厙守權(quán), 劉 剛, 李 妍, 金美松, 孫衛(wèi)平, 康東周
(延邊大學(xué)藥學(xué)院,吉林 延吉 133002)
紅曲霉-人參雙向固體發(fā)酵產(chǎn)物成分變化的初步分析
厙守權(quán), 劉 剛, 李 妍, 金美松, 孫衛(wèi)平, 康東周*
(延邊大學(xué)藥學(xué)院,吉林延吉133002)
目的 利用TLC和HPLC定性分析紅曲霉-人參粉末雙向固體發(fā)酵產(chǎn)物主要成分的變化。方法 紅曲霉接種于以人參為發(fā)酵基質(zhì)的固體培養(yǎng)基。取人參和人參發(fā)酵產(chǎn)物的甲醇提取液,TLC測定它們的酸式monacolin K,HPLC法測定其人參皂苷Rg1、Re、Rb1和Rg3。結(jié)果 人參經(jīng)過紅曲霉發(fā)酵后,TLC檢測出活性成分酸式monacolin K,HPLC證實了人參皂苷Rg1、Re、Rb1的含有量降低,但發(fā)酵液中出現(xiàn)人參皂苷Rg3。結(jié)論 紅曲霉-人參粉末雙向固體發(fā)酵使人參皂苷轉(zhuǎn)化成稀有的人參皂苷Rg3,并保存紅曲霉中的酸式monacolin K.
紅曲霉;人參;發(fā)酵;TLC;HPLC;酸式monacolin K;人參皂苷Rg1;人參皂苷Re;人參皂苷Rb1;人參Rg3
紅曲霉是藥食兩用真菌,在我國的應(yīng)用已有千年的歷史[1-2]。紅曲霉擁有強(qiáng)大的酶系[3],在生長過程中能夠產(chǎn)生次級代謝產(chǎn)物monacolin K,1979年日本學(xué)者遠(yuǎn)藤章從紅曲酶發(fā)酵液中分離得到[4-5],并發(fā)現(xiàn)其為HMG-CoA還原酶的抑制劑,能夠抑制膽固醇的生物合成[6]??茖W(xué)家們經(jīng)過大量試驗證明monacolin K在降低膽固醇方面具有高效、低毒、安全等特點(diǎn)。
人參享有“中藥之王”的美稱,被人類應(yīng)用于藥物治療方面已有上千年的歷史。人參皂苷是人參的主要藥用活性成分之一[7-8],尤其是人參皂苷Rg3和Rh2具有很強(qiáng)的促進(jìn)腫瘤細(xì)胞凋亡、抑制腫瘤細(xì)胞增殖、保肝、增強(qiáng)免疫力和保護(hù)心血管的作用。但是Rg3和Rh2這種稀有人參皂苷在人參中含有量極低[9]。
現(xiàn)階段,微生物發(fā)酵轉(zhuǎn)化中藥的研究成為熱點(diǎn),其具有改變藥性,提高療效,降低毒副作用,擴(kuò)大適應(yīng)癥等特點(diǎn)[10]。二十世紀(jì)80年代末,“藥用真菌新型(雙向性)固體發(fā)酵工程”簡稱“雙向發(fā)酵”正式問世[11]。機(jī)理是采用不同的中藥材組成不同的“藥性基質(zhì)”的底物,在現(xiàn)代生物技術(shù)嚴(yán)密控制下,通過接種不同的單株藥用真菌,發(fā)生一系列復(fù)雜的生理活動與生化反應(yīng)。這樣的組合既提供了真菌生長所需的營養(yǎng),也能使藥性基質(zhì)的成分和組織分解、變化,并產(chǎn)生新的成分,得到的發(fā)酵終產(chǎn)物兼具藥用真菌和中藥材的功效,最終使發(fā)酵作用演變成雙向性[12-14]。本實驗利用藥用真菌紅曲霉菌固體發(fā)酵人參,為紅曲霉-中藥材雙向發(fā)酵體系藥用價值的深層次挖掘和開發(fā)奠定基礎(chǔ),同時為中草藥的二次開發(fā)提供一定的理論基礎(chǔ)。
1.1材料與試劑
1.1.1供試材料 人參,購于延邊參茸總公司,由延邊大學(xué)藥學(xué)院呂慧子副教授鑒定為人參Panaxginseng C.A.Mey的根部;紅曲酶菌株,由韓國KCCM提供。
