陳能 秦立強(qiáng) 萬忠曉
蘇州大學(xué)公共衛(wèi)生學(xué)院營養(yǎng)與食品衛(wèi)生教研室(江蘇215123)
白色脂肪組織具有多種生理功能, 在調(diào)節(jié)機(jī)體能量及糖代謝中發(fā)揮著重要作用[1,2]。 脂肪組織功能紊亂可能導(dǎo)致糖耐量異常、胰島素抵抗。 運(yùn)動(dòng)是改善肥胖、胰島素抵抗、 代謝綜合征等的基礎(chǔ)及關(guān)鍵措施之一[3]。越來越多的證據(jù)支持白色脂肪組織具有很強(qiáng)的可塑性,運(yùn)動(dòng)能夠改善白色脂肪組織的功能。 本文簡(jiǎn)述白色脂肪組織在代謝和內(nèi)分泌平衡方面的主要作用, 并總結(jié)運(yùn)動(dòng)改善白色脂肪組織功能的主要依據(jù)。
解剖學(xué)一般將嚙齒動(dòng)物的白色脂肪組織分為皮下和內(nèi)臟脂肪組織, 不同部位的脂肪組織具有不同的形態(tài)結(jié)構(gòu)和代謝功能。皮下脂肪組織主要位于腹部、臀部和股部的皮下, 而內(nèi)臟脂肪組織指腹腔內(nèi)臟器官周圍的脂肪,如性腺脂肪、腸系膜脂肪、網(wǎng)膜脂肪和腹膜后脂肪。和皮下脂肪組織相比,內(nèi)臟脂肪組織不僅具有較高的基礎(chǔ)甘油三酯分解水平, 且經(jīng)兒茶酚胺類誘導(dǎo)后的甘油三酯分解水平也比皮下脂肪組織高; 經(jīng)胰島素誘導(dǎo)后, 內(nèi)臟脂肪的糖攝取和線粒體蛋白的表達(dá)水平也均高于皮下組織, 且較少受到胰島素抑制脂肪分解作用的影響[4]。 這些差異導(dǎo)致了兩者在脂肪分解、糖攝取和內(nèi)分泌功能等方面的不同。
白色脂肪組織通過內(nèi)分泌、旁分泌、自分泌信號(hào)網(wǎng)絡(luò)與其他組織產(chǎn)生廣泛的交互作用從而在全身代謝平衡中發(fā)揮重要作用。 白色脂肪組織由幾類不同的細(xì)胞組成,主要包括成熟脂肪細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞、成纖維細(xì)胞、巨噬細(xì)胞和前脂肪細(xì)胞, 后四類細(xì)胞通常被稱為脂肪基質(zhì)血管成分[2]。
白色脂肪組織有兩大基本生理功能: 分解供能和分泌多種脂肪因子。在飽腹?fàn)顟B(tài)下,它是機(jī)體儲(chǔ)存甘油三酯的主要器官;在禁食和運(yùn)動(dòng)狀態(tài)下,它通過分解甘油三酯,釋放甘油和脂肪酸進(jìn)入血液循環(huán),因而具有調(diào)節(jié)脂肪酸通量的作用[5],若脂肪組織的這種緩沖作用被損壞,則游離脂肪酸含量將異常升高,增加胰島素抵抗的風(fēng)險(xiǎn)。 此外,白色脂肪組織會(huì)釋放一系列的內(nèi)分泌和旁分泌因子,即脂肪因子[6],目前被識(shí)別的脂肪因子具有大幅增加的趨勢(shì),主要包括瘦素、脂聯(lián)素、內(nèi)脂素、抵抗素、血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子、網(wǎng)膜素、胰島素樣生長(zhǎng)因子1、視黃醇結(jié)合蛋白4、腫瘤壞死因子α、白介素6和單核細(xì)胞趨化蛋白1等。 這些脂肪因子除了參與機(jī)體能量、糖代謝外,還與肝、骨骼肌、下丘腦相互影響,調(diào)節(jié)炎癥、血管生成和食物攝取等代謝過程[6,7]。
