徐 丹 姜 潮 陳 昱 艾 君 王曉艷 李校堃
(吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)生物反應(yīng)器與藥物開發(fā)教育部工程研究中心,長(zhǎng)春 130118)
結(jié)核病(Tuberculosis,TB)是由結(jié)核分枝桿菌(Mycobacteria tuberculosis,MTB)引起的通過空氣傳播的人獸共患傳染病。據(jù)世界衛(wèi)生組織報(bào)道,在2011年,約有870萬(wàn)名新增結(jié)核病例(13%感染了艾滋病病毒)和140萬(wàn)人死于結(jié)核?。?]。結(jié)核病已成為我國(guó)乃至世界危害最嚴(yán)重的疾病之一。1921年,Calmette和Guérin研制出減毒分枝桿菌Bacille Calmette-Guérin(BCG),BCG是目前應(yīng)用最廣泛的結(jié)核分枝桿菌疫苗,但BCG保護(hù)力不穩(wěn)定為0~80%,BCG不能提供有效的免疫保護(hù)力來(lái)抵抗結(jié)核分枝桿菌的感染,尤其對(duì)處于潛伏期的結(jié)核病患者不會(huì)產(chǎn)生任何效果[2,3],所以急需一種有效的疫苗來(lái)控制結(jié)核病的蔓延,目前研究最多的是重組BCG、DNA疫苗和亞單位疫苗。
MPB64蛋白是MTB基因組RD2區(qū)基因編碼的蛋白,分子量約為23 kD,只存在于MTB毒株中,不存在于BCG中[4]。MPB64是MTB培養(yǎng)物濾過蛋白的主要成分之一,占分泌蛋白總量的8%,亦是最早被發(fā)現(xiàn)的MTB復(fù)合群特異性抗原,可誘導(dǎo)肺結(jié)核患者的淋巴細(xì)胞增殖并可產(chǎn)生高水平的IFN-γ,能引起較強(qiáng)的細(xì)胞和體液免疫,具有開發(fā)成結(jié)核病亞單位疫苗和檢測(cè)試劑盒的潛力。本研究在桿狀病毒表達(dá)載體系統(tǒng)中表達(dá)MPB64,希望獲得具有免疫原性的重組蛋白,為MPB64的表達(dá)提供新途徑,為結(jié)核病的檢測(cè)和亞單位疫苗的研究提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。
1.1 材料
1.1.1 質(zhì)粒細(xì)菌 含有MPB64-His基因序列(昆蟲密碼子優(yōu)化)的pUC57載體、E.coli DH5α菌種均由本實(shí)驗(yàn)室保存;pFastBac載體、E.coli DH10Bac感受態(tài)購(gòu)自Invitrogen公司。
1.1.2 試劑盒 脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染試劑盒、Bac-to-Bac表達(dá)系統(tǒng)試劑盒、Sf 9昆蟲細(xì)胞、Sf-900II無(wú)血清培養(yǎng)基購(gòu)自 Invitrogen;PCR酶、限制性內(nèi)切酶、DNA Marker 10 000、DNA連接酶購(gòu)自大連寶生物;質(zhì)粒提取試劑盒購(gòu)自北京索萊寶公司;His標(biāo)簽抗體購(gòu)自abcom公司;BALB/c小鼠由溫州醫(yī)科大學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心提供(18只,雌性,6~8周齡);IFN-γ檢測(cè)試劑盒購(gòu)自上海巧伊生物技術(shù)有限公司。
1.2 方法
1.2.1 設(shè)計(jì)引物 從pUC57-CFP10-ESAT-6-MPB64-His載體中擴(kuò)增MPB64-His目的基因片段,運(yùn)用Primer 5.0軟件設(shè)計(jì)含有BamHⅠ和PstⅠ酶切位點(diǎn)及保護(hù)堿基的上游引物和下游引物,通過PCR克隆得到N端含有6個(gè)His標(biāo)簽的MPB64基因,上游引物 5'CGGGATCCATGAGGATAA3',下游引物5'CTGCAGCTAGTGATGGTGATG3'。
