翟少偉 李 劍 孫秀文

(集美大學水產(chǎn)學院，廈門361021)

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飼料中添加表面活性素對吉富羅非魚生長性能、血清生化指標及脂肪代謝的影響

翟少偉 李 劍 孫秀文

(集美大學水產(chǎn)學院，廈門361021)

本試驗旨在研究飼料中添加表面活性素對吉富羅非魚生長性能、血清生化指標及脂肪代謝的影響。將240尾吉富羅非魚[平均體重為(12.0±0.1) g]，隨機分為4組，每組4個重復，每個重復15尾魚，分別投喂表面活性素添加水平為0(對照組)、50、100和200 mg/kg的試驗飼料7周。結果表明：飼料中添加表面活性素顯著提高吉富羅非魚的終末體重、增重率和特定生長率(P<0.05)，且上述指標50 mg/kg添加組顯著高于200 mg/kg添加組(P<0.05)，同時顯著降低飼料系數(shù)(P<0.05)，但對攝食率和存活率無顯著影響(P>0.05)。飼料中添加表面活性素顯著提高腸道脂肪酶(50 mg/kg添加組除外)活性(P<0.05)，對淀粉酶和蛋白酶活性無顯著影響(P>0.05)。飼料中添加表面活性素后血清尿素氮水平降低，但僅50 mg/kg添加組與對照組有顯著差異(P<0.05)；各添加組血清白蛋白和游離脂肪酸水平顯著高于對照組(P<0.05)，總膽固醇(200 mg/kg添加組除外)、甘油三酯水平顯著低于對照組(P<0.05)；各組間血清酸性磷酸酶和堿性磷酸酶活性無顯著差異(P>0.05)；各添加組血清溶菌酶活性顯著高于對照組(P<0.05)，其中以50 mg/kg添加組活性最高。飼料中添加表面活性素顯著提高肝胰臟脂肪酸合成酶水平(P<0.05)，對肝胰臟乙酰輔酶A羧化酶水平無顯著影響(P>0.05)；各添加組肝胰臟肝脂酶和脂蛋白脂酶活性顯著高于對照組(P<0.05)，但各添加組之間2種酶活性無顯著差異(P>0.05)。由此可見，飼料中添加表面活性素可提高吉富羅非魚腸道脂肪酶活性、改善血清生化指標、調節(jié)脂肪代謝酶水平或活性，進而促進其生長。本試驗條件下，建議吉富羅非魚飼料中表面活性素添加水平為50 mg/kg。

表面活性素；吉富羅非魚；生長性能；脂肪代謝

魚類可以有效利用脂肪，具有節(jié)約蛋白質的效應。適當提高飼料中油脂水平，可一定程度減少蛋白質作為能量的消耗。但飼料中添加過多的油脂會導致魚體脂肪沉積過多，影響魚類健康和產(chǎn)品品質[1-3]。飼料中添加具有表面活性作用的乳化劑，能夠使進入動物腸道的油脂分散形成乳糜微粒，擴大油脂與脂肪酶的接觸面積，從而提高油脂的消化吸收[4]。水產(chǎn)飼料中常用的乳化劑有膽汁酸鹽類、磷脂類和糖苷酯類等單一或復合的乳化劑，這些乳化劑多為動、植物直接提取或化學合成而來[5-7]。而微生物源的乳化劑在飼料中的應用還鮮見報道。近年來，枯草芽孢桿菌分泌的表面活性物質——表面活性素(surfactin)成為表面活性劑領域的研究熱點。它具有特殊的兩親性化學結構，其表面活性強于常見的乳化劑，是最強的生物表面活性劑之一[8-9]。表面活性素不僅具有廣譜高效的抗菌活性，而且對病毒、支原體和原蟲等也具有顯著的抑制效果，又被稱為抗菌脂肽[9-10]。目前，表面活性素在動物飼料中的應用還處于初步階段，以往研究主要關注表面活性素的抗菌活性方面。研究表明，表面活性素適量添加到飼料中可提高愛拔益加(AA)肉雞、斷奶仔豬對脂肪的利用效率，促進蛋白質的沉積和動物生長[11-12]。而表面活性素在水產(chǎn)動物方面，僅有含表面活性素的復合物添加在點帶石斑魚(Epinepheluscoioides)[13]和凡納濱對蝦(Litopenaeusvannamei)[14]飼料中的報道，以及表面活性素添加在吉富羅非魚飼料中的初步研究[15]。鑒于此，本文擬通過研究在飼料中添加不同水平的表面活性素對吉富羅非魚(genetically improved farmed tilapia,GIFT,Oreochromisniloticus)生長性能、血清生化指標及脂肪代謝的影響，探討表面活性素的促生長效果以及對脂肪代謝的影響，為表面活性素作為新型水產(chǎn)飼料乳化劑的應用提供依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 試驗動物與試驗設計

