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WOX轉(zhuǎn)錄因子家族研究進(jìn)展

2015-04-08 06:51:52王俞程何瑞萍彭獻(xiàn)軍沈世華
草業(yè)科學(xué) 2015年5期
關(guān)鍵詞:分生組織突變體擬南芥

王俞程,何瑞萍,彭獻(xiàn)軍,沈世華

(1.北方資源植物重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室 中國(guó)科學(xué)院植物研究所,北京100093;2.中國(guó)科學(xué)院大學(xué),北京100049)

WUSCHEL-related homeobox(WOX)轉(zhuǎn)錄因子家族是植物特有的一類轉(zhuǎn)錄因子。他的同源異型結(jié)構(gòu)域(Ho meodomain,HD)由65個(gè)氨基酸殘基組成[1]。該家族基因在植物發(fā)育關(guān)鍵時(shí)期發(fā)揮重要作用,如胚的形成、干細(xì)胞穩(wěn)定性和器官的形成。這些功能的發(fā)揮與他們能夠促進(jìn)細(xì)胞分裂或阻止未成熟細(xì)胞的提前分化密不可分[2]。WUSCHEL(WUS)基因是WOX 家族中最早發(fā)現(xiàn)的基因,1996年Laux等[3]研究表明擬南芥(Ar abidopsis thaliana)wus突變體的莖尖分生組織(Shoot Apical Meristem,SA M)和花序分生組織(Floral Meristem,F(xiàn)M)異常,不斷產(chǎn)生有缺陷的莖尖分生組織,僅僅產(chǎn)生幾片葉后,芽原基停止生長(zhǎng),導(dǎo)致在莖上產(chǎn)生許多成簇狀的葉序混亂的葉片,花數(shù)目減少且花器官異常,該基因雖然不影響干細(xì)胞的發(fā)生,但對(duì)維持其功能穩(wěn)定性起重要作用。2004年,Haecher等[1]在全面研究擬南芥基因組后,發(fā)現(xiàn)了15個(gè)編碼與WUS結(jié)構(gòu)相似的蛋白的基因,并將他們命名為WOX 基因。

1 WOX結(jié)構(gòu)特點(diǎn)

WOX 轉(zhuǎn)錄因子家族是屬于 Ho meobox(HOX)超家族中的一員,在HOX 超家族中,典型的同源異型結(jié)構(gòu)域由60個(gè)氨基酸殘基組成,這60個(gè)氨基酸殘基序列折疊形成“螺旋-環(huán)-螺旋-轉(zhuǎn)角-螺旋(helix-loop-h(huán)elix-tur n-h(huán)elix)”的空間結(jié)構(gòu),其中由第2 個(gè)和第3 個(gè)螺旋組合形成的“螺旋-轉(zhuǎn)角-螺旋(helix-turn-h(huán)elix)”能夠與特定DNA序列結(jié)合[4]。這一結(jié)構(gòu)域在不同物種不同蛋白中都非常保守,說(shuō)明這個(gè)結(jié)構(gòu)對(duì)維持HD 功能完整性起重要的作用[5]。WOX蛋白家族的HD含有65個(gè)(WUS是66)氨基酸殘基,增加的5 個(gè)或6 個(gè)分別在第1個(gè)和第2個(gè)螺旋間多了1個(gè)或2個(gè)殘基,在第2個(gè)和第3個(gè)螺旋間多了4 個(gè)殘基[4]。HD 結(jié)構(gòu)域在WOX 蛋白家族不同成員中的位置變化較大。該家族分為WUS支(WUS Clade)、中間支(Inter mediate Clade)和遠(yuǎn)古支(Ancient Clade)3個(gè)支,各成員除含有HD 外,還含有其他功能元件,如WUS支的成員在HD 的羧基端一側(cè)含有一個(gè)WUS-box結(jié)構(gòu)域(一般形式是T-L-X-L-F-P-X-X,X 代表任意氨基酸),其他兩支也存在相似結(jié)構(gòu)域。另外,WUS 支成員WUS-box起始氨基酸為T-L,遠(yuǎn)古支和中間支起始氨基酸并不固定。WUS-box結(jié)構(gòu)域在調(diào)控莖尖干細(xì)胞群的穩(wěn)定性和花器官的發(fā)育過(guò)程中起重要的作用[6]。

一些WOX 蛋白在其HD 和WUS-box之間存在著一連串酸性氨基酸殘基,可能作為一個(gè)轉(zhuǎn)錄激活結(jié)構(gòu)域行使其功能;另外,在擬南芥中WUS、WOX5和WOX7在其羧基端末尾存在著一個(gè)與乙烯響應(yīng)因子(Ethylene Response Factor,ERF)相關(guān)的兩性抑制結(jié)構(gòu)域,具有轉(zhuǎn)錄抑制功能[7],除了這三個(gè)成員,其他WOX 蛋白也都含有形式不太嚴(yán)格的EAR結(jié)構(gòu)域其形式大多是[LVI]-X-[LVI]-X-[LVI],存在位置也并不限定在蛋白序列的羧基末端,有時(shí)候會(huì)與其他結(jié)構(gòu)域發(fā)生重疊,并且可能存在多個(gè)拷貝(如在WOX8中有3個(gè)拷貝)。遠(yuǎn)古支的WOX 蛋白(WOX10、WOX13和WOX14)在其羧基端存在著一個(gè)由60個(gè)左右的氨基酸組成的結(jié)構(gòu)域。Lian等[8]選擇7個(gè)物種的56個(gè)WOX 蛋白進(jìn)行比對(duì),發(fā)現(xiàn)除HD 以外還存在7個(gè)保守的結(jié)構(gòu)域,這些結(jié)構(gòu)域的功能未知,尚未有研究報(bào)導(dǎo),他們認(rèn)為這些未知的結(jié)構(gòu)域的形成可能與這些WOX 蛋白的功能分化相關(guān)。

