国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

小分子化合物誘導(dǎo)干細(xì)胞分化為胰島素分泌細(xì)胞研究進(jìn)展

2015-08-24 11:53廖菁菁郝好杰劉建萍井岡山大學(xué)附屬醫(yī)院內(nèi)分泌科江西吉安4000解放軍總醫(yī)院北京0085南昌大學(xué)第二附屬醫(yī)院內(nèi)分泌科江西南昌0006
關(guān)鍵詞:轉(zhuǎn)分化干細(xì)胞分化

廖菁菁,郝好杰,劉建萍井岡山大學(xué)附屬醫(yī)院 內(nèi)分泌科,江西吉安 4000;解放軍總醫(yī)院,北京 0085;南昌大學(xué)第二附屬醫(yī)院 內(nèi)分泌科,江西南昌 0006

根據(jù)國(guó)際糖尿病協(xié)會(huì)(IDF)調(diào)查,2011年全球糖尿病患者為3.66億,到2030年預(yù)計(jì)將達(dá)到5.22億,即患病率將達(dá)到7.7%[1]。而國(guó)內(nèi)最新大樣本流行病學(xué)調(diào)查顯示,中國(guó)成人糖尿病患病率為11.6%[2]。糖尿病已經(jīng)成為一種非常普遍的疾病,目前主要是通過(guò)口服降糖藥及注射外源性胰島素進(jìn)行治療,但長(zhǎng)期注射胰島素給患者帶來(lái)很多不便,也不能阻止各種糖尿病慢性并發(fā)癥的發(fā)生[3],因此迫切需要一些新的治療方法。糖尿病是由于胰島B細(xì)胞受損,導(dǎo)致胰島素分泌缺陷和(或)作用缺陷,從而使患者血液中葡萄糖水平增高。如能重建患者體內(nèi)有功能的B細(xì)胞,就有可能治愈糖尿病。近年來(lái),細(xì)胞治療成為非常有前景的治療方法。目前,將各種來(lái)源的細(xì)胞誘導(dǎo)分化或轉(zhuǎn)分化為胰島素分泌細(xì)胞(insulin-producing cells,IPCs)[4-6],為糖尿病細(xì)胞治療開辟了一條新道路。關(guān)于IPCs再生來(lái)源的干細(xì)胞已有綜述報(bào)道[7],但有關(guān)IPCs的誘導(dǎo)方法及小分子化合物在干細(xì)胞向IPCs誘導(dǎo)分化過(guò)程中的作用的文獻(xiàn)報(bào)道較少。本文就各種來(lái)源干細(xì)胞向IPCs分化的誘導(dǎo)方法及相關(guān)小分子化合物在誘導(dǎo)過(guò)程中所起的作用進(jìn)行綜述。

1 胰島素分泌細(xì)胞的來(lái)源

現(xiàn)階段研究較多的用于治療糖尿病的干細(xì)胞可分為3類:胚胎干細(xì)胞、誘導(dǎo)性多能干細(xì)胞(induced pluripotent stem cells,iPs)及成體干細(xì)胞。胚胎干細(xì)胞是一種全能干細(xì)胞,具有多向分化潛能及自我更新能力,在適當(dāng)?shù)臈l件下可分化為3個(gè)胚層細(xì)胞,包括IPCs[8-9]。最初誘導(dǎo)效率較低,且生成的IPCs對(duì)葡萄糖刺激不敏感,隨著不斷的研究,尤其是利用小分子化合物分階段誘導(dǎo)后,誘導(dǎo)效率明顯提高,誘導(dǎo)出的IPCs對(duì)葡萄糖的敏感性也大大提高了[7]。

