畢生雷,張成明,金洪波,鄭世文,劉鉞,杜風(fēng)光
1(河南天冠企業(yè)集團(tuán)有限公司車用生物燃料技術(shù)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,河南南陽(yáng),473000)
2(清華大學(xué) 核能與新能源技術(shù)研究院,北京,100084)
3(北京市生物燃料工程技術(shù)研究中心,北京,100084)
小球藻(Chlorella)異養(yǎng)培養(yǎng)具有生長(zhǎng)速度快,發(fā)酵設(shè)備通用性好,占地面積少,培養(yǎng)過程和藻細(xì)胞采收成本低,勞動(dòng)強(qiáng)度低等特點(diǎn),近年來受到廣泛關(guān)注。通過對(duì)高細(xì)胞濃度異養(yǎng)培養(yǎng)技術(shù)的研究與探索,大幅度提高了小球藻發(fā)酵效率,使小球藻異養(yǎng)培養(yǎng)的工業(yè)化生產(chǎn)成為可能[1-3]。ZHENG 等發(fā)現(xiàn),小球藻在兩級(jí)異養(yǎng)培養(yǎng)條件下的生長(zhǎng)速度、細(xì)胞密度分別為光自養(yǎng)條件下的3.0和3.3倍[4]。Ceron-Garcia等人在2 L發(fā)酵罐中進(jìn)行小球藻的異養(yǎng)培養(yǎng),最終得到的細(xì)胞干重達(dá)64 g/L,日干重增加量達(dá)到8.7 g/(L·d),且藻細(xì)胞中油脂含量達(dá)到50%[5]。CHEN等使用葡萄糖作為碳源進(jìn)行小球藻異養(yǎng)培養(yǎng),生物質(zhì)和脂質(zhì)的葡萄糖轉(zhuǎn)換率分別為 43.3%和 14.2%[6]。Isleten-Hosoglu等人報(bào)道,異養(yǎng)小球藻脂肪酸的主要成分為油酸(C18∶1)和亞油酸(C18∶2),它們分別占總脂肪酸含量的34.4%和30.1%[7]。在高密度培養(yǎng)方面,華東理工大學(xué)李元廣教授報(bào)道異養(yǎng)小球藻的培養(yǎng)密度高可達(dá)140 g/L、日產(chǎn)率可達(dá)9.08 g/(L·d),是目前的最高水平[8]。而且,異養(yǎng)與光自養(yǎng)串聯(lián)培養(yǎng)后異養(yǎng)小球藻日產(chǎn)率可達(dá)15 g/(L·d),折合后單位面積日產(chǎn)率是自養(yǎng)培養(yǎng)的101~140倍[8]。
小球藻異養(yǎng)培養(yǎng)的發(fā)酵周期通常長(zhǎng)達(dá)7~15 d,生長(zhǎng)速度較慢,如果培養(yǎng)措施不當(dāng),則很容易被細(xì)菌、霉菌等環(huán)境中存在的微生物污染[9]。環(huán)境中霉菌的存在是由于空氣、設(shè)備、墻壁等存在潮濕的狀況,而小球藻在培養(yǎng)過程中一般不會(huì)受到霉菌污染。錢文倩等認(rèn)為,小球藻培養(yǎng)過程中污染菌主要是芽孢屬桿菌[10]。在受到外來菌污染后,小球藻生長(zhǎng)受到抑制,藻細(xì)胞內(nèi)脂類含量下降,為無菌條件下的86%[10]。目前小球藻異養(yǎng)培養(yǎng)染菌后通常的做法是停止發(fā)酵、徹底殺菌,這樣會(huì)造成培養(yǎng)基、補(bǔ)料和能源的巨大浪費(fèi)??司`和安菌素作為新型抑菌劑能使一般雜菌的羧肽酶、轉(zhuǎn)化酶失活,抑制雜菌細(xì)胞壁的擴(kuò)增,能同時(shí)抑制革蘭氏陽(yáng)性菌和革蘭氏陰性菌的生長(zhǎng)分裂,以此來達(dá)到殺菌的目的,已經(jīng)在酒精發(fā)酵和食品工業(yè)中得到廣泛的應(yīng)用,效果比較理想[11]。青霉素中的β-內(nèi)酰胺可以作用于細(xì)菌的細(xì)胞壁,直接阻礙細(xì)菌細(xì)胞壁的合成,從而達(dá)到抑制細(xì)菌的目的。在酒精發(fā)酵和藻類自養(yǎng)培養(yǎng)過程中也有較多的應(yīng)用[12-13]。
