馬 森,張恩平*,陳玉林*,閆海龍
(1.西北農(nóng)林科技大學(xué) 動(dòng)物科技學(xué)院,陜西 楊凌712100;2.榆林學(xué)院生命科學(xué)研究中心,陜西 榆林719000)
山羊絨是絨山羊次級(jí)毛囊的產(chǎn)物,又稱開(kāi)司米,是極好的紡織原料。不同顏色絨毛中,又以白絨最為珍貴[1]。山羊絨隨絨山羊皮膚內(nèi)次級(jí)毛囊周期性在生長(zhǎng)期、退行期及休止期間定向轉(zhuǎn)換而循環(huán)生長(zhǎng)、著色及脫落[2]。因此探索山羊絨周期再生及著色的分子機(jī)理,將對(duì)絨山羊遺傳育種及羊絨產(chǎn)業(yè)發(fā)展具有促進(jìn)作用。
Wnt/β-catenin 信 號(hào) 通 路 是 由 Nusse 等[3]于1982年在小鼠乳腺腫瘤病毒研究中首次發(fā)現(xiàn)的,其傳導(dǎo)途徑如下:Wnt蛋白與靶細(xì)胞膜受體結(jié)合而激活胞質(zhì)內(nèi)小分子β-catenin,促使其在胞質(zhì)內(nèi)聚集后轉(zhuǎn)位入核,激活轉(zhuǎn)錄因子復(fù)合物L(fēng)ef1/Tcf3而起始下游靶基因的轉(zhuǎn)錄。此外,一些拮抗因子如Dkk1[4]等能通過(guò)與Wnt蛋白競(jìng)爭(zhēng)性地結(jié)合膜受體而抑制該信號(hào)通路。
國(guó)內(nèi)外研究發(fā)現(xiàn),Wnt/β-catenin信號(hào)通路是調(diào)控成熟毛囊周期性發(fā)育的中樞通路之一,該通路內(nèi)β-catenin等上游基因在毛囊周期性發(fā)育過(guò)程中起著決定性作用[5]。β-catenin、Lef1/Tcf3等基因突變失活阻礙成熟毛囊再次進(jìn)入周期性發(fā)育過(guò)程,而其過(guò)表達(dá)則誘導(dǎo)成熟毛囊提前由休止期向生長(zhǎng)期的轉(zhuǎn)換[6]。同時(shí),β-catenin 等基因也能夠促進(jìn)生長(zhǎng)中期毛囊內(nèi)部細(xì)胞的大量增殖分化而快速重構(gòu)毛干[7]。Dkk1基因的過(guò)表達(dá)則阻斷毛囊周期性再生的過(guò)程。此外,β-catenin、Lef1/Tcf3及 Dkk1也參與調(diào)控毛囊內(nèi)部黑素細(xì)胞生長(zhǎng)發(fā)育及黑素合成的過(guò)程而影響毛干的著色[8]。
目前,Wnt/β-catenin信號(hào)通路調(diào)控成熟毛囊周期性發(fā)育及毛干著色過(guò)程的研究主要集中在人和小鼠上,而在絨山羊上則尚有相關(guān)研究報(bào)道。本研究擬對(duì)該通路上游基因β-catenin、Lef1/Tcf3及拮抗基因Dkk1mRNA在白色絨山羊絨毛生長(zhǎng)不同時(shí)期及黑、白色絨山羊絨毛生長(zhǎng)旺盛期時(shí)體側(cè)部皮膚組織中的相對(duì)表達(dá)量進(jìn)行測(cè)定,初步探究 Wnt/β-catenin信號(hào)通路是否參與山羊絨周期性再生及著色的過(guò)程,為進(jìn)一步完善山羊絨毛周期性再生及著色的分子機(jī)理奠定基礎(chǔ)。
于榆林市陜北白絨山羊繁育中心選取成年黑、白色供試公羊3只,于2013年5月至2014年3月每間隔兩月采取體側(cè)部皮膚組織1cm2,共采集六次(黑色絨山羊只采集9月份皮膚樣品)。皮膚組織離體后,置于DEPC處理過(guò)的生理鹽水中沖洗血液及其他雜物,立即將皮膚組織置于RNA保存液中,低溫運(yùn)輸,-80℃保存。
