張晗芝
摘 要:重金屬的亞細(xì)胞分布及抗氧化酶系統(tǒng)是植物解毒的重要策略。一氧化氮(NO)是植物組織內(nèi)重要的信號(hào)分子,在植物響應(yīng)各種逆境條件發(fā)揮重要作用。該研究采用水培試驗(yàn),研究外源NO(SNP)對(duì)5 mg·kg-1 Cd脅迫下蓖麻中鎘的亞細(xì)胞分布及抗氧化酶活性的影響,探討NO調(diào)節(jié)下蓖麻對(duì)鎘的解毒機(jī)制。研究表明,與鎘處理下相比,100 μmol·L-1 SNP提高了金屬解毒組分,降低了金屬敏感組分;提高了過氧化氫酶(CAT)活性,不能明顯影響超氧化物歧化酶(SOD)和過氧化物酶(POD)的活性變化。因此,NO通過提高金屬解毒組分的含量和CAT活性,參與蓖麻對(duì)鎘的解毒作用。
關(guān)鍵詞:鎘 蓖麻 亞細(xì)胞 抗氧化酶 一氧化氮
中圖分類號(hào):X173 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A 文章編號(hào):1674-098X(2015)12(a)-0157-03
重金屬在植物亞細(xì)胞的分布能夠反映植物的解毒機(jī)理(Wang和Rainbow,2006;Miao和Wang,2007)。采用差速離心法,組織細(xì)胞可分為5種亞細(xì)胞組分:金屬富集顆粒體、細(xì)胞碎屑、細(xì)胞器、熱敏感蛋白和熱穩(wěn)定蛋白(Wallace等,2003)。重金屬脅迫下海洋硅藻、無脊椎動(dòng)物和小麥等生物體的亞細(xì)胞區(qū)隔化已經(jīng)開展過研究(Miao和Wang,2006;Wallace等,2003;Li等,2011)。
另外,抗氧化酶系統(tǒng)是植物抵抗鎘脅迫的一種解毒策略。鎘脅迫能夠誘導(dǎo)植物體內(nèi)細(xì)胞的氧化脅迫,導(dǎo)致活性氧種類的增加,損害細(xì)胞組分(Sandalio等,2001)。超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化氫酶(CAT)和過氧化物酶(POD)等抗氧化酶在清除活性氧方面發(fā)揮重要的作用,有效抵抗了重金屬毒性導(dǎo)致的氧化脅迫(Vanassche和Clijsters,1990;Chaoui等,1997)。而且,抗氧化酶活性水平能夠反映生物化學(xué)過程并預(yù)示金屬毒性(Li等,2011)。
蓖麻(Ricinus communis L.)是一種重要的能源作物,而且是潛在修復(fù)鎘污染農(nóng)田的理想作物(Agarwal,2007;Huang,2011)。研究NO調(diào)節(jié)下蓖麻對(duì)鎘的解毒機(jī)制非常有意義。一氧化氮(NO)是植物體內(nèi)一種生物活性分子,通過酶促和非酶促途徑產(chǎn)生,能緩解各種環(huán)境毒害(王芳等,2013)。
目前,關(guān)于外源NO(硝普鈉作為供體)對(duì)鎘脅迫下蓖麻中鎘的亞細(xì)胞分布及抗氧化酶活性影響研究還很少。本研究的目的:(1)探討外源NO影響下蓖麻中鎘的亞細(xì)胞分布特征;(2)研究外源NO影響下蓖麻抗氧化酶活性的變化。
1 材料與方法
1.1 試驗(yàn)設(shè)計(jì)