目前,用確定的轉(zhuǎn)錄因子將體細(xì)胞重編程為誘導(dǎo)性多能干細(xì)胞的方法已經(jīng)建立[10-11],這些iPS細(xì)胞與胚胎干細(xì)胞有相似的特性,具有多向分化及自我更新能力。同時(shí)自體細(xì)胞來(lái)源的多能干細(xì)胞避免了免疫排斥問(wèn)題,也避開了倫理及法律上的爭(zhēng)議。不同來(lái)源的iPS細(xì)胞在動(dòng)物模型中可治療各種疾病,包括將其誘導(dǎo)分化為IPCs治療糖尿病[12-14]。

成體干細(xì)胞是胚胎干細(xì)胞分化形成的各特定類型細(xì)胞的干細(xì)胞或前體細(xì)胞,在適當(dāng)?shù)臈l件下可以轉(zhuǎn)分化為其他類型的細(xì)胞,包括轉(zhuǎn)分化為IPCs[15]。這種轉(zhuǎn)分化過(guò)程包括幾種可能的途徑:1)從一種已分化細(xì)胞轉(zhuǎn)分化為另一種分化細(xì)胞;2)已分化的細(xì)胞去分化為一種共同的前體細(xì)胞后再分化為另一種細(xì)胞;3)將成體組織中存在的多能細(xì)胞誘導(dǎo)分化為另一種細(xì)胞;4)與另一已分化的細(xì)胞融合為多能細(xì)胞。成體干細(xì)胞相對(duì)胚胎干細(xì)胞來(lái)說(shuō),取材更方便,成瘤風(fēng)險(xiǎn)更低,且無(wú)倫理上的爭(zhēng)議[16]。

2 小分子化合物誘導(dǎo)IPCs生成

Hou等[17]用7種小分子化合物將小鼠成體細(xì)胞誘導(dǎo)為多能細(xì)胞,這種應(yīng)用小分子化合物進(jìn)行重編程的非轉(zhuǎn)基因方法較轉(zhuǎn)基因方法對(duì)臨床意義更大,因?yàn)樾》肿踊衔餆o(wú)免疫原性、可滲入細(xì)胞、操作方便、容易合成及保存,且其對(duì)特異蛋白的抑制或激活功能多是可逆的,應(yīng)用時(shí)濃度可以準(zhǔn)確控制[17]。目前,已有很多實(shí)驗(yàn)室通過(guò)不同的生長(zhǎng)因子與小分子化合物的組合,直接將胚胎干細(xì)胞、誘導(dǎo)性多能干細(xì)胞及成體干細(xì)胞分階段誘導(dǎo)分化為IPCs,表1中歸納了部分作者的誘導(dǎo)方案。

