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改良小鼠尾靜脈注射器聯(lián)合微量注射泵在Micro-CT 碘海醇增強(qiáng)造影中的應(yīng)用

2015-01-16 05:38王艷杰阿不來海提張宏偉吳向未馮文磊
醫(yī)學(xué)研究雜志 2015年2期
關(guān)鍵詞:針頭注射器造影劑

王艷杰 阿不來海提 張宏偉 吳向未 馮文磊 張 猛

嚙齒類動物因體積小、實驗重復(fù)性和可控性好、且成本低廉而成為科學(xué)研究中最為廣泛使用的動物模型[1]。Micro-CT,又稱微型CT 或小動物CT,具有微米級的分辨率。它以較低的輻射劑量和高質(zhì)量的容積測量影像及定量分析功能,為小動物成像研究提供解決方案,在臨床前生物醫(yī)學(xué)無創(chuàng)成像方面得到廣泛應(yīng)用[2,3]。Micro -CT 對一些疾病模型(如腫瘤模型、包蟲病模型等)的研究,很多情況下要動態(tài)觀察模型的發(fā)生、發(fā)展過程,這就需要保證小動物存活。掃描前,先將造影劑經(jīng)尾靜脈注入小鼠體內(nèi),尾靜脈穿刺成功與否很大程度上決定實驗?zāi)芊袢〉美硐氲慕Y(jié)果。由于Micro-CT 專業(yè)造影劑價格較為昂貴,筆者嘗試使用性價比較高的醫(yī)用碘海醇造影劑,如何提高圖像采集成功率及降低小鼠死亡率。在參照有關(guān)小鼠尾靜脈穿刺實踐的基礎(chǔ)上,進(jìn)一步改進(jìn)穿刺設(shè)備及操作技術(shù),運(yùn)用于小鼠Micro - CT 腹部增強(qiáng)造影中,取得了良好效果。

對象與方法

1.實驗動物及分組:健康昆明(KM)小鼠100 只,雌雄不限,6 ~8 周,體重20 ±2g,由石河子大學(xué)動物中心提供,隨機(jī)分為5 組,每組20 只。應(yīng)用5 組設(shè)備行尾靜脈穿刺:①常規(guī)1ml 注射器及2.5#諾和銳針頭;②常規(guī)1ml 注射器及4.5#針頭;③常規(guī)輸液器7#針頭;④常規(guī)輸液器5#針頭;⑤改良4.5#針頭及輸液連接裝置(圖1)。

圖1 各種型號注射器實物圖

2.材料和器材:skyscan1176 Micro-CT 活體成像系統(tǒng)[美國布魯克(Bruker)公司];PHD 22/2000 微量精密注射泵(美國Harvard 公司,精度為0.0001μl/h);VMR 小動物麻醉機(jī)[美國馬特(Matrx)公司];異氟烷、普通醫(yī)用碘海醇造影劑、常規(guī)1ml 注射器及2.5#諾和銳針頭、常規(guī)1ml 注射器及4.5#針頭、常規(guī)輸液器7#針頭、常規(guī)輸液器5#針頭、改良4.5#針頭及輸液連接器、75%乙醇、0.9%氯化鈉溶液(250 毫升/瓶)均由石河子大學(xué)醫(yī)學(xué)院第一附屬醫(yī)院提供。

3 改良注射器針頭并高壓滅菌后使用:將諾和銳2.5#針芯熱嫁接到4.5#針頭輸液器的輸液枕上,使輸液器的7#和5#針頭變?yōu)?.5#針頭(圖1e)。

4.圖像采集過程:(1)尾靜脈擴(kuò)張:首先對小鼠尾部行備皮處理,之后將小鼠固定,僅尾部顯露,鼠尾浸泡于50℃左右的溫水中約2min,用酒精棉球擦拭尾部,以擴(kuò)張尾靜脈[4]。(2)操作方法:小鼠行Micro-CT 掃描前需禁食8h,禁水4h,以減小腹部氣體干擾。使用3.4%異氟烷在麻醉揮發(fā)罐中使小鼠麻醉,調(diào)節(jié)合適的刻度,時刻觀察小鼠生命體征,避免麻醉過度,實驗過程中麻醉維持流量為300ml/min。待麻醉滿意后,實驗者將小鼠固定于Micro-CT 掃描床上,使用膠帶將小鼠四肢和胸部固定,要求松緊度適宜。同時由助手調(diào)整小鼠位置,使一側(cè)面小鼠尾靜脈朝向正上方。穿刺部位選擇尾部中下1/2 ~2/3 處。左手壓住小鼠尾部遠(yuǎn)端,右手持針頭,從選擇的靜脈正上方平行進(jìn)針,利用可機(jī)械化設(shè)置泵入時間及劑量的微量注射泵持續(xù)注入約0.3ml 造影劑(無此設(shè)備可使用其他方式代替),穿刺成功后用輸液貼牢固地固定在掃描床邊緣。(3)圖像采集:5 組穿刺設(shè)備經(jīng)尾靜脈注入碘海醇造影劑,利用Micro-CT 行增強(qiáng)造影掃描,獲得掃描圖像經(jīng)系統(tǒng)軟件進(jìn)行圖像重建,觀察重建圖像能否出現(xiàn)增強(qiáng)期。如圖2 所示。(4)止血:分別行以上5 組操作后,操作者用左手拇指壓住注射針頭,撤離注射器,交由另一人用紗布壓住穿刺部位反折尾部進(jìn)行止血。(5)記錄:記錄穿刺過程中5 組設(shè)備的穿刺成功次數(shù)和掃描后小鼠死亡數(shù)目。