2 WOX亞細(xì)胞定位與轉(zhuǎn)錄激活活性

盡管WOX 蛋白都是作為轉(zhuǎn)錄因子而發(fā)揮其作用,然而該家族所有的成員都無(wú)法預(yù)測(cè)到明顯的信號(hào)肽序列。已有的亞細(xì)胞定位試驗(yàn)表明,擬南芥的At-PRS(WOX3)[9]、At WOX4[10]、At WUS[11]、At WOX6[12]和At WOX11[13]定位在細(xì)胞核內(nèi),At WOX1同時(shí)定位在細(xì)胞核內(nèi)和細(xì)胞質(zhì)中[14]。水稻的Os WOX3,Os WOX9(DWT1)[15],Os WOX11[13],毛白楊(Populus tomentosa)的Pto WUSa、Pto WOX4a、Pto WOX5a、Pto WOX11/12a和Pto WOX13c都定位在核內(nèi)[16]。既然他們都能定位到核內(nèi),說(shuō)明他們的信號(hào)肽序列可能只是無(wú)法被現(xiàn)有的算法所預(yù)測(cè)到,或者他們還需要和其他具有核定位信號(hào)序列的蛋白發(fā)生相互作用才能定位到核內(nèi)。有些HOX 蛋白需要同其他蛋白質(zhì)形成異源二聚體才能進(jìn)入到核內(nèi),例如HOX 家族的KNOTTED1-LIKE homeobox(KNOX)需要和BLH 蛋白通過(guò)MEINOX 和BELL 這兩個(gè)結(jié)構(gòu)域相互作用形成復(fù)合體才能一起進(jìn)入到核內(nèi)[17]。

研究表明,Os WOX3 A 具有轉(zhuǎn)錄激活活性,并且其氨基端的HD和羧基端的WUS-box 是Os WOX3 A發(fā)揮轉(zhuǎn)錄激活活性所必需的結(jié)構(gòu)[18]。目前只有這一個(gè)WOX 轉(zhuǎn)錄因子有轉(zhuǎn)錄激活活性試驗(yàn)研究報(bào)道。

3 WOX家族系統(tǒng)進(jìn)化

根據(jù)系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)分析,擬南芥WOX 蛋白家族WUS支包含WUS 和WOX 1~WOX 7 共8 個(gè)成員,中間支包括WOX8、WOX9、WOX11 和WOX12,WOX10、WOX13 和WOX14 被劃分到遠(yuǎn)古支[2](圖1)。目前,在植物界中已經(jīng)找到了許多WOX 基因,對(duì)該家族基因的起源和進(jìn)化歷史進(jìn)行了初步研究[8]。處于不同分類地位的植物類群所包含的WOX 蛋白在3支中的分布差異明顯,所有植物均含有遠(yuǎn)古支WOX 蛋白,然而綠藻(Chlorell a)和非維管束植物苔蘚Physcomitrell a patens 等僅含有遠(yuǎn)古支WOX 蛋白,僅在較高等的蕨類植物和種子植物中發(fā)現(xiàn)有中間支蛋白[19],而WUS 支WOX 蛋白則是高等的種子植物所特有的[20]。

圖1 擬南芥WOX蛋白家族的系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)Fig.1 Phylogenetic relationship of Ar abidopsis WOX family proteins

從綠藻到開(kāi)花植物這些親緣關(guān)系相差很大的真核生物都含有WOX 基因,說(shuō)明這個(gè)家族的起源至少發(fā)生在真核生物分化前,系統(tǒng)進(jìn)化的結(jié)果也表明在綠藻和陸生植物發(fā)生分化前,他們的最近共同祖先(Last Co mmon Ancestor)已至少含有一個(gè)WOX基因,WOX 家族基因在遠(yuǎn)古支最早起源,隨后各物種的遠(yuǎn)古支成員們獨(dú)立進(jìn)化[8]。中間支WOX 蛋白成員不僅包括種子植物,同時(shí)包括一些低等的維管植物如石松(Lycopodium)、卷柏(Sel aginell a tamariscina)和地衣類(Lichen)等,說(shuō)明維管植物家族進(jìn)化起源的最近共同祖先已經(jīng)含有中間支WOX 基因[20]。低等植物如綠藻僅含有遠(yuǎn)古支的WOX 基因,而高等種子植物不僅含有遠(yuǎn)古支的WOX 基因,還含有中間支和WUS 支的基因,說(shuō)明遠(yuǎn)古支的WOX 基因代表最古老的成員,而WUS支和中間支的成員是在進(jìn)化過(guò)程中由遠(yuǎn)古支的成員擴(kuò)增后分化而來(lái)的[8]。

Nar d mann和Werr[21]認(rèn)為裸子植物和被子植物發(fā)生分化前,WUS支的基因就已經(jīng)發(fā)生了擴(kuò)增。并且種子植物的最近共同祖先至少已經(jīng)包含WOX2、WOX3 和WOX4 的直系同源基因,以及WUS/WOX5 的直系同源基因。WOX2、WOX3 和WOX4 功能分化后作用部位分別是胚體、邊界分生組織和維管束系統(tǒng)。

有研究者在銀杏(Ginkgo bil oba)、買麻藤(Gnetum gnemon)和樟子松(Pinus syl vestris)這3種裸子植物中都只發(fā)現(xiàn)有對(duì)應(yīng)擬南芥WUS 的基因,沒(méi)有對(duì)應(yīng)WOX5 的基因;而即使是較古老的被子植物無(wú)油樟(Amborell a trichopoda)和睡蓮(Ny mphaea j a mesoniana)中都既有WUS 又有WOX5 基因,推測(cè)WOX5 是在被子植物和裸子植物分離后,在被子植物中獨(dú)自通過(guò)基因復(fù)制和功能分化后產(chǎn)生的[20]。然而Hed man等[22]在裸子植物白皮松(Pinus alba)中發(fā)現(xiàn)同時(shí)存在WOX5 和WUS 基因,上述前三種裸子植物都尚未完成全基因組測(cè)序,因此他們是否真的沒(méi)有對(duì)應(yīng)的WOX5 基因尚不能確定。

WOX1/STF 在所有測(cè)序的雙子葉植物中均有一到兩個(gè)成員,然而在水稻(Or yza sativa)、玉米(Zea mays)、高粱(Sor ghum bicolor)、小麥(Triticu m aestivu m)、大麥(Hor deu m vul gare)等其他單子葉植物中都沒(méi)有發(fā)現(xiàn)與之明顯對(duì)應(yīng)的直系同源基因,這說(shuō)明它可能是在單子葉和雙子葉植物分離后,在雙子葉植物中獨(dú)立進(jìn)化產(chǎn)生的[23]。

