陳 丹,葉 波,劉燕娟,周鑫鈺,雷湘華,段雍明,朱宏建*
(1.湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)植物保護(hù)學(xué)院,長沙 410128;2.植物病蟲害生物學(xué)與防控湖南省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,長沙 410128;3.湖南省安鄉(xiāng)縣農(nóng)業(yè)局,常德 415000)
水稻紋枯病是由立枯絲核菌(Rhizoctoniasolani)引起的導(dǎo)致水稻減產(chǎn)的重要病害[1],一般可減產(chǎn)10%~30%,發(fā)病嚴(yán)重時(shí)可達(dá)50%。近年來,隨著高產(chǎn)雜交稻品種的推廣,施氮水平的提高,水稻復(fù)種指數(shù)的上升,紋枯病的發(fā)生日趨嚴(yán)重。目前我國水稻紋枯病的防治主要以井岡霉素為主,然而長期單一使用井岡霉素易導(dǎo)致R.solani產(chǎn)生抗藥性[2]。而化學(xué)藥劑的使用易帶來農(nóng)藥殘留、環(huán)境污染等問題,這些問題已引起國內(nèi)外有關(guān)專家的高度關(guān)注。因此,加快新型農(nóng)藥品種研制和采用拮抗微生物來防治水稻紋枯病非常必要。
目前,國內(nèi)外已報(bào)道了多種真菌、細(xì)菌和放線菌等微生物對(duì)水稻紋枯病具有不同程度防治效果[3-8]。Choi等[9]分離得到兩株熒光假單孢桿菌(Pseudomonasfluorescens)mc75和pc78,兩者互作能抑制紋枯病菌肽的生產(chǎn)和生物膜的形成。Wan等[10]報(bào)道,鏈霉菌(Streptomycesplatensis)F-1對(duì)水稻紋枯病有很好的抑制作用。Rabindran等[11]分離了4株對(duì)水稻紋枯病有抑制作用的熒光假單胞菌,其中PfALR2的防治效果最好。王蘭英等[12]從砂仁中分離的4株內(nèi)生細(xì)菌對(duì)水稻紋枯病有較好的抑菌活性,其中SRJ2-4抑菌效果最好,抑菌帶寬度達(dá)到18mm,與其他菌株相比達(dá)極顯著水平。朱曉飛等[13]分離篩選到對(duì)水稻紋枯病菌有強(qiáng)拮抗作用的解淀粉芽胞桿菌(Bacillus amyloliquefaciens)YB-3,具有廣譜高效的植物病原菌拮抗活性。崔宇輝等[14]從采自浙江金華市各地的68份土樣中分離篩選到吸水鏈霉菌(Streptomyces hygroscopicus)Sh-43對(duì)水稻紋枯病菌具有較強(qiáng)的拮抗作用,其抑菌帶寬度為28.3mm。曹琦琦等[15]從不同土壤、植物和紋枯病菌菌核樣品中分離篩選到對(duì)水稻紋枯病菌具有較強(qiáng)拮抗活性的細(xì)菌和放線菌菌株各1株,菌絲生長抑制率分別為75.56%和84.07%。
本試驗(yàn)從湖南省郴州市天鵝山風(fēng)景區(qū)采集的土樣中篩選出一株對(duì)水稻紋枯病菌有拮抗活性的放線菌CZB40菌株,能顯著抑制紋枯病菌的菌核形成。結(jié)合形態(tài)、培養(yǎng)特征以及16SrDNA 序列對(duì)其進(jìn)行了分類鑒定,另外對(duì)其發(fā)酵條件及發(fā)酵液的性質(zhì)進(jìn)行了研究,旨在為進(jìn)一步防治水稻紋枯病提供生防材料。
1.1.1 土壤樣品土壤樣品采集于湖南省郴州市天鵝山風(fēng)景區(qū),于室溫下風(fēng)干,待分離。
1.1.2 供試菌株
本研究所涉及的病原菌均為本實(shí)驗(yàn)室分離、鑒定和保存,分別為水稻紋枯病菌(Rhizoctoniasolani)、草莓灰霉病菌(Botrytiscinerea)、稻瘟病菌(Magnaporthegrisea)、辣椒疫霉病菌(Phytophthoracapsici)、辣椒白絹病菌(Sclerotiumrolfsii)、桃褐腐病菌(Moniliniafructicola)。
1.1.3 供試培養(yǎng)基及試劑