1.2.2 PCR反應(yīng)體系 上下游引物各1 μl,模板質(zhì)粒 1 μl,ExTaq 酶 0.25 μl,dNTP 4 μl,10 × buffer 5 μl,超純水 37.75 μl,50 μl反應(yīng)體系。94℃ 預(yù)變性 5 min,94℃ 30 s,60℃ 30 s,72℃ 45 s,30 個(gè)循環(huán)后72℃延伸8 min。
1.2.3 重組pFastBac-MPB64-His載體的構(gòu)建PCR獲得的MPB64-His片段和pFastBac質(zhì)粒分別用BamHⅠ和PstⅠ酶雙酶切并回收需要的片段,目的片段與空載體pFastBac連接后轉(zhuǎn)化DH5α感受態(tài),挑選單菌落進(jìn)行PCR和酶切驗(yàn)證并由華大基因測(cè)序,測(cè)序正確的單克隆提質(zhì)粒進(jìn)行下一步實(shí)驗(yàn)。
1.2.4 重組Bacmid-MPB64-His載體的構(gòu)建pFastBac-MPB64-His質(zhì)粒轉(zhuǎn)化含有Bacmid載體的DH10Bac感受態(tài)(方法根據(jù)說(shuō)明書),轉(zhuǎn)化后的DH10Bac 菌涂布在五抗(K 50 μg/ml,T 10 μg/ml,G 7 μg/ml,IPTG 40 μg/ml,X-gal 100 μg/ml)固體培養(yǎng)基的平皿上,37℃倒置培養(yǎng)48 h,藍(lán)白斑鑒定陽(yáng)性菌落,挑取單菌落在五抗平皿中劃線培養(yǎng),至整個(gè)平皿中只有白色菌落,挑取單菌落利用Bacmid中的M13片段和目的基因片段兩端引物進(jìn)行PCR鑒定。
1.2.5 重組桿狀病毒的制備 取兩份100 μl的SF-900Ⅱ培養(yǎng)基,一份加入 8 μl重組 Bacmid-MPB64-His質(zhì)粒,另一份加入6 μl Cellfectin Reagen試劑,將兩份溶液混合均勻并室溫孵育45 min,6孔板加入對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的Sf 9細(xì)胞,每孔1.0×106個(gè),27℃靜止培養(yǎng)1 h,輕輕移去培養(yǎng)基,加入上述混合物,27℃靜止培養(yǎng)4 h,移去上述混合溶液,加入2 ml培養(yǎng)基,濕盒中27℃培養(yǎng)72 h后可以看到細(xì)胞發(fā)生病變,當(dāng)發(fā)生病變的細(xì)胞大于50%時(shí),收細(xì)胞和培養(yǎng)基,800 r/min離心5 min,取上清即是P1代病毒,P1代病毒加入2%胎牛血清4℃避光儲(chǔ)存。P1代病毒連續(xù)轉(zhuǎn)染細(xì)胞3次獲得P4代病毒。
1.2.6 測(cè)定P4代病毒滴度 對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞加入6孔板,每孔2 ml 5×105個(gè)/ml,貼壁培養(yǎng)過夜,P4代病毒用培養(yǎng)基稀釋成103~108,移去上清液,每孔加病毒稀釋液1 ml,27℃培養(yǎng)1 h后,移去病毒液,將提前在40℃保溫的4%低熔點(diǎn)瓊脂和1.3×的培養(yǎng)基按1∶3比例混合,并迅速加入6孔板,自然凝固后置于27℃濕盒中靜止培養(yǎng)10~15 d,至每孔中的蝕菌斑數(shù)連續(xù)2 d不變,選擇蝕斑數(shù)在3~20個(gè)的孔,病毒滴度的計(jì)算公式:滴度(pfu/ml)=每孔蝕斑數(shù)×稀釋倍數(shù)/1 ml。
1.2.7 轉(zhuǎn)染條件的優(yōu)化 用P4代病毒轉(zhuǎn)染對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期細(xì)胞,細(xì)胞密度2×106個(gè)/ml,27℃搖床100 r/min 培養(yǎng),不同時(shí)間取樣(24、48、60、72、84、96、108、120 h),并取同樣細(xì)胞設(shè)不同感染復(fù)數(shù)(2,3,4,5,6)組,96 h后取樣,SDS-PAGE電泳后,取膠300 mA轉(zhuǎn)膜75 min,5%脫脂奶粉室溫封閉1 h,2.5%脫脂奶粉2 000倍稀釋anti-his單克隆抗體,室溫孵育2 h,TBST洗滌3次,每次5 min,3 000倍稀釋二抗,室溫孵育1 h,TBST稀釋3次,曝光。