4 WOX轉(zhuǎn)錄因子的生物學(xué)功能

WOX 基因家族的成員幾乎在植物的各個(gè)器官中都有表達(dá),其主要表達(dá)部位位于各器官分裂旺盛的細(xì)胞群中。該家族基因在植物關(guān)鍵發(fā)育時(shí)期如胚的形成、干細(xì)胞穩(wěn)定性和器官的形成的過(guò)程中發(fā)揮重要調(diào)控作用。這些功能的發(fā)揮與他們能夠促進(jìn)細(xì)胞分裂或阻止未成熟細(xì)胞的提前分化密不可分[2]。WOX 基因家族各成員的表達(dá)部位和所發(fā)揮的功能見(jiàn)表1。

4.1 遠(yuǎn)古支

WOX13 在擬南芥初生根和側(cè)根的發(fā)生和發(fā)育過(guò)程中表達(dá),在花序和花芽中也有較高表達(dá),參與側(cè)根的發(fā)育和花器官的形成。突變體側(cè)根數(shù)量減少,角果發(fā)育異常。WOX14 也屬于遠(yuǎn)古支,但僅存在于十字花科(Brassicaceae),相比較WOX13,WOX14 的表達(dá)僅限于側(cè)根形成的早期階段和花藥的發(fā)育。WOX10 僅在擬南芥基因組中發(fā)現(xiàn),其他物種中沒(méi)有發(fā)現(xiàn)與他明顯對(duì)應(yīng)的同源基因。擬南芥幼苗中,即使高循環(huán)的PCR 反應(yīng)仍不能檢測(cè)到WOX10 的轉(zhuǎn)錄本的存在,已有的表達(dá)譜數(shù)據(jù)庫(kù)中也沒(méi)有檢測(cè)到該基因轉(zhuǎn)錄本的表達(dá),推測(cè)該基因可能是一個(gè)假基因(Pseudogene)[19]。

4.2 中間支

WOX8 和WOX9 一起參與調(diào)控?cái)M南芥從受精卵發(fā)育成胚的過(guò)程。在擬南芥胚的形成過(guò)程中,WOX2 和WOX8 首先在卵細(xì)胞和受精卵中共同表達(dá),受精卵第1 次不對(duì)稱分裂后,WOX8 和WOX9只在基部子細(xì)胞中表達(dá)。在典型八細(xì)胞期,將形成下胚軸和部分根的中間區(qū)域只表達(dá)WOX9 和少量的WOX2;將形成根分生組織的胚根只表達(dá)WOX8和WOX9;胚柄細(xì)胞只表達(dá)WOX8[1,24]。除了在胚的早期發(fā)育過(guò)程中發(fā)揮作用外,WOX9/STI MPY還在SA M 和葉原基中有表達(dá),對(duì)維持莖尖WUS 和CLAVATA3 的表達(dá)也是必須的。另外WOX9 在根尖分生組織中表達(dá),能夠促進(jìn)根部細(xì)胞的增殖。突變體stip 表現(xiàn)出腋芽和葉原基的發(fā)生和生長(zhǎng)缺陷,初始根的生長(zhǎng)和側(cè)根的發(fā)生受到明顯抑制[25]。STPL/WOX8還能在胚發(fā)育過(guò)程中通過(guò)調(diào)節(jié)CUPSHAPED COTYLEDON(CUC)基因的表達(dá)控制子葉葉緣的形態(tài)建成[26]。

水稻DWT1 是擬南芥WOX8/9 的同源基因,影響水稻節(jié)間細(xì)胞的增殖和伸長(zhǎng),對(duì)控制水稻主枝和分蘗生長(zhǎng)的一致性起重要作用[15]。EVERGREEN 是聚散矮牽牛花(Cy mose petunia)中對(duì)應(yīng)擬南芥WOX9 的轉(zhuǎn)錄因子,它能夠控制花序的構(gòu)型,促進(jìn)側(cè)生花序分生組織細(xì)胞的增殖。EVG 在聚傘花序進(jìn)化過(guò)程中處于重要地位[27]。裸子植物挪威云杉(Picea abies)中,Pa WOX2 和Pa WOX8/9也在受精卵和體胚的早期發(fā)育過(guò)程中高表達(dá),控制體胚的早期發(fā)育,說(shuō)明這一機(jī)制在裸子植物和被子植物中比較保守[28]。

擬南芥中,WOX11 和WOX12 功能重疊。他們一起參與外植體根(Adventitious r oot)的器官發(fā)生,然而側(cè)根的發(fā)生卻不受這些影響[29]。水稻中Os WOX11 參與激活冠狀根的發(fā)生和生長(zhǎng),是一個(gè)不定根生長(zhǎng)發(fā)育的關(guān)鍵調(diào)節(jié)基因。WOX11 首先在突出的冠狀根表達(dá),隨后在根分生組織的細(xì)胞分裂區(qū)表達(dá)。wox11 的缺失突變體或者降低WOX11 的表達(dá)都會(huì)使冠狀根數(shù)目減少和生長(zhǎng)速率下降,而過(guò)量表達(dá)WOX11 則使冠狀根提早產(chǎn)生,冠狀根的生物量也顯著增加,同時(shí)在高位莖節(jié)甚至小花基部也產(chǎn)生不定根[13]。

4.3 WUS支

WUSCHEL 基因是最早發(fā)現(xiàn)的屬于WOX 家族中的基因,wus突變體的莖尖和花序分生組織異常,wus突變體不斷產(chǎn)生有缺陷的莖尖分生組織,隨后異常終止,形成混亂的成簇狀葉片[3]。WUS 基因在莖尖分生組織的中心區(qū)細(xì)胞表達(dá),是形成和維持莖頂端分生組織所必需的;WUS 基因還參與到子房和花藥發(fā)育過(guò)程[30-31]。在根中異位表達(dá)WUS,能夠在根上誘導(dǎo)產(chǎn)生莖尖分生組織,進(jìn)而產(chǎn)生葉片,并產(chǎn)生花序[32]。WUS-box結(jié)構(gòu)域是WUS 發(fā)揮其每一項(xiàng)功能都必需的,當(dāng)這一功能域發(fā)生突變后,WUS 原有的所有功能都無(wú)法正常發(fā)揮[6]。

