王 雪,孟慶峰,劉新欣,王 琪,姚貴哲,王偉利,*
(1.吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物科技學(xué)院,吉林長春130118;2.吉林出入境檢驗(yàn)檢疫局,吉林長春130062)
新孢子蟲是一種頂覆門專性細(xì)胞內(nèi)寄生蟲,最早由Bjerkas I等[1]在患腦膜炎和肌炎的幼犬中發(fā)現(xiàn),由Dubey J P 等[2]命名為新孢子蟲。新孢子蟲可感染犬、牛、羊等多種溫血?jiǎng)游?,是引起母牛流產(chǎn)的主要原因,因此,新孢子蟲病是一個(gè)獸醫(yī)學(xué)上的嚴(yán)重問題,在經(jīng)濟(jì)學(xué)上也具有重要意義。新孢子蟲感染宿主細(xì)胞主要包括黏附和入侵兩個(gè)過程。在這個(gè)過程中,蟲體內(nèi)的細(xì)胞器及其所所分泌的抗原起到重要的重要。首先細(xì)胞表面因子暴露的瞬間引起新孢子蟲微線體分泌相關(guān)蛋白,開始其黏附過程[3],微線體蛋白與宿主細(xì)胞膜上的相應(yīng)受體結(jié)合形成可以移動(dòng)的連接區(qū)域,然后,棒狀體分泌相關(guān)蛋白修飾宿主細(xì)胞,開始侵入細(xì)胞。在侵入的過程中,蟲體形態(tài)不變,宿主細(xì)胞內(nèi)陷形成納蟲空泡,使蟲體居于其中,隨后蟲體棒狀體蛋白、致密顆粒蛋白及一些其他因子對(duì)納蟲泡膜進(jìn)行修飾,使其可以避免宿主細(xì)胞對(duì)納蟲泡的裂解作用。新孢子蟲速殖子在納蟲空泡中進(jìn)行繁殖2d~3d后,細(xì)胞破裂,新孢子蟲速殖子進(jìn)行下一輪的入侵。在此過程中,蟲體表面抗原、棒狀體蛋白、微線體蛋白、致密顆粒蛋白等都起著至關(guān)重要的作用[4]。新孢子蟲入侵宿主細(xì)胞后,引起其細(xì)胞免疫反應(yīng)及體液免疫反應(yīng)。細(xì)胞免疫反應(yīng)主要是新孢子蟲的特異性抗原被抗原遞呈細(xì)胞所識(shí)別并活T 細(xì)胞,使其中CD4+T 淋巴細(xì)胞中的Th1 及Th2細(xì)胞分泌的細(xì)胞因子發(fā)生改變。新孢子蟲的體液免疫主要是IgG 抗體水平發(fā)生改變,所以新孢子蟲疫苗的研究主要是對(duì)新孢子蟲特異性抗原引起細(xì)胞免疫反應(yīng)及體液免疫反應(yīng)進(jìn)行評(píng)估[5]。
新孢子蟲是引起世界范圍內(nèi)牛流產(chǎn)的主要原因之一,目前最有效的防治方法是通過對(duì)檢測后確定感染及疑似患病的動(dòng)物進(jìn)行淘汰,建立無新孢子蟲感染的牛群,但是處置造成的損失同樣不可估量。因此,有必要建立一種有效的疫苗防止新孢子蟲的傳播。新孢子蟲疫苗主要是抑制新孢子蟲對(duì)宿主細(xì)胞的感染,并對(duì)宿主細(xì)胞提供一定的保護(hù)。現(xiàn)在已經(jīng)研究的疫苗方法主要有滅活疫苗、弱毒疫苗、基因工程亞單位疫苗、基因疫苗、活載體疫苗等方面的研究并取得了很大突破。論文主要對(duì)新孢子蟲在黏附入侵過程中分泌的抗原蛋白及根據(jù)其研制的疫苗進(jìn)行概括。
新孢子蟲的蟲體表面抗原主要有NcSAG1、Nc-SRS2、NcP0、p38、NcP29 和NcP40等蛋白[6]。Nc-SAG1與NcSRS2 是新孢子蟲重要的蟲體表面抗原,NcSAG1僅在速殖子階段表達(dá),NcSRS2在速殖子與緩殖子階段均表達(dá),它們?cè)诮閷?dǎo)蟲體入侵細(xì)胞中起到重要的作用[5]。NcSAG1與NcSRS2是免疫與檢測試驗(yàn)中常用的抗原,它們具有較好的免疫原性,以其制備的重組疫苗可有效阻斷新孢子蟲對(duì)小鼠的入侵[7]。NcSAG4 在緩殖子階段表達(dá)的蛋白,在新孢子蟲感染細(xì)胞的周期中始終持續(xù)存在[8]。高建偉等人用P0基因制備DNA 疫苗,證明DNA 疫苗能夠激起細(xì)胞免疫反應(yīng),具有很好的保護(hù)原性[11]。楊濱僮等人用PCR 方法擴(kuò)增P40 基因,構(gòu)建pET-28a-P40質(zhì)粒并成功在大腸埃希菌Rosseta(DE3)中表達(dá),證明了P40基因具有很好的免疫原性,可以作為疫苗的候選基因[9]。