發(fā)酵初始培養(yǎng)基配方為:可溶性淀粉20g、蛋白胨3g、K2HPO40.5g、NaCl 0.5g、MgSO4·7H2O 0.5g、FeSO4·7H2O 0.5g、蒸餾水1 000 mL,pH 7.2。拮抗試驗(yàn)培養(yǎng)基為馬鈴薯葡萄糖瓊脂(PDA)培養(yǎng)基。所用試劑均由長沙鵬潤生物公司提供的市售生化試劑(分析純)。
采用稀釋涂布平板法[16]進(jìn)行放線菌的分離。將采集的土壤稀釋成不同濃度的土壤稀釋液,分別滴加到含有3‰抑菌劑(K2Cr2O7)的高氏1號(hào)培養(yǎng)基平板上,用無菌涂布棒涂勻,靜置30min后,將培養(yǎng)皿放在28 ℃溫箱中倒置培養(yǎng)。采用畫線法純化菌株,所得菌株斜面保存,備用。
按照朱宏建等[17]的方法進(jìn)行拮抗放線菌的篩選及測定。用細(xì)菌過濾器過濾發(fā)酵液。采用含毒介質(zhì)法進(jìn)行拮抗測定,每皿中加入菌株過濾液原液3mL,倒入12mL PDA 培養(yǎng)基(55℃左右)混勻,制成平板,待冷卻后,每皿中央接種水稻紋枯病菌菌餅(直徑5mm),設(shè)清水對(duì)照,每個(gè)處理重復(fù)3次。靜置1h后放入28℃恒溫箱中培養(yǎng),待對(duì)照菌落長滿整個(gè)平板,用十字交叉法測量菌落直徑,記錄結(jié)果并按下式計(jì)算抑制率:
將生長狀況一致,直徑為5 mm 的紋枯病菌菌餅置于經(jīng)細(xì)菌過濾器過濾后的發(fā)酵液與PDA 混合的培養(yǎng)基上,置于28 ℃培養(yǎng),記錄菌核形成的時(shí)間及菌核數(shù)目。
拮抗菌株對(duì)紋枯病菌菌核萌發(fā)的影響按照鄭愛萍等[18]的方法進(jìn)行。將滅菌的載玻片浸入融化的PDA 瓊脂中,使之附上一層瓊脂,取出放在培養(yǎng)皿內(nèi),每皿1片,皿內(nèi)加5mL無菌水保濕。選取大小、形成時(shí)間一致的菌核置于發(fā)酵菌液中(濃度稀釋為108cfu/mL)處理10s,然后放在附有瓊脂的載玻片上,每片3粒,粒距1.5cm,每處理8片24粒,置于28 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng),24h后鏡檢菌核的萌發(fā)情況。菌絲的萌發(fā)指數(shù)測定[19]:在玻片背面距菌核邊緣2 mm 處畫一圈,低倍鏡下觀察,以菌絲長出圈外者定為萌發(fā)菌絲。萌發(fā)菌絲按以下標(biāo)準(zhǔn)分級(jí):0—萌發(fā)菌絲數(shù)為0;1—萌發(fā)菌絲數(shù)為1~20;2—萌發(fā)菌絲數(shù)為21~50;3—萌發(fā)菌絲數(shù)為51~80;4—萌發(fā)菌絲數(shù)為81~140;5—萌發(fā)菌絲數(shù)在140以上。再按以下公式計(jì)算菌絲萌發(fā)指數(shù):
1.5.1 拮抗菌株CZB40形態(tài)觀察和生理生化特性
形態(tài)觀察及生理生化測定方法均按照阮繼生和Kauffmann 等[20-21]的方法進(jìn)行。
1.5.2 拮抗菌株的分子生物學(xué)鑒定
1.5.2.1 放線菌株DNA 的提取與PCR 擴(kuò)增
參照Kauffmann 等[22]及Nikodinovic等[23]的方法提取放線菌基因組DNA,并采用通用引物1492R(5′-GGTTACCTTGTTACGACTT-3′)和27F(5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3′)進(jìn)行PCR 擴(kuò)增,PCR 反應(yīng)條件為:94 ℃預(yù)變性5 min;94 ℃變性30s,56 ℃復(fù)性30s,72 ℃延伸90s,33個(gè)循環(huán);72 ℃延伸10min。用1.0%的瓊脂糖凝膠對(duì)PCR 擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行電泳檢測。采用北京天根生化科技有限公司的瓊脂糖凝膠DNA 回收試劑盒回收目的片段,并采用該公司的pGM-T 克隆試劑盒進(jìn)行PCR 擴(kuò)增產(chǎn)物的連接以及連接產(chǎn)物的轉(zhuǎn)化。挑選陽性克隆送上海生工生物工程技術(shù)有限公司測序。