克菌靈、安菌素、青霉素的毒性都比較小,同屬于干擾細(xì)胞細(xì)胞壁從而達(dá)到抑菌、殺菌目的的抗生素,目前尚未見這3種抑菌劑在藻類發(fā)酵中獲得應(yīng)用的報(bào)道。本研究希望通過考察不同濃度抑菌劑對(duì)小球藻發(fā)酵的影響,以及在染菌條件下對(duì)雜菌的抑制情況,獲得抑菌劑的最佳使用量,以達(dá)到通過使用抑菌劑來減少由于倒料造成經(jīng)濟(jì)損失的目的。
酵母粉,安琪酵母有限公司;葡萄糖,國(guó)藥集團(tuán)有限公司;青霉素,石家莊制藥集團(tuán)有限公司;克菌靈,廣西萬佳食品發(fā)展公司;安菌素,柳州龍?zhí)┛萍加邢薰?其他試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純或生化試劑。
1.2.1 實(shí)驗(yàn)菌株
異養(yǎng)小球藻(Heterotrophic Chlorella),由清華大學(xué)生命科學(xué)院提供。細(xì)菌,由50 L發(fā)酵罐中染桿菌的發(fā)酵液經(jīng)稀釋涂布、挑選單菌落培養(yǎng)而成。
1.2.2 抑菌劑處理方法
在無菌室中,將抑菌劑加入一定體積的無菌水中,分別配成質(zhì)量濃度為5、50、500 mg/mL的溶液備用。
1.2.3 抑菌試驗(yàn)
抑菌試驗(yàn)所采用的受試菌為50 L發(fā)酵罐中染桿菌的發(fā)酵液經(jīng)稀釋涂布、挑選單菌落培養(yǎng)而成。
抑菌圈試驗(yàn)采用紙片法:制備濃度約為105CFU/mL的桿菌懸液,取20 mL桿菌懸液倒入300 mL溶化并已冷卻至40~45℃的牛肉膏蛋白胨培養(yǎng)基中,搖勻后迅速分裝于培養(yǎng)皿中,每個(gè)培養(yǎng)皿15 mL,待凝固后,將20 μL各抑菌劑溶液加入到已消過毒的圓形紙片(Φ 6 mm)上,略干后貼于培養(yǎng)基平板上,同時(shí)作各溶劑的空白對(duì)照,置于恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)(37℃,24 h),培養(yǎng)完成后觀察結(jié)果,測(cè)量抑菌圈直徑[14]。
小球藻接種量10%。培養(yǎng)條件:發(fā)酵溫度28℃,pH 6.5,轉(zhuǎn)速為間歇調(diào)節(jié)(干重<20 g/L,轉(zhuǎn)速為200 r/min;20 g/L<干重<50 g/L,轉(zhuǎn)速為300 r/min;50 g/L<干重<70 g/L,轉(zhuǎn)速為400 r/min;干重 >70 g/L,轉(zhuǎn)速為450 r/min)采用間歇補(bǔ)料,葡萄糖含量低于10 g/L時(shí)補(bǔ)料。發(fā)酵培養(yǎng)基配方為(g/L):葡萄糖30、酵母粉 3,KH2PO40.075,MgSO40.075、CaCl20.025、K2HPO40.175,蛋白胨 3,(NH4)2SO41,F(xiàn)e2(SO4)33,ZnSO40.072,MnCl20.581,鉬 酸 鈉0.044。
1.2.4 搖瓶試驗(yàn)
平板上的藻細(xì)胞單菌落接入搖瓶,200 r/min,28℃下培養(yǎng)7 d,種子培養(yǎng)合格時(shí)種子液中應(yīng)無菌、干重達(dá)到10 g/L以上。搖瓶試驗(yàn)采用2 L搖瓶發(fā)酵,裝液量50%。培養(yǎng)條件:溫度28℃,轉(zhuǎn)速200 r/min。搖瓶培養(yǎng)基配方為(g/L):葡萄糖30、酵母粉 3,KH2PO40.075,MgSO40.075、CaCl20.025、K2HPO40.175,蛋白胨 3,(NH4)2SO41,F(xiàn)e2(SO4)33,ZnSO40.072,MnCl20.581,鉬酸鈉0.044。
1.2.5 發(fā)酵試驗(yàn)