在耐力運(yùn)動(dòng)過程中, 當(dāng)體內(nèi)儲(chǔ)存的糖類消耗殆盡后, 從脂肪組織中動(dòng)員出來的非酯化脂肪酸則成為肌肉收縮的主要能量來源, 血液中升高的兒茶酚胺類化合物是調(diào)節(jié)脂肪分解的主要調(diào)節(jié)因子。 兒茶酚胺類化合物(腎上腺素和去甲腎上腺素)與β-腎上腺素能受體結(jié)合,激活腺苷環(huán)化酶,致使細(xì)胞內(nèi)cAMP水平升高并激活cAMP依賴蛋白激酶(PKA),活化的PKA使圍脂滴蛋白和激素敏感性脂肪酶 (hormone -sensitive triglayceride lipase,HSL)發(fā)生磷酸化,最終促使甘油三酯水解[8,9]。 HSL是脂解的限速酶,存在若干個(gè)可逆的磷酸化位點(diǎn),Ser-563、Ser-659和Ser-660是PKA刺激HSL磷酸化的主要位點(diǎn),且Ser-659和Ser-660是主要活性控制位點(diǎn)[10]。
HSL在早期一直被認(rèn)為是甘油三酯水解的唯一限速酶,2004年,三個(gè)研究團(tuán)隊(duì)分別獨(dú)立發(fā)現(xiàn)了一種新的脂肪分解酶[11],各自命名為脂肪甘油三酯脂酶(ATGL)、去脂素和鈣獨(dú)立性磷酸酯酶A2ζ。 在3T3-L1脂肪細(xì)胞中,ATGL能夠顯著增強(qiáng)無刺激狀況下及兒茶酚胺誘導(dǎo)下的脂肪分解[11],ATGL缺失小鼠異丙腎上腺素誘導(dǎo)的脂肪分解水平顯著下降[12],因此,ATGL在兒茶酚胺誘導(dǎo)的脂肪分解過程中起促進(jìn)作用。 Wohlers等[13]發(fā)現(xiàn)一次急性平臺(tái)跑步后, 雌性小鼠的大網(wǎng)膜和腸系膜脂肪內(nèi)ATGL含量顯著增加;Huijsman等[14]發(fā)現(xiàn)ATGL缺失小鼠的跑步能力受到損害, 且血漿內(nèi)非酯化脂肪酸含量下降,ATGL可能是運(yùn)動(dòng)誘導(dǎo)脂肪分解過程中的一個(gè)重要調(diào)節(jié)因子。 而運(yùn)動(dòng)誘導(dǎo)的ATGL激活所涉及的信號(hào)通路有待進(jìn)一步研究。
Stallknecht等[15]已證實(shí),每天6小時(shí)、為期12周的游泳運(yùn)動(dòng)能夠顯著提高大鼠睪脂內(nèi)線粒體酶的活性。Sutherland等[16]也發(fā)現(xiàn)每天2小時(shí)、為期4周的游泳運(yùn)動(dòng)增加了大鼠睪周和腹膜后脂肪內(nèi)檸檬酸合成酶的活性,并提高了線粒體呼吸鏈酶的含量。 此外,平臺(tái)跑步運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練同樣能夠增加小鼠睪脂內(nèi)線粒體的密度[17]。以上研究表明運(yùn)動(dòng)對(duì)脂肪組織線粒體生成的影響不受運(yùn)動(dòng)形式的限制。
但人群研究的結(jié)果并不一致。 Ruschke等[18]對(duì)人群進(jìn)行為期4周的運(yùn)動(dòng)干預(yù),發(fā)現(xiàn)皮下脂肪中與線粒體合成密切相關(guān)的過氧化物酶體增殖物激活受體γ輔激活因子1α (PGC-1α)mRNA 的表達(dá)上升, 但對(duì)網(wǎng)膜脂肪PGC-1α mRNA 的表達(dá)無影響。Camera等[19]發(fā)現(xiàn)引起骨骼肌改變的短期耐力訓(xùn)練沒有改變?nèi)似は轮緝?nèi)檸檬酸合成酶的活性、 線粒體總量或PGC-1α 的mRNA 表達(dá)量。 人群研究結(jié)果的差異可能是皮下脂肪對(duì)腎上腺素的刺激沒有內(nèi)臟脂肪敏感, 對(duì)兒茶酚胺類化合物的反應(yīng)力也與內(nèi)臟脂肪不同。 此外,運(yùn)動(dòng)的類型、持續(xù)時(shí)間和強(qiáng)度也可能是運(yùn)動(dòng)誘導(dǎo)白色脂肪組織線粒體生成的影響因素。