1.5.2.2 系統(tǒng)發(fā)育分析
將測定的16SrDNA 序列提交到GenBank 數(shù)據(jù)庫,用BLAST 軟件與GenBank中已知的16SrDNA 序列進(jìn)行同源性比較,選取屬內(nèi)同源性較高的放線菌16SrDNA 序列,用MEGA 4.0軟件進(jìn)行系統(tǒng)發(fā)育分析,繪制菌株的系統(tǒng)進(jìn)化樹[24]。
操作方法同1.3。
1.7.1 碳、氮源的優(yōu)化
采用單因子變量法,分別以大米粉、蔗糖、馬鈴薯淀粉、玉米粉、麥芽糖、葡萄糖代替對(duì)照培養(yǎng)基中的碳源(可溶性淀粉),進(jìn)行碳源的優(yōu)化;分別以酵母粉、硝酸鉀、大豆粉、硝酸鈉、硫酸銨代替對(duì)照培養(yǎng)基中的氮源(蛋白胨),進(jìn)行氮源優(yōu)化。刮取1.3中篩選到的菌株的孢子接入三角瓶(300 mL 容量)的100mL液體種子培養(yǎng)基中,28 ℃,200r/min振蕩培養(yǎng)48h;液體種子以5%的接種量接入含100mL各種培養(yǎng)基中的三角瓶中(300 mL 容量),28 ℃,200r/min發(fā)酵培養(yǎng)72h。按照1.3中的方法,測定各個(gè)處理的抑菌效果。
1.7.2 均勻設(shè)計(jì)法優(yōu)化發(fā)酵條件
用獲得的最優(yōu)碳、氮源代替對(duì)照培養(yǎng)基中的碳、氮源作為發(fā)酵培養(yǎng)基,并將碳源、氮源、NaCl、Mg-SO4、K2HPO4、pH、溫度作為影響發(fā)酵條件的7 個(gè)因素,每個(gè)因素分別按一定濃度梯度設(shè)置5個(gè)水平,設(shè)計(jì)U20(57)的均勻設(shè)計(jì)表。按照1.3中的方法,將各個(gè)處理的發(fā)酵液稀釋5倍,進(jìn)行抑菌效果測定。
1.8.1 紫外照射穩(wěn)定性測定
取CZB40菌株發(fā)酵液100mL置于無菌培養(yǎng)皿中,在距20 W 紫外燈10cm 處,分別照射1、3、5、7、9、12h,然后用含毒介質(zhì)法測定其抑菌活性,并以未處理的發(fā)酵液為對(duì)照。
1.8.2 pH 穩(wěn)定性測定
將菌株發(fā)酵液用1mol/L的NaOH 和1mol/L的HCl分別調(diào)至pH 為4、5、6、7、8、9、10,靜置2h后將其分別調(diào)回自然pH(pH=7.3),測定抑菌活性,并以未處理的發(fā)酵液為對(duì)照。
1.8.3 熱穩(wěn)定性測定
將等體積的菌株發(fā)酵液分別在50、60、70、80、90、100 ℃下處理1h,室溫冷卻,未經(jīng)處理的發(fā)酵液作為對(duì)照,測定抑菌活性。
圖1 菌株CZB40與水稻紋枯病菌對(duì)峙培養(yǎng)Fig.1 Strain CZB40confrontation culture with Rhizoctonia solani
從郴州市天鵝山自然風(fēng)景區(qū)采集的18份土壤中篩選得到217個(gè)放線菌菌落,以水稻紋枯病菌為指示菌,篩選出5 株具有拮抗作用的菌株,其中以CZB40菌株的抑菌效果最好(圖1),該菌株的5 倍無菌發(fā)酵濾液對(duì)指示菌的菌絲生長抑制效果也十分顯著(圖2)其抑制率高達(dá)90.45%。
圖2 菌株CZB40對(duì)水稻紋枯病菌的抑制作用Fig.2 Inhibition of the strain CZB40 against Rhizoctonia solani
按1.4小節(jié)方法處理后,菌核的菌絲萌發(fā)指數(shù)降低了56.30%,菌核形成時(shí)間延長了36h,平均每皿形成的菌核數(shù)僅為2粒,而以清水為對(duì)照處理的每皿形成的菌核數(shù)為17粒(表1)。