飼養(yǎng)試驗在集美大學水產(chǎn)學院生態(tài)實驗室進行。吉富羅非魚購買于漳州市水產(chǎn)開發(fā)中心，飼喂基礎飼料暫養(yǎng)馴化15 d之后，選取240尾體格健壯、規(guī)格均一、平均體重為(12.0±0.1) g的試驗魚，隨機分成4組，分別投喂在基礎飼料中添加0(對照組)、50、100和200 mg/kg表面活性素(由福建正源飼料有限公司提供，有效含量為80%)的試驗飼料。每組4個重復，每個重復15尾魚。試驗期為7周。

1.2 基礎飼料組成與飼養(yǎng)管理

基礎飼料配方根據(jù)SC/T 1025—2004《羅非魚配合飼料》配制，其組成及營養(yǎng)水平見表1。

飼料原料粉碎過60目篩，各原料混合均勻后，分別添加0、50、100和200 mg/kg表面活性素，用雙螺桿制粒機(CD4×1TS型，華南理工大學科技實業(yè)總廠)常溫加工成直徑為2.5 mm的顆粒飼料，自然風干后置于已編號的自封袋中，于-20 ℃冷藏保存?zhèn)溆谩?/p>

試驗魚養(yǎng)殖于室內具有循環(huán)水的水族箱(75 cm×55 cm×60 cm，加水量約為120 L)中。每天08:30和17:30定時投喂，達表觀飽食，記錄每箱飼料投喂量。投喂0.5 h后吸出殘料和糞便，并記錄殘餌量。試驗用水為曝氣自來水，每天換水2次，每次換水量約30%。光照為自然光源，增氧機24 h持續(xù)增氧。試驗期間維持水溫(27±2) ℃，pH 7.3±0.2，溶氧濃度高于6.0 mg/L，氨氮濃度低于0.2 mg/L。

表1 基礎飼料組成及營養(yǎng)水平(風干基礎)

1)維生素預混料為每千克飼料提供Vitamin premix provided the following per kg of the diet：VA 25 000 IU，VD33 500 IU，VE 20 mg，VK 5 mg，VB12.5 mg，VB22.5 mg，VB31.0 mg，VB60.2 mg，生物素 biotin 0.03 mg，葉酸 folic acid 0.75 mg，VB120.05 mg，VC 5 mg，泛酸鈣 calcium pantothenate 10 mg，肌醇 inositol 100 mg。

2)礦物質預混料為每千克飼料提供Mineral premix provided the following per kg of the diet：NaCl 50 mg，MgSO4·7H2O 25 mg，NaH2PO4·2H2O 25 mg，KH2PO432 mg，Ca(H2PO4)2·H2O 20 mg，F(xiàn)eSO4250 mg，Ca(C3H5O3)235 mg，ZnSO4·7H2O 3.5 mg，MnSO4·4H2O 16 mg，CuSO4·5H2O 3 mg，CoCl2·6H2O 5 mg，KIO30.3 mg。