大鼠腹腔注射鏈脲佐菌素后脂肪細(xì)胞的糖代謝嚴(yán)重受損, 但進(jìn)行為期10周的運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練可恢復(fù)受損的糖代謝[20]。 運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練還能使2型糖尿病患者脂肪細(xì)胞內(nèi)葡萄糖轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白4的蛋白表達(dá)量增加[21],這可能與運(yùn)動(dòng)調(diào)節(jié)了脂肪細(xì)胞IRS/PI3K/Akt/PKB通路,從而提高白色脂肪組織的胰島素敏感性有關(guān)[22]。 此外,運(yùn)動(dòng)能夠增加脂肪組織的線粒體, 也可能是運(yùn)動(dòng)誘導(dǎo)脂肪組織糖攝取改善的原因之一。
2.4.1 脂聯(lián)素(adiponectin)
1995年Scherer等[23]首次發(fā)現(xiàn)脂聯(lián)素,它只能由脂肪細(xì)胞分泌。脂聯(lián)素具有提高胰島素敏感性、增強(qiáng)血管功能、抗動(dòng)脈粥樣硬化、抗炎和保護(hù)心臟等功能[24]。 體重正常的健康受試者進(jìn)行運(yùn)動(dòng)干預(yù)后, 外周血脂聯(lián)素水平不受影響[25],甚至略有降低[26];但肥胖和超重的受試者,進(jìn)行運(yùn)動(dòng)干預(yù)或是運(yùn)動(dòng)聯(lián)合控制飲食干預(yù)后,血漿脂聯(lián)素水平顯著提高[27]。 運(yùn)動(dòng)誘導(dǎo)的脂聯(lián)素水平改變很大程度上歸因于身體成分的改變,同時(shí),動(dòng)物實(shí)驗(yàn)已證實(shí)運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練的強(qiáng)度也是影響血漿脂聯(lián)素水平的因素之一[28]。
2.4.2 瘦素(leptin)
在體內(nèi), 瘦素主要通過調(diào)節(jié)下丘腦和其他特定區(qū)域的中樞神經(jīng)來抑制食欲[7]。瘦素還能刺激骨骼肌的脂肪酸氧化[29]、促進(jìn)細(xì)胞因子生成和提高巨噬細(xì)胞粘附力[30]。 肥胖狀況下,人體外周血瘦素水平升高。 運(yùn)動(dòng)對(duì)瘦素水平的影響并無一致的結(jié)論,既有運(yùn)動(dòng)降低瘦素水平[31]的報(bào)道,也有運(yùn)動(dòng)不影響瘦素水平[32]的報(bào)道。通常情況下,如果運(yùn)動(dòng)減少了脂肪含量,瘦素水平將下降[33]。
2.4.3 其他脂肪因子
運(yùn)動(dòng)對(duì)脂肪因子的影響是多方面的, 并不局限于脂聯(lián)素和瘦素。 抵抗素(resistin)是近年被發(fā)現(xiàn)并重視的一類脂肪因子,由于它對(duì)胰島素的功能有抑制作用,故被認(rèn)為是形成胰島素抵抗?fàn)顟B(tài)的重要一環(huán)。 有動(dòng)物實(shí)驗(yàn)表明,運(yùn)動(dòng)、高脂飲食干預(yù)對(duì)抵抗素水平并無顯著影響[34]。 