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小干擾RNA沉默骨橋蛋白對(duì)球囊損傷大鼠頸動(dòng)脈后基質(zhì)金屬蛋白酶-2及基質(zhì)金屬蛋白酶-14的影響*

2015-12-15 08:48徐健馮豐劉閨男
關(guān)鍵詞:中膜聚醚球囊

徐健,馮豐,劉閨男

(1.遼寧省沈陽(yáng)市第一人民醫(yī)院心血管內(nèi)科,遼寧 沈陽(yáng) 110041;2.中國(guó)醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院心血管內(nèi)科,遼寧 沈陽(yáng) 110001)

·論著·

小干擾RNA沉默骨橋蛋白對(duì)球囊損傷大鼠頸動(dòng)脈后基質(zhì)金屬蛋白酶-2及基質(zhì)金屬蛋白酶-14的影響*

徐健1,馮豐1,劉閨男2

(1.遼寧省沈陽(yáng)市第一人民醫(yī)院心血管內(nèi)科,遼寧 沈陽(yáng) 110041;2.中國(guó)醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院心血管內(nèi)科,遼寧 沈陽(yáng) 110001)

目的觀察經(jīng)動(dòng)脈外膜轉(zhuǎn)染骨橋蛋白(OPN)的小干擾RNA對(duì)大鼠頸動(dòng)脈損傷后內(nèi)膜增生及基質(zhì)金屬蛋白酶-2(MMP-2)、基質(zhì)金屬蛋白酶-14(MMP-14)表達(dá)的影響,并初步探討OPN-siRNA-002抑制球囊損傷后內(nèi)膜增生的機(jī)制。方法以前期細(xì)胞實(shí)驗(yàn)篩選出的最敏感的OPN-siRNA-002序列作為動(dòng)物實(shí)驗(yàn)轉(zhuǎn)染基因,在轉(zhuǎn)染試劑聚醚膠介導(dǎo)下,經(jīng)血管外膜轉(zhuǎn)染OPN-siRNA-002,于術(shù)后不同的實(shí)驗(yàn)終點(diǎn)處死大鼠,檢測(cè)內(nèi)膜增生程度及OPN、MMP-2、MMP-14的表達(dá)變化,以及OPN-siRNA-002對(duì)它們的抑制作用。結(jié)果OPN-siRNA-002組內(nèi)膜增生顯著減輕,OPN、MMP-2、MMP-14的表達(dá)減少,與對(duì)照組比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.001)。結(jié)論OPN-siRNA-002可能通過特異性抑制OPN的表達(dá),進(jìn)而抑制MMP-2、MMP-14的表達(dá),減輕血管損傷后內(nèi)膜的增生。