表1 WOX轉(zhuǎn)錄因子的表達(dá)部位和功能Table 1 Summary of WOX transcription f actor expression domains and f unction

與WUS 在SA M 表達(dá),對(duì)維持SAM 穩(wěn)定性起重要作用對(duì)應(yīng)的是,WOX5 在根尖的靜止中心表達(dá),對(duì)維持根尖分生組織干細(xì)胞的穩(wěn)定性起重要作用;擬南芥wox5-1 突變體中,位于靜止中心區(qū)的細(xì)胞形態(tài)異常,體積變大,而且鄰近的中柱干細(xì)胞體積變得更大,說(shuō)明這些細(xì)胞已經(jīng)發(fā)生了分化[33]。WOX5 在子葉原基和側(cè)根原基發(fā)生和向外生長(zhǎng)時(shí)也有表達(dá),說(shuō)明它在這些組織發(fā)育過(guò)程中也發(fā)揮著作用。WOX5 與WUS 在維持干細(xì)胞穩(wěn)定性方面所起的調(diào)控作用是同等的或者說(shuō)是可互換的,如在WUS 編碼區(qū)前面加上WOX5 的啟動(dòng)子,就可以恢復(fù)wox5 突變體的表型;在WOX5 的編碼區(qū)前面加上WUS 的啟動(dòng)子也可以恢復(fù)wus 突變體SA M 異常的表型,但還是不能恢復(fù)wus突變體在花器官方面的缺陷[33]。

WOX1 參與調(diào)控葉片的橫向生長(zhǎng),影響葉片的寬度。這一功能在不同物種中較保守。該基因在不同物種中的直系同源基因,如矮牽牛(Petunia hybrida)中的MA W、蒺藜狀苜蓿(Medicago tr uncatul a)中的STF、煙草(Nicotiana tabacu m)中的LAM 以及擬南芥中WOX1 和PRS 都參與到調(diào)控葉片的橫向生長(zhǎng)。在蒺藜狀苜蓿中,st f 突變體的葉片橫向生長(zhǎng)導(dǎo)致葉脈發(fā)育嚴(yán)重異常,葉片中脈變細(xì),側(cè)脈減少。煙草l am1 突變體,由于缺乏葉肉細(xì)胞的分化,葉片變成細(xì)條狀[34]。矮牽牛MA W 基因整合了擬南芥中At WOX1 和At WOX3 兩個(gè)基因的功能,參與到葉片的橫向生長(zhǎng)和花器官的融合發(fā)育[35]。擬南芥wox1 敲除突變體中,沒(méi)有觀察到明顯的異常表型,說(shuō)明還存在與其功能重疊的基因[35],擬南芥中WOX1 和WOX3 一起共同調(diào)控葉片的橫向生長(zhǎng)[36]。

擬南芥的PRESSED FLOWER (PRS)基因,也稱WOX3,參與調(diào)控兩側(cè)花瓣的發(fā)育。突變體花瓣窄小,有時(shí)甚至缺失。PRS 在花序分生組織的L1、L2和L3層細(xì)胞中均表達(dá),其中在L1層細(xì)胞中表達(dá)量最高,PRS 在莖尖分生組織外周細(xì)胞中表達(dá),使鄰近細(xì)胞分化成營(yíng)養(yǎng)器官和生殖器官的兩側(cè)區(qū)域。prs1突變體葉片兩側(cè)的托葉、側(cè)向的萼片以及雄蕊的變窄或缺失[37]。PRS 過(guò)表達(dá)則使植株表皮層細(xì)胞過(guò)度生長(zhǎng),在植株莖桿表面形成許多瘤狀突起[9]。

玉米中WOX3 的直系同源基因雙突變體ns1和ns2 的葉片變窄,這一表型主要是由于無(wú)法招募周圍基礎(chǔ)細(xì)胞以形成葉緣組織而造成的[38]。水稻nal2/3 雙突變體,葉片明顯變窄,而過(guò)表達(dá)NAL2/3則會(huì)使植株葉片變寬,NAL2 和NAL3 基因是對(duì)應(yīng)WOX3 的兩個(gè)獨(dú)立拷貝,單突變體葉片無(wú)明顯表型變化[17,39]。

WOX2 與WOX8 和WOX9 一起參與到擬南芥胚的形成發(fā)育過(guò)程,WOX2 最開(kāi)始在卵細(xì)胞和受精卵中都表達(dá),受精卵第一次不對(duì)稱分裂后,WOX2的表達(dá)被限制在頂部子細(xì)胞,而WOX8 的表達(dá)限制在基部子細(xì)胞中;在典型八細(xì)胞期,WOX2 在將發(fā)育成大部分地上組織的頂部細(xì)胞群中表達(dá)。WOX2的表達(dá)和原胚的正常發(fā)育依賴WOX8 在基部子細(xì)胞群中的正常表達(dá)[40]。WOX2 對(duì)胚芽的發(fā)育起重要的調(diào)控作用,WOX1 和WOX3 在這方面也有冗余的功能,只有當(dāng)WOX2 功能缺失時(shí),WOX1、WOX3 和WOX5 在這方面的作用才發(fā)揮出來(lái)[40]。

At WOX4 在植株幾乎所有的維管束系統(tǒng)中均有表達(dá),具體表達(dá)部位在形成層和原形成層組織,影響植物的次生生長(zhǎng)。At WOX4 在莖尖和根尖分生組織中無(wú)表達(dá)[10]。WOX4 在水稻中不僅參與維管束發(fā)育,在花序和花分生組織中也有較高表達(dá)。當(dāng)將WOX4 沉默后,莖尖分生組織發(fā)育異常,植株矮小且形狀異常,葉片發(fā)黃。Os WOX4 是一個(gè)調(diào)節(jié)SA M 穩(wěn)定性的正向調(diào)控因子[41]。對(duì)At WOX4 進(jìn)行RNAi后,葉片、成熟莖和成熟根中的維管束分化的導(dǎo)管和篩管量顯著減少,而未分化的組織則過(guò)度積累。RNAi植株明顯小于野生型。西紅柿(Lycopersicon esculentum)中過(guò)表達(dá)WOX4,其篩管和導(dǎo)管的數(shù)量也明顯增多[42]。

