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睡菜離體快繁技術(shù)的研究

2015-07-04 11:14胡若洋杜思樂石雪飛李學(xué)東
西北植物學(xué)報 2015年2期
關(guān)鍵詞:圖版外植體生根

趙 峰,胡若洋,杜思樂,石雪飛,李學(xué)東

(首都師范大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院,北京100048)

睡菜(MenyanthestrifoliataL.)又名螟菜、醉草,為龍膽科睡菜屬多年沼生草本植物,根狀莖匍匐粗大,初為綠色,老熟后轉(zhuǎn)為褐色,三出復(fù)葉,小葉卵圓形,挺出水面,總狀花序具多花,花白色,花冠背面常帶粉色,上部內(nèi)面具白色流蘇狀毛,蒴果球形,種子膨脹,圓形,花果期5~7月,在中國分布于東北、華北、云南、西藏及四川等地[1]??善灿诤恿?、湖泊、池塘淺水處,極具觀賞價值(圖版Ⅰ,A~G)。睡菜的栽培繁殖以分株繁殖為主,多在每年的3~5月進(jìn)行,將根狀莖分割,具3~4個芽眼分栽即可,也可播種繁殖[2]。其在濕地植被恢復(fù)和植物多樣性重建等方面具有很好的應(yīng)用前景。

在瑞典睡菜是用于治療腎炎和急性腎功能衰竭的一種傳統(tǒng)藥物,并且對于壞血病及其它疾病也具有顯著療效[3-4]。通過將睡菜根莖提取物施加于100~120g大鼠后研究發(fā)現(xiàn):睡菜可抑制血小板活化因子(PAF),從而防止急性腎功能衰竭[5-6]。研究表明,睡菜具有顯著的免疫調(diào)節(jié)及抗炎作用,這可能與其體內(nèi)復(fù)雜的免疫多糖組分[7-8]有關(guān)。其兼具抗腫瘤的生物活性,前蘇聯(lián)在1982年就已經(jīng)有利用睡菜與五氟尿嘧啶制劑配合成功治療25例胃癌晚期患者的相關(guān)報道[9]。同時,睡菜還具有清熱利尿、健胃、安神的作用,并可作蔬菜,具有很高的藥用價值及廣闊的應(yīng)用開發(fā)前景。

對于睡菜的組織培養(yǎng)研究國內(nèi)外研究報道極少,2012年吳昌宇等[10]對其外植體消毒和愈傷組織誘導(dǎo)進(jìn)行了初步研究報道。李文潔等[11]對產(chǎn)自云南的睡菜進(jìn)行了離體培養(yǎng)與植物再生研究,但其消毒方法、培養(yǎng)基成分和激素配比都比較復(fù)雜。本研究旨在探索一種簡便、快速的睡菜離體繁殖技術(shù),為睡菜種苗的規(guī)?;a(chǎn)提供技術(shù)支持。

1 材料和方法

1.1 材 料

實(shí)驗(yàn)材料采自北京延慶縣野鴨湖自然保護(hù)區(qū)長勢良好的睡菜植株,該材料于2007年在北京延慶縣濕地資源普查時被發(fā)現(xiàn),為北京新記錄種[12]。

1.2 方 法

1.2.1 培養(yǎng)基配置 本實(shí)驗(yàn)選用的基本培養(yǎng)基為MS培養(yǎng)基,瓊脂含量0.8%,蔗糖濃度3%,pH 5.8~6.0,在121℃、0.15 MPa條件下滅菌20min。

1.2.2 外植體消毒 取10cm 睡菜嫩莖段為外植體(以休眠期取材為宜,可顯著減少污染幾率),用自來水沖洗1~2h,去除葉和根。然后在超凈工作臺中用75%酒精浸泡30s,放入1g/L HgCl2中消毒10min。用無菌水沖洗5次,浸泡5min,將消毒的材料切成0.5cm 厚薄片。

1.2.3 愈傷組織誘導(dǎo) 配制5組不同激素濃度的培養(yǎng)基(表1),每組重復(fù)4瓶,每瓶中接種3塊相同睡菜嫩莖,培養(yǎng)15d。培養(yǎng)條件為(20±2)℃,12 h/12h光照,光強(qiáng)1 000~2 000lx,相對濕度50%~70%。定期觀察,統(tǒng)計愈傷組織誘導(dǎo)率。

愈傷組織誘導(dǎo)率=誘導(dǎo)愈傷組織數(shù)/總接種數(shù)