1.1.2藥品試劑 Monacolin K對照品(中國藥品生物制品檢定所提供,批號100600-201102),人參皂苷對照品Rg1(批號110703-200726),Re(編號110804),Rb1(批號110704-200420)由中國藥品生物制品檢定所提供,Rg3(中國食品藥品檢定研究院提供,批號110754-201123);甲醇、乙腈(色譜級,F(xiàn)isher Scientific);正丁醇、三氯甲烷、石油醚、苯、濃硫酸、無水乙醇、甲酸均為分析純。
1.2儀器與設(shè)備 HITACHI-2000型高效液相色譜儀(日本日立公司);FA604型電子分析天平(上海精天電子儀器有限公司);YQ-620B型超聲波清洗機(jī)(上海易凈超聲波儀器有限公司);HZQ-F100型振蕩培養(yǎng)箱(哈爾濱市東聯(lián)電子技術(shù)開發(fā)有限公司);DNP-9162BS-III型電熱恒溫培養(yǎng)箱(上海新苗醫(yī)療器械制造有限公司);SW-CJ-IC型凈化工作臺(上海新苗醫(yī)療器械制造有限公司);DSX-280B型不銹鋼手提式滅菌器(上海申安醫(yī)療器械廠)。
1.3方法
1.3.1紅曲霉發(fā)酵人參 在超凈工作臺上,將紅曲菌種轉(zhuǎn)接于斜面培養(yǎng)基上,30℃下培養(yǎng)7 d。將培養(yǎng)好的斜面菌種轉(zhuǎn)接于搖瓶種子培養(yǎng)液中,放入搖床培養(yǎng)箱中,在一定溫度和轉(zhuǎn)數(shù)下培養(yǎng)48 h。取一定量的搖瓶種子液,接種于以人參為發(fā)酵基質(zhì)的固體培養(yǎng)基上,置于恒溫培養(yǎng)箱中,一定溫度下培養(yǎng)若干天。
1.3.2TLC法檢測發(fā)酵產(chǎn)物中的monacolin K 取適量monacolin K對照品2份,用甲醇配制成0.1%的溶液,為內(nèi)酯式monacolin K對照品溶液,加入適量0.1 mol/LNaOH-75%乙醇[15],60℃水浴2 h,得酸式monacolin K對照品溶液。再取適量發(fā)酵產(chǎn)品,按固液比1∶10加蒸餾水,放入振蕩培養(yǎng)箱中,30℃,150 r/min振蕩3 h。振蕩結(jié)束后離心10 min,棄上清液,得殘渣。干燥殘渣再按固液比1∶20加入石油醚,70℃回流提取90 min,之后離心10 min,棄上清液,得殘渣。干燥殘渣再按固液比1∶20加入甲醇,70℃回流提取4 h,之后提取液離心,取上清液,濃縮至適量,得供試品溶液。取TLC板,105℃活化45 min,待冷卻后,取供試液與對照品溶液在TLC板上同時展開,展開劑為苯-甲醇-三氯甲烷-甲酸(24∶2∶2∶0.5),展開結(jié)束后吹干,用10%硫酸-乙醇顯色,觀察效果。
1.3.3TLC法檢測發(fā)酵產(chǎn)物中人參皂苷的成分變化 分別取人參皂苷Rg1、Rg3對照品1 mg加入1 mL甲醇溶解,配制成對照品溶液。再分別取干人參和人參發(fā)酵產(chǎn)物適量,加入適量甲醇,超聲提取3 h,之后離心,取上清液。蒸干上清液,殘渣用適量蒸餾水溶解,并加入等體積的水飽和正丁醇進(jìn)行萃取,取上層液體與對照品溶液同時在TLC板上展開,展開劑為三氯甲烷-乙酸乙酯-甲醇-水(15∶40∶22∶10),10℃下放置分層的下層液體[16]。展開結(jié)束后吹干,用10%硫酸-乙醇顯色,觀察效果。
1.3.4HPLC法測定發(fā)酵產(chǎn)物中人參皂苷的成分變化
1.3.4.1色譜條件 色譜柱為Diamonsil C18(5 μm,250 mm×4.6 mm),流動相為乙腈-1.3%磷酸水溶液,梯度洗脫(0~30 min,乙腈19%;30~35 min,乙腈19%~24%;35~80 min,乙腈24%~50%),體積流量為0.8 mL/min,柱溫為30℃,檢測波長為203 nm,進(jìn)樣量為20μL。