RNA保存液(Takara)、RNA提取試劑盒(康為世紀(jì))、反轉(zhuǎn)錄試劑盒(Thermo Scientific)、實(shí)時(shí)熒光定量試劑盒(Takara)、膠回收試劑盒(Omega)。梯度PCR儀(Bio-Rad),pMD-19T克隆載體(Takara);核酸蛋白定量?jī)x(NanoDrop);實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀(Bio-Rad);凝膠電泳儀(北京六一儀器廠);凝膠成像儀(Bio-Rad);高速冷凍離心機(jī)(Eppendorf)。
皮膚組織解凍后經(jīng)DEPC處理水吹洗三次以除去殘留RNA保存液,經(jīng)高通路組織研磨器研磨后按照超純RNA提取試劑盒說(shuō)明書(shū)所示步驟提取皮膚組織總RNA,1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)所提總RNA完整性,核酸定量?jī)x測(cè)定總RNA純度及濃度。
將所提取的皮膚組織總RNA均質(zhì)化然后依照Thermo反轉(zhuǎn)錄試劑盒操作說(shuō)明書(shū)所示步驟以O(shè)ligo(dT)18為引物進(jìn)行cDNA第一鏈的合成。反應(yīng)體系如下:2μg總RNA、1μL Oligo(dT)18引物、4 μL 5XReaction Buffer、1μL RibolLock RNase Inhibitor(20u/μL)、2μL 10mM dNTP Mix、1μL RevertAid M-MuLV Reverse Transcriptase(200u/μL),補(bǔ)足無(wú)酶水至20μL。上述試劑配置均在冰上進(jìn)行。輕微混勻后離心,42℃孵育60min,70℃加熱5min終止反應(yīng),反轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物置于-80℃保存?zhèn)溆谩?/p>
據(jù)NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)中已發(fā)表的β-catenin(XM_005695574.1)、Dkk1(XM_005698161.1)、Tcf3(XM_005682921.1)、Lef1(NM_001285746.1)及內(nèi)參基因β-actin(XM_005946208.1)核苷酸序列,采用Primer premier 5.0設(shè)計(jì)定量引物。實(shí)時(shí)熒光定量確定引物的擴(kuò)增特異性及效率。各基因引物見(jiàn)表1。
表1 Wnt/β-catenin信號(hào)通路上游基因?qū)崟r(shí)熒光定量引物Table 1 Primers sequences of upstream genes within Wnt/β-catenin pathway for quantitative real-time PCR
取反轉(zhuǎn)錄合成的cDNA第一鏈,使用上述各基因引物進(jìn)行qRT-PCR條件及體系的優(yōu)化。優(yōu)化后的反應(yīng)體系如下:12.5μL SYBR?Premix Ex TaqII(Tli RNaseH Plus)2×、1μL PCR Forward Primer(10μM)、1μL PCR Reverse Primer(10 μM)、cDNA 2μL、滅菌ddH2O 8.5μL,總體積為25μL。實(shí)時(shí)定量采用三步法PCR程序:95℃預(yù)變性30s;95℃變性5s,58℃退火30s,72℃延伸30 s,共40個(gè)循環(huán);60~95℃解鏈,梯度0.5℃,共71個(gè)循環(huán)。每個(gè)樣品做三次重復(fù)。
β-catenin、Lef1/Tcf3及 Dkk1基因所采用實(shí)時(shí)熒光定量引物及反應(yīng)條件同1.5。