但在人群研究中,運(yùn)動(dòng)療法能顯著降低肥胖人群循環(huán)系統(tǒng)抵抗素水平[35];Wenning等[36]的研究也表明,為期3個(gè)月的運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練能夠降低男性糖尿病患者抵抗素水平。 動(dòng)物實(shí)驗(yàn)與人群研究結(jié)果的差異可能與運(yùn)動(dòng)方式、強(qiáng)度、實(shí)驗(yàn)對(duì)象等的差異有關(guān)。 本課題組的研究結(jié)果表明[37],抵抗素具有誘導(dǎo)脂肪組織分解,降低脂聯(lián)素表達(dá)的作用。 抵抗素在調(diào)節(jié)運(yùn)動(dòng)對(duì)機(jī)體影響中究竟發(fā)揮怎樣的作用還需要進(jìn)一步的研究來闡明。
腫瘤壞死因子α(TNF-α)是一種促炎細(xì)胞因子,運(yùn)動(dòng)對(duì)其影響仍有爭(zhēng)議。有文獻(xiàn)指出,12周的游泳訓(xùn)練對(duì)高脂飼喂的小鼠血清TNF-α水平有顯著降低的作用,對(duì)其脂肪組織內(nèi)TNF-α無此作用, 但運(yùn)動(dòng)能顯著降低正常飼喂小鼠脂肪組織的TNF-α水平[38]。人群研究結(jié)果表明, 有氧運(yùn)動(dòng)對(duì)肥胖人群血清TNF-α水平有降低趨勢(shì),但無顯著意義[39]。 隨著發(fā)現(xiàn)脂肪因子數(shù)量的迅猛增加, 還需要大量的研究來進(jìn)一步闡明脂肪因子在調(diào)控運(yùn)動(dòng)改善機(jī)體狀態(tài)中的作用。
2.5.1 兒茶酚胺類化合物
運(yùn)動(dòng)升高血液兒茶酚胺類化合物水平, 激活脂肪組織的眾多信號(hào)通路, 其中有關(guān)AMP依賴的蛋白激酶(AMPK)和p38 MAPK信號(hào)通路的報(bào)道最為廣泛,β-腎上腺素受體激動(dòng)劑能顯著增強(qiáng)AMPK[40-42]和p38 MAPK[43,44]在脂肪細(xì)胞內(nèi)的活性。兒茶酚胺激活A(yù)MPK是脂肪分解的結(jié)果,在隨后的脂肪酸再酯化過程中增強(qiáng)[41];脂肪分解的抑制導(dǎo)致腎上腺素受體激動(dòng)劑誘導(dǎo)的p38 MAPK活化減弱[44]。 動(dòng)物實(shí)驗(yàn)和人群研究均表明,一次急性運(yùn)動(dòng)誘導(dǎo)了脂肪組織AMPK活化[40,42],但也有不一致的實(shí)驗(yàn)結(jié)論,這可能與運(yùn)動(dòng)持續(xù)時(shí)間、強(qiáng)度和類型影響脂肪組織內(nèi)AMPK的磷酸化狀態(tài)有關(guān)[45]。 目前已經(jīng)明確的是, 兒茶酚胺能夠調(diào)節(jié)雌性大鼠脂肪細(xì)胞內(nèi)運(yùn)動(dòng)誘導(dǎo)的AMPK活化[40],而這種變化是否存在性別差異需要進(jìn)一步研究闡明。
2.5.2 白細(xì)胞介素-6(IL-6)
近年來骨骼肌被認(rèn)為是一類內(nèi)分泌器官, 研究最多的肌肉因子是IL-6。 當(dāng)骨骼肌收縮時(shí),IL-6的分泌量增多,這是運(yùn)動(dòng)過程中血漿IL-6水平增加的主要原因。肌源性IL-6也可能是運(yùn)動(dòng)相關(guān)的誘導(dǎo)脂肪組織代謝的潛在中介物。 早期研究認(rèn)為IL-6能夠刺激脂肪組織分解,且在運(yùn)動(dòng)誘導(dǎo)的AMPK活性增加過程中發(fā)揮作用[46],但該觀點(diǎn)受到越來越多研究者的質(zhì)疑。 