1.3 樣品采集與組織勻漿液的制備

飼養(yǎng)試驗結束后，試驗魚禁食24 h，稱量每個水族箱中全部試驗魚總重，隨機取規(guī)格相近6尾魚，用60 mg/L丁香酚進行麻醉處理，測量體重，尾靜脈取血，4 ℃靜置30 min后離心(3 000 r/min,10 min)取血清，保存于-80 ℃冰箱，待測血清生化指標。采血后的試驗魚解剖，分離出肝胰臟和腸道，保存于-80 ℃冰箱，待測消化酶、脂肪代謝關鍵酶的水平或活性。

組織勻漿液制備時，將冷凍于-80 ℃的吉富羅非魚肝胰臟和腸道組織取出，先放入4 ℃冰箱中解凍，然后在冰浴的0.86%生理鹽水中漂洗，去除血液，濾紙拭干，稱重，按組織重(g)與0.86%生理鹽水體積(mL)比(m/v)=1∶9在冰浴條件下制成10%的組織勻漿液(勻漿時間10 s/次，間隙20 s，連續(xù)5～7次)，再將10%的組織勻漿液在4 ℃條件下以3 000 r/min離心10 min，取上清液分裝到1.5 mL離心管中于-20 ℃冰箱保存待測。

1.4 測定指標與方法

1.4.1 生長性能指標

根據(jù)記錄的試驗數(shù)據(jù)，按下列公式計算各生長性能指標：

增重率(weight gain rate,WGR,%)=

100×(Wt-W0)/W0；

特定生長率(specific growth rate,SGR,%/d)=

100×(lnWt-lnW0)/t；

飼料系數(shù)(feed conversion ratio,FCR)=

FC/(Wt-W0)；

攝食率(feeding rate,FR,%)=100×FC/

[(W0+Wt)/2]/t；

日攝食量(daily feed intake,DFI,g/尾)=

FC/t；

存活率(survival rate,SR,%)=100×

Nf/Ni。

式中：W0為每尾魚平均初始體重(initial body weight,IBW)，g/尾；Wt為每尾魚平均終末體重(final body weight,FBW)，g/尾；t為飼喂天數(shù)，d；FC為平均每尾魚攝食飼料總量(feed consumption)(風干樣重)，g；Ni為初始魚尾數(shù)，尾；Nf為終末魚尾數(shù)，尾。

1.4.2 腸道消化酶活性

腸道脂肪酶和淀粉酶活性采用南京建成生物工程研究所提供的試劑盒進行測定。腸道蛋白酶活性的測定采用福林-酚試劑法，以磷酸二氫鈉-磷酸氫二鈉緩沖液調節(jié)pH，680 nm處測吸光度值。

1.4.3 血清生化指標

血清尿素氮(urea nitrogen,UN)、白蛋白(albnmin,ALB)、甘油三酯(triglyceride,TG)、總膽固醇(total cholesterol,TC)、游離脂肪酸(free fatty acid,FFA)水平分別用Fearon法、溴甲酚綠法、酶偶聯(lián)比色法、甘油磷酸氧化酶-過氧化物酶(GPO-PAP)法、銅試劑法測定；酸性磷酸酶(acid phosphatase,ACP)和堿性磷酸酶(alkaline phosphatase,AKP)活性均采用磷酸苯二鈉比色法測定；溶菌酶(lysozyme,LZM)活性采用比濁法，利用南京建成生物工程研究所提供的試劑盒測定。

1.4.4 肝胰臟脂肪代謝關鍵酶的水平或活性

肝胰臟脂肪酸合成酶(fatty acid synthetase,FAS)和乙酰輔酶A羧化酶(acetyl CoA carboxylase,ACC)水平采用雙抗體酶聯(lián)免疫分析法測定；肝脂酶(hepatic lipase,HL)和脂蛋白脂酶(lipoprotein lipase,LPL)活性均采用銅試劑法測定，試劑盒由南京建成生物工程研究所提供，具體操作步驟見說明書。