相關(guān)基因在白色絨山羊絨毛生長(zhǎng)不同時(shí)期及生長(zhǎng)旺盛期黑、白色絨山羊體側(cè)部皮膚組織中的相對(duì)表達(dá)量采用2-ΔΔCt法計(jì)算。各基因在不同月份白色絨山羊皮膚組織中的相對(duì)表達(dá)量以5月份為基準(zhǔn),而9月份黑、白色絨山羊皮膚組織內(nèi)的相對(duì)表達(dá)量則以黑色為基準(zhǔn)。數(shù)據(jù)顯著性分析采用SPSS 17軟件。
經(jīng)紫外分光光度計(jì)檢測(cè)所提取的絨山羊皮膚總RNA發(fā)現(xiàn),OD260/280值均在1.8至2.0之間。1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)圖中28S、18S電泳條帶清晰可見(jiàn),5S條帶暗淡,各條帶之間彌散較少。結(jié)果表明,所提取皮膚組織總RNA完整性良好,純度及質(zhì)量滿足實(shí)驗(yàn)要求。
絨山羊皮膚樣品的總RNA進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄獲得皮膚樣品cDNA,經(jīng)10倍梯度比稀釋后進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光PCR,得到內(nèi)參基因β-actin 及β-catenin 等基因相關(guān)系數(shù)(R)均在0.990以上,擴(kuò)增效率(E)均在95%~110%之間。結(jié)果表明,反轉(zhuǎn)錄所得的cDNA可用于下一步實(shí)時(shí)熒光定量PCR試驗(yàn),實(shí)時(shí)熒光定量PCR體系及條件適于β-actin及β-catenin等基因mRNA的相對(duì)表達(dá)量研究。
Wnt/β-catenin信號(hào)通路上游基因mRNA不同月份間相對(duì)表達(dá)量(5月份為基準(zhǔn))見(jiàn)圖1。由圖1知,βcatenin、Lef1/Tcf3基因mRNA相對(duì)表達(dá)量在5~9月份間逐步上調(diào),9月份表達(dá)量最高(P<0.05);9月份到次年3月份間,表達(dá)量逐步下調(diào);3月份表達(dá)量最低(P<0.05)。同時(shí),各基因mRNA在5月份的相對(duì)表達(dá)量顯著高于3月份(P<0.05)。Dkk1作為Wnt/β-catenin信號(hào)通路的拮抗基因,其各月份之間相對(duì)表達(dá)量差異不顯著(P>0.05)。結(jié)果表明,Wnt/β-catenin信號(hào)通路內(nèi)β-catenin等上游基因mRNA在間白色絨山羊各月份體側(cè)部皮膚組織中的相對(duì)表達(dá)量有明顯的先上調(diào)后下調(diào)的變化規(guī)律,而Dkk1基因mRNA各月份間相對(duì)表達(dá)量則無(wú)類似的變化規(guī)律。
圖1 Wnt/β-catenin信號(hào)通路上游基因在白色絨山羊不同月份皮膚組織中的表達(dá)Fig.1 Expression of upstream genes within Wnt/β-catenin signaling in cashmere goat skin tissue among different months
Wnt/β-catenin 信號(hào)通路中上游基因β-catenin、Lef1/Tcf3以及該通路拮抗基因Dkk1mRNA在9月份黑、白色絨山羊皮膚組織中的相對(duì)表達(dá)量見(jiàn)圖2。由圖2可知,各基因mRNA在黑、白絨山羊皮膚組織中的相對(duì)表達(dá)量均差異不顯著(P>0.05)。
