郭 靜 姚丹丹 楊宏波 霍永久 趙國琦

(揚(yáng)州大學(xué)動(dòng)物科學(xué)與技術(shù)學(xué)院，揚(yáng)州225009)

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飼糧精粗比對(duì)犢牛腸道小肽轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白mRNA表達(dá)的影響

郭 靜 姚丹丹 楊宏波 霍永久 趙國琦*

(揚(yáng)州大學(xué)動(dòng)物科學(xué)與技術(shù)學(xué)院，揚(yáng)州225009)

本試驗(yàn)旨在研究不同精粗比顆粒料對(duì)犢牛腸道黏膜小肽轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白PepT1、PepT2、PHT1和PHT2 mRNA表達(dá)的影響。選擇日齡、體重相近的中國荷斯坦公犢牛6頭，分為2個(gè)處理，每個(gè)處理3頭，各處理精粗比分別為75∶25(Ⅰ)和65∶35(Ⅱ)，預(yù)試期14 d，正試期56 d。結(jié)果表明：1)十二指腸和空腸PepT1 mRNA表達(dá)豐度極顯著高于回腸、盲腸和結(jié)腸(P<0.01)；處理Ⅰ犢牛十二指腸和空腸PepT1 mRNA表達(dá)豐度極顯著高于處理Ⅱ(P<0.01)；2)與PepT1 mRNA相比，PepT2 mRNA在犢牛腸道中表達(dá)豐度較低；處理Ⅰ十二指腸和結(jié)腸PepT2 mRNA表達(dá)豐度極顯著高于處理Ⅱ(P<0.01)；3)處理Ⅰ盲腸PHT1 mRNA表達(dá)豐度極顯著低于處理Ⅱ(P<0.01)，處理Ⅰ犢?；啬c和結(jié)腸PHT1 mRNA表達(dá)豐度顯著高于處理Ⅱ(P<0.05)；4)處理Ⅰ犢牛盲腸PHT2 mRNA表達(dá)豐度極顯著低于處理Ⅱ(P<0.01)，處理Ⅰ犢牛十二指腸和結(jié)腸PHT2 mRNA表達(dá)豐度極顯著高于處理Ⅱ(P<0.01)。以上結(jié)果說明，與精粗比為65∶35的飼糧相比，精粗比為75∶25的飼糧更能夠促進(jìn)犢牛腸道中PepT1、PepT2、PHT1和PHT2 mRNA的表達(dá)。

PepT1；PepT2；PHT1；PHT2；小肽；小肽轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白；腸道；犢牛

傳統(tǒng)代謝模型認(rèn)為蛋白質(zhì)須被消化成游離氨基酸后方可吸收利用，而國內(nèi)外試驗(yàn)研究表明，小肽是腸道中蛋白質(zhì)分解的主要產(chǎn)物，且小肽比氨基酸更易被機(jī)體吸收。因小肽種類繁多，較難檢測(cè)，轉(zhuǎn)運(yùn)小肽蛋白研究為小肽營養(yǎng)研究提供了新思路。且有研究表明，消化過程中形成寡肽的數(shù)量和比例與飼糧蛋白質(zhì)品質(zhì)有關(guān)。隨著分子克隆技術(shù)的出現(xiàn)，小肽轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白的功能和結(jié)構(gòu)逐漸被人們發(fā)現(xiàn)。研究表明，質(zhì)子依賴的寡肽轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白(proton-dependent oligopeptide transporters，POTs)利用質(zhì)子的動(dòng)力介導(dǎo)一系列短鏈肽和擬肽類物質(zhì)的細(xì)胞轉(zhuǎn)運(yùn)。目前POTs家族在哺乳動(dòng)物中已確定出4個(gè)成員，分別是PepT1、PepT2、PHT1和PHT2[1-2]。近年來，小肽的營養(yǎng)學(xué)價(jià)值受到人們的不斷關(guān)注，小肽轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白的研究也成為了現(xiàn)在的研究熱點(diǎn)。而腸道是蛋白質(zhì)消化吸收的主要場(chǎng)所，蛋白質(zhì)經(jīng)胃和小腸內(nèi)蛋白酶和肽酶作用，降解為游離氨基酸和寡肽(二肽和三肽)，然后分別由氨基酸轉(zhuǎn)運(yùn)載體蛋白以及寡肽轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白吸收并轉(zhuǎn)運(yùn)進(jìn)入體內(nèi)。Aguerre等[3]用粗蛋白質(zhì)含量為16.2%，而精粗比不同的飼糧飼喂奶牛，發(fā)現(xiàn)隨著飼糧中粗料水平的增加，乳蛋白率呈線性下降。目前，已知屬于POTs家族的轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白包括PepT1、PepT2、PHT1和PHT2等[1]，但鮮見PepT1和PepT2在犢牛腸道小肽營養(yǎng)吸收的研究。本試驗(yàn)旨在研究不同精粗比飼糧對(duì)犢牛各腸段PepT1、PepT2、PHT1和PHT2 mRNA表達(dá)的影響，并為進(jìn)一步的研究提供理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 試驗(yàn)動(dòng)物及飼糧