1.2.8 蛋白純化 A液為20 mmol/L PB,pH8.0;B液為20 mmol/L PB+500 mmol/L NaCl,pH8.0;C 液為20 mmol/L PB+400 mmol/L咪唑,pH8.0。收集細(xì)胞培養(yǎng)液,調(diào)pH至8.0上Q柱100%A液平衡,16%B液沖洗雜蛋白,30%B液洗脫目的蛋白,100%B液再生Q柱。Q柱收集液上Ni柱,A液平衡,7.5%C液沖洗雜蛋白,50%C液洗脫目的蛋白,100%C液再生Ni柱。純化后蛋白超濾離心除鹽,經(jīng)SDS-PAGE電泳后,利用灰度分析測(cè)定純度,BCA蛋白濃度測(cè)定試劑盒檢測(cè)蛋白濃度,計(jì)算蛋白表達(dá)量。
1.2.9 免疫小鼠 BALB/c小鼠隨機(jī)分為三組,每組6只??瞻讓?duì)照組腹腔注射生理鹽水,陽(yáng)性對(duì)照組注射卡介苗BCG,實(shí)驗(yàn)組采用腹腔注射MPB64蛋白免疫BALB/c小鼠3次,每只每次0.05 mg(生理鹽水組0.2 ml/只),每次間隔2周,每次免疫后第3天斷尾取血,血清儲(chǔ)存在-80℃?zhèn)溆谩?/p>
1.2.10 血清中抗體滴度的檢測(cè) BCG和純化的蛋白MPB64分別在碳酸鹽包被緩沖液中稀釋到1.0 μg/ml,100 μl/孔包被酶標(biāo)板 4℃過夜,PBST 洗3次,分別加入PBS稀釋的血清100 μl/孔,20倍稀釋起始,依次倍比稀釋12個(gè)濃度梯度,空白孔用PBS代替,37℃孵育2 h,PBST 洗3次,每孔100 μl加5 000倍稀釋的二抗,37℃孵育1 h,PBST洗3次,加底物顯色,酶標(biāo)儀檢測(cè)490 nm波長(zhǎng)下的吸光值。
1.2.11 脾臟細(xì)胞分泌IFN-γ的檢測(cè) BALB/c小鼠免疫后第9周處死,無(wú)菌條件下分離脾臟細(xì)胞,每孔40萬(wàn)個(gè)細(xì)胞鋪96孔板。每孔加入10 μg培養(yǎng)基稀釋的MPB64蛋白,空白對(duì)照加入等量培養(yǎng)基,37℃培養(yǎng)72 h后取上清,ELISA方法檢測(cè)血清中IFN-γ濃度,實(shí)驗(yàn)步驟按照說(shuō)明書。
1.2.12 重組蛋白MPB64對(duì)脾臟細(xì)胞的增殖活性
BALB/c小鼠免疫后第9周處死,無(wú)菌條件下分離脾臟細(xì)胞,每孔40萬(wàn)個(gè)細(xì)胞鋪96孔板。稀釋成不同濃度的重組蛋白給藥,最高濃度100 μg/孔,連續(xù)2倍稀釋10個(gè)梯度。以 PBS作為空白對(duì)照。37℃培養(yǎng)72 h后每孔加25 μl MTT,繼續(xù)培養(yǎng)4 h,小心的除去上清,每孔加120 μl DMSO,震蕩10 min至結(jié)晶溶解。在630 nm和570 nm雙波長(zhǎng)下測(cè)定吸光度,計(jì)算重組蛋白對(duì)脾臟細(xì)胞的增殖活性。
2.1 Bacmid-MPB64-His表達(dá)載體構(gòu)建示意圖 桿狀病毒表達(dá)載體Bacmid-MPB64-His的構(gòu)建,如圖1所示??寺〉腗PB64-His基因插入到桿狀病毒轉(zhuǎn)移載體pFastBac的BamHⅠ和 PstⅠ酶切位點(diǎn)之間。重組轉(zhuǎn)移載體pFastBac-MPB64-His轉(zhuǎn)染DH10Bac感受態(tài)細(xì)胞,并在幫助質(zhì)粒的作用下與DH10Bac中的表達(dá)載體Bacmid在mini-Tn7位點(diǎn)發(fā)生轉(zhuǎn)座,獲得重組MPB64-His質(zhì)粒。
2.2 目的基因的PCR擴(kuò)增 MPB64-His基因包括MPB64的687 bp和其后的His標(biāo)簽以及加兩端的酶切位點(diǎn)共744 bp,結(jié)果與預(yù)期一致,如圖2所示。
2.3 重組pFastBac-MPB64-His質(zhì)粒的雙酶切驗(yàn)證提取pFastBac-MPB64-His質(zhì)粒,用 BamHⅠ和 PstⅠ雙酶切,酶切大小片段與預(yù)期結(jié)果一致,如圖3所示。
2.4 重組Bacmid-MPB64-His載體的PCR驗(yàn)證提取Bacmid-MPB64-His質(zhì)粒,以MPB64-His的上游引物和M13的下游引物做PCR驗(yàn)證,電泳結(jié)果與預(yù)期值1 223 bp一致,如圖4所示。