骨橋蛋白;小干擾RNA;血管再狹窄;基因轉(zhuǎn)染;大鼠

隨著生活節(jié)奏的加快,生活方式的改變及人口老齡化,冠狀動(dòng)脈粥樣硬化性心臟?。ü谛牟。┑陌l(fā)病率也愈來愈高,成為造成死亡的主要原因之一。近幾十年來,隨著冠狀動(dòng)脈內(nèi)介入技術(shù)的不斷成熟與發(fā)展,越來越多的冠心病患者都得到有效治療。但經(jīng)皮冠狀動(dòng)脈成形(percutaneous transluminal coronaryangioplasty,PTCA)術(shù)后再狹窄(restenosis,RS)的發(fā)生嚴(yán)重地影響其遠(yuǎn)期療效。上世紀(jì)90年代中期以來進(jìn)行包括PTCA、冠脈斑塊切除、斑塊旋切和激光血管成形術(shù)等腔內(nèi)物理治療的臨床試驗(yàn),但其預(yù)防和治療效果令人失望[1-4]。目前多數(shù)學(xué)者認(rèn)為,RS包括內(nèi)膜增生、血管重塑和血栓形成3個(gè)相互聯(lián)系而又獨(dú)立的環(huán)節(jié)[5]。骨橋蛋白(osteopontin,OPN)是細(xì)胞外基質(zhì)(extracellular matrix,ECM)中一種重要的功能性蛋白,在大鼠血管損傷的增生內(nèi)膜中,它的表達(dá)迅速明顯增加,調(diào)節(jié)血管平滑肌細(xì)胞(vascular smooth muscle cell,VSMC)增殖和遷移,因而被認(rèn)為是VSMC表型轉(zhuǎn)化的標(biāo)志性基因[6]。有大量實(shí)驗(yàn)證明,基質(zhì)金屬蛋白酶(matrix metalloproteinase,MMPs)是一類蛋白酶家族,血管損傷后表達(dá)明顯增加,在動(dòng)脈粥樣硬化(atherosclerosis,AS)增厚的內(nèi)膜中表達(dá)水平顯著增加,并與病變程度相關(guān)[7]。本文擬通過球囊損傷的方法制備大鼠頸動(dòng)脈內(nèi)膜損傷模型,在體局部轉(zhuǎn)染OPN-siRNA,觀察轉(zhuǎn)染OPN-siRNA對(duì)損傷血管局部OPN的表達(dá)、MMPs的表達(dá)及抑制血管內(nèi)膜增生的作用,來初步探討OPN-siRNA抑制血管內(nèi)膜增生的可能機(jī)制,從而為基因治療RS提供更多的實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料

Wistar大白鼠由中國(guó)醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供,導(dǎo)管2 F Fogarty購(gòu)自美國(guó)Baxter health corporation,OPN兔抗大鼠多克隆抗體購(gòu)自Santa Cruz Biotechnology USA,MMP-2、MMP-14兔抗大鼠多克隆抗體購(gòu)自武漢博士德生物工程有限公司,總RTPCR提取試劑盒、RT-PCR逆轉(zhuǎn)錄試劑盒、RT-PCR引物購(gòu)自大連寶生物工程有限公司,根據(jù)GeneBank信息,確定大鼠OPN cDNA序列(NM_012881),合成3對(duì)可能有效的OPN-siRNA(委托廣州銳博生物科技有限公司合成)。通過筆者之前的研究[8],應(yīng)用實(shí)時(shí)RT-PCR檢測(cè)OPN-mRNA的表達(dá)水平,選擇其中沉默效果最好的siRNA序列-Si-r-OPN_002,進(jìn)行動(dòng)物實(shí)驗(yàn)。正向引物:(5'-3')5'-GGAUGAAUC UGACGAAUCUDTDT-3';反向引物:(3'-5')3'-DTDT CCUACUUAGACUGCUUAGA-5'。

1.2 方法

1.2.1 實(shí)驗(yàn)分組72只Wistar大白鼠隨機(jī)分為4組,每組18只。①假手術(shù)組:分離出左頸總動(dòng)脈后,不作球囊拉傷處理;②聚醚對(duì)照組:左頸總動(dòng)脈球囊拉傷后,30%的聚醚(pluronic)200μl凝膠溶液注射于頸動(dòng)脈損傷部位周圍;③OPN-SCR-siRNA對(duì)照組:左頸總動(dòng)脈球囊拉傷后,含OPN-scramble-siRNA 15μg的30%聚醚膠(pluronic gel)的200μl溶液注射于頸動(dòng)脈損傷部位周圍;④OPN-siRNA-002治療組:左頸總動(dòng)脈球囊拉傷后,含OPN-siRNA-002 15μg的30%pluronic gel的200μl溶液注射于頸動(dòng)脈損傷部位周圍。