發(fā)酵試驗(yàn)所采用的受試菌為異養(yǎng)小球藻以及50 L發(fā)酵罐中染桿菌的發(fā)酵液經(jīng)稀釋涂布、挑選單菌落培養(yǎng)而成的液體雜菌。發(fā)酵試驗(yàn)采用50 L正常發(fā)酵的空白試驗(yàn)和50 L接入液體雜菌、添加抑菌劑試驗(yàn)進(jìn)行對(duì)比。其中添加抑菌劑的試驗(yàn)罐在接種時(shí)同時(shí)接入1 mL液體雜菌。
發(fā)酵試驗(yàn)采用50 L發(fā)酵,接種量10%,發(fā)酵溫度28 ℃,pH 6.5,通風(fēng)量 2 m3/(L·h)[1],轉(zhuǎn)速為間歇調(diào)節(jié)(干重<20 g/L,轉(zhuǎn)速為200 r/min;20 g/L<干重<50 g/L,轉(zhuǎn)速為300 r/min;50 g/L<干重<70 g/L,轉(zhuǎn)速為400 r/min;干重 >70 g/L,轉(zhuǎn)速為450 r/min)采用間歇補(bǔ)料,葡萄糖含量低于10 g/L時(shí)補(bǔ)料。
發(fā)酵培養(yǎng)基配方為(g/L):葡萄糖30、酵母粉3,KH2PO40.075,MgSO40.075、CaCl20.025、K2HPO40.175,蛋白胨 3,(NH4)2SO41,F(xiàn)e2(SO4)33,ZnSO40.072,MnCl20.581,鉬酸鈉0.044。
葡萄糖含量采用HPLC法測(cè)定,細(xì)胞數(shù)采用血球板計(jì)數(shù)。干重測(cè)定方法:取10 mL發(fā)酵液,離心后棄上清液,加蒸餾水至10 mL,再次離心,100℃下烘干藻泥,然后計(jì)算干重。
抑菌圈試驗(yàn)過程比較簡(jiǎn)單、快捷,可以有效地反映出菌體對(duì)藥物試劑的敏感程度,畜牧業(yè)已經(jīng)廣泛的使用抑菌圈來判定抑菌效果。根據(jù)常用藥敏試驗(yàn)敏感度判定標(biāo)準(zhǔn)[15],一般抑菌圈直徑在15 mm以上為高敏,10~14 mm為中敏,10 mm以下為低敏,0 mm為不敏感。為了克服小球藻染菌問題,研究人員需要不斷的開展試驗(yàn)以篩選菌體相對(duì)比較敏感的藥物試劑。染菌小球藻發(fā)酵液中分離出的桿菌對(duì)安菌素、克菌靈等抑菌劑敏感性結(jié)果見表1。
表1 抑菌試驗(yàn)結(jié)果Table 1 Result of antibacterial experiment
如表1所示,一定質(zhì)量濃度的抑菌劑均對(duì)該桿菌有抑制作用,并且隨著抑菌劑濃度升高,抑制作用增強(qiáng)。當(dāng)抑菌劑濃度低于50 mg/mL時(shí)均表現(xiàn)為中、低敏,當(dāng)抑菌劑濃度達(dá)到500 mg/mL時(shí),安菌素和克菌靈表現(xiàn)為高敏,而青霉素則表現(xiàn)為中敏。安菌素和克菌靈的抑菌圈直徑進(jìn)行單因素方差分析P=0.000 182差異不是太大。而克菌靈和青霉素P=0.013 769,安菌素和青霉素P=0.006 437,之間差異明顯較大。安菌素和克菌靈在添加500 mg/L時(shí)抑菌圈>15 mm處于在高敏區(qū),而青霉素在添加500 mg/L時(shí)抑菌圈介于10 mm與10 mm處于在中敏區(qū)但接近高敏的標(biāo)準(zhǔn),從抑菌圈所表現(xiàn)出來的抑菌效果,依次是克菌靈、安菌素、青霉素為了更好的區(qū)分。微生物發(fā)酵試驗(yàn)中添加任何試劑都需要考慮其對(duì)發(fā)酵過程的影響,為了考察抑菌劑對(duì)小球藻發(fā)酵過程的影響、找到更合適的抑菌劑用量,需進(jìn)一步開展搖瓶試驗(yàn)。
搖瓶試驗(yàn)可以直觀地反映微生物發(fā)酵過程中微生物生長(zhǎng)狀況,在進(jìn)行配方等試驗(yàn)時(shí),使用搖瓶開展試驗(yàn),可以快速、低成本地獲取相關(guān)試驗(yàn)結(jié)果。微生物在搖瓶中對(duì)營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的消耗速度、在搖瓶中的生長(zhǎng)速度,能夠直接說明了微生物對(duì)該配方的適應(yīng)性。而抑菌劑小球藻在發(fā)酵過程中的影響也會(huì)在搖瓶試驗(yàn)中直觀的觀察出來。