1.5 數(shù)據(jù)統(tǒng)計與分析

所有試驗數(shù)據(jù)以平均值±標準差(mean±SD)表示。原始數(shù)據(jù)用Excel 2010整理后，采用SPSS 19.0進行單因素方差分析(one-way ANOVA)，若組間存在顯著差異，則采用Duncan氏法進行多重比較，P<0.05表示差異顯著。

2 結 果

2.1 飼料中添加表面活性素對吉富羅非魚生長性能的影響

由表2可知，各添加組的FBW、WGR和SGR均顯著高于對照組(P<0.05)，同時50 mg/kg添加組顯著高于200 mg/kg添加組(P<0.05)。各添加組的FCR均顯著低于對照組(P<0.05)，各添加組之間無顯著差異(P>0.05)。50 mg/kg添加組的DFI顯著高于對照組和200 mg/kg添加組(P<0.05)，與100 mg/kg添加組無顯著差異(P>0.05)。各組間FR和SR無顯著差異(P>0.05)。

表2 飼料中添加表面活性素對吉富羅非魚生長性能的影響

同行數(shù)據(jù)肩標不同小寫字母表示差異顯著(P<0.05)。下表同。

In the same row, values with different small letter superscripts mean significant difference (P<0.05). The same as below.

2.2 飼料中添加表面活性素對吉富羅非魚腸道消化酶活性的影響

由表3可知，飼料中添加表面活性素對吉富羅非魚腸道淀粉酶和蛋白酶活性無顯著影響(P>0.05)。隨著表面活性素添加水平的升高，吉富羅非魚腸道脂肪酶活性呈現(xiàn)上升趨勢，除50 mg/kg添加組外，其余各添加組均顯著高于對照組(P<0.05)，但各添加組之間無顯著差異(P>0.05)。

表3 飼料中添加表面活性素對吉富羅非魚腸道消化酶活性的影響

2.3 飼料中添加表面活性素對吉富羅非魚血清生化指標的影響

由表4可知，50 mg/kg添加組血清UN水平顯著低于對照組(P<0.05)，其他添加組與對照組相比無顯著差異(P>0.05)。各添加組血清ALB水平均顯著高于對照組(P<0.05)，但各添加組之間差異不顯著(P>0.05)。除200 mg/kg添加組外，其他添加組血清TC水平顯著低于對照組(P<0.05)。各添加組血清TG水平均顯著低于對照組(P<0.05)，但各添加組之間差異不顯著(P>0.05)。各添加組血清FFA水平顯著高于對照組(P<0.05)，但各添加組之間無顯著差異(P>0.05)。各添加組血清ACP和AKP活性與對照組均無顯著差異(P>0.05)。各添加組血清LZM活性均顯著高于對照組(P<0.05)，以50 mg/kg添加組血清LZM活性最高。

2.4 飼料中添加表面活性素對吉富羅非魚肝胰臟脂肪代謝關鍵酶水平或活性的影響

由表5可知，各添加組肝胰臟FAS水平顯著低于對照組(P<0.05)，各添加組肝胰臟ACC水平與對照組無顯著差異(P>0.05)；各添加組肝胰臟HL和LPL活性顯著高于對照組(P<0.05)，各添加組間這2種酶活性無顯著差異(P>0.05)。