1.2.2 大鼠頸動(dòng)脈損傷模型的建立Wistar大鼠,體重350~400 g,10%水合氯醛(300 mg/kg)麻醉后,頸正中切開,鈍性分離左頸總動(dòng)脈,用血管夾臨時(shí)阻斷左頸總動(dòng)脈近心、遠(yuǎn)心端血流,應(yīng)用2 F Fogarty球囊導(dǎo)管從頸外動(dòng)脈插入左頸總動(dòng)脈內(nèi),注入生理鹽水,反復(fù)全程抽拉球囊,重復(fù)3次,造成左頸總動(dòng)脈內(nèi)膜損傷。術(shù)后結(jié)扎頸外動(dòng)脈,恢復(fù)血流。分別于術(shù)后的不同的實(shí)驗(yàn)終點(diǎn)分批處死動(dòng)物。取出左頸總動(dòng)脈,分別置于4%多聚甲醛和液氮中,用于HE染色、免疫組織化學(xué)、Western blot及實(shí)時(shí)RT-PCR檢測(cè)。

1.2.3 在體OPN-siRNA轉(zhuǎn)染左頸總動(dòng)脈球囊拉傷后,結(jié)扎頸外動(dòng)脈,將200μl轉(zhuǎn)染復(fù)合物(含有Cy3-OPN-SCR-siRNA 15μg的30%pluronic gel溶液)注射于頸動(dòng)脈損傷部位周圍,縫合頸部創(chuàng)口。轉(zhuǎn)染72 h后,即取大鼠損傷段局部血管,放入液氮罐中,制成冷凍切片(片厚5μm),避光置于熒光顯微鏡下。

1.2.4 血管病理形態(tài)學(xué)檢測(cè)病變血管標(biāo)本經(jīng)石蠟包埋后,從每段血管的橫截面隨機(jī)切下3張切片后,利用HE染色在光學(xué)顯微鏡下觀察其內(nèi)膜增生情況,并利用計(jì)算機(jī)圖像分析系統(tǒng),檢測(cè)血管內(nèi)膜、中膜厚度的改變,計(jì)算內(nèi)膜/中膜(I/M)的面積比。

1.2.5 免疫組織化學(xué)檢查將頸總動(dòng)脈制成4μm的切片,采用SABC法進(jìn)行免疫組織化學(xué)染色,加DAB顯色,蘇木素復(fù)染。以胞漿見棕黃色顆粒為陽(yáng)性,一組切片標(biāo)本用PBS代替一抗作為空白對(duì)照組。

1.2.6 實(shí)時(shí)RT-PCR法檢測(cè)血管壁組織的OPN、MMP-2和MMP-14 mRNA表達(dá)采用Trizol一步法提取頸總動(dòng)脈的總RNA。取各組總RNA 3μl逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA,逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)根據(jù)逆轉(zhuǎn)錄試劑盒要求的標(biāo)準(zhǔn)進(jìn)行,反應(yīng)總體積為20μl,反應(yīng)條件為37℃、15 min,85℃、5 s,4℃、7 min。應(yīng)用ABI 7500擴(kuò)增儀進(jìn)行PCR擴(kuò)增反應(yīng),20μl反應(yīng)體系組成如下:SYBR Premix Ex TaqⅡ(2X)10μl,PCR正向引物(10μmol)0.8μl,PCR反向引物(10μmol)0.8μl,ROX Reference DyeⅡ0.4μl,cDNA模板2μl,dH2O 6μl。反應(yīng)條件為:95℃活化30 s,95℃變性5 s,然后60℃退火和延展30 s,共40個(gè)循環(huán)。引物序列和擴(kuò)增產(chǎn)物長(zhǎng)度見表1。β-肌動(dòng)蛋白作為參考。按2-△△(T)法計(jì)算目的基因相對(duì)于對(duì)照基因的表達(dá)量[9]。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,取均值。

1.2.7 Western blot法檢測(cè)血管壁組織的OPN、MMP-2和MMP-14的蛋白表達(dá)提取各組動(dòng)脈總蛋白后,并將蛋白濃度調(diào)至同一水平,每孔加樣80μg,進(jìn)行聚丙烯酰胺凝膠電泳,轉(zhuǎn)膜,脫脂奶粉封閉2 h,分別加入一抗OPN(1∶400)、MMP-2(1∶400)和MMP-14(1∶400),4℃孵育過夜。洗膜3次,加入辣根過氧化酶標(biāo)記的二抗孵育,顯色2~5 min,凝膠成像分析系統(tǒng)測(cè)定條帶的平均積分光密度值。