健康受試者在體灌注IL-6對(duì)脂肪組織的脂肪分解無效, 但刺激了骨骼肌內(nèi)的脂肪分解[47]。運(yùn)動(dòng)過程中IL-6對(duì)皮下脂肪組織AMPK活性亦無影響[45]。 本課題組的研究也發(fā)現(xiàn)一次急性運(yùn)動(dòng)后,IL-6對(duì)脂肪組織的磷酸烯醇式丙酮酸羧激酶和丙酮酸脫氫酶激酶4的mRNA表達(dá)無影響[48]。 值得注意的是,IL-6的間質(zhì)濃度范圍為2000~3000 pg/ml[49],即使像馬拉松這樣的大運(yùn)動(dòng)量運(yùn)動(dòng)后, 外周血中IL-6濃度也穩(wěn)定在35 pg/ml左右[50]。 因此,脂肪組織在非運(yùn)動(dòng)狀態(tài)下已被高濃度IL-6包圍, 在運(yùn)動(dòng)過程中IL-6信號(hào)通路是否被激活需進(jìn)一步的研究。
2.5.3 鳶尾素(Irisin)
2012年Bostrom等[51]發(fā)現(xiàn)了一種新的多肽并將其命名為鳶尾素,它是一種由肌肉細(xì)胞分泌的細(xì)胞因子,其表達(dá)量呈PGC-1α依賴性。 在運(yùn)動(dòng)過程中,鳶尾素能夠誘導(dǎo)小鼠皮下白色脂肪轉(zhuǎn)變?yōu)楹稚荆?使機(jī)體消耗多余的熱量, 這為開發(fā)新的治療代謝性疾病的措施提供了新思路,但目前人群研究結(jié)果存在不一致性。 Huh等[52]的研究結(jié)果表明在正常人群及代謝綜合征患者中,一次急性運(yùn)動(dòng) (包括高強(qiáng)度間歇訓(xùn)練和中等強(qiáng)度持續(xù)訓(xùn)練) 能夠顯著增加人血液中鳶尾素的含量;但Hecksteden等[53]的研究則提示26周的運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練并未改變血液中鳶尾素的含量, 且作者認(rèn)為已報(bào)道的運(yùn)動(dòng)增強(qiáng)鳶尾素含量的陽性結(jié)果可能與樣本儲(chǔ)存控制不當(dāng)導(dǎo)致鳶尾素降解有關(guān);Blüher等[54]的研究表明在肥胖兒童中進(jìn)行為期一年的運(yùn)動(dòng)和飲食聯(lián)合干預(yù)能夠增加循環(huán)系統(tǒng)鳶尾素的含量。因此,仍需大量的人群研究來進(jìn)一步驗(yàn)證長(zhǎng)期的運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練是否能夠增加鳶尾素含量,及鳶尾素對(duì)脂肪組織功能的影響在改善運(yùn)動(dòng)對(duì)機(jī)體影響中所起的作用。
白色脂肪組織具有很強(qiáng)的可塑性,在調(diào)節(jié)糖、脂肪代謝中發(fā)揮重要作用。 脂肪組織的代謝與運(yùn)動(dòng)形式有關(guān),因此,應(yīng)進(jìn)一步闡明不同形式的運(yùn)動(dòng)影響白色脂肪組織功能的具體機(jī)制。同時(shí),應(yīng)探討運(yùn)動(dòng)與其他能夠改善脂肪組織功能的措施(如植物化學(xué)物)聯(lián)合作用對(duì)白色脂肪組織的影響, 最終為個(gè)性化的生活方式干預(yù)療法提供理論依據(jù)。
[1] Rosen ED,Spiegelman BM. Adipocytes as regulators of energy balance and glucose homeostasis. Nature,2006,444(7121):847-853.