1.3.4.2對照品的制備 將人參皂苷Rg1、Re、Rb1、Rg3對照品分別用甲醇配制成1 mg/mL的對照品溶液,0.45μm微孔濾膜過濾,用于HPLC檢測。
1.3.4.3供試液的制備 分別取干人參和人參發(fā)酵產(chǎn)物適量,加入適量甲醇,超聲提取3 h,之后離心,取上清液。蒸干上清液,殘渣用適量蒸餾水溶解,并加入等體積的水飽和正丁醇進(jìn)行萃取,萃取后取上層液體,將所取上層液體蒸干后溶于適量的色譜級甲醇中,0.45μm微孔濾膜過濾,用于HPLC檢測。
2.1方法學(xué)考察
2.1.1精密度試驗 精密吸取Rg3對照品溶液20 μL,按照色譜條件進(jìn)行HPLC測定,連續(xù)進(jìn)樣6次,記錄峰面積,人參皂苷Rg3的峰面積RSD值為0.8%,小于5.0%,表明所用儀器的精密度良好。
2.1.2穩(wěn)定性試驗 精密吸取Rg3對照品溶液20 μL,按照色譜條件進(jìn)行HPLC測定,分別在0、4、8、12、24、48 h后連續(xù)進(jìn)樣,記錄峰面積,人參皂苷Rg3的峰面積RSD值為1.1%,表明供試品溶液在48 h內(nèi)基本穩(wěn)定。
2.1.3重復(fù)性試驗 分別精密吸取20μL Rg3對照品溶液6份,按照色譜條件分別進(jìn)樣,進(jìn)行HPLC測定,記錄峰面積,人參皂苷Rg3的峰面積RSD值為1.8%,小于5.0%,表明該方法重復(fù)性良好。
2.2TLC法對發(fā)酵產(chǎn)物中monacolin K的定性分析結(jié)果 如圖1所示,發(fā)酵樣品與內(nèi)酯式和酸式monacolin K對照品相比較,酸式monacolin K對照品的斑點(diǎn)明顯可見,說明紅曲酶-人參發(fā)酵產(chǎn)物中含有酸式monacolin K。
2.3TLC法對發(fā)酵產(chǎn)物中人參皂苷的定性分析結(jié)果 如圖2所示,發(fā)酵人參樣品與Rg3在相同的Rf值處有斑點(diǎn)出現(xiàn),而未發(fā)酵人參則沒有斑點(diǎn)出現(xiàn),初步證明發(fā)酵人參當(dāng)中含有人參皂苷Rg3。
2.4HPLC法對發(fā)酵產(chǎn)物中人參皂苷的定性分析結(jié)果 根據(jù)圖3,色譜峰1、2分別為人參皂苷Rg1、Re色譜峰,色譜峰5為人參皂苷Rb1色譜峰,色譜峰Rg3為色譜峰9。人參皂苷Rg1、Re、Rb1在發(fā)酵中發(fā)生轉(zhuǎn)化,含有量降低,人參經(jīng)過發(fā)酵得到人參皂苷Rg3,其轉(zhuǎn)化機(jī)制尚待研究。從HPLC圖還可看出其他色譜峰高略有變化,具體化學(xué)成分有待進(jìn)一步研究。
圖1 紅曲樣品的TLC圖譜Fig.1 TLC chromatogram of Monascus product
圖2 人參樣品TLC圖Fig.2 TLC chromatogram of Ginseng
對紅曲霉所產(chǎn)生的monacolin K定性分析檢測。由于monacolin K在酸性條件下以酸式和內(nèi)酯式兩種形式存在,他們處于一種相互轉(zhuǎn)化的動態(tài)平衡中[17],兩者的結(jié)構(gòu)只是在母核上兩處支鏈結(jié)構(gòu)有微小區(qū)別,而且兩者的極性極其相近,利用高效液相色譜法對monacolin K進(jìn)行檢測時,兩者在相同波長處的峰在同一處不易分開,這就為其定性造成了一定的困難。所以利用薄層色譜法對monacolin K定性,但對色譜系統(tǒng)的要求也很高,需要找出合適的展開劑種類及展開比例,以達(dá)到內(nèi)酯式mona-colin K和酸式monacolin K的良好分離。