2.2.1 添加安菌素的搖瓶試驗(yàn)結(jié)果
安菌素是近兩年開發(fā)出來的新型抑菌劑,在酒精發(fā)酵行業(yè)獲得了一定的應(yīng)用,能夠起到良好的抑菌效果,目前尚未應(yīng)用到藻類培養(yǎng)領(lǐng)域。
如圖1所示,添加100 mg/L的安菌素,發(fā)酵過程干重質(zhì)量濃度、葡萄糖含量變化趨勢(shì)和終了干重與空白樣基本吻合,說明添加100 mg/L的安菌素不會(huì)對(duì)整個(gè)發(fā)酵過程產(chǎn)生明顯的影響。而增大添加量以后,小球藻的發(fā)酵過程出現(xiàn)較為明顯的波動(dòng),且隨著安菌素添加量的增加,小球藻終了干重呈現(xiàn)降低的趨勢(shì)、葡萄糖消耗減慢。說明增大添加量以后安菌素對(duì)小球藻的發(fā)酵過程產(chǎn)生了負(fù)面的影響,藻細(xì)胞增殖速度減慢。在發(fā)酵第5 d,添加500 mg/L的安菌素的小球藻發(fā)酵液中出現(xiàn)了絮狀物,經(jīng)鏡檢發(fā)現(xiàn)未染雜菌,可能是添加較多量的安菌素后小球藻發(fā)生了絮凝。
圖1 添加安菌素對(duì)發(fā)酵過程影響Fig.1 Effect of Anjunsu on Chlorella fermentation
2.2.2 添加青霉素的搖瓶試驗(yàn)結(jié)果
青霉素是目前藻類培養(yǎng)過程中使用較多的抑菌劑,王江濤、周文禮等人的研究表明,低于100 mg/L的青霉素在自養(yǎng)小球藻培養(yǎng)過程中可以明顯起到抑菌的作用且不會(huì)對(duì)小球藻、金藻等藻類產(chǎn)生葉綠素a產(chǎn)生抑制。而王衛(wèi)東等人的研究則表明,添加300 IU/mL的青霉素不僅會(huì)抑制雜菌而且還會(huì)對(duì)球等鞭金藻的生長(zhǎng)起到促進(jìn)作用[12-14]。
圖2 添加青霉素對(duì)發(fā)酵過程影響Fig.2 Effect of penicillin on Chlorella fermentation
如圖2所示,添加100 mg/L的青霉素,發(fā)酵過程干重質(zhì)量濃度和葡萄糖含量變化趨勢(shì)在發(fā)酵前期與空白樣基本吻合,而進(jìn)入到第4天,添加青霉素的發(fā)酵過程干重質(zhì)量濃度開始落后于空白樣,而且終了干重也低于空白樣。說明添加100 mg/L的青霉素已經(jīng)對(duì)整個(gè)發(fā)酵過程產(chǎn)生明顯的影響。而隨著添加量增大,小球藻在發(fā)酵過程中葡萄糖消耗速度減慢,發(fā)酵過程干重質(zhì)量濃度變化越來越低,且小球藻終了干重也呈現(xiàn)越來越低的趨勢(shì)。說明增大添加量以后青霉素對(duì)小球藻的發(fā)酵過程產(chǎn)生了較為明顯負(fù)面的影響,藻細(xì)胞增殖速度受到抑制。
2.2.3 添加克菌靈的搖瓶試驗(yàn)結(jié)果
克菌靈是近兩年開發(fā)出來的新型抑菌劑,在酒精發(fā)酵行業(yè)獲得了一定的應(yīng)用。在發(fā)酵初期添加,起到抑制雜菌生長(zhǎng)、減少硫酸用量、減弱發(fā)酵醪酸度的作用[16]。目前尚未應(yīng)用在藻類培養(yǎng)領(lǐng)域。
如圖3所示,添加各個(gè)比例的克菌靈,整個(gè)發(fā)酵過程干重質(zhì)量濃度變化趨勢(shì)均和終了干重與空白樣相比均基本吻合,僅終了干重略低,說明安菌素不會(huì)對(duì)整個(gè)發(fā)酵過程產(chǎn)生明顯的影響。添加100 mg/L的克菌靈整個(gè)發(fā)酵過程干重質(zhì)量濃度變化趨勢(shì)均和終了干重與空白樣相比基本相同。