[2] Ahima RS. Adipose tissue as an endocrine organ. Obesity(Silver Spring),2006,14 (Suppl 5):242S-249S.
[3] Roberts CK,Hevener AL,Barnard RJ. Metabolic syndrome and insulin resistance:underlying causes and modification by exercise training. Comprehensive Physiology,2013,3 (1):1-58.
[4] Ibrahim MM. Subcutaneous and visceral adipose tissue:structural and functional differences. Obes Rev,2010,11(1):11-18.
[5] Frayn KN. Adipose tissue as a buffer for daily lipid flux.Diabetologia,2002,45(9):1201-1210.
[6] Trayhurn P,Wood IS. Adipokines:inflammation and the pleiotropic role of white adipose tissue. Br J Nutr,2004,92(3):347-355.
[7] Flier JS. Obesity wars:molecular progress confronts an expanding epidemic. Cell,2004,116(2):337-350.
[8] Horowitz JF. Fatty acid mobilization from adipose tissue during exercise. Trends Endocrinol Metab,2003,14(8):386-392.
[9] Egan JJ,Greenberg AS,Chang MK,et al. Mechanism of hormone-stimulated lipolysis in adipocytes:translocation of hormone-sensitive lipase to the lipid storage droplet. Proc Natl Acad Sci USA,1992,89(18):8537-8541.
[10] Shen WJ,Patel S,Natu V,et al. Mutational analysis of structural features of rat hormone -sensitive lipase.Biochemistry,1998,37(25):8973-8979.
[11] Zimmermann R,Strauss JG,Haemmerle G,et al. Fat mobilization in adipose tissue is promoted by adipose triglyceride lipase. Science,2004,306(5700):1383-1386.
[12] Haemmerle G,Lass A,Zimmermann R,et al. Defective lipolysis and altered energy metabolism in mice lacking adipose triglyceride lipase. Science,2006,312 (5774):734-737.
[13] Wohlers LM,Jackson KC,Spangenburg EE. Lipolytic signaling in response to acute exercise is altered in female mice following ovariectomy. J Cell Biochem,2011,112(12):3675-3684.
[14] Huijsman E,van de Par C,Economou C,et al. Adipose triacylglycerol lipase deletion alters whole body energy metabolism and impairs exercise performance in mice. Am J Physiol Endocrinol Metab,2009,297(2):E505-E513.
[15] Stallknecht B,Vinten J,Ploug T,et al. Increased activities of mitochondrial enzymes in white adipose tissue in trained rats.Am J Physiol,1991,261(3 Pt 1):E410-E414.
[16] Sutherland LN,Bomhof MR,Capozzi LC,et al. Exercise and adrenaline increase PGC-1 {alpha} mRNA expression in rat adipose tissue. J Physiol,2009,587(Pt 7):1607-1617.
[17] Xu X,Ying Z,Cai M,et al. Exercise ameliorates high-fat diet -induced metabolic and vascular dysfunction,and increases adipocyte progenitor cell population in brown adipose tissue. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol,2011,300(5):R1115-R1125.
[18] Ruschke K,F(xiàn)ishbein L,Dietrich A,et al. Gene expression of PPARgamma and PGC -1alpha in human omental and subcutaneous adipose tissues is related to insulin resistance markers and mediates beneficial effects of physical training.Eur J Endocrinol,2010,162(3):515-523.
[19] Camera DM,Anderson MJ,Hawley JA,et al. Short -term endurance training does not alter the oxidative capacity of human subcutaneous adipose tissue. Eur J Appl Physiol,2010,109(2):307-316.