圖3 人參HPLC圖譜Fig.3 HPLC chromatograph map of Ginseng
人參皂苷的變化是由于微生物在生長過程中產(chǎn)生的酶對人參皂苷的某一部位或某幾個部位的特定轉(zhuǎn)化而獲得一定的產(chǎn)物[18]。本實驗中利用紅曲霉發(fā)酵人參,根據(jù)TLC和HPLC圖譜可知人參皂苷發(fā)生了轉(zhuǎn)化,并成功轉(zhuǎn)化出人參稀有皂苷Rg3,轉(zhuǎn)化機(jī)理可能為人參皂苷Rb1經(jīng)過酶的水解作用在C20位脫去一個葡萄糖苷生成人參皂苷Rd,再經(jīng)進(jìn)一步水解生成人參皂苷Rg3[19]如圖4所示?;蛘呷藚⒃碥誖b2和Rc在不同的酶的作用下改變了C3和C20上的糖鏈結(jié)構(gòu)最終轉(zhuǎn)化成人參皂苷Rg3[20],如圖5所示。具體的轉(zhuǎn)化路線還有待于進(jìn)一步的研究考證。
從結(jié)果中可以得出,發(fā)酵產(chǎn)物中檢測出活性成分酸式monacolin K和人參稀有皂苷Rg3,發(fā)酵產(chǎn)物兼具紅曲霉和人參主要活性成分,紅曲霉具有一定的轉(zhuǎn)化人參皂苷的能力,人參皂苷成分發(fā)生變化,并轉(zhuǎn)化出人參皂苷Rg3,使發(fā)酵具有雙向性。
圖4 人參皂苷Rb1轉(zhuǎn)化為人參皂苷Rg3反應(yīng)機(jī)理圖Fig.4 Reaction mechanism of ginsenoside Rb1converted into Rg3
圖5 人參皂苷Rb2和Rc轉(zhuǎn)化為人參皂苷Rg3的反應(yīng)機(jī)理圖Fig.5 Reaction mechanism of ginsenoside Rb2and Rc converted into Rg3
[1] 傅金泉.中國古代紅曲文化及現(xiàn)代新技術(shù)[J].釀酒科技,2001(1):79-80.
[2] 邢旺興,宓鶴鳴,賀 祥.紅曲考證[J].中藥材,2000,23(3):175-177.
[3] 荊雯雯.紅曲霉雙向發(fā)酵體系的初步研究[D].貴陽:貴州大學(xué),2011:6.
[4] Endo A.Monacolin K-A new hypocholesterolemic agent produced by a Monascus species[J].JANTIBIOT,1979,32(8):852-854.
[5] Endo A.Monacolin K-A new hypocholesterolemic agent that specifically inhibits3-hydroxy-3-methylglu-laryl coenzyme A reductase[J].JANTIBIOT,1980,33(3):334-336.
[6] 王 玲,吳軍林,吳清平.紅曲降血脂功能的研究及應(yīng)用概況[J].食品工業(yè)科技,2014,35(8):387-389.
[7] 郭秀麗,高淑蓮.人參化學(xué)成分和藥理研究進(jìn)展[J].中醫(yī)臨床研究,2012,4(14):26-27.
[8] 黎 陽,張鐵軍,劉素香,等.人參化學(xué)成分和藥理研究進(jìn)展[J].中草藥,2009,40(1):164-附2.
[9] Yu H S,Liu QM,Zhang C Z,etal.A new ginsenosidase from Aspergillus strain hydrolyzing 20-O-multi-glycoside of PPD ginsenoside[J].Process.Biochemistry,2009,(7):772-775.