1.2.4 愈傷組織繼代培養(yǎng) 配制4種不同激素濃度的培養(yǎng)基(表2),每組重復(fù)4瓶,每瓶接種3塊愈傷組織。培養(yǎng)條件為(20±2)℃,12h/12h光照,光強(qiáng)1 000~2 000lx,相對濕度50%~70%。定期觀察,統(tǒng)計愈傷組織增長率。

愈傷組織增長率=增長愈傷組織數(shù)/總接種數(shù)

1.2.5 芽的誘導(dǎo) 設(shè)計采用雙因素實(shí)驗(yàn),共26組激素濃度梯度(表3),篩選適宜誘導(dǎo)睡菜愈傷組織出芽的NAA 和6-BA 激素濃度。將培養(yǎng)的愈傷組織接種到出芽培養(yǎng)基上,每組重復(fù)4瓶,每處理重復(fù)3次。定期觀察,統(tǒng)計愈傷組織出芽率。

愈傷組織出芽率=出芽愈傷組織數(shù)/總接種數(shù)

1.2.6 誘導(dǎo)生根及移栽 篩選最適宜誘導(dǎo)睡菜愈傷組織出根的NAA 和6-BA 激素濃度。設(shè)計采用雙因素實(shí)驗(yàn),共設(shè)置26組激素濃度梯度(表4)。將帶芽的再生小苗接種于不同激素配比的生根培養(yǎng)基上,每組重復(fù)4瓶,每個處理重復(fù)3次。定期觀察,統(tǒng)計平均生根率(平均生根率=生根小苗數(shù)/總接種數(shù))。得到的完整再生植株移栽于底部覆有滅菌土壤的水槽中,定期觀察其生長狀況,統(tǒng)計成活率(成活率=成活植株數(shù)/總移栽數(shù))。

2 結(jié)果與分析

2.1 睡菜愈傷組織誘導(dǎo)及繼代培養(yǎng)

將消毒后的睡菜嫩莖段接種至培養(yǎng)基上(圖版Ⅱ,A)。培養(yǎng)基中不加激素時,睡菜不能形成愈傷組織。當(dāng)激素濃度在0.5~1.5mg/L 6-BA、0.05~0.15mg/L NAA 時,可形成淺綠色的愈傷組織(圖版Ⅱ,B)。當(dāng)培養(yǎng)基中激素含量為1.0mg/L 6-BA和0.1 mg/L NAA 時,睡菜愈傷組織誘導(dǎo)效果最好,達(dá)到100%(表1)。由此推斷,最適宜的外植體誘導(dǎo)培養(yǎng)基為MS+1 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA。

在外植體誘導(dǎo)出愈傷組織后,需要及時進(jìn)行繼代培養(yǎng),以避免培養(yǎng)過程中微生物通過封口膜污染及培養(yǎng)基營養(yǎng)消耗引起的愈傷組織老化死亡。在繼代培養(yǎng)中,仍然選擇不同濃度6-BA 和NAA 來調(diào)控愈傷組織的生長。結(jié)果(表2)顯示,睡菜愈傷組織在激素濃度范圍為MS+0.3~1.5mg/L 6-BA+0.03~0.15 mg/L NAA 的培養(yǎng)基中均可進(jìn)行增殖。其中在MS+1mg/L 6-BA+0.1mg/L NAA培養(yǎng)基中愈傷組織生長最好,愈傷組織生長率可達(dá)91.67%。

表1 不同激素配比對睡菜愈傷組織誘導(dǎo)的影響Table 1 Effect of different media on inducing calli of M.trifoliata

2.2 芽的誘導(dǎo)

由表3可知,在編號Y11~Y26的培養(yǎng)基中除其他均可誘導(dǎo)出芽且比較集中(圖版Ⅱ,C~R)。

表3顯示,在不同時期培養(yǎng)基Y18的誘導(dǎo)出芽率均出現(xiàn)最大值,推測睡菜最適誘導(dǎo)芽的培養(yǎng)基為編號Y18(圖版Ⅱ,J)。重復(fù)接種和二次繼代該培養(yǎng)基的出芽率均可達(dá)到50%以上,即最適芽誘導(dǎo)培養(yǎng)基是MS+0.3mg/L NAA+4mg/L 6-BA。

2.3 根的誘導(dǎo)及再生植株移栽

對根誘導(dǎo)需在出芽的基礎(chǔ)上進(jìn)行,當(dāng)最初產(chǎn)生愈傷組織的時候,需使細(xì)胞分裂加快,即細(xì)胞分裂素/生長素(6-BA/NAA)的比值大時,更易誘導(dǎo)出芽。后期誘導(dǎo)生根形成完整再生植株的過程中,生長素起著更關(guān)鍵的作用。設(shè)計雙因子實(shí)驗(yàn),篩選最適宜誘導(dǎo)睡菜愈傷組織生根的NAA 和6-BA 濃度。