試驗(yàn)于2014年3月至2014年5月在揚(yáng)州大學(xué)實(shí)驗(yàn)農(nóng)牧場(chǎng)進(jìn)行。選擇6頭(104±2)日齡、平均體重為(121.25±4.12) kg的中國荷斯坦斷奶公犢牛。根據(jù)NRC(2001)營養(yǎng)需要配制各處理犢牛顆粒料。保證各處理顆粒料營養(yǎng)水平一致的前提下，通過調(diào)整精料中的玉米、豆粕、DDGS、麥麩和粗料的苜蓿、小黑麥草的含量來配制不同精粗比的顆粒料。處理Ⅰ和處理Ⅱ分別飼喂精粗比為75∶25和65∶35的顆粒料。粗料按照苜蓿和小黑麥草3∶1組成。所有原料經(jīng)粉碎后在揚(yáng)州大學(xué)農(nóng)牧場(chǎng)采用20型顆粒料機(jī)組制成。顆粒料組成及營養(yǎng)水平見表1，營養(yǎng)水平檢測(cè)方法參照《飼料分析及飼料質(zhì)量檢測(cè)技術(shù)》[4]。

表1 顆粒料組成及營養(yǎng)水平(干物質(zhì)基礎(chǔ))

1)預(yù)混料為每千克飼糧提供 Premix provided the following per kilogram of diets:Fe 90 mg,Cu 12.5 mg,Mn 60 mg,Zn 100 mg,I 1.5 mg,Se 0.3 mg,Co 1.0 mg,VA 15 000 IU,VD 5 000 IU,VE 50 mg。

2)營養(yǎng)水平除泌乳凈能、鈣、磷、賴氨酸和蛋氨酸為計(jì)算值外均為實(shí)測(cè)值。Nutrient levels were measured values except that NEL, Ca, P, Lys and Met were calculated values.

1.2 試驗(yàn)設(shè)計(jì)與飼養(yǎng)管理

按日齡、體重相近，遺傳基礎(chǔ)相似的原則，試驗(yàn)犢牛隨機(jī)分為2個(gè)處理，每個(gè)處理3頭。顆粒料每天于08:30、14:30、20:30飼喂3次，預(yù)試期14 d，正試期 56 d。根據(jù)3～6月齡犢牛采食量需要，每周調(diào)整1次飼喂量，并保證每個(gè)處理犢牛的干物質(zhì)采食量基本一致。試驗(yàn)期每個(gè)處理犢牛分欄飼養(yǎng)，自由飲水，保證每天有6～7 h戶外活動(dòng)時(shí)間，每日清晨犢牛飼喂后打掃圈舍，且每周對(duì)牛舍至少2次消毒。

試驗(yàn)結(jié)束后，宰前禁食12 h。沿縱向剖開腹腔，分離腸道，采集十二指腸、空腸、回腸、盲腸、結(jié)腸的黏膜層，用少許4 ℃預(yù)冷的滅菌生理鹽水沖洗，分別分裝入1.5 mL的離心管中，至液氮速凍，-80 ℃冷凍保存，以備逐一測(cè)定。

1.3 試驗(yàn)方法

1.3.1 腸道各段組織總RNA的提取及檢測(cè)

應(yīng)用Grinder公司高通量組織研磨儀對(duì)組織進(jìn)行勻漿，按照天根生化科技有限公司的RNA提取試劑盒提取。One Drop測(cè)定總RNA的濃度和純度，根據(jù)OD260 nm/OD280 nm來評(píng)價(jià)RNA純度。再進(jìn)行1%甲醛變性瓊脂糖凝膠電泳，根據(jù)28S rRNA、18S rRNA、5S rRNA的亮度評(píng)價(jià)RNA是否有降解。