PFS2/At WOX6 幾乎在所有正處于分化狀態(tài)的器官原基中都有表達(dá),而在成熟組織中無(wú)表達(dá),WOX6 過(guò)表達(dá)影響葉原基和花原基的分化和成熟,說(shuō)明WOX6 能夠抑制器官原基的成熟分化。WOX6 還參與調(diào)控子房的發(fā)育,作用機(jī)制是通過(guò)調(diào)控子房壁細(xì)胞的增殖和胚囊母細(xì)胞的分化。p f s2突變體的子房和葉片都發(fā)育異常[12]。WOX6 還影響植物的低溫耐受性,突變體植株hos9 生長(zhǎng)緩慢,并且變得更加不耐低溫,然而其表達(dá)水平不受低溫刺激而變化[43]。

5 WOX轉(zhuǎn)錄因子的表達(dá)調(diào)控機(jī)制

根據(jù)已有的研究結(jié)果,大多數(shù)WOX 基因功能的發(fā)揮或者是因?yàn)樗麄兡軌虼龠M(jìn)細(xì)胞的分裂或者是能夠阻止未成熟細(xì)胞的分化。一些WOX 基因的功能的發(fā)揮具有非細(xì)胞特異性,即表達(dá)部位與發(fā)揮作用的部位不一致。例如WUS 和WOX5 能非細(xì)胞特異性地控制干細(xì)胞的穩(wěn)定性;水稻DWT1 能非細(xì)胞特異性地調(diào)節(jié)節(jié)間細(xì)胞的增殖和伸長(zhǎng);擬南芥胚發(fā)育過(guò)程中WOX8 和WOX9 能非細(xì)胞特異性地調(diào)節(jié)頂部細(xì)胞群的分化[1]。

WUS 在莖尖分生組織中通過(guò)參與一個(gè)由WUS 基因和CLAVATA(CLV)基因組成的負(fù)反饋環(huán)以維持莖尖分生組織中干細(xì)胞的穩(wěn)定性。在莖頂端分生組織的起始發(fā)育過(guò)程中,WUS 的表達(dá)逐漸局限于中心區(qū)原體的一部分細(xì)胞中。WUS、CLV1和CLV3 形成一個(gè)反饋環(huán),以維持莖頂端分生組織中心區(qū)的大小。WUS 在分生區(qū)原體的表達(dá),誘導(dǎo)CLV3 在上層原套中表達(dá),產(chǎn)生CLV3 蛋白,由CLV3蛋白的作用,激活原體中的CLV1 信號(hào)途徑[44],反過(guò) 來(lái),CLV1 的 激 活,又限制了WUS 的 表達(dá)區(qū)域[45]。有研究者發(fā)現(xiàn)WUS 通過(guò)直接參與到細(xì)胞分裂素的信號(hào)網(wǎng)絡(luò)中而調(diào)控分生組織功能,WUS能夠直接與ARR7/15 發(fā)生作用,并抑制其表達(dá)[46-47]。

相比較在SA M 中的情況,在花序分生組織(F M)中,干細(xì)胞的穩(wěn)定性非常短暫,一旦花器官發(fā)生后,F(xiàn)M 的活力就停止,這一過(guò)程依賴WUS 和AGAMOUS(AG)的相互作用。在花的發(fā)育過(guò)程中,WUS能夠促進(jìn)AG 的表達(dá),然而AG 通過(guò)直接與WUS 結(jié)合并抑制WUS 的表達(dá)來(lái)終止花序分生組織的命運(yùn),兩者形成的一個(gè)負(fù)反饋環(huán)可以共同調(diào)控FM 的活性[48-49]。

WUS-box這一具有轉(zhuǎn)錄抑制功能的結(jié)構(gòu)域,不僅是WUS發(fā)揮其每一項(xiàng)功能所必須的,而且在其他WOX 蛋白中也發(fā)揮重要的作用。研究發(fā)現(xiàn),在矮牽牛中WUS-box是STF 發(fā)揮其調(diào)控葉片橫向生長(zhǎng)的功能所必需的。在STF 啟動(dòng)子下,擬南芥WUS支里,所有具有WUS-box的成員(At WOX7除外,At WOX7無(wú)WUS-box)均可恢復(fù)l am1 突變體的窄葉表型。而中間支和遠(yuǎn)古支的成員因?yàn)槎紱](méi)有完整的WUS-box結(jié)構(gòu)域都不具上述功能。在At-WOX7、中間支和遠(yuǎn)古支蛋白后面額外增加一個(gè)WUS-box或者其他的外源轉(zhuǎn)錄抑制結(jié)構(gòu)域(repressor domain)也可以恢復(fù)l am1 葉片的橫向生長(zhǎng)[50]。

激素在植物生長(zhǎng)發(fā)育過(guò)程中發(fā)揮重要作用,如生長(zhǎng)素、細(xì)胞分裂素和脫落酸等。已有較多試驗(yàn)結(jié)果表明,很多WOX 基因都與某些激素存在互作,共同調(diào)控植物的生長(zhǎng)發(fā)育。例如,在WOX1 的同源基因stf 和l am1 突變體中,植株體內(nèi)生長(zhǎng)素合成減少。而過(guò)表達(dá)STF 則導(dǎo)致植株體內(nèi)生長(zhǎng)素和細(xì)胞分裂素含量明顯提高。STF 可能通過(guò)調(diào)控生長(zhǎng)素和細(xì)胞分裂素的平衡以控制葉片的橫向生長(zhǎng)[34]。水稻Os WOX11 的表達(dá)受外源生長(zhǎng)素和細(xì)胞分裂素的誘導(dǎo),參與激活冠狀根的發(fā)生和生長(zhǎng)[13]。在擬南芥胚的發(fā)育過(guò)程中,WOX2 能促進(jìn)生長(zhǎng)素轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白基因PI NFORMWD1(PI N1)的表達(dá),使生長(zhǎng)素集中到向根的一端和正在發(fā)育的胚的子葉頂端,調(diào)控胚芽的發(fā)育[40]。分別外源施加IAA、NAA 和6-BA后,水稻植株體內(nèi)的Os WOX11 基因在1 h 的表達(dá)量就有顯著提高,其中在IAA 和NAA 誘導(dǎo)下的變化最顯著[51]。