該試驗(yàn)為水培試驗(yàn),在溫室進(jìn)行。溫室設(shè)定的溫度為晝夜25/15 ℃,光強(qiáng)度為300 mE/m2/s,16 h的光周期,平均相對(duì)濕度為65%。試驗(yàn)采用50%霍格蘭營養(yǎng)液,組分包含2.5 mmol·L-1 KNO3,2.5 mmol·L-1 Ca(NO3)2,0.5 mmol·L-1 MgSO4,0.5 mmol·L-1 KH2PO4,25 μmol·L-1 H3BO3,2.25 μmol·L-1 MnCl2,0.15 μmol·L-1 CuSO4,1.9 μmol·L-1 ZnSO4,0.05 mmol·L-1(NH4)6Mo7O24和5 μmol·L-1 Fe-EDTA。選用的蓖麻品種Zibo-3由山東省淄博市農(nóng)業(yè)科學(xué)院提供。蓖麻種子開始播種在無污染的人工土壤上生長2~3周,直到種苗具有兩片健壯的葉子。選擇長勢(shì)一致的蓖麻幼苗種植與含有400 mL營養(yǎng)液的1 L盆中。硝普鈉(SNP)的水溶液作為NO的供體,CdCl2 2.5 H2O的水溶液作為鎘污染來源。試驗(yàn)設(shè)3個(gè)處理,分別為對(duì)照(CK)、5 mg·kg-1 Cd(Cd)、5 mg·kg-1 Cd+100 μmol·L-1 SNP(Cd+SNP),每個(gè)處理3個(gè)重復(fù),蓖麻葉用于測(cè)定生理指標(biāo)。營養(yǎng)液每三天更換一次,營養(yǎng)液的pH值保持在6.0±0.1。蓖麻幼苗在水培溶液中生長10天。
收獲的植物鮮葉先用自來水清洗,然后用超純水清洗3 遍,最后用吸水紙擦拭,保證無水分殘留。新鮮葉保存在液氮中,分析抗氧化酶、可溶性蛋白和亞細(xì)胞分布。
1.2 蓖麻葉中鎘的亞細(xì)胞分布
根據(jù)差速離心法(Zhang等,2015),細(xì)胞內(nèi)的鎘可分離為5個(gè)亞細(xì)胞組分:金屬富集顆粒體、細(xì)胞碎屑、細(xì)胞器、熱敏感蛋白和熱穩(wěn)定蛋白。5個(gè)亞細(xì)胞組分的鎘質(zhì)量分?jǐn)?shù)用火焰原子吸收光譜測(cè)定(Contra AA 700,Germany)。細(xì)胞器和熱敏感蛋白組分定義為金屬敏感組分,金屬富集顆粒體和熱穩(wěn)定蛋白定義為生物解毒組分(Wang和Rainbow,2006)。數(shù)據(jù)為三個(gè)重復(fù)的平均值。
1.3 抗氧化酶和可溶性蛋白測(cè)定
新鮮的葉子(0.2 g)經(jīng)過預(yù)冷的研磨器研磨達(dá)到均質(zhì)化,由緩沖液提取。緩沖液的組分為:0.05 mmol·L-1的磷酸二氫鈉和磷酸氫二鈉溶解于1%聚乙烯吡咯烷酮,調(diào)節(jié) pH值為7.4。均勻的溶漿在10 000 g4 ℃的離心機(jī)中離心10 min(Li等,2011)。上清液用于可溶性蛋白和抗氧化酶活性的測(cè)定。蓖麻葉中可溶性蛋白的測(cè)定采用考馬斯亮藍(lán)的方法??扇苄缘鞍椎暮勘硎緸閙g protein·g -1。氮藍(lán)四唑(NBT)光還原法測(cè)定超氧化物歧化酶(SOD)的活性(Giannopolitis等,1977)。SOD活性以抑制NBT光還原反應(yīng)50%所需的酶量為一個(gè)酶活性單位,表示為U/mg protein。過氧化氫酶(CAT)依據(jù)A240的變化速率計(jì)算CAT活性(Aebi,1984),以1 min內(nèi)A240降低0.1為一個(gè)酶活性單位(U),表示為U/mg protein。過氧化物酶(POD)依據(jù)A470的變化速率計(jì)算POD活性(Chance等,1955),以1 min內(nèi)A470降低1為一個(gè)酶活性單位(U),表示為U/mg protein。
1.4 統(tǒng)計(jì)分析
數(shù)據(jù)分析采用SPSS 16.0軟件(SPSS,Chicago,IL,USA)的方差分析和T檢驗(yàn)方法。所用指標(biāo)采用三個(gè)重復(fù)。數(shù)據(jù)表示為平均值±誤差,用Duncans檢驗(yàn)顯著性差異(P<0.05)。
2 結(jié)果與分析