表4 飼料中添加表面活性素對吉富羅非魚血清生化指標的影響

表5 飼料中添加表面活性素對吉富羅非魚肝胰臟脂肪代謝關鍵酶水平或活性的影響

3 討 論

3.1 飼料中添加表面活性素對吉富羅非魚生長性能及消化酶活性的影響

本試驗中，吉富羅非魚飼料中添加50～200 mg/kg表面活性素均提高了FBW、WGR和SGR，降低了FCR，表明表面活性素具有促生長作用；其中50 mg/kg添加組的效果最佳。目前，關于表面活性素在水產(chǎn)飼料中應用的報道較少。研究表明，在吉富羅非魚飼料中添加12.5～50.0 mg/kg抗菌脂肽(即表面活性素)，以50.0 mg/kg添加組促生長效果最好[15]；在點帶石斑魚(Epinepheluscoioides)飼料中添加2%含表面活性素的黃豆粉可顯著提高其WGR[13]；添加100 mg/kg的NT-6抗菌脂肽(以表面活性素、芬薺素和伊枯草菌素為活性成分)可顯著提高凡納濱對蝦(Litopenaeusvannamei)的WGR和SGR[14]。此外，在AA肉雞飼糧中添加4 000 U/kg抗菌脂肽對肉雞的生長發(fā)育和免疫機能具有較好的調節(jié)和促進作用[11]；在斷奶仔豬飼糧中添加4 000 U/kg抗菌脂肽能夠提高其生長性能，減少斷奶應激造成的腹瀉，抑制腸道有害微生物，對有益微生物也有一定的抑制作用，顯著影響血液激素水平和某些生化指標，能夠提高機體對脂類的轉化利用能力和蛋白質的沉積能力[12]。本試驗中表面活性素促生長的添加水平與前人報道存在較大差異，這可能是動物的種類、試驗條件、表面活性素有效含量等不同所致。

本研究中，飼料中添加表面活性素提高了吉富羅非魚腸道脂肪酶活性(50 mg/kg添加組除外)。這可能與飼料中添加表面活性素后，吉富羅非魚腸道絨毛高度和黏膜基層厚度顯著增加，隱窩深度變淺，小腸成熟吸收細胞的數(shù)量顯著增多有關[16]。小腸絨毛高度越高，隱窩深度越淺，即兩者比值變大時，其對營養(yǎng)物質的吸收能力逐漸增強[16-17]；腸道成熟細胞數(shù)量與腸道消化酶活性呈正相關[18]，腸道成熟細胞數(shù)量增加能提高消化酶活性，進而促進營養(yǎng)物質的消化[19]。

表面活性素是由一個手性序列為L-L-D-L-L-D-L的七肽和一個含13～15個碳原子的β-羥基脂肪酸構成的復合物，分子質量約為1 036 u[20]；其長脂肪酸鏈及肽鏈上的L-亮氨酸2、D-亮氨酸3、L-纈氨酸4、D-亮氨酸6、L-亮氨酸7構成了親油基團，環(huán)鏈骨架與L-谷氨酸1和L-天冬氨酸52個酸性氨基酸殘基構成親水基團[21]，少量表面活性素即可起到良好的乳化、起泡和增溶等效果[10]。因此，飼料中添加表面活性素可能發(fā)揮與飼用乳化劑類似的作用。此外，表面活性素還具有抗菌、抗病毒和抗氧化等生物活性，其不僅可以阻止引起飼料變質的致病菌和腐生菌的滋生，還可能抑制吉富羅非魚腸道中有害菌的繁殖，改善腸道健康狀況[16,22-23]，從而促進魚體生長。

然而，隨著表面活性素添加水平的增加，吉富羅非魚生長指標并未呈上升趨勢，200 mg/kg添加組吉富羅非魚的FBW、WGR和SGR顯著低于50 mg/kg添加組。研究表明，表面活性素的多種生物學活性以表面活性作用為基礎。當表面活性素發(fā)揮表面活性作用時，其乳化效果與用量直接相關，在臨界膠束濃度(critical micelle concentration,CMC)以下時，其乳化能力隨著用量的增加而增加；但超過CMC后，乳化性能趨于穩(wěn)定，即使加大用量，乳化效果也不會有太大變化[24]。因此，本試驗中添加200 mg/kg表面活性素可能已超過其CMC，乳化作用不再顯著增強。此外，過量的外源乳化劑可能對機體自身膽汁酸分泌產(chǎn)生抑制作用，導致機體生長受到影響[25]。