圖2 Wnt/β-catenin通路上游基因在黑白色絨山羊皮膚組織中的表達(dá)Fig.2 Expression of upstream genes within Wnt/β-catenin signaling in cashmere goat skin tissue between the white and black
研究表明,Wnt/β-catenin信號(hào)通路基因在小鼠皮膚組織中的表達(dá)具有毛囊周期依賴性的特征,即在生長(zhǎng)前期出現(xiàn)表達(dá),生長(zhǎng)中期表達(dá)量最高,退行期及休止期表達(dá)量最低甚至沒(méi)有表達(dá)[9]。本試驗(yàn)對(duì)Wnt/β-catenin信號(hào)通路上游β-catenin 等基因 mRNA在不同月份白色絨山羊體側(cè)部皮膚組織中的相對(duì)表達(dá)量進(jìn)行研究。對(duì)于絨山羊來(lái)講,5、7月份為絨毛生長(zhǎng)前期,9月份為生長(zhǎng)旺盛期,11月份為生長(zhǎng)后期,1月份處于退行期,3月份則處于休止期[10]。Wnt/β-catenin信號(hào)通路上游基因mRNA在處于各個(gè)時(shí)期內(nèi)的白色絨山羊體側(cè)部皮膚組織中均有表達(dá),生長(zhǎng)前期(5、7月份)至生長(zhǎng)旺盛期(9月份)時(shí)表達(dá)量逐漸升高,旺盛期時(shí)表達(dá)量最高,生長(zhǎng)旺盛期后進(jìn)入生長(zhǎng)后期(11月份)、退行期(1月份)時(shí)表達(dá)量逐漸下調(diào),休止期(3月份)時(shí)表達(dá)量最低。Wnt/βcatenin信號(hào)通路上游基因在白色絨山羊不同時(shí)期體側(cè)皮膚中的表達(dá)呈現(xiàn)同絨毛周期生長(zhǎng)同步的規(guī)律性,表明該信號(hào)通路同次級(jí)毛囊的活動(dòng)密切相關(guān)。
Wnt/β-catenin信號(hào)通路在毛囊生長(zhǎng)發(fā)育過(guò)程中的作用主要與毛囊內(nèi)部各類細(xì)胞增殖、分化有關(guān)。毛囊形態(tài)發(fā)生期時(shí),Wnt/β-catenin信號(hào)首先在真皮中出現(xiàn),構(gòu)成“第一真皮信號(hào)”,誘導(dǎo)上皮細(xì)胞聚集增殖形成表皮基板以及真皮凝聚物[11]。隨后,Wnt/βcatenin信號(hào)作為“第二真皮信號(hào)”促使表皮基底層細(xì)胞快速分裂,向下生長(zhǎng)并入侵真皮層,包裹真皮凝聚物形成了毛乳頭[11]。成熟毛囊進(jìn)入周期性再生循環(huán)時(shí),Wnt/β-catenin信號(hào)通路主要與休止期靜息狀態(tài)維持,休止期向生長(zhǎng)期轉(zhuǎn)換以及生長(zhǎng)期毛囊的快速重構(gòu)相關(guān)。研究發(fā)現(xiàn),Wnt/β-catenin信號(hào)在休止期大部分時(shí)間內(nèi)被BMP信號(hào)所抑制,僅在休止期快結(jié)束時(shí)抑制效應(yīng)才被解除。Wnt/β-catenin信號(hào)在休止期被抑制主要是由于低水平的 Wnt/βcatenin信號(hào)能夠抑制隆突部?jī)?nèi)毛囊干細(xì)胞的增殖分化而維持毛囊休止期的靜息狀態(tài)。休止期末時(shí),BMP信號(hào)水平降低,Wnt/β-catenin信號(hào)水平升高從而促使毛囊干細(xì)胞的增殖分化,繼而誘導(dǎo)毛囊由休止期向生長(zhǎng)期的轉(zhuǎn)換[12]。研究人員通過(guò)基因突變與轉(zhuǎn)錄組測(cè)序相結(jié)合的技術(shù)手段也發(fā)現(xiàn),β-catenin在生長(zhǎng)期起始時(shí)激活隆突部毛囊干細(xì)胞內(nèi)同細(xì)胞增殖分化相關(guān)基因的大規(guī)模表達(dá)[13]。