1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

采用SPSS 13.0統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,運(yùn)用方差分析,P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

表1 實(shí)時(shí)RT-PCR引物序列和擴(kuò)增產(chǎn)物長(zhǎng)度

2 結(jié)果

2.1 在體OPN-siRNA轉(zhuǎn)染效果觀察

轉(zhuǎn)染Cy3標(biāo)記的SCR-siRNA 72 h后,將轉(zhuǎn)染局部血管制成5μm厚的冷凍切片置于熒光顯微鏡下,可以發(fā)現(xiàn),殘存血管外膜下、中膜及內(nèi)膜下均有紅色熒光分布,以中膜最為明顯,說明轉(zhuǎn)染效果滿意(見圖1)。

圖1 在體OPN-siRNA轉(zhuǎn)染效果(×400)

2.2 血管病理形態(tài)學(xué)檢測(cè)結(jié)果

假手術(shù)組的血管內(nèi)膜光滑、完整;而在球囊損傷并且給予30%Pluronic gel的對(duì)照組和轉(zhuǎn)染OPNSCR-siRNA對(duì)照組14 d,其內(nèi)彈力板消失,內(nèi)膜明顯增生。轉(zhuǎn)染OPN-siRNA-002與同一時(shí)間點(diǎn)對(duì)照組相比,內(nèi)膜增生受到顯著抑制,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.001)。各組血管新生內(nèi)膜與中膜面積比見圖2和表2。

圖2 OPN-siRNA-002對(duì)球囊損傷后新生內(nèi)膜增生的影響

2.3 免疫組織化學(xué)染色結(jié)果

假手術(shù)組血管壁內(nèi)膜和中膜胞漿內(nèi)見微弱黃色顆粒,而血管球囊損傷后3、7及14 d,均出現(xiàn)棕黃色顆粒,主要分布于中膜及增厚的內(nèi)膜的細(xì)胞漿及細(xì)胞外基質(zhì)中,MMP-14第3天最強(qiáng),MMP-2第7天最強(qiáng);OPN第14天最強(qiáng)。OPN-siRNA-002治療組在各個(gè)時(shí)間點(diǎn)的中膜和內(nèi)膜亦出現(xiàn)棕黃色顆粒,但較兩對(duì)照組明顯減輕(P<0.01)。見圖3。

表2 血管球囊損傷后血管內(nèi)膜、中膜面積比(n=6,mm2±s)

表2 血管球囊損傷后血管內(nèi)膜、中膜面積比(n=6,mm2±s)

注:I為新生內(nèi)膜面積,M為中膜面積,I/M為內(nèi)膜面積與中膜面積比值。1)與假手術(shù)組比較,P<0.01;2)與兩對(duì)照組比較,P<0.01

組別指標(biāo)術(shù)后7 d術(shù)后14 d假手術(shù)組新生內(nèi)膜面積00中膜面積0.131 5±0.012 70.132 5±0.012 7聚醚對(duì)照組新生內(nèi)膜面積0.098 5±0.006 01)0.132 7±0.015 21)中膜面積0.133 3±0.006 20.131 7±0.008 1 I/M0.740 5±0.030 01)1.009 0±0.116 51)OPN-SCR-siRNA對(duì)照組新生內(nèi)膜面積0.095 8±0.005 71)0.128 7±0.009 81)中膜面積0.129 0±0.005 70.132 0±0.005 9 I/M0.744 3±0.057 41)0.978 0±0.107 41)OPN-siRNA-002治療組新生內(nèi)膜面積0.041 0±0.004 82)0.065 2±0.009 92)中膜面積0.130 3±0.00420.125 0±0.015 5 I/M0.314 4±0.033 52)0.521 0±0.042 72)