3.2 飼料中添加表面活性素對吉富羅非魚血清生化指標的影響

魚類血清生化指標的變化能夠動態(tài)反映魚體的營養(yǎng)物質代謝和生理健康狀況。當魚類健康狀況良好時，體內蛋白質代謝正常，血清UN處于較低水平[26-27]。本研究結果顯示，飼料中添加表面活性素顯著降低了吉富羅非魚血清中UN水平，表明其有利于改善蛋白質的代謝，提高蛋白質沉積率[28]。ALB是魚類血清中重要的運輸?shù)鞍?，能維持魚類血液中膠體滲透壓和免疫球蛋白水平穩(wěn)定。當肝胰臟功能受損時，血清中ALB比例會下降[29]。本試驗中，飼料中添加表面活性素提高了吉富羅非魚血清中ALB水平，表明表面活性素可以維持魚類肝胰臟健康。

血液中的TG、TC、FFA和磷脂等脂類物質總稱為血脂，其水平的變化常用來反映機體脂類代謝狀況和健康水平[30]。TG是魚類重要的能源物質，主要參與體內能量的產(chǎn)生與儲存，血清中TG水平較高表明肝胰臟中脂肪的分解代謝較低[31]。TC是合成膽汁酸、維生素D和甾體激素的主要原料，并參與形成細胞膜[32]。血清中FFA水平可衡量機體脂肪動員的程度[33]。本研究中，飼料中添加表面活性素后吉富羅非魚血清中TG、TC水平顯著降低，F(xiàn)FA水平顯著升高，表明添加表面活性素可促進機體對脂類物質的轉化和利用，加速TC分解代謝，抑制TC在血液中的沉積，提高TG的轉運和代謝，具有明顯的降血脂作用。

魚類體內的特異性免疫機制不完善，維持機體健康主要依賴于非特異性免疫機制[34]。血清中ACP、AKP和LZM活性等是常用來評價魚類免疫功能狀況的非特異性免疫指標。本試驗中，飼料中添加表面活性素后吉富羅非魚血清中AKP活性有增強的趨勢，說明表面活性素一定程度地提高了機體的免疫力[35]。LZM是一種具有溶菌活性的堿性蛋白，具有抵抗病原微生物感染的作用，是魚類生理防御水平的重要指標之一[36]。本研究中，飼料中添加表面活性素提高了吉富羅非魚血清中LZM活性，表明非特異性免疫功能增強?？梢?，飼料中添加表面活性素可提高吉富羅非魚的非特異性免疫功能，這可能與表面活性素具有抗菌、抗病毒活性有關[15-16]。

3.3 飼料中添加表面活性素對吉富羅非魚肝胰臟脂肪代謝關鍵酶水平或活性的影響

魚類的脂肪代謝主要在肝胰臟中完成，包括合成代謝、體內的轉運以及分解代謝等過程。肝胰臟中相關代謝酶的水平或活性可以反映出魚類體內脂肪的代謝狀況[37]。FAS是催化乙酰輔酶A酶促系列反應合成棕櫚酸的關鍵酶，ACC是催化乙酰輔酶A形成丙二酰輔酶A反應最關鍵的酶，兩者在脂肪酸合成過程中起著重要作用，控制著體內脂肪合成的強弱，從而影響機體脂肪沉積[38]。飼料中添加表面活性素后，吉富羅非魚肝胰臟FAS水平顯著降低，表明脂肪的合成代謝受到抑制，但是對ACC水平無顯著影響。HL和LPL是魚類肝臟中參與脂肪降解的2種關鍵酶。HL作為配體，還可促進低密度脂蛋白和乳糜微粒殘粒進入肝細胞，參與高密度脂蛋白膽固醇的逆轉運和高密度脂蛋白殘粒的分解[37]。LPL是一種糖蛋白，存在于多種細胞和組織中，主要催化血漿中乳糜微粒和極低密度脂蛋白中的TG分解[39]，產(chǎn)生甘油并釋放出FFA，從而控制TG在各組織的量[40]。本研究中，飼料中添加表面活性素后吉富羅非魚肝胰臟HL和HPL活性顯著升高，表明脂肪分解代謝增強。這可能與表面活性素促進載脂蛋白表達激活以及肝細胞中HL合成有關[10,41]。