3 小分子化合物在IPCs誘導(dǎo)分化過(guò)程中的作用

從表1中可以看到不同的細(xì)胞誘導(dǎo)分化為IPCs需要不同的培養(yǎng)基、生長(zhǎng)因子及小分子化合物,但它們也有一些共同的特點(diǎn),如都是分階段進(jìn)行誘導(dǎo),誘導(dǎo)分化過(guò)程中使用的生長(zhǎng)因子及小分子化合物部分是一樣的。這些生長(zhǎng)因子及小分子化合物可促進(jìn)B細(xì)胞的增殖和分化、增加胰島素含量。如表皮生長(zhǎng)因子(epidermal growth factor,EGF)是EGF蛋白家族中的一員,對(duì)細(xì)胞的存活、增殖及分化起重要作用[23],已有研究發(fā)現(xiàn)其可以促進(jìn)胰十二指腸同源框蛋白1陽(yáng)性細(xì)胞增殖[12]。堿性成纖維生長(zhǎng)因子與EGF聯(lián)合使用或單獨(dú)使用,有利于IPCs分化[24-25]。激活素A是轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子-β超家族的成員,可調(diào)節(jié)細(xì)胞的增殖和分化,誘導(dǎo)胚胎干細(xì)胞向終末內(nèi)胚層分化,與其他細(xì)胞因子聯(lián)合作用可進(jìn)一步誘導(dǎo)分化為IPCs[24,26]。5-氮雜胞苷,一種DNA甲基化酶抑制劑,可逆轉(zhuǎn)DNA的甲基化過(guò)程,刺激分化過(guò)程中胰腺內(nèi)分泌細(xì)胞相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子(Ngn3、Pdx1)的表達(dá)。Pennarossa等[27]利用5-AZA使人成纖維細(xì)胞經(jīng)過(guò)一個(gè)短暫的去甲基化狀態(tài)后,成功轉(zhuǎn)分化為IPCs,將重編程所得IPCs移植入糖尿病小鼠體內(nèi)后可逆轉(zhuǎn)其高血糖狀態(tài)。曲古霉素A,一種非特異組蛋白去乙?;敢种苿烧{(diào)節(jié)染色體重構(gòu),使干細(xì)胞去分化,并進(jìn)一步向胰腺內(nèi)分泌細(xì)胞分化,增加內(nèi)分泌細(xì)胞的數(shù)量,與5-AZA聯(lián)合應(yīng)用可促進(jìn)骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞、肝干細(xì)胞向IPCs分化[19-22]。維甲酸可誘導(dǎo)人胚胎干細(xì)胞表達(dá)胰腺發(fā)育過(guò)程中重要的轉(zhuǎn)錄因子Ngn3和神經(jīng)源性分化因子,并進(jìn)一步促進(jìn)Pdx1、成對(duì)盒基因4(Pax4)及同源盒基因6.1(Nkx6.1)表達(dá),誘導(dǎo)生成IPCs[28-29]。尼克酰胺是各種誘導(dǎo)方案中常用的一種小分子化合物,早在20世紀(jì)90年代,Otonkoski等就利用尼克酰胺誘導(dǎo)人胎胰向內(nèi)分泌細(xì)胞分化,其研究表明,用10 nmol/L尼克酰胺作用于未分化的上皮細(xì)胞簇,可使發(fā)育過(guò)程中的胰島B細(xì)胞DNA含量增加2倍,胰島素含量增加3倍,同時(shí),胰島素、胰高血糖素及生長(zhǎng)抑素的基因表達(dá)量也增加了[16]。艾塞那肽-4是胰高血糖素樣肽1(GLP-1)激動(dòng)劑,可通過(guò)刺激B細(xì)胞的復(fù)制及再生增加B細(xì)胞團(tuán)的數(shù)量,并可增加胰島素基因表達(dá)及胰島素原的合成,與利索茶堿共作用時(shí)可逆轉(zhuǎn)受損的糖尿病鼠的B細(xì)胞[30]。也有報(bào)道體外高濃度的艾塞那肽-4可增加小鼠胚胎干細(xì)胞來(lái)源的IPCs胰島素的分泌量[31]。艾塞那肽-4與激活素A聯(lián)合作用,可上調(diào)Pdx1、Ngn3,胰島素、胰高血糖素、生長(zhǎng)抑素、胰多肽及葡萄糖轉(zhuǎn)運(yùn)子2(Glut2)的表達(dá),這些基因可促進(jìn)有功能的B樣細(xì)胞的生成[20]。

表1 小分子化合物誘導(dǎo)干細(xì)胞分化為胰島素分泌細(xì)胞Tab. 1 Differentiation of stem cells into insulin-producing cells using small molecule compounds

