胡喜蘭,路 靜,陸丹丹,施鵬飛,張珍明
(1淮海工學(xué)院化學(xué)工程學(xué)院,江蘇連云港222005;2淮海工學(xué)院江蘇省海洋資源開發(fā)研究院,江蘇連云港222005)
苯妥英(5,5-Diphenylhydantion,簡(jiǎn)寫為 Hpht)是治療癲癇病的首選藥物。作為生物配體,苯妥英是以N和O原子為配位原子,與過渡金屬形成的配合物有著豐富的立體結(jié)構(gòu)和生物活性[1-3]。鎳是生命科學(xué)中極為重要的生命元素,是生物體內(nèi)必需的痕量元素,在氫酶、甲基輔酶M還原酶、一氧化碳脫氫酶、超氧歧化酶和尿酶中均發(fā)現(xiàn)其活性中心含有鎳離子[4-6]。因此,模擬合成生命體系中過渡金屬與苯妥英配體形成的配合物對(duì)其結(jié)構(gòu)和性能進(jìn)行研究,對(duì)揭示金屬酶的結(jié)構(gòu),開發(fā)療效高、活性強(qiáng)、毒性小的新藥具有重要的意義[7-10]。為此我們利用水熱法,以苯妥英及1,2-丙二胺為配體與醋酸鎳反應(yīng),合成得到了一個(gè)新穎的三元鎳配合物[Ni(pht)2(pn)2][11],利用電子吸收光譜法、溴化乙錠熒光分析法以及粘度測(cè)定研究了此種配合物與DNA的相互作用,為進(jìn)一步的研究打下了基礎(chǔ)。
配合物的元素分析由Perkin Elmer2400型元素分析儀測(cè)定;配合物的紅外光譜由WGH-30/6型雙光束紅外分光光度計(jì)(KBr壓片)測(cè)定;島津UV-2550型紫外可見分光光度計(jì);日立F4500型熒光光譜儀,激發(fā)波長(zhǎng)為525nm,掃描速度15nm·s-1,在220nm~900nm測(cè)量發(fā)射熒光光譜。小牛胸腺(CT-DNA,生化試劑,sigma公司);三羥甲基氨基甲烷(分析純,天津市福晨化學(xué)試劑廠);溴化乙錠(EB,生化試劑,F(xiàn)luka公司);醋酸鎳、1,2- 丙二胺、苯妥英、無(wú)水乙醇等均為分析純?cè)噭?實(shí)驗(yàn)用水為二次蒸餾水。
配合物按文獻(xiàn)[11]進(jìn)行合成,得到淡紫色的塊狀晶體,其熔點(diǎn)大于573K;產(chǎn)物按C36H42N8NiO4計(jì)算的理論值(%):C 60.94,H 5.97,N 15.79;元素分析的測(cè)定值(%):C 61.56,H 6.09,N 16.46。IR(KBr壓片,cm-1):3346,3178,2960,2876,1629,1493,1450,1263,1122,961,759,698,603,533。該晶體幾乎不溶于水、醇,稍溶于二甲基甲酰胺(DMF)。性質(zhì)測(cè)定中配合物用少量DMF溶解后用Tris緩沖溶液定容至一定體積,備用。
分別往樣品池與參比池中加入2mL Tris-HCl緩沖溶液 (CTris=50mmol·L-1,CNaCl=10mmol·L-1,pH=7.42),進(jìn)行基線掃描,然后用2mL的DNA溶液取代樣品池的緩沖溶液進(jìn)行掃描,再依次往樣品池和參比池中加入一定體積的配合物,每加一次掃描一次。
在溶液中,EB(ethidium bromide)能平行的插入到雙螺旋DNA結(jié)構(gòu)的堿基之間而產(chǎn)生較強(qiáng)的熒光。然而,當(dāng)EB被其他能插入到DNA雙螺旋結(jié)構(gòu)中的分子擠出來時(shí),整個(gè)體系的熒光顯著降低,因此可通過測(cè)定配合物對(duì)EB-DNA體系的熒光光譜的影響來研究配合物與DNA的作用。在EB-DNA體系(CEB/CDNA=0.5)中,每次加入一定體積的的配合物,以525nm為激發(fā)波長(zhǎng),在550nm~650nm波長(zhǎng)區(qū)間記錄每次配合物對(duì)EB-DNA體系的熒光強(qiáng)度變化。
粘度測(cè)量時(shí),將溫度恒定在(25±0.1)℃進(jìn)行。測(cè)試液相對(duì)粘度按下列公式計(jì)算:η=(t-t0)/t0,其中t0為緩沖液流經(jīng)毛細(xì)管所需的時(shí)間,t為DNA溶液(含濃度不等的配合物)流經(jīng)毛細(xì)管所需的時(shí)間,η0為未加配合物時(shí)DNA溶液的相對(duì)粘度,以(η/η0)1/3對(duì)結(jié)合比率 r(r=CComplex/CDNA)作圖,可以看到鎳配合物對(duì)DNA粘度的影響。