致密顆粒蛋白GRA 在形成帶蟲空泡時(shí)起到重要的作用,目前已經(jīng)被評(píng)價(jià)為候選抗原的有NcGRA1,NcGRA2,NcGRA6,NcGRA7 以及Nc-MAG1等[10]。賈立軍等[11]用NcGRA7蛋白基因構(gòu)建重組質(zhì)粒pMD18-NcGRA7,并應(yīng)用SDS-PAGE及Western blot方法對(duì)其進(jìn)行分析,證明其具有很好的免疫原性,可以作為疫苗的候選基因。金春梅等[12]對(duì)NcGRA2t基因進(jìn)行克隆測序,通過對(duì)其編碼蛋白進(jìn)行分析,說明其編碼蛋白具有很強(qiáng)的抗原性,可以做為疫苗的候選基因。MAG1在蟲體黏附細(xì)胞過程中具有一定的介導(dǎo)作用,焦石對(duì)其進(jìn)行克隆分析,并用其與γ 干擾素基因融合,構(gòu)建重組質(zhì)粒,證明其具有一定的免疫原性,為其疫苗的研究提供一定的理論基礎(chǔ)[13]。NcGRA14是長為1 215bp無內(nèi)含子的基因,是新發(fā)現(xiàn)的一種致密顆粒蛋白,其免疫原性至今還沒有確定[14]。
微線蛋白是由新孢子蟲頂端的微線體分泌的一類蛋白,目前已知微線抗原蛋白主要有NcMIC1、NcMIC2、NcMIC3、NcMIC4及NcMIC10等。Yin J G 等[15]重組NcMIC10蛋白在大腸埃希菌中進(jìn)行表達(dá),并針對(duì)該蛋白的非重疊片段制備多克隆抗體,然后用ELISA 方法檢測山羊血清中的抗體,對(duì)現(xiàn)有的抗原進(jìn)行補(bǔ)充。AMA1是由微線分泌的頂膜抗原,是典型跨膜蛋白,在入侵對(duì)宿主細(xì)胞過程中具有一定的介導(dǎo)作用。郭煥平等[16]構(gòu)建pMD18T-NcAMA 重組克隆質(zhì)粒并克隆到腺病毒中,為以病毒為載體的新孢子蟲重組疫苗提供依據(jù)。Srinivasan S以RIBI為佐劑,用重組NcMIC4蛋白免疫小鼠,可以引起體液免疫應(yīng)答,IgG1 水平明顯升高,同時(shí)減少新孢子蟲對(duì)腦的感染性,NcMIC4 可以以作為疫苗的候選基因[17]。
棒狀體蛋白在新孢子蟲蟲體入侵及對(duì)納蟲空泡進(jìn)行修飾的過程中起到了重要作用。目前已知的棒狀體 蛋 白 主 要 有NcROP1、NcROP2、NcROP3、NcROP4、NcROP8及NcROP30?,F(xiàn)在研究比較多的是NcROP2 蛋白,也是確定的疫苗候選抗原之一。Debachea K 將NcROP2基因在大腸埃希菌中表達(dá)形成重組蛋白recNcROP2并與乳化的弗氏不完全佐劑接種到已經(jīng)感染新孢子蟲的小鼠體內(nèi),結(jié)果是接種重組蛋白的小鼠存活率比較高,其IgG 水平明顯升高,說明其對(duì)新孢子蟲具有一定的免疫作用[18]。新孢子蟲的大部分基因都與弓形蟲相似,有研究說明,棒狀體蛋白可能與新孢子蟲的毒力有關(guān)。Lei T 用弓形蟲的TgROP18基因轉(zhuǎn)染新孢子蟲上,構(gòu)建Nc1-TgROP18,然后對(duì)其毒力進(jìn)行分析,轉(zhuǎn)基因的新孢子蟲比野生新孢子蟲的毒力強(qiáng),確定ROP18是弓形蟲與新孢子蟲毒力差異的關(guān)鍵因素[19],并且可能與新孢子蟲入侵宿主細(xì)胞并在宿主細(xì)胞內(nèi)繁殖有關(guān)。