4 展望

近年來(lái)的研究表明,不同來(lái)源的細(xì)胞通過(guò)轉(zhuǎn)基因[26,32]及非轉(zhuǎn)基因[12,18,22]的方法都可以誘導(dǎo)分化或轉(zhuǎn)分化為IPCs,因此選擇一個(gè)最佳的細(xì)胞類型及誘導(dǎo)方案也是目前一個(gè)比較棘手的問(wèn)題。胚胎發(fā)育過(guò)程中,肝與胰腺共同來(lái)源于內(nèi)胚層,發(fā)育上的同源性提示肝和胰腺在細(xì)胞增殖及分化調(diào)控等方面有很高的相似性[33],兩者之間的轉(zhuǎn)化涉及相對(duì)較少的表觀基因改變,且肝具有強(qiáng)大的修復(fù)與再生能力,能為胰島素分泌細(xì)胞的重編程提供大量的細(xì)胞來(lái)源。近來(lái)的研究發(fā)現(xiàn),miR-302可促進(jìn)Pdx1、Ngn3、V-MAF肌肉腱膜纖維肉瘤癌基因同源A(MafA)將人成體肝細(xì)胞重編程為胰島素分泌細(xì)胞,過(guò)表達(dá)miR-302a可增加胰腺發(fā)育相關(guān)基因Pdx1的表達(dá)[34]。因此,將肝細(xì)胞重編程為胰島素分泌細(xì)胞在糖尿病細(xì)胞治療方面具有很大潛力。非內(nèi)分泌的胰腺細(xì)胞及胰島細(xì)胞與胰島B細(xì)胞來(lái)源同一胚層,或許會(huì)是一個(gè)比較好的選擇[35]。轉(zhuǎn)基因方法存在轉(zhuǎn)染基因整合及誘變的風(fēng)險(xiǎn)[8],因此通過(guò)小分子化合物這種非轉(zhuǎn)基因的方法誘導(dǎo)分化或重編程出IPCs的策略越來(lái)越受到人們的關(guān)注。小分子化合物更像是一種藥物,通過(guò)小分子化合物抑制或激活組織細(xì)胞發(fā)育過(guò)程中相關(guān)基因及信號(hào)通路將細(xì)胞進(jìn)行誘導(dǎo)分化及轉(zhuǎn)分化。但是,目前我們對(duì)于各種小分子化合物的作用機(jī)制及其與胰腺發(fā)育過(guò)程中各信號(hào)通路是如何相互影響的并不清楚。想要通過(guò)小分子化合物誘導(dǎo)出我們需要的產(chǎn)胰島素細(xì)胞,就需要了解各組織自然發(fā)育過(guò)程中基因表達(dá)及小分子化合物是如何調(diào)節(jié)這種復(fù)雜的基因網(wǎng)絡(luò)系統(tǒng)的。這需要我們進(jìn)行深入研究,這是一個(gè)很艱辛的過(guò)程,是一個(gè)挑戰(zhàn),但又吸引我們不斷探索,因?yàn)槲覀兞私獾脑蕉?,解析的越清楚,離治愈糖尿病的日子就越近。

1 Canivell S, Gomis R. Diagnosis and classification of autoimmune diabetes mellitus[J]. Autoimmun Rev, 2014, 13(4/5): 403-407.

2 Xu Y, Wang LM, He J, et al. Prevalence and control of diabetes in Chinese adults[J]. JAMA, 2013, 310(9): 948-958.

3 Muir KR, Lima MJ, Docherty HM, et al. Cell therapy for type 1 diabetes[J]. QJM, 2014, 107(4):253-259.

4 Segev H, Fishman B, Ziskind A, et al. Differentiation of human embryonic stem cells into insulin-producing clusters[J]. Stem Cells, 2004, 22(3): 265-274.

5 Alipio Z, Liao WB, Roemer EJ, et al. Reversal of hyperglycemia in diabetic mouse models using induced-pluripotent stem (iPS)-derived pancreatic beta-like cells[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2010,107(30): 13426-13431.

6 Nagaya M, Katsuta H, Kaneto H, et al. Adult mouse intrahepatic biliary epithelial cells induced in vitro to become insulin-producing cells[J]. J Endocrinol, 2009, 201(1): 37-47.

7 Shen J, Cheng Y, Han Q, et al. Generating insulin-producing cells for diabetic therapy: existing strategies and new development[J].Ageing Res Rev, 2013, 12(2): 469-478.

8 Kroon E, Martinson LA, Kadoya K, et al. Pancreatic endoderm derived from human embryonic stem cells generates glucoseresponsive insulin-secreting cells in vivo[J]. Nat Biotechnol,2008, 26(4):443-452.