圖1 桿狀病毒表達(dá)載體的構(gòu)建Fig.1 Construction of recombinant baculovirus expression vector
圖2 PCR擴(kuò)增MPB64-His基因Fig.2 PCR product of MPB64-His gene
2.5 昆蟲細(xì)胞感染病毒后的形態(tài)學(xué)鑒定 重組Bacmid-MPB64-His載體在轉(zhuǎn)染試劑的介導(dǎo)下轉(zhuǎn)染對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的昆蟲細(xì)胞,昆蟲細(xì)胞感染病毒72 h后,在顯微鏡下觀察形態(tài)變化,細(xì)胞停止生長(zhǎng)分裂,細(xì)胞內(nèi)有粒狀物出現(xiàn),細(xì)胞表面出芽,出泡,部分細(xì)胞裂解,如圖5所示。
圖3 pFastBac-MPB64-His雙酶切鑒定Fig.3 Identification of recombinant plasmid pFastBac-MPB64-His
圖4 PCR鑒定重組桿狀病毒DNAFig.4 Identification of recombinant baculovirus DNA by PCR
2.6 蛋白的表達(dá) P3代病毒轉(zhuǎn)染對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的昆蟲細(xì)胞,72 h后收集上清經(jīng)15%SDS-PAGE電泳顯示在23 kD有蛋白表達(dá),如圖6所示。P4代病毒轉(zhuǎn)染對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的昆蟲細(xì)胞,收集上清做Western blot鑒定,證明細(xì)胞感染病毒48 h后有蛋白表達(dá),96 h時(shí)蛋白表達(dá)量最高,感染復(fù)數(shù)(MOI)為4時(shí)蛋白收獲最高,如圖7所示。
2.7 蛋白的純化 收集上清上樣于Q柱,洗脫樣品在SDS-PAGE電泳顯示目的條帶在含0.15 mol/L NaCl的PB緩沖液中洗脫,洗脫樣品上樣于Ni親和層析柱,用含咪唑的PB緩沖液洗脫,樣品經(jīng)12%SDS-PAGE電泳顯示目的蛋白在含0.2 mol/L咪唑的PB緩沖液中洗脫?;叶确治鰷y(cè)定蛋白純度為91%。洗脫樣品除鹽后測(cè)定蛋白濃度,計(jì)算上清中蛋白收量為35 mg/L,如圖8所示。
2.8 血清中抗體效價(jià)測(cè)定 MPB64免疫組血清中抗體效價(jià)的測(cè)定在20~5 120倍間呈S形曲線,最佳稀釋倍數(shù)為2 000倍。MPB64免疫組明顯高于BCG對(duì)照組,結(jié)果如圖9所示。
圖5 正常及感染后的Sf 9細(xì)胞形態(tài)Fig.5 Normal Sf 9 and Sf 9 cells infected after 72 h
圖6 病毒感染細(xì)胞后的蛋白表達(dá)Fig.6 Protein expression after virus infected cells
圖7 Western blot檢測(cè)不同時(shí)間和感染復(fù)數(shù)表達(dá)蛋白表達(dá)情況Fig.7 Detection of expression of recombinant MPB64-His protein in different infection time and various MOI infection by Western blot
圖8 MPB64蛋白純化結(jié)果Fig.8 Purification of MPB64
圖9 血清抗體的滴度Fig.9 Serum antibody titer
2.9 脾臟細(xì)胞分泌IFN-γ的檢測(cè) 免疫后的第9周,取小鼠脾臟細(xì)胞培養(yǎng)在96孔板,加入10μg蛋白MPB64刺激,72 h后培養(yǎng)基中IFN-γ的含量為35.75 pg/ml,明顯高于空白對(duì)照組的1.28 pg/ml,如圖10所示。