圖3 OPN、MMP-2及MMP-14免疫組織化學(xué)染色結(jié)果(×400)

2.4 實(shí)時(shí)RT-PCR檢測(cè)

在假手術(shù)組,OPN、MMP-2、MMP-14 mRNA僅微弱表達(dá);血管球囊損傷后,OPN、MMP-2、MMP-14 mRNA表達(dá)明顯升高;MMP-14 mRNA第3天達(dá)高峰,第14天時(shí)恢復(fù)正常水平;MMP-2 mRNA表達(dá)第7天達(dá)高峰,OPN mRNA表達(dá)第14天達(dá)高峰。經(jīng)OPN-siRNA治療后,同一時(shí)間點(diǎn)OPN、MMP-2、MMP-14 mRNA表達(dá)明顯減少(見圖4),與SCR-siRNA轉(zhuǎn)染及聚醚對(duì)照組比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。

圖4 實(shí)時(shí)RT-qPCR分析大鼠頸動(dòng)脈損傷OPN、MMP-2 and MMP-14 mRNA表達(dá)(n=6)

圖5 Western blot分析大鼠頸動(dòng)脈OPN、MMP-2與MMP-14蛋白表達(dá)水平,Actin作為內(nèi)參

2.5 Western blot檢測(cè)

在假手術(shù)組,OPN、MMP-2、MMP-14有微弱的蛋白條帶表達(dá);然而,血管球囊損傷后3、7及14天后,OPN、MMP-2、MMP-14蛋白條帶灰度逐漸增加,MMP-14第3天最明顯,MMP-2第7天最明顯,OPN第14天最明顯。經(jīng)OPN siRNA治療后,同一時(shí)間點(diǎn)OPN、MMP-2、MMP-14表達(dá)明顯減少(見圖5),與OPN-SCR-siRNA轉(zhuǎn)染及聚醚對(duì)照組比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.001)見表3。

表3 血管組織OPN、MMP-2、MMP-14蛋白表達(dá)(積分光密度比值,n=6±s)

表3 血管組織OPN、MMP-2、MMP-14蛋白表達(dá)(積分光密度比值,n=6±s)

注:1)與假手術(shù)組比較,P<0.01;2)與兩對(duì)照組比較,P<0.01

組別第3天第7天第14天OPN假手術(shù)組0.187 6±0.015 6 0.190 2±0.018 4 0.189 3±0.018 1聚醚對(duì)照組0.35 6±0.039 81)0.566 1±0.046 31)0.819 5±0.043 01)OPN-SCR-siRNA對(duì)照組0.359 2±0.029 11)0.550 1±0.046 61)0.804 4±0.050 71)OPN-siRNA-002治療組0.201 1±0.024 02)0.322 5±0.034 22)0.430 6±0.042 62)MMP-2假手術(shù)組0.165 7±0.015 8 0.166 2±0.016 1 0.164 8±0.015 0聚醚對(duì)照組0.359 4±0.033 31)0.584 3±0.070 31)0.501 1±0.052 81)OPN-SCR-siRNA對(duì)照組0.362 5±0.031 01)0.578 7±0.051 81)0.496 1±0.042 21)OPN-siRNA-002治療組0.192 1±0.018 52)0.329 2±0.026 92)0.303 0±0.026 92)MMP-14假手術(shù)組0.169 3±0.017 4 0.168 1±0.017 1 0.162 8±0.017 6聚醚對(duì)照組0.6176±0.08331)0.359 4±0.033 31)0.176 6±0.017 5 OPN-SCR-siRNA對(duì)照組0.612 0±0.055 11)0.362 5±0.031 01)0.178 1±0.019 2 OPN-siRNA-002治療組0.318 0±0.031 12)0.188 8±0.018 52)0.169 1±0.018 4