1.3.2 cDNA的合成

采用TaKaRa的反轉(zhuǎn)錄試劑盒。試驗(yàn)于冰上進(jìn)行，取PrimeScriptTMRT Master Mix 2 μL，dH2O和RNA組成10 μL體系，再在Eppendorf公司的PCR儀上進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄。反應(yīng)條件：37 ℃擴(kuò)增15 min，85 ℃變性5 s，4 ℃保存，長期保存于-20 ℃。

1.3.3 引物設(shè)計(jì)與實(shí)時(shí)熒光定量PCR條件

PCR引物采用Primer軟件設(shè)計(jì)，由Invitrogen公司合成，引物序列及參數(shù)見表2，將PepT1、PepT2、PHT1、PHT2引物濃度分別稀釋成10 μmol/L。以甘油醛-3-磷酸脫氫酶(GAPDH)作為內(nèi)標(biāo)，對(duì)PepT1、PepT2、PHT1、PHT2 mRNA進(jìn)行相對(duì)定量分析。

表2 引物設(shè)計(jì)

1.4 數(shù)據(jù)處理與統(tǒng)計(jì)分析

各樣品引物PCR擴(kuò)增的Ct由各自的擴(kuò)增曲線分別得出，并根據(jù)公式2-△Ct數(shù)學(xué)推導(dǎo)得出目的基因的量，在該公式中Ct是熱循環(huán)儀檢測(cè)到反應(yīng)體系中熒光信號(hào)的強(qiáng)度值，△Ct=Ct目的基因-Ct管家基因，計(jì)算出樣品中PepT1、PepT2、PHT1、PHT2基因與管家基因GAPDH相對(duì)表達(dá)豐度。應(yīng)用GraphPad Prism 5.0軟件進(jìn)行單因素方差分析(one-way ANOVA)，用Tukey’s法進(jìn)行多重比較，最后結(jié)果經(jīng)均一化處理后，取平均值和標(biāo)準(zhǔn)誤作柱狀分布圖。

2 結(jié) 果

2.1 總RNA質(zhì)量及反轉(zhuǎn)錄效果

總RNA的OD260 nm/OD280 nm在1.8～2.0之間。用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)，從圖1可知，未降解的RNA樣品可見到28S、18S帶均很清晰、完整，且其亮度比基本符合2∶1，表明所提取的RNA純度較高，質(zhì)量可靠。

圖1 總RNA凝膠電泳圖

2.2 GAPDH、PepT1、PepT2、PHT1和PHT2的實(shí)時(shí)熒光定量PCR電泳圖

GAPDH、PepT1、PepT2、PHT1和PHT2基因?qū)崟r(shí)熒光定量PCR擴(kuò)增產(chǎn)物的退火溫度(Tm)分別為87.16、86.42、84.67、88.90和86.42 ℃。GAPDH、PepT1、PepT2、PHT1和PHT2基因?qū)崟r(shí)熒光定量PCR擴(kuò)增產(chǎn)物的電泳結(jié)果如圖2所示，根據(jù)表1給出的產(chǎn)物大小判定相應(yīng)的條帶是目的基因擴(kuò)增產(chǎn)物。

M：分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn) Molecular weight marker；1：甘油醛-3-磷酸脫氫酶GAPDH；2：PepT1；3：PepT2；4：PHT1；5：PHT2。

圖2GAPDH、PepT1、PepT2、PHT1和PHT2 mRNA實(shí)時(shí)熒光定量PCR電泳圖

Fig.2 The electrophoretogram ofGAPDH,PepT1,PepT2,PHT1 andPHT2 mRNA by real-time fluorescence quantitative PCR

2.3 犢牛腸道各段組織中PepT1和PepT2 mRNA的表達(dá)

由圖3可知，十二指腸和空腸PepT1 mRNA表達(dá)豐度分別極顯著高于回腸、盲腸和結(jié)腸(P<0.01)，結(jié)腸PepT1 mRNA表達(dá)豐度顯著高于盲腸(P<0.05)。