也有研究發(fā)現(xiàn),β-catenin基因功能缺失則導(dǎo)致毛囊滯留于休止期,不能正常地實(shí)現(xiàn)由休止期向生長(zhǎng)期的轉(zhuǎn)換[6]。生長(zhǎng)期時(shí),大量的 Wnt/β-catenin信號(hào)通路基因以高水平且相互重疊的方式表達(dá)于毛囊內(nèi)部以維持毛囊生長(zhǎng)期的正常行進(jìn)[13]。有研究指出,生長(zhǎng)中期時(shí)β-catenin、Lef1等 Wnt/β-catenin信號(hào)通路上游基因高水平表達(dá)于毛母質(zhì)區(qū)域,促進(jìn)毛母質(zhì)內(nèi)毛干前體細(xì)胞向毛干各細(xì)胞譜系終末分化的過(guò)程而重構(gòu)毛干[14-15]。一些毛發(fā)特異性的角蛋白基因啟動(dòng)子區(qū)域含有Lef/Tcf轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點(diǎn),因而受到 Wnt/βcatenin信號(hào)通路的轉(zhuǎn)錄調(diào)控[16]。此外,一些具有促進(jìn)角蛋白細(xì)胞增殖分化作用的 Wnt/β-catenin信號(hào)通路靶基因如Shh、Jagged1等也在生長(zhǎng)期毛母質(zhì)內(nèi)高表達(dá)[17]。當(dāng)毛囊進(jìn)入由細(xì)胞凋亡驅(qū)使的退行期及休止期時(shí),Wnt/β-catenin信號(hào)水平也逐漸減弱至基本消失[15]。
Wnt/β-catenin信號(hào)強(qiáng)弱與毛囊內(nèi)部細(xì)胞活動(dòng)及毛囊不同時(shí)期的轉(zhuǎn)換有直接關(guān)系。結(jié)合 Wnt/βcatenin信號(hào)通路上游基因在絨毛生長(zhǎng)不同時(shí)期絨山羊體側(cè)部皮膚組織中的表達(dá)規(guī)律推測(cè),Wnt/βcatenin信號(hào)能夠通過(guò)對(duì)次級(jí)毛囊內(nèi)部細(xì)胞增殖分化的調(diào)控,而促進(jìn)次級(jí)毛囊由休止期向生長(zhǎng)期的轉(zhuǎn)換以及生長(zhǎng)期絨毛的快速生長(zhǎng)。但 Wnt/β-catenin信號(hào)通路各上游基因具體在毛囊內(nèi)的表達(dá)部位以及表達(dá)量與不同時(shí)期絨毛生長(zhǎng)速度的關(guān)系還需通過(guò)原位雜交及免疫組化等試驗(yàn)進(jìn)一步研究和驗(yàn)證。
哺乳動(dòng)物皮膚及毛發(fā)著色是一個(gè)受復(fù)雜基因互作網(wǎng)絡(luò)調(diào)控的過(guò)程。Wnt/β-catenin作為哺乳動(dòng)物內(nèi)保守且具有重要生理作用的信號(hào)通路之一,也參與了皮膚及毛發(fā)的著色過(guò)程。Wnt/β-catenin信號(hào)通路拮抗基因Dkk1在人皮膚著色較淡的掌拓(手、腳)部位高表達(dá)而在著色較深的非掌拓部位低表達(dá),表明Dkk1基因與人類不同部位的皮膚著色深淺相關(guān)[18]。β-catenin基因在不同毛色的羊駝皮膚組織中的表達(dá)量存在差異,表明β-catenin基因參與動(dòng)物毛發(fā)著色過(guò)程[19]。本試驗(yàn)對(duì) Wnt/β-catenin信號(hào)通路上游β-catenin、Lef1/Tcf3基因及該通路拮抗基因Dkk1mRNA在生長(zhǎng)旺盛期黑、白絨山羊皮膚組織中的相對(duì)表達(dá)量研究發(fā)現(xiàn),上述基因在不同毛色絨山羊皮膚組織中的相對(duì)表達(dá)量并無(wú)顯著差異,表明Wnt/β-catenin信號(hào)通路可能并不參與絨毛的著色過(guò)程。該結(jié)果同前述研究并不相符。