2.1 蓖麻不同組織中鎘的亞細(xì)胞分布
以前研究發(fā)現(xiàn),100 μmol·L-1 SNP+5 mg·kg-1Cd處理的生物量相比5 mg·kg-1鎘脅迫顯著增加,但明顯低于對(duì)照處理的生物量。另外,相對(duì)于鎘處理,添加100 μmol·L-1 SNP提高了蓖麻根部和地上部分鎘的富集能力。亞細(xì)胞中鎘的質(zhì)量分?jǐn)?shù)及相對(duì)含量(見表1)所示。相對(duì)于鎘處理,添加SNP處理細(xì)胞器和熱敏感蛋白中鎘質(zhì)量分?jǐn)?shù)分別顯著降低了65.6%和52.8%。添加SNP增加了生物解毒組分中鎘的質(zhì)量分?jǐn)?shù)和相對(duì)含量,降低了金屬敏感組分中鎘的質(zhì)量分?jǐn)?shù)和相對(duì)含量。
2.2 抗氧化酶活性
抗氧化酶(SOD、CAT、POD)的活性(見表2)所示。相對(duì)于對(duì)照處理,5 mg·kg-1鎘處理?xiàng)l件下,SOD、CAT和POD的活性顯著降低;添加外源SNP后,CAT活性與Cd處理相比顯著提高,基本能恢復(fù)到對(duì)照水平,而SOD和CAT活性與Cd處理相比沒顯著差異。因此,添加SNP能通過調(diào)節(jié)CAT活性的方式緩解Cd脅迫下蓖麻葉中的氧化脅迫。
3 討論
生物體內(nèi)金屬的亞細(xì)胞分布反應(yīng)了金屬富集的內(nèi)在過程,是一種能夠預(yù)測(cè)金屬毒性和耐性的方法(Wallace等,2003)。Wang和Wang(2008)研究認(rèn)為金屬敏感組分能預(yù)測(cè)硅藻中鎘的毒性。Zhang等(2015)研究表明,蓖麻老葉中金屬解毒組分或者金屬敏感組分和蓖麻對(duì)鎘的耐性相關(guān)聯(lián)。該研究中SNP提高蓖麻對(duì)鎘耐性,可能與葉中金屬解毒組分增加和金屬敏感組分減少有關(guān)。
抗氧化酶(SOD、CAT和POD)是植物解毒機(jī)理的重要組成部分。SOD是一種金屬酶類,能夠催化超氧自由基轉(zhuǎn)化為過氧化氫和氧氣,保護(hù)細(xì)胞組分免受超氧自由基的毒害(Del Rio等,2002)。CAT和POD是調(diào)節(jié)細(xì)胞內(nèi)過氧化氫含量的關(guān)鍵酶類(Blokhina等,2003)。研究發(fā)現(xiàn),鎘脅迫下植物組織內(nèi)抗氧化酶活性增加(Yu等,2013)。然而,該研究發(fā)現(xiàn),5 mg·kg-1鎘脅迫下蓖麻葉中SOD、CAT和 POD活性顯著降低(Table 2)。Zhang等(2015)研究也發(fā)現(xiàn),5 mg·kg-1或2 mg·kg-1鎘脅迫下蓖麻葉中SOD、CAT和POD活性降低或無明顯變化,與該研究結(jié)果相符。外源NO(SNP)能夠提高抗氧化酶(SOD、CAT和POD)活性,增強(qiáng)植物對(duì)鎘的毒害(王芳等,2013)。然而一些研究發(fā)現(xiàn),SNP降低了SOD和POD的活性(朱涵毅等,2013),與該研究結(jié)果一致。該研究中SNP提高了蓖麻葉中CAT活性,參與蓖麻對(duì)鎘的解毒作用。因此,該研究發(fā)現(xiàn),NO通過提高金屬解毒組分的含量和CAT活性,參與蓖麻對(duì)鎘的解毒作用。
參考文獻(xiàn)
[1] AGARWAL A K.Biofuels (alcohols and biodiesel) applications as fuels for internal combustion engines[J].Progress in Energy and Combustion Science,2007(33):233-271.
