢測NSE、GFAP、CNPase表達(dá),觀察BMSCs移植后EAE 大鼠體內(nèi)神經(jīng)元(NSE)、星形膠質(zhì)細(xì)胞(GFAP)和少突膠質(zhì)細(xì)胞(CNPase)數(shù)量,了解BMSCs對EAE 的神經(jīng)再生的修復(fù)作用及遷徙分化情況。

本實驗中采用NSE、GFAP、CNPase抗體均為小鼠抗大鼠抗體,具有高度特異性,分別檢測移植后不同時間點神經(jīng)元、星形膠質(zhì)細(xì)胞和少突膠質(zhì)細(xì)胞表達(dá)情況,結(jié)果顯示在EAE模型組,NSE 和CNPase的表達(dá)較正常對照組顯著下降,提示在EAE模型中可能存在不同程度神經(jīng)元和少突膠質(zhì)細(xì)胞的損傷凋亡。目前研究顯示在EAE 和MS的病灶內(nèi)存在少突膠質(zhì)細(xì)胞、神經(jīng)元、小膠質(zhì)細(xì)胞、巨噬細(xì)胞等多種細(xì)胞的凋亡,并在疾病的發(fā)病和病情發(fā)展中有重要的作用[6]。少突膠質(zhì)細(xì)胞是髓鞘形成細(xì)胞,具有形成和修復(fù)髓鞘的能力,影響軸突的生長、結(jié)構(gòu)以及功能。少突膠質(zhì)細(xì)胞的凋亡影響髓鞘的結(jié)構(gòu)和功能,引起髓鞘脫失,繼發(fā)或加重軸突的損傷[7]。

研究顯示,BMSCs植入實驗動物體內(nèi)后具有增殖、遷徙和分化的能力,可調(diào)節(jié)EAE 大鼠的免疫紊亂并分化為髓鞘形成細(xì)胞,刺激髓鞘再生,促進(jìn)神經(jīng)功能修復(fù)。關(guān)于BMSCs在炎癥性脫髓鞘疾病中神經(jīng)再生保護(hù)的機制尚未完全闡明,目前認(rèn)為可能與下列幾種因素有關(guān):(1)BMSCs植入體內(nèi)能向損傷處遷徙并向神經(jīng)元、神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞分化并替代死亡的宿主細(xì)胞,與局部殘存的細(xì)胞重新建立聯(lián)系,恢復(fù)神經(jīng)元回路[8-9]。(2)BMSCs可分泌多種細(xì)胞因子及神經(jīng)生長因子,改善局部微環(huán)境并啟動再生相關(guān)基因的表達(dá),促進(jìn)軸突功能的再生[10-11]。Bianco等[12]將BMSCs植入動物體內(nèi)后,可導(dǎo)致IL-6、IL-7、IL-12和腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子(BDNF)等多種細(xì)胞因子分泌增多,這些細(xì)胞因子對神經(jīng)損傷修復(fù)起重要作用,同樣可能對免疫調(diào)控起一定作用。(3)BMSCs能夠抑制神經(jīng)元的凋亡,并使殘存的脫髓鞘的神經(jīng)纖維和新生的神經(jīng)纖維髓鞘化,從而恢復(fù)神經(jīng)結(jié)構(gòu)的完整性[8,13-14]。

綜上,預(yù)防給予BMSCs可以明顯改善EAE大鼠神經(jīng)缺損癥狀及縮短病程,可能機制是通過免疫調(diào)節(jié),抑制免疫反應(yīng)所致的神經(jīng)細(xì)胞損傷,減少神經(jīng)元和少突膠質(zhì)細(xì)胞的凋亡,從而發(fā)揮神經(jīng)保護(hù)作用,但不能排除仍有部分BMSCs在局部微環(huán)境信號的誘導(dǎo)下向脫髓鞘區(qū)遷徙并分化為髓鞘形成細(xì)胞的可能。本研究為BMSCs在臨床上炎癥性脫髓鞘疾病治療提供了理論依據(jù)。

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大口黑鱸鰓黏液細(xì)胞的組織化學(xué)特征及5-HT免疫反應(yīng)陽性細(xì)胞的分布
人胎腦額葉和海馬中星形膠質(zhì)細(xì)胞的發(fā)育性變化
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