2.4 犢牛腸道各段組織中PepT1、PepT2、PHT1、PHT2 mRNA的表達(dá)

由圖4-A可知，處理Ⅰ犢牛十二指腸和空腸PepT1 mRNA表達(dá)豐度極顯著高于處理Ⅱ(P<0.01)，結(jié)腸PepT1 mRNA表達(dá)豐度顯著高于處理Ⅱ(P<0.05)。由圖4-B可知，處理Ⅰ犢牛十二指腸和結(jié)腸PepT2 mRNA表達(dá)豐度極顯著高于處理Ⅱ(P<0.01)。由圖4-C可知，處理Ⅰ犢牛盲腸PHT1 mRNA表達(dá)豐度極顯著低于處理Ⅱ(P<0.01)，回腸和結(jié)腸PHT1 mRNA表達(dá)豐度顯著高于處理Ⅱ(P<0.05)。由圖4-D可知，處理Ⅰ犢牛十二指腸、結(jié)腸PHT2 mRNA表達(dá)豐度極顯著高于處理Ⅱ(P<0.01)，盲腸PHT2 mRNA表達(dá)豐度極顯著低于處理Ⅱ(P<0.01)。

3 討 論

3.1 PepT1和PepT2 mRNA在犢牛腸道中的表達(dá)

前人在單胃動(dòng)物[5-7]和反芻動(dòng)物[8-9]的研究中，均發(fā)現(xiàn)PepT1 mRNA主要在小腸表達(dá)。Chen等[7]和Pan等[8]Northern Blot分析表明，綿羊和泌乳奶牛的PepT1 mRNA在空腸和回腸表達(dá)豐度最高，十二指腸較低，盲腸和結(jié)腸未檢測(cè)到。隨著檢測(cè)技術(shù)的更新，應(yīng)用實(shí)時(shí)熒光定量PCR方法檢測(cè)牛消化道各段Ⅰ型肽載體的表達(dá)，李燕[10]發(fā)現(xiàn)牛各腸段PepT1 mRNA表達(dá)豐度由高到低的順序依次為回腸、空腸、十二指腸、盲腸和結(jié)腸，劉桂梅[11]的結(jié)果由高到低的順序依次為空腸、回腸、盲腸、十二指腸和結(jié)腸。本試驗(yàn)結(jié)果表明，PepT1 mRNA主要在犢牛十二指腸和空腸表達(dá)，與前人反芻動(dòng)物的檢測(cè)結(jié)果略有不同。出現(xiàn)這樣的差異，可能跟動(dòng)物的日齡、品種、飼糧組成等有關(guān)，具體原因還有待進(jìn)一步研究。且Xie等[12]認(rèn)為奶牛十二指腸是小肽吸收的主要部位，與本試驗(yàn)PepT1 mRNA表達(dá)結(jié)果一致。本試驗(yàn)結(jié)果表明，精粗比為75∶25比65∶35飼糧更能促進(jìn)PepT1 mRNA的表達(dá)，可能是因?yàn)轱暭Z中蛋白質(zhì)來源不同。

數(shù)據(jù)柱形相同或無字母標(biāo)注表示無顯著差異(P>0.05)，不同小寫字母表示差異顯著(P<0.05)，不同大寫字母表示差異極顯著(P<0.01)。

Values with the same or no letters mean no significant difference (P>0.05),while with different small letters mean significant difference(P<0.05), and with different capital letters mean significant difference (P<0.01).

圖3PepT1和PepT2 mRNA在犢牛腸道中的差異性表達(dá)

Fig.3 Differential expression ofPepT1 andPepT2 mRNA in intestine of calves

*表示差異顯著(P<0.05)，**表示差異極顯著(P<0.01)。

* mean significant difference (P<0.05), ** mean extremely significant difference (P<0.01).