圖3 添加克菌靈對(duì)發(fā)酵過程影響Fig.3 Effect of Kejunling on Chlorella fermentation
對(duì)比安菌素、青霉素、克菌靈搖瓶發(fā)酵試驗(yàn)結(jié)果,安菌素的添加會(huì)引起小球藻在發(fā)酵過程中葡萄糖消耗和細(xì)胞增殖有所減慢,而青霉素的添加則會(huì)引起小球藻發(fā)酵過程劇烈變化,葡萄糖消耗和藻細(xì)胞干重質(zhì)量濃度均為空白樣的一半。而克菌靈添加則沒有對(duì)小球藻發(fā)酵過程造成明顯影響。結(jié)合平板抑菌圈試驗(yàn)結(jié)果,添加100 mg/L的克菌靈抑菌效果良好,且添加量較小在發(fā)酵過程中不會(huì)對(duì)小球藻的正常發(fā)酵過程造成明顯的影響,比較適合在小球藻發(fā)酵過程中使用。
搖瓶試驗(yàn)結(jié)果可以直觀的反映發(fā)酵過程,由于轉(zhuǎn)速、通風(fēng)、溫度、pH等因素影響,搖瓶試驗(yàn)結(jié)果又不能完全反映發(fā)酵過程。搖瓶試驗(yàn)結(jié)果必須在發(fā)酵罐中進(jìn)行進(jìn)一步試驗(yàn)。
如圖4所示,正常發(fā)酵試驗(yàn)(空白)發(fā)酵過程中干重增加較為平穩(wěn),而接種時(shí)同時(shí)接入雜菌的對(duì)照組(100 mg/L)在發(fā)酵處于延滯期的前2天,生長(zhǎng)與空白組沒有太大差別,而在發(fā)酵進(jìn)入第3、4天兩者之間干重質(zhì)量濃度、每天干重增加量差距比較明顯,發(fā)酵處于停滯狀態(tài),如果不采取挽救措施,整個(gè)發(fā)酵會(huì)以失敗而告終。而加入100 mg/L克菌靈后,小球藻的生長(zhǎng)逐步恢復(fù)正常。在加入克菌靈24 h后,鏡檢已經(jīng)發(fā)現(xiàn)不了雜菌。在第5天以后發(fā)酵過程中干重增長(zhǎng)趨勢(shì)與對(duì)照基本一致,而發(fā)酵終了干重的質(zhì)量濃度也僅比空白組低10 g/L。結(jié)果表明在染菌以后添加克菌靈可以有效地抑制雜菌,并成功挽救發(fā)酵。
圖4 50 L發(fā)酵罐中克菌靈對(duì)小球藻發(fā)酵的影響Fig.4 Effect of Kejunling on Chlorella fermentation in a 50 L fermenter
從表1中可以看出,在相同的發(fā)酵時(shí)間內(nèi),由于染菌的影響,小球藻終了干重、藻油含量、平均每天干重增加量均比正常發(fā)酵過程偏低,但是由于添加了抑菌劑及時(shí)抑制了細(xì)菌對(duì)小球藻正常生長(zhǎng)的影響,所以發(fā)酵沒有因染菌而失敗,而是在停滯一段時(shí)間后恢復(fù)了正常生長(zhǎng),因此使用抑菌劑挽救了染菌的發(fā)酵過程。
表1 添加抑菌劑對(duì)發(fā)酵結(jié)果的影響Table 1 The effect of fermentation results by adding bacteriostatic agent
(1)雜菌(桿菌)生長(zhǎng)較快,能夠在發(fā)酵過程中迅速占據(jù)種群優(yōu)勢(shì),消耗大量營(yíng)養(yǎng)物質(zhì),導(dǎo)致小球藻不能夠正常生長(zhǎng),每天干重增加量迅速下降,如果不采取挽救措施,會(huì)直接導(dǎo)致發(fā)酵失敗。
(2)在加入克菌靈后,在24 h后鏡檢已經(jīng)不能發(fā)現(xiàn)雜菌(桿菌),克菌靈能夠有效的抑制雜菌(桿菌)。
(3)空白組的終了干重為88.4 g/L,日干重增加量為7.36 g/(L·d),對(duì)照組終了干重為75.2 g/L,每天干重增加量為6.27 g/(L·d),相比僅降低14.9%。而在沒有添加克菌靈前小球藻的干重一直低于5 g/L,添加克菌靈在抑制了雜菌(桿菌)且成功的挽救了發(fā)酵過程。
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