圖10 培養(yǎng)基上清中IFN-γ的含量Fig.10 Supernatant levels of IFN-γ
圖11 MPB64促脾臟細(xì)胞增殖研究Fig.11 MPB64 promoted splenic lymphocytes cells proliferation
2.10 重組蛋白對(duì)脾臟細(xì)胞的增殖活性驗(yàn)證 酶標(biāo)儀檢測(cè)570 nm波長(zhǎng)下的吸光值,數(shù)據(jù)如圖11所示,由數(shù)據(jù)顯示重組蛋白對(duì)免疫過的小鼠脾臟細(xì)胞有明顯的促增殖作用,在蛋白濃度0.2~100 μg/ml之間呈劑量依賴性。
自1990年以來(lái),TB已經(jīng)受到世界各國(guó)的重視,每年新增病例以及死亡人數(shù)持續(xù)減少,但由于耐藥TB的出現(xiàn)以及結(jié)核病例感染艾滋病毒,使得TB控制的進(jìn)展極為緩慢。我國(guó)在全球22個(gè)TB重災(zāi)區(qū)中僅次于印度排名第二[5,6]。TB的治療費(fèi)用高,且因耐藥甚至耐多藥株的出現(xiàn)使TB的多種藥物作用降低,尤其是耐多藥TB的治療副作用較大,治療周期延長(zhǎng)。
BCG仍是目前預(yù)防TB唯一可用的疫苗。BCG的制備和傳代過程中丟失了部分與保護(hù)力相關(guān)的基因。接種BCG可顯著降低兒童TB的發(fā)病率和死亡率,但對(duì)成人的免疫效果極不穩(wěn)定,保護(hù)力為0~80%,而且BCG仍存在一定毒力,最近研究顯示BCG與臨床致病結(jié)核分枝桿菌有很大不同,BCG對(duì)流行的臨床菌株北京株缺乏有效作用[7]。
亞單位疫苗與BCG相比,具有組分明確、生產(chǎn)周期短、價(jià)格低廉、無(wú)毒安全等優(yōu)點(diǎn),已受到國(guó)內(nèi)外眾多學(xué)者的青睞,目前已知的保護(hù)性抗原有MTB早期分泌蛋白ESAT6、CFP10、MPB64和Ag85B復(fù)合物等[8]。
桿狀病毒表達(dá)載體系統(tǒng)(BEVS)是1983年由Smith等[9]建立,具有蛋白表達(dá)水平高、周期短、對(duì)目的蛋白有翻譯后修飾作用等優(yōu)點(diǎn)[10,11]。它幾乎可以表達(dá)任何生物(從細(xì)菌到人體組織)的基因產(chǎn)物和進(jìn)行任何細(xì)胞定位(細(xì)胞內(nèi)、細(xì)胞外周質(zhì)),已廣泛用于生物制藥、基因工程及疫苗的研究及生產(chǎn),其中在該系統(tǒng)中生產(chǎn)的流感疫苗和豬瘟亞單位疫苗具有良好的效果[12,13]。
本實(shí)驗(yàn)在桿狀病毒表達(dá)載體系統(tǒng)成功地表達(dá)了結(jié)核分枝桿菌蛋白MPB64并進(jìn)行純化,又進(jìn)一步驗(yàn)證重組蛋白MPB64的免疫原性,證明重組蛋白可以刺激BALB/c小鼠產(chǎn)生抗體,提高BALB/c小鼠血清中IFN-γ的含量。IFN-γ可激活巨噬細(xì)胞,增強(qiáng)巨噬細(xì)胞殺傷能力,抑制MTB生長(zhǎng),最終產(chǎn)生抗TB的保護(hù)效應(yīng)。
目前,我國(guó)結(jié)核感染皮試診斷及流行病學(xué)調(diào)查主要采用PPD(結(jié)核桿菌精致純蛋白衍生物)皮試。但PPD中存在致病性分枝桿菌、環(huán)境中的分枝桿菌及BCG所共有的抗原,因而不能區(qū)分BCG接種、非致病性分枝桿菌感染和結(jié)核桿菌感染,特異性和敏感性均不理想。因MPB64只存在于致病性結(jié)核分枝桿菌,不存在于作為疫苗的BCG中,純化后的重組蛋白除可作為疫苗外,可用于制備檢測(cè)試劑盒,檢測(cè)接種人群的抗體表達(dá)量。對(duì)比PPD檢測(cè)可以區(qū)別BCG免疫和MTB感染。本課題組在以上實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)之上,將繼續(xù)對(duì)MPB64免疫原性進(jìn)一步檢測(cè),并對(duì)重組蛋白MPB64進(jìn)行保護(hù)力的探究和嘗試,利用重組蛋白MPB64對(duì)TB檢測(cè)進(jìn)行開發(fā)。