滅活苗是指通過對(duì)蟲體進(jìn)行一定的處理使其失活,失去感染力和致病力,但保留其組成成分而制成的疫苗,具有安全性高、無毒力返祖現(xiàn)象等優(yōu)點(diǎn),但它不能激活細(xì)胞的免疫反應(yīng),并且在滅活過程中可能會(huì)導(dǎo)致一些保護(hù)性抗原缺失[5]。Andrianarivo A G 等[20]研 制 出 一 種 疫 苗,該 疫 苗 用Havlogen 和Polygen兩種佐劑滅活新孢子蟲的速殖子,Polygen能夠引起機(jī)體較高的抗體水平,具有較好的免疫原性,但是Polygen是否對(duì)γ干擾素具有很強(qiáng)的刺激,目前還未明確,雖其不能預(yù)防妊娠奶牛的垂直傳播,但通過靜脈注射或肌肉注射能夠達(dá)到一定的預(yù)防作用。Rojo-Montejoa S等用3種不同的佐劑滅活速殖子及3種不同蟲體的數(shù)量來免疫小鼠,發(fā)現(xiàn)氫氧化鋁與CpG 寡核苷酸的混合佐劑能夠防止新孢子蟲病慢性階段,阻止新孢子蟲在大腦中增值。而且研究表明了不同佐劑使疫苗的療效發(fā)生變化[21]。
弱毒苗又稱弱毒活疫苗,是一種病原致病力減弱但仍具有活力的完整病原疫苗,也就是用人工致弱或自然篩選的弱毒株,經(jīng)培養(yǎng)后制備的疫苗。此類疫苗可以刺激機(jī)體產(chǎn)生體液免疫應(yīng)答和細(xì)胞免疫應(yīng)答等多種保護(hù)性反應(yīng)。Marugán-Hernández V等[22]應(yīng)用Nc-1株的SAG4c1.1、轉(zhuǎn)基因SAG4c2.1及野生Nc-1(WT)株制備活疫苗,并對(duì)已感染新孢子蟲的懷孕小鼠進(jìn)行免疫,小鼠病死率為40%、7%和5.6%,產(chǎn)后病死率分別為45%,11.1%和10.8%,證明了野生Nc-1(WT)株制備的弱毒苗對(duì)懷孕小鼠的免疫效果最好,也說明野生毒株的毒力弱。Rojo-Montejo S等[23]分離無毒力Nc-Spain 1H株,用5×105個(gè)活的Nc-Spain 1H 速殖子免疫小鼠,新生兒的病死率降低為2.4%,并激發(fā)Th1型免疫,將速殖子進(jìn)行10倍稀釋,低濃度速殖子可以引起IgG2a水平升高,高濃度速殖子能夠引起IgG1升高,表明Nc-Spain 1H 能夠防治新孢子蟲病。但是目前還沒有弱毒活疫苗可以用于預(yù)防新孢子蟲的感染,一是因?yàn)槿醵久缫蕾囉隗w外細(xì)胞培養(yǎng),需要大量的勞動(dòng)力;二是已經(jīng)用于預(yù)防牛流產(chǎn)的弱毒活疫苗,均導(dǎo)致了懷孕母牛流產(chǎn),同時(shí)顯示了活疫苗對(duì)孕畜具有一定的威脅。在此看來重組蛋白苗及亞單位疫苗對(duì)預(yù)防新孢子蟲更具有吸引力和潛力[24]。
重組蛋白疫苗是指將新孢子蟲的目的抗原基因構(gòu)建在表達(dá)載體上,將已構(gòu)建的表達(dá)蛋白載體轉(zhuǎn)化到細(xì)菌中,在一定的誘導(dǎo)條件下,表達(dá)出大量的抗原蛋白,通過純化后制備的疫苗。Hecker Y P等[25]應(yīng)用重組蛋白rNcSAG1、rNcHSP20和rNcGRA7 制備免疫刺激復(fù)合物并對(duì)感染新孢子蟲的懷孕的母牛進(jìn)行皮下注射,發(fā)現(xiàn)rNcSAG1,rNcHSP20 和rNcGRA7 具有一定的免疫原性,但是不能阻止新孢子蟲的垂直傳播。Lv Q 等人重組NcP78 和NcGRA7免疫蛋白并對(duì)Balb/c小鼠進(jìn)行接種,發(fā)現(xiàn)重組的NcP78和NcGRA7能夠引起Th1和Th2免疫應(yīng)答,使IgG1和IgG2a抗體水平升高,此外,重組NcP78和NcGRA7可以減少新孢子蟲在大腦的寄生及繁殖。雖然這些疫苗不能緩解人工流產(chǎn)的癥狀,但是可以增加后代的出生數(shù)量,對(duì)小鼠感染新孢子蟲具有一定的保護(hù)作用[10]。