該配合物的紅外光譜中在3346cm-1、3178cm-1附近的吸收峰為1,2-丙二胺上的N-H鍵上的N-H鍵伸縮振動(dòng)吸收,在2960cm-1及2876cm-1分別為甲基和亞甲基的吸收,1629cm-1可以確認(rèn)為苯妥英咪唑環(huán)上的羰基吸收峰,與配體苯妥英咪唑環(huán)上的羰基吸收峰相比較,藍(lán)移了 90cm-1,1493cm-1、1450cm-1為苯環(huán)的骨架振動(dòng),1263cm-1為C-N的伸縮振動(dòng),1122cm-1、961cm-1是苯環(huán)的C-H面內(nèi)彎曲振動(dòng),759cm-1、698cm-1為苯環(huán)C-H的面外彎曲振動(dòng),603cm-1、533cm-1的弱雙峰可確認(rèn)為 Ni-NH2和Ni-N鍵的伸縮振動(dòng),而在配體苯妥英紅外光譜中沒有此吸收,進(jìn)一步說明了鎳離子與氨基、苯妥英咪唑環(huán)上的氮原子形成了配位鍵。
從圖1中可以發(fā)現(xiàn)在260nm左右,CT-DNA在反應(yīng)前有一較強(qiáng)的吸收峰,這是典型的DNA分子中堿基的紫外吸收,配合物在此也有吸收,CT-DNA與該配合物反應(yīng)之后(如圖1),呈現(xiàn)了較明顯的減色效應(yīng),當(dāng)加入 440μL配合物(r=CComplex/CDNA=1.78)時(shí),其減色率達(dá)到了8.56%,這可能是由于配合物插入到DNA堿基之間,配體的空π軌道與DNA堿基填有電子的π軌道發(fā)生耦合,使π→π*軌的能量下降導(dǎo)致躍遷幾率減小而產(chǎn)生減色效應(yīng),可認(rèn)為是配合物與DNA之間存在一種插入作用[12-15]。
圖1 DNA在不同配合物濃度作用下的電子吸收光譜Fig.1 Absorption spectra of the DNA upon addition of the complex:1.0 ×10 -4mmol·L -1CT-DNA.r=0,0.32,0.81,1.78,2.75
從圖2中其中可以看出在EB-DNA體系中隨著配合物濃度的增大,即r(r=Ccomplex/CDNA)值的增大,EB-DNA的熒光強(qiáng)度逐步被猝滅,說明配合物與DNA作用后,將EB從EB-DNA復(fù)合物中擠出,由此推測(cè)配合物中的苯妥英配體可能與DNA發(fā)生了部分插入作用。圖3中I0為EB-DNA的熒光強(qiáng)度,I為加入配合物后EB-DNA的熒光強(qiáng)度,從圖3中可以看出當(dāng)r>3.3時(shí),體系的熒光強(qiáng)度減弱為50%,說明該配合物與DNA發(fā)生了插入結(jié)合作用[12-14],這與紫外吸收光譜分析所得的結(jié)果是一致的。
圖2 配合物對(duì)EB-DNA體系的熒光光譜的影響Fig.2 Effects of the complex on the fluorescence spectra of EB-DNA system From top to bottom show the absorbance changing upon the increase in complex concentration,r:(0)0.79,(1)1.58,(2)2.37,(3)3.16,(4)3.95,(5)4.74,(6)5.53,(7)6.32,(8)7.11
圖3 配合物對(duì)EB-DNA體系的熒光猝滅Fig.3 Emission quenching of the complex to the EBDNA system plots of I0/I vs r for the titration of DNA with the complex;r:(0)0.79,(1)1.58,(2)2.37,(3)3.16,(4)3.95,(5)4.74,(6)5.53,(7)6.32,(8)7.11
粘度法一般認(rèn)為是檢測(cè)配合物與DNA結(jié)合方式的重要依據(jù)之一。從配合物與DNA作用的粘度(圖4)判斷該配合物是以插入方式與DNA相互作用的[12-14]。這一結(jié)果也與前面的紫外吸收光譜和熒光分析的結(jié)果相一致,進(jìn)一步說明該配合物與DNA發(fā)生了插入結(jié)合作用。
圖4 DNA相對(duì)粘度隨配合物加入量的變化Fig.4 Effects of increasing amounts of the complex on the relative viscosity of DNA
三元配合物[Ni(pht)2(pn)2]可能是以插入方式與小牛胸腺DNA結(jié)合的。
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