大部分水稻W(wǎng)OX 基因的表達(dá)水平都受到一種或多種非生物脅迫的影響。例如,在干旱處理下,幾乎所有WOX 基因的表達(dá)水平在12 h均有明顯的提升;NaCl處理能誘導(dǎo)Os WOX3 和Os WOX5 的表達(dá);低溫處理能提升Os WOX9B 和Os WOX12B 的表達(dá)[51]。

WOX 轉(zhuǎn)錄因子還能與其他轉(zhuǎn)錄因子發(fā)生相互作用。如水稻中WOX3能夠抑制YAB3 的表達(dá),過(guò)表達(dá)WOX3 植株與YAB3 的RNAi植株表型相同,他們共同調(diào)控水稻葉片的發(fā)育[52];在胚的早期發(fā)育階段,WOX8 和其功能重疊基因WOX9 一起,在受精卵、基部子細(xì)胞和下胚軸細(xì)胞中被WRKY2轉(zhuǎn)錄因子激活[53]。

6 總結(jié)及展望

WOX 基因大多是在分生組織發(fā)揮作用,不管是根中、莖中、葉中還是花中的分生組織。他們的功能都是控制分生組織的分化,作用機(jī)制是促進(jìn)細(xì)胞的分裂或者是抑制細(xì)胞的提前分化。WOX 基因之間功能的分化,很多都是由于啟動(dòng)子的分化,導(dǎo)致表達(dá)部位不一樣,進(jìn)而使不同基因在不同部位發(fā)揮作用,例如有些WOX 基因之間,只要改變啟動(dòng)子,就可以部分甚至完全互補(bǔ)原有基因的功能。如將WUS 的編碼序列連上WOX3 的啟動(dòng)子,就可以完全互補(bǔ)WOX3 的功能。在STF 啟動(dòng)子下,所有具有WUS-box結(jié)構(gòu)域的WOX 基因均可恢復(fù)stf 的窄葉表型。有些WOX 基因間的功能存在冗余,將其中單個(gè)WOX 基因敲除后,并不會(huì)出現(xiàn)明顯的表型變化,如WOX1[35]。

目前大多數(shù)有關(guān)WOX 基因的研究只有功能報(bào)道,他們所參與的調(diào)控網(wǎng)絡(luò)及所處的信號(hào)通路依然知之甚少,相關(guān)的研究對(duì)加深WOX 基因功能的理解有十分重要的意義。從已有的關(guān)于WOX 基因家族的文獻(xiàn)報(bào)導(dǎo)來(lái)看,大部分研究都集中在模式植物擬南芥和水稻中,在其他物種中的研究相對(duì)較少。鑒于WOX 家族基因在植物關(guān)鍵發(fā)育時(shí)期發(fā)揮重要作用,對(duì)各器官的形態(tài)建成有如此重要的作用,更重要的是同一個(gè)WOX 基因在不同物種中所發(fā)揮的作用也不近相同。因此,在其他物種中開(kāi)展WOX 陋就簡(jiǎn)家族基因功能的研究是有必要的。

目前有關(guān)WOX 基因的研究主要還是集中在生長(zhǎng)發(fā)育方面。已有的研究表明,該家族基因在植物地上部分和地下部分的形態(tài)建成過(guò)程中發(fā)揮重要調(diào)控作用。WOX 基因在控制植物整體形態(tài)建成方面的作用,如葉片大?。?4],對(duì)提高作物地上部分的生物量,培育高產(chǎn)牧草新品種具有十分重要的指導(dǎo)意義。有關(guān)該家族基因響應(yīng)非生物脅迫方面的研究相對(duì)較少,植物的生長(zhǎng)發(fā)育必然要受到外部環(huán)境的影響,植物在受到逆境脅迫時(shí),必然要調(diào)整或者改變自身的形態(tài)建成,以更好地適應(yīng)逆境環(huán)境。因此推測(cè)該家族必然有能夠參與響應(yīng)脅迫的基因,尋找到這樣一些基因,并探索其作用具體的分子機(jī)制,將是一項(xiàng)非常有意義的研究,這也將為培育抗逆性強(qiáng)的作物新品種提供重要參考。

致謝:該論文是第二屆全國(guó)草業(yè)生物技術(shù)大會(huì)評(píng)選出的優(yōu)秀論文,并得到中國(guó)草業(yè)生物技術(shù)專業(yè)委員會(huì)提供的版面費(fèi)支持。

[1] Haecker A,Gross-Hardt R,Geiges B,Sarkar A,Breuninger H,Herr mann M,Laux T.Expression dynamics of WOX genes mark cell fate decisions during early embryonic patterning in Arabidopsis thaliana[J].Develop ment,2004,131(3):657-668.

[2] van der Graaff E,Laux T,Rensing S A.The WUS homeobox-containing(WOX)protein family[J].Genome Biology,2009,10(12):248.

[3] Laux T,Mayer K F,Berger J,Jurgens G.The WUSCHEL gene is required f or shoot and floral meristem integrity in Arabidopsis[J].Develop ment,1996,122(1):87-96.

[4] Mukherjee K,Brocchieri L,Bür glin T R.A co mprehensive classification and evolutionar y analysis of plant ho meobox genes[J].Molecular Biology and Evolution,2009,26(12):2775-2794.

[5] Ariel F D,Manavella P A,Dezar C A,Chan R L.The true story of the HD-Zip family[J].Trends in Plant Science,2007,12(9):419-426.

[6] Ikeda M,Mitsuda N,Oh me-Takagi M.Arabidopsis WUSCHEL is a bif unctional transcription factor that acts as a repressor in stem cell regulation and as an activator in floral patter ning[J].The Plant Cell,2009,21(11):3493-3505.