9 Rezania A, Bruin JE, Arora P, et al. Reversal of diabetes with insulin-producing cells derived in vitro from human pluripotent stem cells[J]. Nat Biotechnol, 2014, 32(11): 1121-1133.

10 Park IH, Zhao R, West JA, et al. Reprogramming of human somatic cells to pluripotency with defined factors[J]. Nature, 2008, 451(7175): 141-146.

11 Lewitzky M, Yamanaka S. Reprogramming somatic cells towards pluripotency by defined factors[J]. Curr Opin Biotechnol, 2007,18(5): 467-473.

12 Zhang D, Jiang W, Liu M, et al. Highly efficient differentiation of human ES cells and iPS cells into mature pancreatic insulinproducing cells[J]. Cell Res, 2009, 19(4): 429-438.

13 Thatava T, Kudva YC, Edukulla R, et al. Intrapatient variations in type 1 diabetes-specific iPS cell differentiation into insulin-producing cells[J]. Mol Ther, 2013, 21(1):228-239.

14 Raikwar SP, Kim EM, Sivitz WI, et al. Human iPS cell-derived insulin producing cells form vascularized organoids under the kidney capsules of diabetic mice[J]. PLoS One, 2015, 10(1):e0116582.

15 Wu Y, Li J, Saleem S, et al. c-Kit and stem cell factor regulate PANC-1 cell differentiation into insulin- and glucagon-producing cells[J]. Lab Invest, 2010, 90(9):1373-1384.

16 Wong RS. Extrinsic factors involved in the differentiation of stem cells into insulin-producing cells: an overview[J]. http://www.hindawi.com/journals/jdr/2011/406182.

17 Hou P, Li Y, Zhang X, et al. Pluripotent stem cells induced from mouse somatic cells by small-molecule compounds[J/OL].Science, 2013, 341(6146):651-654.

18 Wei R, Yang J, Liu GQ, et al. Dynamic expression of microRNAs during the differentiation of human embryonic stem cells into insulinproducing cells[J]. Gene, 2013, 518(2): 246-255.

19 Milanesi A, Lee JW, Xu Q, et al. Differentiation of nestin-positive cells derived from bone marrow into pancreatic endocrine and ductal cells in vitro[J]. J Endocrinol, 2011, 209(2): 193-201.

20 Jafarian A, Taghikhani M, Abroun S, et al. Generation of high-yield insulin producing cells from human bone marrow mesenchymal stem cells[J]. Mol Biol Rep, 2014, 41(7):4783-4794.

21 Leontovy? I, Koblas T, Pektorova L, et al. The effect of epigenetic factors on differentiation of pancreatic progenitor cells into insulinproducing cells[J]. Transplant Proc, 2011, 43(9): 3212-3216.

22 Liu J, Liu Y, Wang H, et al. Direct differentiation of hepatic stemlike WB cells into insulin-producing cells using small molecules[J].Sci Rep, 2013, 3:1185.

23 Herbst RS. Review of epidermal growth factor receptor biology[J].Int J Radiat Oncol Biol Phys, 2004, 59(2 Suppl): 21-26.

24 Sun Y, Chen L, Hou XG, et al. Differentiation of bone marrowderived mesenchymal stem cells from diabetic patients into insulinproducing cells in vitro[J]. Chin Med J, 2007, 120(9): 771-776.

25 Lumelsky N, Blondel O, Laeng P, et al. Differentiation of embryonic stem cells to insulin-secreting structures similar to pancreatic islets[J]. Science, 2001, 292(5520): 1389-1394.

26 Tang DQ, Lu S, Sun YP, et al. Reprogramming liver-stem WB cells into functional insulin-producing cells by persistent expression of Pdx1- and Pdx1-VP16 mediated by lentiviral vectors[J]. Lab Invest, 2006, 86(1):83-93.