[1]趙 鋼,杜 芳.結(jié)核性腦膜炎臨床診斷思路[J].中國(guó)現(xiàn)代神經(jīng)疾病雜志,2013,13(1):1-4.
[2]Skeiky YA,Sadoff JC.Advances in tuberculosis vaccine strategies[J].Nat Rev Microbiol,2006,4(6):469-476.
[3]Fine PE.Variation in protection by BCG:implications of and for heterologous immunity [J].Lancet,1995,346(8986):1339-1345.
[4]Kamath AT,F(xiàn)eng CG,Macdonald M,et al.Differential protective efficacy of DNA vaccines expressing secreted proteins of Mycobacteria tuberculosis[J].Infect Immun,1999,67(4):1702-1707.
[5]Centers for Disease Control and Prevention.Development of new vaccines for tuberculosis,recommendations of the advisory council for the elimination of tuberculosis(ACET)[J].Morb Mortal Wkly Rep,1998,47:1-6.
[6]Floyd K,Blanc L,Raviglione M,et al.Resources required for global tuberculosis control[J].Science,2002,295(3):2040-2041.
[7]Tsenova L,Harbacheuski R,Sung N,et al.BCG vaccination confers poor protection against M.tuberculosis HN878-induced central nervous system disease[J].Vaccine,2007,25(28):5126-5132.
[8]Doherty TM,Andersen P.Tuberculosis vaccine development[J].Curr Opin Pulm Med,2002,8(3):183-187.
[9]Smith GE,F(xiàn)raser MJ,Summers MD.Molecular engineering of the Autographa californica nuclear polyhedrosis virus genome:deletion mutations within the polyhedrin gene[J].J Virol,1983,46(2):584-593.
[10]Schmidt FR.Recombinant expression systems in the pharmaceutical industry[J].Appl Microbiol Biotechnol,2004,65:363-372.
[11]Van ND,F(xiàn)ortunati E,Ehlert E,et al.Baculovirus infection of nondividing mammalian cells:mechanisms of entry and nuclear transport of capsids[J].J Virol,2001,75:951-970.
[12]Blanchard P,Mahe D,Cariolet R,et al.Protection of swine against post-weaning multisystemic wasting syndrome(PMWS)by porcine circovirus type 2(PCV2)proteins[J].Vaccine,2003,21:4565-4575.
[13]Cox MJ,Hollister JR.FluBlok,a next generation influenza vaccine manufactured in insect cells[J].Biologicals,2009,37:182-189.