[20] Goodyear LJ,Hirshman MF,Horton ED,et al. Exercise training normalizes glucose metabolism in a rat model of impaired glucose tolerance. Metabolism,1991,40(5):455-464.
[21] Hussey SE,McGee SL,Garnham A,et al. Exercise training increases adipose tissue GLUT4 expression in patients with type 2 diabetes. Diabetes Obes Metab,2011,13 (10):959-962.
[22] Peres SB,de Moraes SM,Costa CE,et al. Endurance exercise training increases insulin responsiveness in isolated adipocytes through IRS/PI3 -kinase/Akt pathway. J Appl Physiol,2005,98(3):1037-1043.
[23] Scherer PE,Williams S,F(xiàn)ogliano M,et al. A novel serum protein similar to C1q,produced exclusively in adipocytes. J Biol Chem,1995,270(45):26746-26749.
[24] Lindsay RS,F(xiàn)unahashi T,Hanson RL,et al. Adiponectin and development of type 2 diabetes in the Pima Indian population.Lancet,2002,360(9326):57-58.
[25] Kobayashi J,Murase Y,Asano A,et al. Effect of walking with a pedometer on serum lipid and adiponectin levels in Japanese middle-aged men. J Atheroscler Thromb,2006,13(4):197-201.
[26] Yatagai T,Nagasaka S,Taniguchi A,et al. Hypoadiponectinemia is associated with visceral fat accumulation and insulin resistance in Japanese men with type 2 diabetes mellitus.Metabolism,2003,52(10):1274-1278.
[27] Esposito K,Pontillo A,Di Palo C,et al. Effect of weight loss and lifestyle changes on vascular inflammatory markers in obese women:a randomized trial. JAMA,2003,289 (14):1799-1804.
[28] Garekani ET,Mohebbi H,Kraemer RR,et al. Exercise training intensity/volume affects plasma and tissue adiponectin concentrations in the male rat. Peptides,2011,32(5):1008-1012.
[29] Minokoshi Y,Kim YB,Peroni OD,et al. Leptin stimulates fatty -acid oxidation by activating AMP -activated protein kinase. Nature,2002,415(6869):339-343.
[30] Fruhbeck G,Gomez -Ambrosi J,Muruzabal FJ,et al. The adipocyte:a model for integration of endocrine and metabolic signaling in energy metabolism regulation. Am J Physiol Endocrinol Metab,2001,280(6):E827-E847.
[31] Eriksson M,Johnson O,Boman K,et al. Improved fibrinolytic activity during exercise may be an effect of the adipocytederived hormones leptin and adiponectin. Thromb Res,2008,122(5):701-708.
[32] Ishigaki T,Koyama K,Tsujita J,et al. Plasma leptin levels of elite endurance runners after heavy endurance training. J Physiol Anthropol Appl Human Sci,2005,24(6):573-578.
[33] Bouassida A,Chamari K,Zaouali M,et al. Review on leptin and adiponectin responses and adaptations to acute and chronic exercise. Br J Sports Med,2010,44(9):620-630.
[34] 汪洋. 運(yùn)動(dòng)與限食對(duì)肥胖大鼠血清抵抗素的影響. 北京:北京體育大學(xué),2008.
[35] 柏友萍,張晶,江雙雙,等. 減肥運(yùn)動(dòng)處方對(duì)超重肥胖大學(xué)生體脂、 血糖與抵抗素的影響. 衛(wèi)生研究,2013,42(4):538-549.
[36] Wenning P,Kreutz T,Schmidt A,et al. Endurance exercise alters cellular immune status and resistin concentrations in men suffering from non-insulin-dependent type 2 diabetes.Exp Clin Endocrinol?Diabetes,2013,121(8):475-482.
[37] Chen N,Zhou L,Zhang Z,et al. Resistin?induces lipolysis and suppresses adiponectin secretion in cultured human visceral adipose tissue. Regul Pept,2014,194-195:49-54.