[10] 鄔吉野.槐耳大黃雙向發(fā)酵研究[D].北京:北京中醫(yī)藥大學(xué),2013:10-11.
[11] 莊 毅,潘 揚(yáng),謝小梅,等.藥用真菌雙向發(fā)酵的起源、發(fā)展及其優(yōu)勢和潛力[J].中國食用菌,2007,26(2):3-6.
[12] 魏 龍,贠建民,艾對元,等.提高靈芝-當(dāng)歸雙向固態(tài)發(fā)酵基質(zhì)抗氧化活性的條件優(yōu)化研究[J].食品工業(yè)科技,2014:1-8.
[13] 崔培梧,吳紅娟,譚朝陽,等.植物藥-茯苓菌雙向發(fā)酵代謝特征初探[J].湖南中醫(yī)藥大學(xué)學(xué)報,2013,33(7):37-40.
[14] 張 婧,郭明曄,程亦雄,等.響應(yīng)面法優(yōu)化槐耳/板藍(lán)根雙向發(fā)酵條件[J].中國實驗方劑學(xué)雜志,2013,19(22):34-37.
[15] 楊 麗,張水華,王啟軍.TLC薄層色譜法同步檢測功能紅曲中酸性和內(nèi)酯型莫那呵啉K(Monacolin K)[J].食品研究與開發(fā),2006,27(2):113-114.
[16] 國家藥典委員會.中華人民共和國藥典:2010年版一部[S].北京:中國醫(yī)藥科技出版社,2010:8.
[17] Wang Q J,Zhang SH,Sung C K,et al.Simultaneous detection of lactone form and acid form monacolin K by sensitive TLC method[J].Journal of South China Uniυersity of Technology(Natural Science Edition),2003,31(9):71-74.
[18] 宋學(xué)洲,高文斌,鄭毅男.人參皂苷生物轉(zhuǎn)化研究最新進(jìn)展[J].人參研究,2012,24(1):34-38.
[19] 王洪峰,朱 凱,田 健,等.人參雙向固體發(fā)酵過程中化學(xué)成分的變化[J].吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2013,35(3):312-316.
[20] 白龍律.人參皂苷微生物轉(zhuǎn)化研究[D].北京:延邊大學(xué)化學(xué)院,2011:10-11.
Chem ical changes in M onascus-Ginseng product after bi-directional solid fermentation
SHE Shou-quan, LIU Gang, LIYan, JIN Mei-song, SUNWei-ping, KANG Dong-zhou*
(College of Pharmacy,Yanbian Uniυersity,Yanji133002,China)
AIM To analyze the constituent changes in the products ofmedicinal fungi Monascus and Ginseng powder after the bi-directional solid fermentation by TLC and HPLC.METHODS By inoculating Ginseng powder with Monascus,TLC was used tomeasure the acid form monacolin K content and the contents of ginsenoside Rg1,Re,Rb1,and Rg3ofmethanolic extracts were determined from Ginseng and Ginseng fermented broth by HPLC. RESULTS The TLC showed that therewas acid form monacolin K contained in Monascus-Gnseng fermented product.HPLCmethod proved thata slight decrease in contents of ginsenosides Rg1,Re and Rb1,but ginsenoside Rg3appeared in Ginseng fermented broth.CONCLUSION Monascus-Ginseng bi-directional solid fermentationmakes ginsenosides convert to ginsenoside Rg3which is rare in Ginseng and does not destroy acid form monacolin K from Monascus in fermented broth.
Monascus;Ginseng;fermentation;TLC;HPLC;acid form monacolin K;ginsenoside Rg1;ginsenoside Re;ginsenoside Rb1;ginsenoside Rg3
10.3969/j.issn.1001-1528.2015.03.030
2014-04-12
厙守權(quán)(1986—),男,碩士生,研究方向為功能保健食品。Tel:13199540256,E-mail:327719006@qq.com
康東周,男,博士,副教授,碩士生導(dǎo)師,研究方向為功能保健食品。Tel:(0433)2436012
R284.1
A
1001-1528(2015)03-0599-05