圖4PepT1、PepT2、PHT1和PHT2 mRNA在犢牛腸道中的差異性表達(dá)

Fig.4 Differential expression ofPepT1,PepT2,PHT1 andPHT2 mRNA in intestine of calves

PepT2是高親和力/低容量(high affinity/low capacity)的肽轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白[13]。在大鼠、兔子、牛等動(dòng)物中檢測(cè)到腎臟、乳腺、大腦、肺、胰腺、巨噬細(xì)胞[14]等組織和細(xì)胞均有表達(dá)[15-16]。Zhang等[17]Northern Blot分析表明猴子的腸道中PepT2 mRNA不表達(dá)，實(shí)時(shí)熒光定量PCR分析表明人的腸道中少量表達(dá)，本試驗(yàn)中，PepT2 mRNA在腸道中的表達(dá)豐度很低，與Zhang等[17]的研究結(jié)果一致。本試驗(yàn)中，PepT2 mRNA在腸道中表達(dá)豐度雖低，但精粗比為75∶25飼糧處理十二指腸和結(jié)腸PepT2 mRNA表達(dá)豐度極顯著高于精粗比為65∶35飼糧處理，與對(duì)應(yīng)的PepT1 mRNA表達(dá)一致，PepT1和PepT2之間是否存在一定的相互作用關(guān)系還有待進(jìn)一步研究。

3.2 PHT1和PHT2 mRNA在犢牛腸道中的表達(dá)

PHT1又叫肽/組氨酸轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白，對(duì)組氨酸和肌肽表現(xiàn)出高親和力[18-19]。PHT1主要在大鼠腦和視網(wǎng)膜中表達(dá)，腸道中不表達(dá)[20]，而在孵化后的雞中各組織廣泛表達(dá)。Bhardwaj等[21]免疫組織化學(xué)分析表明PHT1在小腸的絨毛上皮表達(dá)。本試驗(yàn)中PHT1 mRNA在犢牛腸中廣泛表達(dá)，且表達(dá)豐度由高到低依次為盲腸、回腸、空腸、十二指腸、結(jié)腸，精粗比為75:25飼糧處理回腸、結(jié)腸中表達(dá)豐度顯著高于精粗比為65∶35飼糧處理，而盲腸中卻相反，出現(xiàn)這種情況可能是反芻動(dòng)物盲腸對(duì)粗纖維的消化率高的特點(diǎn)造成的[22]。

PHT2除識(shí)別二、三肽化合物為底物之外，還介導(dǎo)組氨酸的轉(zhuǎn)運(yùn)，但不介導(dǎo)甘氨酸的吸收[20]。目前關(guān)于PHT2的研究鮮少，已知大鼠中主要在淋巴系統(tǒng)表達(dá)。本試驗(yàn)中，PHT2 mRNA在犢牛腸道中廣泛表達(dá)，且表達(dá)豐度由高到低依次為盲腸、結(jié)腸、回腸、空腸、十二指腸，精粗比為75∶25飼糧處理十二指腸和結(jié)腸中的表達(dá)豐度顯著高于精粗比為65∶35飼糧處理，而盲腸中卻相反，出現(xiàn)這種情況可能也是反芻動(dòng)物盲腸對(duì)粗纖維消化率高的特點(diǎn)造成的[21]。PHT2是582個(gè)氨基酸編碼的蛋白質(zhì)，與PHT1具有49%的同一性。Shen等[20]報(bào)道鼠中PHT1、PHT2和PepT1、PepT2的同源性低于25%。POTs家族成員的結(jié)構(gòu)、功能、特異性、調(diào)節(jié)作用及各成員之間的相關(guān)性還有待進(jìn)一步闡明。

3.3 犢牛腸道POTs mRNA表達(dá)影響因素

研究報(bào)道，POTsmRNA的表達(dá)受動(dòng)物的日齡、品種、激素、飼糧組成等因素的影響。Gilbert等[23]給雛雞飼喂等量優(yōu)質(zhì)蛋白質(zhì)飼糧(大豆蛋白粉)，從第3～14天肉雞體內(nèi)PepT1 mRNA表達(dá)豐度呈不斷上升的趨勢(shì)，同時(shí)雛雞體重顯著增加，可見飼糧蛋白質(zhì)品質(zhì)是影響PepT1活性的重要因素。本試驗(yàn)中，精粗比為75∶25比65∶35飼糧更能促進(jìn)犢牛十二指腸、空腸、回腸和結(jié)腸POTsmRNA的表達(dá)，說明犢牛腸道POTsmRNA的表達(dá)受飼糧中蛋白質(zhì)來源的影響。而犢牛屠宰試驗(yàn)結(jié)果表明，精粗比為65∶35飼糧處理犢牛屠宰性能和內(nèi)臟器官發(fā)育均比精粗比為75∶25飼糧處理略高[24]，且精粗比為65∶35飼糧處理犢牛胃腸道生長發(fā)育較好[25]，說明犢牛腸道POTsmRNA的表達(dá)并不能反映動(dòng)物個(gè)體對(duì)蛋白質(zhì)的吸收利用效率，具體原因還有待進(jìn)一步研究。