圖2 注入碘海醇造影劑和不同設(shè)備穿刺后采集的圖像

5.統(tǒng)計學(xué)方法:應(yīng)用SPSS 17.0 軟件進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)分析,計數(shù)資料組間比較選用卡方檢驗,以P <0.05 為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

結(jié) 果

經(jīng)過實驗驗證,各種型號的注射器優(yōu)缺點如下:①使用2.5#諾和銳針頭的注射器,尾靜脈注射成功率高,但不能在行CT 時持續(xù)泵入造影劑,另由于針體較短,固定時容易脫出;②常規(guī)1ml 注射器及4.5#針頭,穿刺成功率較2.5#針頭低,不能在行CT 時持續(xù)泵入造影劑;③常規(guī)輸液器7#針頭,穿刺成功率較4.5#針頭低;④常規(guī)輸液器5#針頭,穿刺成功率較7#針頭高,但較4.5#較低;⑤改良4.5#針頭及輸液連接裝置,穿刺成功率高,在微量注射泵的配合下,可實現(xiàn)造影劑精準(zhǔn)、持續(xù)的泵入且無人員暴露于輻射下,目前為最優(yōu)配置。采用前4 組穿刺時,經(jīng)尾靜脈注射的造影劑很快便經(jīng)過腎臟進(jìn)行代謝,導(dǎo)致增強(qiáng)造影效果不明顯。采用第5 組改良的方式進(jìn)行小鼠尾靜脈注射可以方便控制造影劑的出入量和速度,提高了穿刺的成功率和效率,同時達(dá)到了良好的造影效果。統(tǒng)計結(jié)果顯示,各組間尾靜脈穿刺成功率比較,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(χ2=16.000,P =0.003),圖像采集成功率比較,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(χ2=13.429,P=0.009),小鼠死亡率比較,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(χ2=11.905,P =0.018)。其中第1 組穿刺成功率最高為95%,圖像采集成功率最低為42.10%,小鼠死亡率為30%;第2組穿刺成功率為80%,圖像采集成功率為43.75%,小鼠死亡率為50%;第3 組穿刺成功率最低為50%,圖像采集成功率為50.00%,小鼠死亡率為45%;第4組穿刺成功率為60%,圖像采集成功率為58.33%,小鼠死亡率為15%;第5 組穿刺成功率為90%,圖像采集成功率最高為94. 44%,小鼠死亡率最低為10%;綜合評價各組穿刺成功率、圖像采集率以及小鼠死亡率:第1 組穿刺成功率最高(95%),但圖像采集率偏低,小鼠死亡率為30%(6 只);第4 組小鼠死亡率較低為15%(3 只),但穿刺成功率和圖像采集率也較低;第5 組經(jīng)改良的穿刺設(shè)備,穿刺成功率較高(90%),同時圖像采集率達(dá)最高(94.44%),小鼠死亡率僅為10%(2 只),同時可以控制注射速度和劑量,就避免了一次性大劑量注射動物不能耐受的情況,有效控制了小鼠的死亡(圖3)。

討 論

適宜的環(huán)境溫度對尾靜脈擴(kuò)張有一定影響,應(yīng)保持實驗室內(nèi)溫度在28℃左右,特別是在新疆維吾爾族自治區(qū),在冬季較寒冷條件下,適宜的溫度能夠使血流通暢,降低穿刺阻力,另外應(yīng)用熱水浴浸泡法也可以使尾靜脈擴(kuò)張[5]。在進(jìn)行穿刺時,可以通過回抽血來判斷穿刺是否成功。使用改良組穿刺設(shè)備,穿刺后也較易固定,即使小鼠稍微活動也不會影響穿刺效果,在持針方式上,操作者用左手壓住小鼠尾部遠(yuǎn)端向下壓低稍傾斜,右手持針,斜面向上,從選擇的靜脈正上方平行進(jìn)針,針尖緊貼皮下刺入血管后再進(jìn)針約5mm,感覺無阻力后,稍回撤針見有回血,再輕推無阻力即可注射。在操作過程中,要避免采用其他不規(guī)范手式持針在針頭扎入血管后又換手帶來的針頭位移問題。