表1 CZB40菌株對(duì)紋枯病菌菌核形成及萌發(fā)的影響(6次重復(fù))1)Table 1 Effects of CZB40strain on sclerotium formation and germination against Rhizoctonia solani(6replicates)
2.3.1 CZB40菌株的形態(tài)特征
CZB40菌株在高氏1號(hào)培養(yǎng)基上生長,菌落緊密,基內(nèi)菌絲深紅褐色,后期深橙色至紅褐色,可溶色素褐黃色。氣生菌絲很豐富,在掃描電鏡下觀察發(fā)現(xiàn),氣生菌絲體形成孢子鏈時(shí),孢子絲直、柔曲,孢子呈長圓柱形,表面光滑(圖3)。
2.3.2 CZB40菌株的分子生物學(xué)鑒定
PCR擴(kuò)增及上海生工生物工程有限公司測序及拼接結(jié)果顯示,CZB40菌株的16SrDNA 擴(kuò)增產(chǎn)物的大小為1 474bp。將菌株的16SrDNA 序列提交至GenBank中(KJ751551),并用BLAST 軟件與Gen-Bank中已公開的16SrDNA序列進(jìn)行同源性比較,計(jì)算所測定的CZB40菌株的16SrDNA 全序列遺傳距離,并根據(jù)遺傳距離用MEGA 4.0軟件構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(圖4)。結(jié)果表明,CZB40菌株與極暗黃鏈霉菌(S.fulvissimus)的16SrDNA序列相似性達(dá)到99%。
圖3 放線菌CZB40菌株的孢子形態(tài)Fig.3 Morphology of the spores of strain CZB40
圖4 菌株CZB40的系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.4 Phylogenetic tree of strain CZB40
2.3.3 生理生化特性
CZB40菌株在高氏1號(hào)固體培養(yǎng)基中生長產(chǎn)生褐黃色色素。菌株能分解利用纖維素,使明膠液化,能水解淀粉,能產(chǎn)生硫化氫,能使牛奶胨化,但不能使牛奶凝固。根據(jù)生理生化特征分析,再結(jié)合形態(tài)學(xué)與培養(yǎng)特征及分子生物學(xué)鑒定結(jié)果,將其鑒定為極暗黃鏈霉菌(S.fulvissimus)。
抗菌譜測定結(jié)果表明,該菌株的發(fā)酵濾液對(duì)供試的多種植物病原菌均有抑制作用,菌絲生長抑制率為27.94%~85.71%(表2)。其中,對(duì)桃褐腐病菌的抑菌效果較好,抑制率達(dá)到85.71%。在5%和1%水平上顯著高于其他幾種病原菌。
2.5.1 不同碳、氮源對(duì)菌株發(fā)酵液抑菌活性的影響
在供試的6種碳源和5種氮源中,最優(yōu)的碳源是玉米粉,對(duì)指示菌的生長抑制率為91.76%,最優(yōu)的氮源是酵母粉,抑制率為92.50%(表3)。所以,選擇玉米粉和酵母粉作為最優(yōu)的碳源、氮源進(jìn)行發(fā)酵條件研究。
表2 菌株CZB40對(duì)病原菌的抑制效果1)Table 2 Inhibition of strain CZB40against the fungal phytopathogens
表3 不同碳源、氮源對(duì)菌株CZB40發(fā)酵液抑菌活性的影響1)Table 3 Effects of different carbon and nitrogen sources on the antibacterial activity of fermentation broth of strain CZB40
2.5.2 均勻設(shè)計(jì)試驗(yàn)優(yōu)化發(fā)酵條件