黑色素細(xì)胞通過(guò)產(chǎn)生黑素為皮膚及毛發(fā)著色。Wnt/β-catenin信號(hào)通路參與皮膚及毛發(fā)著色過(guò)程主要與其調(diào)控黑色素細(xì)胞增殖分化的作用相關(guān)。低水平的Wnt/β-catenin信號(hào)維持黑素前體細(xì)胞-黑素干細(xì)胞的未分化狀態(tài),高水平的 Wnt/β-catenin信號(hào)促進(jìn)黑素干細(xì)胞終末分化成為成熟的黑素細(xì)胞[20]。β-catenin在已分化的黑素細(xì)胞中低表達(dá)而在未分化完成的黑素細(xì)胞中高表達(dá),說(shuō)明 Wnt/βcatenin信號(hào)主要是與黑素細(xì)胞生成及增殖分化相關(guān),但可能并不參與已分化黑素細(xì)胞功能的調(diào)控[21]。之前研究中,Dkk1對(duì)不同部位皮膚著色深淺調(diào)節(jié)與其拮抗 Wnt/β-catenin信號(hào)而抑制黑素細(xì)胞增殖分化相關(guān),也并沒(méi)有涉及已分化黑素細(xì)胞的功能調(diào)控[18]。黑素是由已經(jīng)分化的黑素細(xì)胞產(chǎn)生的,并被分泌到鄰近角蛋白細(xì)胞中而為皮膚及毛發(fā)著色。對(duì)于絨山羊來(lái)講,生長(zhǎng)旺盛期時(shí)絨毛生長(zhǎng)速度最快,此時(shí)次級(jí)毛囊內(nèi)已分化黑素細(xì)胞也大量產(chǎn)生黑素為絨毛著色。Wnt/β-catenin信號(hào)通路上游基因生長(zhǎng)旺盛期在黑、白絨山羊皮膚組織中的表達(dá)量并無(wú)差異,表明 Wnt/β-catenin信號(hào)通路并不涉及次級(jí)毛囊內(nèi)部已分化黑素細(xì)胞產(chǎn)生黑素而為絨毛著色的過(guò)程。本研究只初步探討 Wnt/β-catenin信號(hào)通路在是否參與生長(zhǎng)旺盛期絨毛著色過(guò)程,而Wnt/β-catenin信號(hào)通路在整個(gè)毛囊周期中絨毛著色過(guò)程中的作用還需對(duì) Wnt/β-catenin信號(hào)通路相關(guān)基因在不同時(shí)期及不同毛色絨山羊皮膚組織中的表達(dá)量進(jìn)行測(cè)定。
Wnt/β-catenin信號(hào)通路上游β-catenin、Lef1/Tcf3基因mRNA在白色絨山羊不同時(shí)期體側(cè)部皮膚組織中的相對(duì)表達(dá)量具有明顯的變化規(guī)律即生長(zhǎng)前期緩慢上調(diào),旺盛期表達(dá)量最高,生長(zhǎng)后期及退行期逐漸下調(diào),休止期表達(dá)量最低;該通路拮抗基因Dkk1mRNA在白色絨山羊不同時(shí)期體側(cè)部皮膚組織中無(wú)明顯的變化規(guī)律。β-catenin、Lef1/Tcf3及Dkk1基因mRNA在生長(zhǎng)旺盛期黑、白絨山羊體側(cè)部皮膚組織中的表達(dá)并無(wú)顯著差異。Wnt/β-catenin信號(hào)通路參與絨毛周期性再生過(guò)程,但并不參與生長(zhǎng)旺盛期絨毛的著色過(guò)程。
[1] 朱玉成.影響山羊絨細(xì)度的因素及控制羊絨細(xì)度的研究現(xiàn)狀[J].中國(guó)草食動(dòng)物,2004,24(2):35-37.
[2] 賈志海.國(guó)外絨山羊研究現(xiàn)狀及展望[J].中國(guó)畜牧雜志,1994,30(1):57-59.