圖3 不同穿刺設(shè)備的尾靜脈穿刺成功率(%)、小鼠死亡率(%)、圖像采集成功率(%)

一些科研工作者在進(jìn)行Micro -CT 腹部臟器增強(qiáng)造影實驗中,時常會涉及經(jīng)小鼠尾靜脈注射造影劑的問題。小鼠在正常生理體位下,尾部血管有4 根明顯可見,即背腹面上各有一根動脈,兩個側(cè)面各有一根靜脈,平均直徑小于0.6 ±0.5mm[6]。通常情況下尾靜脈注射有著起效快,血藥濃度高等優(yōu)勢,但由于小鼠尾靜脈較細(xì),穿刺困難而限制了其使用[7,8]。另一方面,Micro -CT 增強(qiáng)成像使用的專用造影劑Microfil[9]、Aurovist - gold nanoparticle angiographic agent、Fenestra LC/VC 等,注入小鼠體內(nèi)后可在相應(yīng)臟器部位停留數(shù)小時,能夠滿足單次注射增強(qiáng)掃描,但價格較為昂貴,比普通醫(yī)用造影劑要高幾十倍以上[10,11]。小鼠尾靜脈單次注射碘海醇造影劑的劑量一般不宜超過0.4ml,如果大劑量迅速推注,會容易造成小鼠超負(fù)載性猝死,特別是注射混懸型或高濃度造影劑時,更容易造成并發(fā)血管栓塞性猝死,所以應(yīng)盡量控制好注射劑量和速度。筆者在實驗中常采用的注射劑量為0.3ml,盡管如此,前4 組方式注射后有部分小鼠出現(xiàn)呼吸急促、窒息和心臟驟停等猝死現(xiàn)象,可能與造影劑進(jìn)入太快,而導(dǎo)致的造影劑超載性猝死。若劑量過小,達(dá)不到造影效果,應(yīng)盡量使劑量和造影效果均衡。使用正確的注射器規(guī)格也很重要,有研究者使用1ml 注射器以及2ml 和2.5ml 注射器也取得了一定的實驗成果[12,13]。筆者也發(fā)現(xiàn)1ml 注射器的4.5#針頭在尾靜脈穿刺中有較好的成功率,而在小鼠Micro-CT 增強(qiáng)造影實踐中發(fā)現(xiàn)上述方法也存在弊端,如不能持續(xù)將造影劑以小劑量緩慢按時間-劑量需要,送入鼠體,會導(dǎo)致圖像采集失敗。因此筆者采用的是改良4.5#針頭及輸液連接裝置,配合微量注射泵,將造影劑持續(xù)泵入。

雖然Micro-CT 掃描時輻射劑量較低,但積累到一定程度同樣對實驗人員造成身體損害,碘海醇在小鼠體內(nèi)代謝快,如果使用人工持續(xù)不斷地將0.3ml 的造影劑推入鼠體會導(dǎo)致以下問題:①進(jìn)入鼠體造影劑劑量不精確;②時間不易掌握;③CT 掃描時,輻射對實驗人員身體損害大。利用微量注射泵,可以程序化設(shè)定注射時間以及造影劑注射的速率和劑量,這樣就可以避免實驗人員暴露于輻射源下。

經(jīng)過改良的設(shè)備進(jìn)行小鼠尾靜脈注射,穿刺成功率、圖像采集率和小鼠死亡率均有優(yōu)化,與其余組相比差異有統(tǒng)計學(xué)意義。這種改良的穿刺方式,使得Micro-CT 掃描的基于碘海醇的腹部增強(qiáng)造影效果得到提升,降低了科研成本,這對于后續(xù)進(jìn)行Micro -CT 增強(qiáng)造影的實驗研究廣泛開展提供非常必要的幫助。

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3 王寶明. Micro-CT 系統(tǒng)幾何校正算法研究及實現(xiàn)[D].西安:西安電子科技大學(xué)碩士論文.2012,3

4 溫軍業(yè),問明,楊冬野,等. C57BL/6 小鼠鼠尾靜脈注射不同方法的對比[J].中華實驗外科雜志,2013,30(6):1317

5 孫美芳,黃德武. 熱水浴浸泡法在大小鼠尾靜脈注射中的應(yīng)用[J].實驗動物科學(xué)與管理,1999,16(3):36

6 蘇麗娜,郭劍偉,饒光玲.小鼠尾靜脈注射與斷頭取血實驗技術(shù)的改進(jìn)[J].大理學(xué)院學(xué)報,2010,9(6):25 -27

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12 彭艷,姚吉龍.大鼠尾靜脈注射方法的比較[J].海南醫(yī)學(xué),2012,23(2):112

13 陳育堯,黃雪玲. 大鼠尾靜脈注射法[J]. 南方醫(yī)科大學(xué)學(xué)報,2009,29(6):1312

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