[7] Paponov I A,Teale W,Lang D,Paponov M,Reski R,Rensing S A,Pal me K.The evolution of nuclear auxin signalling[J].BMC Evolutionary Biology,2009,9(1):126.

[8] Lian G,Ding Z,Wang Q,Zhang D,Xu J.Origins and evolution of WUSCHEL-Related homeobox protein family in plant kingdom[J].The Scientific World Journal,2014(2):983-990.

[9] Matsu moto N,Okada K.A ho meobox gene,PRESSED FLOWER,regulates lateral axis-dependent develop ment of Ar abidopsis flowers[J].Genes &Develop ment,2001,15(24):3355-3364.

[10] Hirakawa Y,Kondo Y,F(xiàn)ukuda H.TDIF peptide signaling regulates vascular stem cell proliferation via the WOX4 homeobox gene in Arabidopsis[J].The Plant Cell,2010,22(8):2618-2629.

[11] Mayer K F,Schoof H,Haecker A,Lenhard M,Jürgens G,Laux T.Role of WUSCHEL in regulating stem cell fate in the Ar abidopsis shoot meristem[J].Cell,1998,95(6):805-815.

[12] Park S O,Zheng Z,Oppenhei mer D G,Hauser B A.The PRETTY FEW SEEDS2 gene encodes an Arabidopsis homeodomain protein that regulates ovule develop ment[J].Develop ment,2005,132(4):841-849.

[13] Zhao Y,Hu Y,Dai M,Huang L,Zhou D X.The WUSCHEL-related ho meobox gene WOX11 is required to activate shoot-bor ne crown root develop ment in rice[J].The Plant Cell,2009,21(3):736-748.

[14] Zhang Y,Wu R,Qin G,Chen Z,Gu H,Qu L J.Over-expression of WOX1 leads to defects in meristem develop ment and polyamine homeostasis in Arabidopsis[J].Journal of Integrative Plant Biology,2011,53(6):493-506.

[15] Wang W,Li G,Zhao J,Chu H,Lin W,Zhang D,Wang Z,Liang W.DWARF TILLER1,a WUSCHEL-Related ho meobox transcription factor,is required for tiller gr owth in rice[J].PLoS Genetics,2013,10(3):1340.

[16] Liu B,Wang L,Zhang J,Li J,Zheng H,Chen J,Lu M.WUSCHEL-related ho meobox genes in Popul us tomentosa:Diversified expression patter ns and a f unctional si milarity in adventitious root for mation[J].BMC Geno mics,2014,15(1):296.

[17] Di Giacomo E,Iannelli M A,F(xiàn)rugis G.TALE and shape:How to make a leaf different[J].Plants,2013,2(2):317-342.

[18] Cho S H,Yoo S C,Zhang H,Pandeya D,Koh H J,Hwang J Y,Ki m G T,Paek N C.The rice narr ow leaf 2 and narrow leaf 3 loci encode WUSCHEL-related ho meobox 3 A(Os WOX3 A)and f unction in leaf,spikelet,tiller and lateral root develop ment[J].New Phytologist,2013,198(4):1071-1084.

[19] Deveaux Y,Toffano-Nioche C,Claisse G,Thareau V,Morin H,Laufs P,Moreau H,Kreis M,Lechar ny A.Genes of the most conserved WOX clade in plants affect root and flower develop ment in Arabidopsis[J].BMC Evolutionary Biology,2008,8(1):291.

[20] Nar d mann J,Reisewitz P,Werr W.Discrete shoot and root stem cell-pro moting WUS/WOX5 f unctions are an evolutionar y innovation of angiosper ms[J].Molecular Biology and Evolution,2009,26(8):1745-1755.

[21] Nard mann J,Werr W.Sy mplesiomorphies in the WUSCHEL clade suggest that the last common ancestor of seed plants contained at least four independent stem cell niches[J].The New Phytologist,2013,199(4):1081-1092.

[22] Hed man H,Zhu T,von Ar nold S,Sohlber g J J.Analysis of the WUSCHEL-related ho meobox gene family in the conifer picea abies reveals extensive conser vation as well as dynamic patter ns[J].BMC Plant Biology,2013,13(1):89.

[23] Tadege M,Lin H,Niu L,Mysore K S.Control of dicot leaf blade expansion by a WOX gene,STF[J].Plant Signal &Behavior,2011,6(11):1861-1864.

[24] Zhang Z,Laux T.The asy mmetric division of the Arabidopsis zygote:From cell polarity to an embryo axis[J].Sexual Plant Reproduction,2011,24(2):161-169.

[25] Wu X,Dabi T,Weigel D.Requirement of ho meobox gene STI MPY/WOX9 for Ar abidopsis meristem gr owth and maintenance[J].Current Biology,2005,15(5):436-440.

[26] Lie C,Kelsom C,Wu X.WOX2 and STI MPY-LI KE/WOX8 pro mote cotyledon boundar y for mation in Ar abidopsis[J].Plant Jour nal,2012,72(4):674-682.

[27] Rebocho A B,Bliek M,Kusters E,Castel R,Procissi A,Roobeek I,Souer E,Koes R.Role of EVERGREEN in t he develop ment of the Cy mose Petunia inflorescence[J].Develop mental Cell,2008,15(3):437-447.

[28] Palovaara J,Hallber g H,Stasolla C,Hak man I.Co mparative expression patter n analysis of WUSCHEL-rel ated homeobox 2(WOX2)and WOX8/9 in developing seeds and somatic embr yos of t he gy mnosper m Picea abies[J].New Phytologist,2010,188(1):122-135.

[29] Liu J,Sheng L,Xu Y,Li J,Yang Z,Huang H,Xu L.WOX11 and 12 are involved in the first-step cell fate transition during de novo r oot or ganogenesis in Ar abidopsis[J].The Plant Cell,2014,26(3):1081-1093.

[30] Gross-Har dt R,Lenhar d M,Laux T.WUSCHEL signaling f unctions in interregional co mmunication during Ar abidopsis ovule develop ment[J].Genes &Develop ment,2002,16(9):1129-1138.

[31] Deyhle F,Sar kar A K,Tucker E J,Laux T.WUSCHEL regulates cell differentiation during anther develop ment[J].Develop mental Biology,2007,302(1):154-159.