選擇最優(yōu)碳源(玉米粉)、最優(yōu)氮源(酵母粉)、NaCl、MgSO4、K2HPO4、pH、溫度為影響發(fā)酵條件的7個(gè)因素,每個(gè)因素設(shè)置5個(gè)水平,共20個(gè)處理,設(shè)計(jì)U20(57)的均勻設(shè)計(jì)表。將菌株CZB40按表中設(shè)計(jì)的20種發(fā)酵條件進(jìn)行發(fā)酵,試驗(yàn)結(jié)果用DPS數(shù)據(jù)庫處理系統(tǒng)進(jìn)行分析和統(tǒng)計(jì),得到各個(gè)發(fā)酵條件下的濾液對(duì)水稻紋枯病菌的抑制效果,在濾液稀釋10倍時(shí)對(duì)菌絲生長抑制率最高達(dá)到94.85%,比優(yōu)化前明顯提高(表4)。從表中可知,該菌株的最優(yōu)發(fā)酵條件是玉米粉25g/L、酵母粉5g/L、MgSO40.2g/L、NaCl 0.8g/L、K2HPO40.4g/L、水1 000mL、29℃、pH 6.0。
表4 均勻設(shè)計(jì)發(fā)酵條件優(yōu)化結(jié)果1)Table 4 The results of uniform design optimization of fermentation conditions
對(duì)試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行線性相關(guān)分析和逐步回歸分析,本例擬合的線性回歸方程和逐步回歸方程經(jīng)方差分析檢驗(yàn)均無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),因此做線性擬合不合理。再進(jìn)行二次多項(xiàng)式逐步回歸,結(jié)果如下:
模型統(tǒng)計(jì)學(xué)分析結(jié)果如下:方程的相關(guān)系數(shù)r=0.915,F(xiàn)=7.06,F(xiàn)0.05(8,11)=2.95,F(xiàn)0.01(8,11)=4.74,F(xiàn)>F0.01(8,11)>F0.05(8,11)。根據(jù)F檢驗(yàn),回歸方程有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,其中P=0.002 1(<0.05),顯著。按該數(shù)學(xué)模型得到的最佳培養(yǎng)條件是:玉米粉25g/L、酵母粉5g/L、NaCl 0.8g/L、MgSO40.2g/L、K2HPO40.4g/L、pH=6、T=29℃。各自變量偏回歸系數(shù)的顯著性檢驗(yàn)結(jié)果見表5,菌株發(fā)酵液對(duì)水稻紋枯病菌抑制作用影響最大的變量從大到小依次是:X1X6>X1X4>X6X7>X1X5>X4X5>X3X4>X2X3>X4X7。
表5 各自變量偏回歸系數(shù)的顯著性檢驗(yàn)Table 5 Partial regression independent variables significance test of convergence
2.6.1 紫外穩(wěn)定性
菌株發(fā)酵液距20 W 紫外燈10cm 照射1、3、5、7、9、12h后,與原發(fā)酵液相比較,對(duì)水稻紋枯病菌的抑制率變化不大,說明菌株CZB40發(fā)酵液對(duì)紫外線不敏感。
2.6.2 酸堿穩(wěn)定性
放線菌菌株CZB40發(fā)酵液在酸性和堿性條件下比較敏感,穩(wěn)定性差。分別用1mol/L 的HCl和1mol/L的NaOH 調(diào)原發(fā)酵液pH 至4.0和10.0,處理2h后,調(diào)回至原發(fā)酵液的pH,對(duì)水稻紋枯病菌的抑制率為53.80%和52.58%,與原發(fā)酵液90.45%相比,下降明顯(圖5)。因此在發(fā)酵液活性物質(zhì)分離純化和使用過程中應(yīng)盡量保持pH 6~7的條件。
2.6.3 熱穩(wěn)定性
放線菌菌株CZB40 發(fā)酵液熱穩(wěn)定性較好。與原發(fā)酵液相比,在50 ℃以下處理1h后,抑制率沒有變化。隨著溫度的升高,對(duì)水稻紋枯病菌的抑制率開始出現(xiàn)下降,在100 ℃處理1h后,抑制率為68.78%,與原發(fā)酵液90.45%相比,僅下降了21.67%(圖6),說明菌株CZB40發(fā)酵液能耐高溫。