基因工程亞單位疫苗是利用DNA 重組技術(shù),將編碼病原體的保護(hù)性抗原的基因?qū)朐思?xì)胞或真核細(xì)胞,使其在受體細(xì)胞中高效表達(dá),分泌具有保護(hù)性的抗原肽鏈。新抱子蟲亞單位疫苗是提取新袍子蟲具有免疫原性的蛋白,加以佐劑制成的[9,26]。Otsuki T 等[27]證 明10 只 桑 蠶 能 夠 表 達(dá)1.7 mg SAG1,17只桑蠶能表達(dá)370μg SRS2,表明桑蠶的表達(dá)系統(tǒng)能大量產(chǎn)生重組抗原應(yīng)用于亞單位疫苗的制備。賈立軍等[28]提取新孢子蟲表面蛋白基因Nc-SAG1,進(jìn)行原核表達(dá),將經(jīng)Western blot鑒定具有免疫活性的重組蛋白與弗氏佐劑混合制備NcSAG1基因工程亞單位疫苗,并免疫小鼠,檢測抗體檢的OD450nm 值為0.688;CD4+/CD8+T 細(xì)胞比值為3.650,均高于對(duì)照組,證明制備的基因工程亞單位疫苗具有一定的免疫效果。高建偉制備的新飽子蟲3種不同佐劑亞單位疫苗按常規(guī)免疫程序免疫小鼠,測得3種佐劑亞單位疫苗的抗體效價(jià)及CD4+T細(xì)胞均高于對(duì)照組,具有一定的保護(hù)作用[9]。
核酸疫苗分為兩種,即DNA 疫苗和RNA 疫苗,它可被細(xì)胞吸納,并在細(xì)胞內(nèi)表達(dá)生成疫苗抗原。與傳統(tǒng)疫苗相比,核酸疫苗具有特異性高、安全性好、制備簡單等特點(diǎn)。核酸疫苗既可以誘導(dǎo)機(jī)體產(chǎn)生保護(hù)性抗體,同時(shí)也可以引起細(xì)胞免疫反應(yīng),特別是細(xì)胞T 淋巴細(xì)胞(cTL)反應(yīng)。賈文影構(gòu)建新袍子蟲核糖體磷蛋白NcP0真核表達(dá)載體,轉(zhuǎn)染Vero細(xì)胞,獲得大量的pVAX1-NcP0質(zhì)粒并添加佐劑免疫沙鼠,計(jì)算疫苗攻毒后pVAX1-NcP0 組和添加Cp-M 佐劑組的保護(hù)率分別為66.7%和70%,證明新孢子蟲DNA 疫苗能夠激活機(jī)體細(xì)胞及體液免疫反應(yīng),對(duì)新孢子蟲病具有一定的預(yù)防作用[29]。
載體疫苗是用基因工程技術(shù)將保護(hù)性抗原基因(目的基因)轉(zhuǎn)移到載體中使之表達(dá)的活疫苗。目前有多種理想的病毒載體,如痘病毒、腺病毒和皰疹病毒等都可以用于活載體疫苗的制備。郭煥平構(gòu)建了含有AMA1基因的腺病毒載體疫苗及核酸疫苗,免疫Balb/c小鼠后腺病毒載體疫苗的IgG、IgGI及IgG2a均高于核酸疫苗,在一定程度上激活機(jī)體免疫反應(yīng)[16]。賈立軍以NcSRS2 基因構(gòu)建重組腺病毒,免疫小鼠測抗體效價(jià)為1∶2 048,證實(shí)了Nc-SRS2重組腺病毒可以作為疫苗預(yù)防新孢子蟲病的可行性[30]。
新孢子蟲疫苗的研究主要是對(duì)新孢子蟲特異性抗原引起細(xì)胞免疫反應(yīng)及體液免疫反應(yīng)進(jìn)行評(píng)估。綜上所述,確定的可以作為疫苗候選基因的抗原蛋白主要有表面蛋白NcSAG1和NcSRS2;致密顆??乖鞍譔cGRA1、NcGRA2、NcGRA6、NcGRA7及NcMAG1;微線抗原蛋白NcMIC1、NcMIC3、Nc-MIC4、NcMIC10 和NcAMA1;棒 狀 體 抗 原 蛋 白NcROP2等。