[32] Gallois J L,Nora F R,Mizukami Y,Sablowski R.WUSCHEL induces shoot stem cell activity and develop mental plasticity in the root meristem[J].Genes &Develop ment,2004,18(4):375-380.

[33] Sar kar A K,Luijten M,Miyashi ma S,Lenhard M,Hashi moto T,Nakaji ma K,Nakaji ma K,Scheres B,Heidstra R,Laux T.Conserved factors regulate signalling in Ar abidopsis thaliana shoot and root stem cell organizers[J].Nature,2007,446:811-814.

[34] Tadege M,Lin H,Bedair M,Ber bel A,Wen J,Rojas C M,Niu L,Tang Y,Su mmer L,Rater P,Mc Hale A N,Madue?o F,Mysore K S.STENOFOLIA regulates blade outgr owth and leaf vascular patter ning in Medicago tr uncatul a and Nicotiana syl vestris[J].The Plant Cell,2011,23(6):2125-2142.

[35] Vandenbussche M,Horst man A,Zethof J,Koes R,Rijpkema A S,Gerats T.Differential recruit ment of WOX transcription factors for lateral develop ment and or gan f usion in Petunia and Ar abidopsis[J].Plant Cell,2009,21(8):2269-2283.

[36] Nakata M,Matsumoto N,Tsugeki R.,Rikirsch E,Laux T,Okada K.Roles of the middle domain-specific WUSCHEL-rel ated homeobox genes in early develop ment of leaves in Ar abidopsis[J].Plant Cell,2012,24(2):519-535.

[37] Shi mizu R,Ji J,Kelsey E,Ohtsu K,Schnable P S,Scanlon M J.Tissue specificity and evolution of meristematic WOX3 f unction[J].Plant Physiology,2009,149(2):841-850.

[38] Nard mann J,Ji J,Werr W,Scanlon M J.The maize duplicate genes narrow sheath1 and narrow sheath2 encode a conserved homeobox gene f unction in a lateral domain of shoot apical meristems[J].Develop ment,2004,131(12):2827-2839.

[39] Ishi wata A,Ozawa M,Nagasaki H,Kato M,Noda Y,Yamaguchi T,Nosaka M,Shi mizu-Sato S,Nagasaki A,Maekawa M,Hirano HY,Sato Y.Two WUSCHEL-rel ated homeobox genes,narrow leaf 2 and narrow leaf 3,control leaf width in rice[J].Plant and Cell Physiology,2013,54(5):779-792.

[40] Breuninger H,Rikirsch E,Her mann M,Ueda M,Laux T.Differential expression of WOX genes mediates apical-basal axis f or mation in the Ar abidopsis embryo[J].Develop mental Cell,2008,14(6):867-876.

[41] Oh mori Y,Tanaka W,Koji ma M,Sakakibara H,Hirano H Y.WUSCHEL-RELATED HOMEOBOX4 is involved in meristem maintenance and is negatively regulated by the CLE gene FCP1 in rice[J].Plant Cell,2013,25(1):229-241.

[42] Ji J,Strable J,Shi mizu R,Koenig D,Sinha N,Scanlon M J.WOX4 pro motes procambial develop ment[J].Plant Physiology,2009,152(3):1346-1356.

[43] Zhu J,Shi H,Lee B H,Damsz B,Cheng S,Stir m V,Zhu J K,Hasegawa P M,Bressan R A.An Ar abidopsis ho meodomain transcription factor gene,HOS9,mediates cold tolerance through a CBF-independent pathway[J].Proceedings of the National Academy of Sciences,2004,101(26):9873-9878.

[44] Rojo E,Shar ma V K,Kovaleva V,Raikhel N V,F(xiàn)letcher J C.CLV3 is localized to the extracellular space,where it activates the Ar abidopsis CLAVATA stem cell signaling path way[J].The Plant Cell,2002,14(5):969-977.

[45] Brand U,F(xiàn)letcher J C,Hobe M,Meyerowitz E M,Si mon R.Dependence of stem cell fate in Ar abidopsis on a feedback loop regulated by CLV3 activity[J].Science,2000,289:617-619.

[46] Leibfried A,To J P,Busch W,Stehling S,Kehle A,Demar M,Kieber J J,Loh mann J U.WUSCHEL controls meristem f unction by direct regulation of cytokinin-inducible response regulators[J].Nature,2005,438:1172-1175.

[47] 徐云遠(yuǎn),種康.植物干細(xì)胞決定基因WUS 的研究進(jìn)展[J].植物生理與分子生物學(xué)學(xué)報(bào),2006,31(5):461-468.

[48] Lenhar d M,Bohnert A,Jürgens G,Laux T.Ter mination of stem cell maintenance in Ar abidopsis floral meristems by interactions bet ween WUSCHEL and AGA MOUS[J].Cell,2001,105(6):805-814.

[49] Liu X,Ki m Y J,Müller R,Yu mul R E,Liu C,Pan Y,Cao X,Goodrich J,Chen X.AGAMOUS ter minates floral stem cell maintenance in Ar abidopsis by directly repressing WUSCHEL through recruit ment of Polycomb Group proteins[J].The Plant Cell,2011,23(10):3654-3670.

[50] Lin H,Niu L,Mc Hale N A,Ohme-Takagi M,Mysore K S,Tadege M.Evolutionarily conserved repressive activity of WOX proteins mediates leaf blade outgrowth and floral organ develop ment in plants[J].Proceedings of the National Academy of Sciences,2013,110(1):366-371.

[51] Cheng S,Huang Y,Zhu N,Zhao Y.The rice WUSCHEL-rel ated homeobox genes are involved in reproductive or gan develop ment,hor mone signaling and abiotic stress response[J].Gene,2014,549(2):266-274.

[52] Dai M,Hu Y,Zhao Y,Liu H,Zhou D X.A WUSCHEL-LI KE HOMEOBOX gene represses a YABBY gene expression required for rice leaf develop ment[J].Plant Physiology,2007,144(1):380-390.

[53] Ueda M,Zhang Z,Laux T.Transcriptional activation of Arabidopsis axis patterning genes WOX8/9 links zygote polarity to embr yo develop ment[J].Develop mental Cell,2011,20(2):264-270.

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