3 討論

EMC是血管損傷后新生內(nèi)膜的主要成分,在PTCA后發(fā)生RS的新生內(nèi)膜中,EMC的含量超過50%[10],因此,EMC是血管再塑形的主要元素,也是形成RS的主要物質(zhì)。研究發(fā)現(xiàn),許多參與經(jīng)皮冠狀動(dòng)脈介入治療(percataneous coronary intervention,PCI)術(shù)后RS的細(xì)胞因子都能夠刺激VSMC過度表達(dá)OPN[11-12]。應(yīng)用抗OPN抗體可以抑制VSMC的表型轉(zhuǎn)化、遷移和增殖[13]。前期的研究也證明,使用針對(duì)大鼠OPN的反義核苷酸抑制OPN的表達(dá)后,可明顯抑制VSMC的增殖[14],均表明以O(shè)PN為靶點(diǎn)在防治RS發(fā)生方面的重要作用。

鑒于siRNA轉(zhuǎn)染過程中容易受核酸的消化作用的影響,半衰期較短,研究人員對(duì)siRNA進(jìn)行甲基化修飾,使其在細(xì)胞核內(nèi)長(zhǎng)期穩(wěn)定存在。轉(zhuǎn)染途徑的選擇是決定siRNA效果的另一重要因素,血管壁基因轉(zhuǎn)移可經(jīng)血管腔內(nèi)和血管外膜兩種途經(jīng)。本研究受到WANG等[15]在血管外膜成功轉(zhuǎn)染siRNAADAMTS-7方法的啟示,探討血管損傷后,經(jīng)血管外膜轉(zhuǎn)染OPN-siRNA抑制血管內(nèi)膜增生的作用。為了證實(shí)經(jīng)血管外膜的轉(zhuǎn)染效果,本研究應(yīng)用Cy3-SCR-siRNA,于損傷和轉(zhuǎn)染后第3天,取出局部血管并制成冰凍切片,可以發(fā)現(xiàn),殘存血管外膜下、中膜及內(nèi)膜下均有紅色熒光分布,以中膜最為明顯,說明轉(zhuǎn)染效果滿意。實(shí)驗(yàn)結(jié)果也表明,轉(zhuǎn)染后第7天,不僅OPN的mRNA和蛋白表達(dá)水平與對(duì)照組相比出現(xiàn)了明顯的下調(diào),而且其內(nèi)膜增生的程度也被明顯地抑制,而且這種抑制作用一直持續(xù)到實(shí)驗(yàn)結(jié)束的第14天。

NAGASE[16]認(rèn)為MMP-2在細(xì)胞的遷移中起到關(guān)鍵作用,MMP-14、MMP-2酶原、TIMP-2在細(xì)胞表面形成三元絡(luò)合物,調(diào)節(jié)MMP-2的激活,降解ECM,促進(jìn)細(xì)胞遷移。ECM,尤其是基底膜,是VSMC遷徙必需戰(zhàn)勝的生理屏障,其合成及降解失衡并沉積于動(dòng)脈壁是AS、RS等病變加重的一個(gè)關(guān)鍵環(huán)節(jié)[17]。ECM合成及降解,以及平滑肌的遷移、增生都取決于MMPs和其組織抑制劑TIMPs之間的動(dòng)態(tài)平衡[18]。MMPs由VSMC、巨噬細(xì)胞及其他一些細(xì)胞產(chǎn)生,是降解VSMC基底膜基質(zhì)的主要酶類,導(dǎo)致血管VSMC由中膜向內(nèi)膜遷移并增生,進(jìn)一步分泌大量ECM,從而促進(jìn)內(nèi)膜增生、血管重構(gòu),最終導(dǎo)致RS的發(fā)生[19]。抑制MMPs活性可能降低RS的程度,其中尤以MMP-2最為重要,KUZUYA等[20]用MMP-2基因敲除小鼠進(jìn)行實(shí)驗(yàn),在動(dòng)脈損傷模型中發(fā)現(xiàn)內(nèi)膜增生程度比野生型小鼠明顯減輕,VSM遷移能力顯著下降。MMP-14是一類特殊的蛋白酶,研究認(rèn)為其以無活性的MMP-2為作用底物,將其氮端剪切掉,成為中間活化狀態(tài),進(jìn)而轉(zhuǎn)變成完全活化的MMP-2,參與其酶原的激活反應(yīng);由于分布在細(xì)胞表面,人們認(rèn)為其在細(xì)胞遷移中的作用更為重要[21-22]。