目前有大量的研究人員對(duì)新孢子蟲特異性抗原進(jìn)行篩選并用已知的試驗(yàn)方法測定其免疫原性的制備疫苗?,F(xiàn)在研究比較廣泛的主要有滅活苗、弱毒苗、基因工程亞單位疫苗、重組蛋白苗、核酸疫苗、活載體疫苗等。弱毒疫苗以及滅活疫苗是研究比較早的人疫苗,在一定程度上都有些不可忽視的缺點(diǎn),因此在預(yù)防新孢子蟲病上不是比較理想的選擇。亞單位疫苗,重組蛋白疫苗以及核酸疫苗具有安全性高,穩(wěn)定性強(qiáng)、制備簡單、運(yùn)輸方便特點(diǎn),在此看來可能比弱毒疫苗和滅活疫苗對(duì)預(yù)防新更具有開發(fā)力及潛力?;钶d體疫苗是現(xiàn)在一個(gè)研究熱點(diǎn),但是重復(fù)使用,可能使效果降低,還不是很理想,有待完善。雖然現(xiàn)在關(guān)于疫苗的研究有很多,但是還沒有有效的疫苗被投入市場來預(yù)防新孢子蟲病,但是相信隨著不斷深入的研究,在不久的將來,一定能夠突破難點(diǎn),最終成為控制新孢子蟲病的重要手段
[1] Bjerkas I,Mohn S F,Presthus J.Unidentified cystforming sporozoon causing encephalomyelitis and myositis in dogs[J].Z Parasitenk,1984,70:271-274.
[2] Dubey J P,Carpenter J L,Speer C A,et al.Newly recognized fatal protozoan disease of dogs[J].J Am Vet Med Assoc,1988,192:1269-1285.
[3] Tomley F M,Soldati D S.Mix and match modules:structure and function of microneme proteins in apicomplexan parasites[J].Trends Parasitol,2001,17:81-88.
[4] 武曉燕,黃曉紅.新孢子蟲侵入宿主細(xì)胞的研究進(jìn)展[J].生命科學(xué),2010,22(9):873-877.
[5] 呂 強(qiáng).犬新抱子蟲宿主細(xì)胞結(jié)合蛋白篩選及其免疫原性分析[D].吉林長春:吉林大學(xué),2013.
[6] 楊濱僮.新袍子蟲P40和MIC6基因的免疫保護(hù)作用研究[D].吉林長春:吉林農(nóng)業(yè)大學(xué),2014.
[7] 楊濱撞,趙 權(quán),賀鵬飛,等.新抱子蟲表面抗原P40基因的克隆及原核表達(dá)[J].中國生物制品學(xué) 雜志,2014,7(6):789-791.
[8] 李 赫,丁 鶴,李建華,等.新抱子蟲NcSAG4基因克隆及原核表達(dá)[J].中國病原生物學(xué)雜志,2012,7(6):446-448.
[9] 高建偉.牛新袍子蟲亞單位疫苗的研究[D].吉林延邊:延邊大學(xué),2011.
[10] Qiang L,Xing S Y,Gong P T,et al.A 78kDa host cell invasion protein of Neo spora caninum as a potential vaccine candidate[J].Exp Parasitol,2015,148:56-65.
[11] 賈立軍,張守發(fā),李男禮.牛源犬新飽子蟲NcG RA7基因的克隆及原核表達(dá)分析[J].中國預(yù)防獸醫(yī)學(xué)報(bào),2013,35(9):773-775.