4 結 論

飼料中添加表面活性素可提高吉富羅非魚腸道脂肪酶活性、改善血清生化指標、調節(jié)脂肪代謝酶水平或活性，進而促進吉富羅非魚生長。本試驗條件下，建議吉富羅非魚飼料中表面活性素添加水平為50 mg/kg。

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Author, ZHAI Shaowei, associate professor, E-mail: shaoweizhai@163.com

(責任編輯 菅景穎)

Effects of Surfactin Supplementation on Growth Performance,Serum Biochemical Indexes and Lipid Metabolism of Genetically Improved Farmed Tilapia (Oreochromisniloticus)

ZHAI Shaowei LI Jian SUN Xiuwen

(FisheriesCollegeofJimeiUniveristy,Xiamen361021,China)

A 7-week feeding trial was conducted to evaluate the effects of surfactin supplementation on growth performance, serum biochemical indexes and lipid metabolism of genetically improved farmed tilapia (GIFT,Oreochromisniloticus). Two hundred and forty GIFT with the average body weight of (12.0±0.1) g were randomly divided into four groups with four replicates in each group and 15 fish in each replicate. The fish of four groups were fed experimental diets supplemented with 0 (control group), 50, 100 and 200 mg/kg surfactin, respectively. Results showed as follows: the final body weight, weight gain rate and specific growth rate were significantly increased by surfactin supplementation (P<0.05), and final body weight, weight gain rate and specific growth rate of 50 mg/kg supplementation group were significantly higher than those of 200 mg/kg supplementation group (P<0.05); the feed conversion ratio was significantly decreased by surfactin supplementation (P<0.05). Feeding rate and survival rate of all groups were similar (P>0.05). The lipase activity (except the 50 mg/kg supplementation group) in intestinal tract was significantly increased by surfactin supplementation (P<0.05), but the activities of amylase and protease were not significantly different among all groups (P>0.05). The serum urea nitrogen level was decreased by surfactin supplementation, and the significant difference was found between 50 mg/kg supplementation group and control group (P<0.05). The levels of serum albnmin and free fatty acid of supplementation groups were significantly higher than those of control group (P<0.05). The levels of serum total cholesterol (except the 200 mg/kg supplementation group) and triglyceride of supplementation groups were significantly lower than those of control group (P<0.05). The activities of serum acid phosphatase and alkaline phosphatase were not significantly different among all groups (P>0.05). The serum lysozyme activity of surfactin supplementation groups were significantly higher than that of control group (P<0.05), and the lysozyme activity of 50 mg/kg supplementation group was the highest among all groups. Compared with control group, the fatty acid synthetase level in hepatopancreas of supplementation groups were significantly decreased (P<0.05), while the acetyl CoA carboxylase level in hepatopancreas was not affected by surfactin supplementation (P>0.05). The activities of hepatic lipase and lipoprotein lipase in hepatopancreas were significantly increased by surfactin supplementation (P<0.05), but no significant differences of those two enzymes were found among all supplementation groups (P>0.05). In conclusion, the recommended dietary surfactin supplementation level is 50 mg/kg, which can increase the intestinal lipase activity, improve the serum biochemical indexes and regulate the enzyme levels/activities of lipid metabolism, and then improve the growth of GIFT under present experimental condition.[ChineseJournalofAnimalNutrition, 2015, 27(12)：3959-3967]

surfactin; genetically improved farmed tilapia; growth performance; lipid metabolism

10.3969/j.issn.1006-267x.2015.12.038

2015-06-04

科技部國際科技合作與交流專項“海洋生物表面活性素應用于水產(chǎn)動物飼料的研究”(2014DFT30150)

翟少偉(1973—)，男，河北晉州人，副教授，碩士生導師，博士，研究方向為動物營養(yǎng)與飼料資源開發(fā)。E-mail: shaoweizhai@163.com

S963

A

1006-267X(2015)12-3959-09