4 結(jié) 論

①PepT1 mRNA主要在犢牛十二指腸和空腸表達(dá)，PepT2 mRNA在犢牛腸道中微弱表達(dá)。PHT1主要在犢牛盲腸、回腸、空腸、十二指腸表達(dá)，PHT2在犢牛十二指腸、盲腸和結(jié)腸表達(dá)，尤其是盲腸表達(dá)豐度最高。

② 精粗比為75∶25比65∶35飼糧更能促進(jìn)犢牛十二指腸、空腸、回腸和結(jié)腸POTsmRNA的表達(dá)，而十二指腸作為小肽吸收的主要部位，說明精粗比75∶25處理隨著腸道轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白質(zhì)分解產(chǎn)物POTs增加，蛋白質(zhì)更易被吸收。

③ 腸道POTsmRNA的表達(dá)受飼糧蛋白質(zhì)來源的影響，但其并不能反映動(dòng)物個(gè)體對(duì)蛋白質(zhì)的吸收利用效率。

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*Corresponding author, professor, E-mail: jszhaoguoqi@sohu.com

(責(zé)任編輯 王智航)

Effects of Dietary Concentrate to Forage Ratio on Intestinal Peptide Transporter mRNA Expressions of Calves

GUO Jing YAO Dandan YANG Hongbo HUO Yongjiu ZHAO Guoqi*

(CollegeofAnimalScienceandTechnology,YangzhouUniversity,Yangzhou225009，China)

This experiment was conducted to observe the effects of concentrate to forage ratio in pellet diet on the mRNA expressions of peptide transporters (PepT1,PepT2,PHT1 andPHT2) in intestinal mucosa of calves. Six Holstein bull calves with similar days of age and body weight were divided into 2 treatments with 3 calves per treatment. Calves were fed pellet diets with concentrate to forage ratio of 75∶25 (Ⅰ) and 65∶35(Ⅱ), respectively. The preliminary trial period was 14 d and the experimental period was 56 d. The results showed as follows: 1) the expression abundance ofPepT1 mRNA in duodenum and jejunum was significantly higher than that in ileum, cecum and colon (P<0.01), and duodenum and jejunum in treatment Ⅰ were significantly higher than those in treatment Ⅱ (P<0.01). 2) The expression abundance ofPepT2 mRNA intestine was little compared with that ofPepT1 mRNA. The expression abundance ofPepT2 mRNA in duodenum and colon in treatment Ⅰ was significantly higher than that in treatment Ⅱ (P<0.01). 3) The expression abundance ofPHT1 mRNA in cecum in treatment Ⅰ was significantly lower than that in treatment Ⅱ (P<0.01), and ileum and colon in treatment Ⅰ were significantly higher than those in treatment Ⅱ (P<0.05). 4) The expression abundance ofPHT2 mRNA in cecum in treatment Ⅰ was significantly lower than that in treatment Ⅱ (P<0.01), and duodenum and colon in treatment Ⅰ were significantly higher than those in treatment Ⅱ (P<0.01). The results show that compared with 65∶35, concentrate to forage ratio of 75∶25 can promote the expressions ofPepT1,PepT2,PHT1 andPHT2 mRNA.[ChineseJournalofAnimalNutrition, 2015, 27(12)：3951-3958]

PepT1;PepT2;PHT1;PHT2; peptide; peptide transporter; intestine; calve

10.3969/j.issn.1006-267x.2015.12.037

2015-06-17

國家自然科學(xué)基金(31572430)；國家“十二五”科技支撐計(jì)劃項(xiàng)目(2011BAD17B02)；江蘇省科技支撐項(xiàng)目(BE2013387)

郭 靜(1989—)，女，江蘇揚(yáng)州人，碩士研究生，研究方向?yàn)閯?dòng)物營養(yǎng)與飼料科學(xué)。E-mail: yzguojing@hotmail.com

*通信作者：趙國琦，教授，博士生導(dǎo)師，E-mail: jszhaoguoqi@sohu.com

S823

A

1006-267X(2015)12-3951-08