表2 不同激素配比對睡菜愈傷組織生長的影響Table 2 Effect of different media on inducing calli of M.trifoliata

表3 不同水平NAA和6-BA對睡菜芽的誘導(dǎo)Table 3 Effect of different mediums(NAA/6-BA)on inducing buds of M.trifoliata

表4 不同水平NAA和6-BA對睡菜根的誘導(dǎo)Table 4 Effect of different mediums(NAA/6-BA)on taking roots of M.trifoliata

表5 溫度、光照強(qiáng)度對睡菜移栽苗的影響Table 5 The influence of temperature and light intensity on transplants

將生長情況良好的帶芽愈傷組織接入不同激素濃度的培養(yǎng)基(表4)中,結(jié)果發(fā)現(xiàn)編號G12和G13培養(yǎng)基內(nèi)愈傷組織在1周內(nèi)均誘導(dǎo)出根,并且生根率很高(圖版Ⅱ,S~V)。尤其G12培養(yǎng)基重復(fù)接種后可達(dá)100%的出根率(表4),說明最適宜誘導(dǎo)根的培養(yǎng)基是MS+1 mg/L NAA+0.3 mg/L 6-BA。形成的再生植株可選潮濕的雨天移栽于室外水池中,1周左右即可挺出水面(圖版Ⅱ,X)。

獲得睡菜完整再生植株移栽至不同溫度、照度的培養(yǎng)箱中,觀察不同培養(yǎng)條件對睡菜生長的影響。以移栽后20d為標(biāo)準(zhǔn)測量不同培養(yǎng)條件下睡菜的挺水高度,計算生長速率(生長速率=挺水高度/生長時間)。結(jié)果(表5)發(fā)現(xiàn)光照強(qiáng)度及培養(yǎng)溫度對睡菜的生長均有影響,低溫、弱光條件下睡菜的生長受到明顯抑制,其中溫度對睡菜的生長影響較為明顯。睡菜的培養(yǎng)要求溫度較高,因此初夏移栽應(yīng)為最宜。

3 討 論

睡菜作為一種水生植物,其外植體的消毒是一個難題,其中外植體的取材時間是首先要考慮的因素[13]。從入秋到春季萌芽前的休眠期取材,再把睡菜嫩莖段用1g/L 的多菌靈懸濁液浸泡24h,可大大降低其染菌的概率。

誘導(dǎo)芽的培養(yǎng)基配制時,總會出現(xiàn)培養(yǎng)基沒有凝結(jié)的情況。經(jīng)反復(fù)配制發(fā)現(xiàn),激素的濃度很容易影響培養(yǎng)基的酸堿度。高濃度的6-BA 使培養(yǎng)基過于偏酸,致使培養(yǎng)基不易凝結(jié)。因此配制前將6-BA濃度高于6mg/L的培養(yǎng)基pH 提前調(diào)至6.3,這樣所制作的培養(yǎng)基更易凝結(jié)。

再生小苗的室外移栽由于易受外源微生物和原生動物的侵染,致使其成活率僅有30%左右。延長睡菜在無菌瓶中的生長期可以達(dá)到壯苗的目的,并有利于提高移栽的成活率[14]。將利用植物組織快繁技術(shù)得到的再生小苗轉(zhuǎn)移到經(jīng)高壓蒸汽滅菌(121℃/30min)的土及蒸餾水中先培養(yǎng)1周。壯苗后的睡菜再移栽于室外可達(dá)100%的成活率。睡菜耐寒而不耐旱,培養(yǎng)過程中要及時補(bǔ)水,防止由于水分蒸發(fā)造成的缺水脅迫。

睡菜作為少有的濕地觀花植物具有很高的觀賞價值和藥用價值,利用植物離體快繁技術(shù),通過改變MS培養(yǎng)基中6-BA、NAA 的濃度,建立睡菜組織培養(yǎng)無性系,30d左右便可得到大量的再生苗,有利于睡菜的進(jìn)一步推廣和普及。

圖版Ⅰ 睡菜自然景觀及再生植株煉苗實(shí)驗(yàn)PlateⅠ The natural landscape and hardening experiments of M.trifoliata

圖版Ⅱ 睡菜組織培養(yǎng)過程PlateⅡ The process of tissue culture on M.trifoliata

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