圖5 不同pH 對(duì)CZB40發(fā)酵液活性的影響Fig.5 Effects of different pH values on the activity of fermentation extracts of CZB40
圖6 不同溫度對(duì)CZB40發(fā)酵液活性的影響Fig.6 Effects of different temperatures on the activity of fermentation extracts of CZB40
目前研究者普遍認(rèn)為:菌核在水稻紋枯病的傳播中起重要作用,但目前報(bào)道的生防菌作用機(jī)制都是基于抑制病原菌菌絲生長為靶標(biāo)的,抑制菌核形成的生防放線菌鮮有報(bào)道。鄭愛萍等[18]曾報(bào)道過致黃假單胞菌對(duì)水稻紋枯病菌菌核形成具有明顯抑制作用,并能使菌核的菌絲萌發(fā)率降低69.0%。張慧雯等[25]曾報(bào)道鏈霉菌702所產(chǎn)生的抗真菌活性物質(zhì),對(duì)水稻紋枯病菌的EC50為1.128 05mg/L,且對(duì)菌核萌發(fā)有較強(qiáng)的抑制作用。因此,篩選抑制紋枯病菌菌核形成及萌發(fā)的生防菌在生產(chǎn)上更有應(yīng)用價(jià)值。本研究篩選到的生防放線菌菌株CZB40對(duì)紋枯病菌菌絲生長抑制率高達(dá)90.45%,并且能使菌核的菌絲萌發(fā)指數(shù)降低56.30%,顯著抑制菌核的形成。
鏈霉菌產(chǎn)生的抗菌活性物質(zhì)多為次級(jí)代謝產(chǎn)物,其生產(chǎn)效率不僅與菌種自身的性能相關(guān),而且還要有最優(yōu)的發(fā)酵條件。本研究對(duì)放線菌菌株CZB40需要的碳源、氮源進(jìn)行了篩選,在此基礎(chǔ)上對(duì)其發(fā)酵條件,如溫度、pH、NaCl、MgSO4、K2HPO4等,進(jìn)行均勻設(shè)計(jì)優(yōu)化。另外對(duì)菌株CZB40發(fā)酵液性質(zhì)進(jìn)行了初步研究,這些研究結(jié)果為該菌株抗菌化合物的分離純化、結(jié)構(gòu)鑒定和拮抗機(jī)理的研究奠定了基礎(chǔ)。
極暗黃鏈霉菌(S.fulvissimus)是一種能產(chǎn)生重要活性物質(zhì)的放線菌,已經(jīng)有大量研究人員對(duì)其代謝產(chǎn)物進(jìn)行了報(bào)道。Malik 等[26]發(fā)現(xiàn)S.fulvissimus分泌抗菌蛋白,該蛋白表現(xiàn)出對(duì)金黃葡萄球菌(Staphylococcusaureus)MRSA 菌株有顯著抑菌作用。它可能成為用于控制耐藥性革蘭氏陽性細(xì)菌新藥物的重要來源。Ohbuchi等[27]報(bào)道S.fulvissimus產(chǎn)生溶解酶制劑,表現(xiàn)出N-乙酰氨基葡萄糖苷酶和溶菌酶活性,可以迅速裂解細(xì)菌細(xì)胞。
本研究是國內(nèi)首次報(bào)道使用極暗黃鏈霉菌(S.fulvissimus)拮抗水稻紋枯病菌。獲得的菌株CZB40具有較高的殺菌活性和穩(wěn)定性,可能是一種高效的新型生物農(nóng)藥的出發(fā)菌株,具有良好的開發(fā)前景,進(jìn)一步的研究可從宏觀方面對(duì)菌株CZB40發(fā)酵液中抗菌活性物質(zhì)進(jìn)行分離純化、結(jié)構(gòu)鑒定,并通過小區(qū)試驗(yàn)、田間試驗(yàn)檢驗(yàn)其生防效果,進(jìn)一步開發(fā)為生物農(nóng)藥;從微觀方面可應(yīng)用分子生物學(xué)手段研究其拮抗物質(zhì)生物合成的功能基因及合成機(jī)理,并通過對(duì)野生菌株進(jìn)行改良,使之符合生防要求。目前,本課題組已經(jīng)開始分離純化菌株CZB40發(fā)酵液中抗菌活性物質(zhì)的主要成分。
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