[2] BLOKHINA O,VIROLAINEN E,F(xiàn)AGERSTEDT KV.Antioxidants,oxidative damage and oxygen deprivation stress:a review [J].Annals of Botany,2003,91(2):179-194.
[3] CHAOUI A,MAZHOUDI S,GHORBAL MH, et al.Cadmium and zinc induction of lipid peroxidation and effects on antioxidant enzyme activities in bean (Phaseolus vulgaris L)[J].Plant Science,1997,127(2):139-147.
[4] DEL RIO LA, CORPAS FJ,SANDALIO LM,et al.Reactive oxygen species,antioxidant systems and nitric oxide in peroxisomes[J]. Journal of Experimental Botany,2002,53(372): 1255-1272.
[5] HUANG H G,YU N,WANG L J,et al.The phytoremediation potential of bioenergy crop Ricinus communis for DDTs and cadmium co-contaminated soil[J].Bioresource Technology, 2011(102):11034-11038.
[6] LI DD,ZHOU DM,WANG P,et al.Temperature affects cadmium-induced phytotoxicity involved in subcellular cadmium distribution and oxidative stress in wheat roots[J]. Ecotoxicology and Environmental Safety,2011,74 (7):2029-2035.
[7] SANDALIO LM,DALURZO HC,GOMEZ M,ROMERO-PUERTAS MC,DEL RIO LA.Cadmium-induced changes in the growth and oxidative metabolism of pea plants[J]. Journal of Experimental Botany,2001,52(364):2115-2126.
[8] VANASSCHE F,CLIJSTERS H.Effects of Metals on Enzyme-Activity in Plants[J].Plant Cell and Environment,1990,13(3):195-206.
[9] WALLACE WG,LEE BG,LUOMA SN.2003. Subcellular compartmentalization of Cd and Zn in two bivalves.I.Significance of metal-sensitive fractions(MSF)and biologically detoxified metal(BDM)[J].Marine Ecology Progress Series,2003(249):183-197.
[10] WANG WX,RAINBOW PS.Subcellular partitioning and the prediction of cadmium toxicity to aquatic organisms[J].Environmental Chemistry,2006,3(6):395-399.
[11] WANG MJ,WANGWX.Cadmium toxicity in a marine diatom as predicted by the cellular metal sensitive fraction. Environmental Science and Technology,2008,42(3):940-946.
[12] MIAO AJ,WANG WX.Cadmium toxicity to two marine phytoplankton under different nutrient conditions[J].Aquatic Toxicology, 2006,78(2):114-126.
[13] YU FM,LIU KH,LI MS,et al.Effects of cadmium on enzymatic and non-enzymatic antioxidative defences of rice (Oryza Sativa L.)[J].International Journal of Phytoremediation,2013(15):513-521.
[14] ZHANG H Z,GUO Q J,YANG J X,et al. Subcellular cadmium distribution and antioxidant enzymatic activities in the leaves of two castor(Ricinus communis L.)cultivars exhibit differences in Cd accumulation[J].Ecotoxicology and Environmental Safety,2015(120):184-192.
[15] 王芳,常盼盼,陳永平,等.外源NO對(duì)鎘脅迫下玉米幼苗生長和生理特性的影響[J].草樣科學(xué),2013,22(2):178-186.
[16] 朱涵毅,陳益軍,勞佳麗,等.外源NO對(duì)鎘脅迫下水稻幼苗抗氧化系統(tǒng)和微量元素積累的影響[J].生態(tài)學(xué)報(bào),2013,33(2):603-609.