[12] 金春梅,于龍政,張守發(fā).新抱子蟲NcGRA 2t基因的克隆與生物信息學(xué)分析[J].延邊大學(xué)農(nóng)學(xué)學(xué)報(bào),2013,35(4):313-316.
[13] 焦 石,賈立軍,張立霞,等.犬新抱子蟲MAG1與IFN-y融合基因重組質(zhì)粒的構(gòu)建及原核共表達(dá)[J].中國獸醫(yī)學(xué)報(bào),2013,33(3):386-408.
[14] Liu G Z,Cui X,Hao P,et al.GRA 14,a novel dense granule protein from Neospora caninum[J].Acta Biochem Biophys Sin,2013,7:607-609.
[15] Yin J G,Qu G G,Cao L L,et al.Characterization of Neospora caninum microneme protein 10(NcMIC10)and its potential use as a diagnostic marker for neosporosis[J].Vet Parasitol,2012,187:28-35.
[16] 郭煥平.牛源犬新抱子蟲AMA 1基因核酸疫苗與重組腺病毒疫苗的制備及動(dòng)物免疫[D].吉林延邊:延邊大學(xué),2014.
[17] Srinivasan S,Mueller J,Suana A,et al.Vaccination with microneme protein NcMIC4increases mortality in mice inoculated with Neospora caninum[J].J Parasitol,2007,93(5):1046-55.
[18] Debachea K,Guionaudb C,Alaeddineb F,et al.Vaccination of mice with recombinant NcROP2antigen reduces mortality and cerebral infection in mice infected with Neospora caninum tachyzoites[J].Int J Parasitol,2008,38:1455-1463.
[19] Lei T,Wang H,Liu J,et al.ROP18is a key factor responsible for virulence difference bet-ween toxoplasma gondii and Noespora caninum[J].PLoS One,2014,9(6):e99744.
[20] Andrianarivo A G,Choromanski L,Mc Donough S P,et al.Immunogenicity of a killed whole Neospora caninum tachyzoite preparation formulated with different adjuvants[J].Int J Parasitol,1999,29,1613-1625.
[21] Rojo-Montejoa S,Collantes-Fernándeza E,Regidor-Cerrilloa J,et al.Influence of adjuvant and antigen dose on protection induced by aninactivated whole vaccine against Neospora caninuminfection in mice.[J].Vet Parasitol,2011,175:220-229.
[22] Marugán-Hernández V,Ortega-Mora L M,Aguado-Martínez A,et al.Transgenic Neosporacaninum strains constitutively expressing the bradyzoite NcSAG4protein proved to be safe and conferred significant levels of protection against vertical transmission when used as live vaccines in mice[J].Vaccine,2011,44(29)7867-7874.
[23] Rojo-Montejo S,Collantes-Fernández E,López-Pérez I,et al.Evaluation of the protection conferred by a naturally attenuated Neospora caninumisolate against congenital and cerebral neosporosis in mice[J].Vet Res,2012,43:62.doi:10.1186/1297-9716-43-62.
[24] Michael P,Dadín P,Hemphill A,et al.A live vaccine against Neospora caninum abortions in cattle[J].Vaccine,2015,33:1299-1301.
[25] Hecker Y P,Cóceres V,Wilkowsky S E,et al.A Neospora caninum vaccine using recombinant proteins fails to prevent foetal infection in pregnant cattle after experimental intravenous challenge[J].Vet Immunol Immunop,2014,162:142-153.
[26] 童金水.弓形蟲疫苗研究進(jìn)展[J].吉林畜牧獸醫(yī),2014(7):7-9.
[27] Otsuki T,Dong JH,Kato T,et al.Expression,purification and antigenicity of Neospora caninumantigens using silkworm larvae targeting for subunit vaccines[J].Vet Parasitol,2013,192:284-287.
[28] 賈立軍,張守發(fā),欒 楊,等.牛新孢子蟲NcSAG1基因工程亞單位疫苗的免疫試驗(yàn)[J].畜牧與獸醫(yī),2010,42(1):20-22.
[29] 賈文影.新抱子蟲PO 基因的真核表達(dá)及DNA 疫苗的初步研究[D].吉林延邊:延邊大學(xué),2010.
[30] 賈立軍,于龍政,張守發(fā).表達(dá)牛源犬新孢子蟲NcSRS2基因重組腺病毒的構(gòu)建及免疫原性分析[J].畜牧獸醫(yī)學(xué)報(bào),2012,3(43):446-452.