[38] 焦廣發(fā),張海峰,高峰,等. 12周游泳運(yùn)動(dòng)對(duì)高脂飲食大鼠脂肪組織UCP2 mRNA 和TNF-α的影響. 中國運(yùn)動(dòng)醫(yī)學(xué)雜志,2009,28(3):281-5.
[39] 趙芝. 有氧運(yùn)動(dòng)對(duì)肥胖者血清RBP4、TNF-α水平的影響. 蘇州:蘇州大學(xué),2010.
[40] Koh HJ,Hirshman MF,He H,et al. Adrenaline is a critical mediator of acute exercise-induced AMP-activated protein kinase activation in adipocytes. Biochem J,2007,403 (3):473-481.
[41] Gauthier MS,Miyoshi H,Souza SC,et al. AMP -activated protein kinase is activated as a consequence of lipolysis in the adipocyte:potential mechanism and physiological relevance. J Biol Chem,2008,283(24):16514-16524.
[42] Park H,Kaushik VK,Constant S,et al. Coordinate regulation of malonyl -CoA decarboxylase,sn -glycerol -3 -phosphate acyltransferase,and acetyl -CoA carboxylase by AMP -activated protein kinase in rat tissues in response to exercise.J Biol Chem,2002,277(36):32571-32577.
[43] Moule SK,Denton RM. The activation of p38 MAPK by the beta-adrenergic agonist isoproterenol in rat epididymal fat cells. FEBS Lett,1998,439(3):287-290.
[44] Mottillo EP,Shen XJ,Granneman JG. Beta3-adrenergic receptor induction of adipocyte inflammation requires lipolytic activation of stress kinases p38 and JNK. Biochim Biophys Acta,2010,1801(9):1048-1055.
[45] Brandt C,Jakobsen AH,Adser H,et al. IL-6 regulates exercise and training-induced adaptations in subcutaneous adipose tissue in mice. Acta Physiol(Oxf),2012,205(2):224-235.
[46] Ruderman NB,Keller C,Richard AM,et al. Interleukin-6 regulation of AMP-activated protein kinase. Potential role in the systemic response to exercise and prevention of the metabolic syndrome. Diabetes,2006,55 (Suppl 2):S48-S54.
[47] Wolsk E,Mygind H,Grondahl TS,et al. IL -6 selectively stimulates fat metabolism in human skeletal muscle. Am J Physiol Endocrinol Metab,2010,299(5):E832-E840.
[48] Wan Z,Ritchie I,Beaudoin MS,et al. IL-6 Indirectly Modulates the Induction of Glyceroneogenic Enzymes in Adipose Tissue during Exercise. PLoS One,2012,7(7):e417-e419.
[49] Nielsen NB,Hojbjerre L,Sonne MP,et al. Interstitial concentrations of adipokines in subcutaneous abdominal and femoral adipose tissue. Regul Pept,2009,155(1-3):39-45.
[50] Ostrowski K,Hermann C,Bangash A,et al. A trauma-like elevation of plasma cytokines in humans in response to treadmill running. J Physiol,1998,513 (Pt 3):889-894.
[51] Bostrom P,Wu J,Jedrychowski MP,et al. A PGC1-alpha-dependent myokine that drives brown-fat-like development of white fat and thermogenesis. Nature,2012,481 (7382):463-468.
[52] Huh JY,Siopi A,Mougios V,et al. Irisin in response to exercise in humans with and without metabolic syndrome. J Clin Endocrinol Metab,2014:100(3):E453-E457.
[53] Hecksteden A,Wegmann M,Steffen A,et al. Irisin and exercise training in humans -Results from a randomized controlled training trial. BMC Med,2013,11(1):235.
[54] Blüher S,Panagiotou G,Petroff D,et al. Effects of a 1-year exercise and lifestyle intervention on irisin,adipokines,and inflammatory markers in obese children. Obesity (Silver Spring),2014,22(7):1701-1708.