本研究表明,血管內(nèi)膜損傷后MMP-14和MMP-2表達(dá)增加,MMP-14在第3天達(dá)高峰,MMP-2在第7天達(dá)高峰,經(jīng)OPN-siRNA-002治療后表達(dá)相應(yīng)減少??紤]可能OPN-siRNA-002阻斷下游細(xì)胞遷移相關(guān)基因MMP-14轉(zhuǎn)錄激活,從而也間接抑制了MMP-14激活MMP-2促進(jìn)細(xì)胞遷移的作用。這與先前的一項(xiàng)體外研究應(yīng)用OPN刺激VSMC的增生可以提高M(jìn)MPs的活性一致[23]。而且另一項(xiàng)體外研究也顯示,OPN刺激MMP-2的激活是通過NF-κB介導(dǎo)的MMP-14的誘導(dǎo)產(chǎn)生,OPN誘導(dǎo)MMP-2生成在轉(zhuǎn)錄水平得到調(diào)控[24]。這些都支持OPN在血管再狹窄的發(fā)生中扮演著主角作用。

總之,此次研究成功地證明經(jīng)血管外膜轉(zhuǎn)染OPN-siRNA能夠顯著降低頸動(dòng)脈損傷后OPN的表達(dá),抑制細(xì)胞遷移的相關(guān)基因MMP-14及MMP-2的表達(dá),減輕新生內(nèi)膜的形成。該研究為臨床治療RS提供一定實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)及理論依據(jù),進(jìn)一步的研究還在進(jìn)行中。

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(張蕾 編輯)

Effects of osteopontin-small interfering RNA on expressions of MMP-2 and MMP-14 after balloon injury of rat carotid artery*

Jian XU1,Feng FENG1,Gui-Nan LIU2
(1.Department of Cardiology,the First People's Hospital of Shenyang,Shenyang,Liaoning 110041,P.R.China;2.Department of Cardiology,the First Affiliated Hospital, China Medical University,Shenyang,Liaoning 110001,P.R.China)

【Objective】To investigate the effects of perivascular osteopontin-small interfering RNA(OPN-siRNA)transfer on neointima formation and MMP-2 and MMP-14 expressions after balloon injury of rat carotid artery and to explore the possible mechanism of inhibiting neointima formation.【Methods】The most sensitive OPN-siRNA-002 sequence was chosen by real-time RT-PCR in the previous experiment and used as transfection siRNA in the subsequent animal experiments,then perivascularly transfected with 30%pluronic gel.Six rats of each group were killed at different experimental endpoints after balloon injury.Hematoxylineosin(HE),immunohistochemistry,real-time RT-PCR and Western blot were used to evaluate neointima and the expressions of MMP-2 and MMP-14,and the role of OPN-siRNA on them was also studied.【Results】The neointimal thickness and mRNA and protein expressions of OPN,MMP-2 and MMP-14 were significantly decreased in the OPN-siRNA-002 group at each time point compared to those in the control group(P<0.001).【Conclusion】OPN-siRNA-002 can inhibit intimal hyperplasia after artery injury by inhibiting the expressions of OPN,MMP-2 and MMP-14.

osteopontin;siRNA;restenosis;transfection;rat

R363;R-332

A

1005-8982(2015)30-0001-06

2015-01-29

沈陽(yáng)市科技局立項(xiàng)項(xiàng)目(No:F13-220-9-32)

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