[3] Ken M C,Roel Nusse.Wnt signaling:a common theme in animal development[J].Gene and Development,1997,11:3 286-3 305.
[4] Glinka A,Wu W,Delius H,et al.Dickkopf-1is a member of a new family of secreted proteins and functions in head induction[J].Nature,1998,391:357-362.
[5] Andl T,Reddy S T,Gaddapara T,et al.WNT signals are required for the initiation of hair follicle development[J].Development Cell,2002,2:643-653.
[6] Atit R,Sgaier S K,Mohamed O A,et al.β-Catenin activation is necessary and sufficient to specify the dorsal dermal fate in the mouse[J].Development Bio,2006,l296:164-176.
[7] Rabbani P,Takeo M,Chou W,et al.Coordinated activation of Wnt in epithelial and melanocyte stem cells initiates pigmented hair regeneration[J].Cell,2011,145:941-955.
[8] Tanimura S,Tadokoro Y,Inomata K,et al..Hair follicle stem cells provide a functional niche for melanocyte stem cells[J].Cell Stem Cell,2011,8:177-187.
[9] Plikus M V,Mayer J A,LA Cruz de D,et al.Cyclic dermal BMP signalling regulates stem cell activation during hair regeneration[J].Nature,2008,51:340-344.
[10] 王 麗,彭麗琴,張文彬,等.內(nèi)蒙古白絨山羊皮膚毛囊發(fā)生發(fā)育規(guī)律的研究[J].畜牧獸醫(yī)學(xué)報(bào),1996,27(6):524-530.
[11] Narhi K,Ja rvinen E,Birchmeier W,et al.Sustained epithelialβ-catenin activity induces precocious hair development but disrupts hair follicle down-growth and hair shaft formation[J].Development,2008,135:1 019-1 028.
[12] Oshimori N,F(xiàn)uchs E.Paracrine TGF-bsignaling counterbalances BMP-mediated repression in hair follicle stem cell activation[J].Cell Stem Cell,2012,10:63-75.
[13] Wen-h(huán)ui Lien,Lisa Polak,Mingyan Lin,et al.In vivo transcriptional governance of hair follicle stem cells by canonical Wnt regulators[J].Nature cell biology,2014,16(2):179-190.
[14] Reddy S T,Andl T,Lu M-M,et al.Expression of Frizzled genes in developing and postnatalhair follicles[J].J Invest Dermatol,2004,123:275-282.
[15] Reddy S,Andl T,Bagasra A,et al.Characterization of Wnt gene expression in developing and postnatal hair follicles and identification of Wnt5aas a target of Sonic hedgehog in hair follicle morphogenesis[J].Mech Dev,2001,107:69-82.
[16] Fuchs E.Scratching the surface of skin development[J].Nature,2007,445:834.
[17] Enshell-Seijffers D,Lindon C,Kashiwagi M,et al.β-catenin activity in the dermal papilla regulates morphogenesis and regeneration of hair[J].Dev Cell,2010,18:633-642.
[18] Yamaguchi Y,Itami S,Watabe H,et al.Mesenchymal-epithelial interactions in the skin:Increased expression of dickkopf1by palmoplantar fibroblasts inhibits melanocyte growth and differentiation[J].J Cell Biol,2004,165:275-285.
[19] 于秀菊,董常生,范闊海,等.β-catenin在不同毛色羊駝皮膚中的表達(dá)和定位[J].畜牧獸醫(yī)學(xué)報(bào),2010,41(3):335-340.
[20] Piul Rabbani,Makoto Takeo,WeiChin Chou,et al.Coordinated Activation of Wnt inEpithelial and Melanocyte Stem Cells Initiates Pigmented Hair Regeneration[J].Cell,2011,145:941-955.
[21] 鄧 芳,郭海英,連曉華,等.毛囊黑素譜系細(xì)胞中β-catenin在毛囊周期中的表達(dá)[J].第三軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報(bào),2011,33(8):44-46.