27 Pennarossa G, Maffei S, Campagnol M, et al. Brief demethylation step allows the conversion of adult human skin fibroblasts into insulinsecreting cells[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2013, 110(22):8948-8953.

28 Cai J, Yu C, Liu Y, et al. Generation of homogeneous PDX1(+)pancreatic progenitors from human ES cell-derived endoderm cells[J]. J Mol Cell Biol, 2010, 2(1): 50-60.

29 Ostr?m M, Loffler KA, Edfalk S, et al. Retinoic acid promotes the Generation of pancreatic endocrine progenitor cells and their further differentiation into beta-cells[J]. PLoS One, 2008, 3(7):e2841.

30 Yang Z, Chen M, Carter JD, et al. Combined treatment with lisofylline and exendin-4 reverses autoimmune diabetes[J].Biochem Biophys Res Commun, 2006, 344(3): 1017-1022.

31 Li H, Lam A, Xu AM, et al. High dosage of Exendin-4 increased early insulin secretion in differentiated beta cells from mouse embryonic stem cells[J]. Acta Pharmacol Sin, 2010, 31(5):570-577.

32 Miyashita K, Miyatsuka T, Matsuoka TA, et al. Sequential introduction and dosage balance of defined transcription factors affect reprogramming efficiency from pancreatic duct cells into insulinproducing cells[J]. Biochem Biophys Res Commun, 2014, 444(4):514-519.

33 Deutsch G, Jung J, Zheng M, et al. A bipotential precursor population for pancreas and liver within the embryonic endoderm[J].Development, 2001, 128(6):871-881.

34 Lu J, Dong H, Lin L, et al. miRNA-302 facilitates reprogramming of human adult hepatocytes into pancreatic islets-like cells in combination with a chemical defined media[J]. Biochem Biophys Res Commun, 2014, 453(3): 405-410.

35 Pandian GN, Taniguchi J, Sugiyama H. Cellular reprogramming for pancreatic β-cell regeneration: clinical potential of small molecule control[J]. Clin Transl Med, 2014, 3(1): 6.

猜你喜歡
轉(zhuǎn)分化干細(xì)胞分化
干細(xì)胞:“小細(xì)胞”造就“大健康”
兩次中美貨幣政策分化的比較及啟示
分化型甲狀腺癌切除術(shù)后多發(fā)骨轉(zhuǎn)移一例
魯政委:房地產(chǎn)同城市場(chǎng)初現(xiàn)分化
造血干細(xì)胞移植與捐獻(xiàn)
甘草酸聯(lián)合大黃素抑制成纖維細(xì)胞增殖及轉(zhuǎn)分化的抗腎臟纖維化作用
干細(xì)胞產(chǎn)業(yè)的春天來(lái)了?
大鼠皮膚成纖維細(xì)胞在低密度培養(yǎng)條件下基質(zhì)金屬蛋白酶9和13基因表達(dá)的抑制
依那普利對(duì)單側(cè)輸尿管梗阻大鼠腎組織胰島素樣生長(zhǎng)因子-1表達(dá)及腎小管上皮細(xì)胞轉(zhuǎn)分化的影響
活性維生素D3對(duì)TGF-β1誘導(dǎo)人腎小管上皮細(xì)胞轉(zhuǎn)分化的作用
百色市| 洪湖市| 临漳县| 紫云| 白河县| 城固县| 辰溪县| 德令哈市| 依兰县| 江达县| 吴江市| 安陆市| 陇川县| 大安市| 茌平县| 壤塘县| 白河县| 西宁市| 三台县| 彭州市| 江北区| 龙陵县| 瓮安县| 黄梅县| 萍乡市| 贡山| 苍梧县| 综艺| 西林县| 海宁市| 平利县| 苏尼特右旗| 本溪市| 吴川市| 青河县| 聊城市| 城固县| 昌平区| 维西| 永昌县| 彭水|