劉柏含,高艷霞,王占義*,姬朝光,宮培剛
(1.長春市口腔醫(yī)院 頜面外科,吉林 長春130051;2.吉林大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院,吉林 長春130021)
眾所周知,胰島素樣生長因子-1(insulinlike growth factor-1,IGF-1)是一種重要的調(diào)控因子,因其結(jié)構(gòu)與胰島素相類似而得名[1,2]。目前,血管內(nèi)皮生長因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)是直接作用于血管內(nèi)皮而且作用最強(qiáng)的生長因子,F(xiàn)rerich B等[3]利用IGF-1和 VEGF成功構(gòu)建組織工程人工血管,發(fā)現(xiàn)兩種生長因子聯(lián)用可以獲得更好的結(jié)果,同時發(fā)現(xiàn)IGF-1可以有效的促進(jìn)多種細(xì)胞分泌VEGF,通過增強(qiáng)血管的穩(wěn)定性從而促進(jìn)血管生成和新骨形成,然而,IGF-1如何誘導(dǎo)VEGF表達(dá)的機(jī)制仍在探索中。本實(shí)驗(yàn)以體外培養(yǎng)的骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(bone marrow mesenchymal stem cells,BMSCs)為研究對象,外源性地加入IGF-1后檢測細(xì)胞中 VEGF、HIF-1α和p-MEK 等相關(guān)信號蛋白的表達(dá),同時加入MNK抑制劑CGP 57380和HIF-1α抑制劑YC-1后再檢測含外源性IGF-1的細(xì)胞中VEGF的表達(dá),從而為探討IGF-1誘導(dǎo)VEGF表達(dá)的可能機(jī)制提供實(shí)驗(yàn)室數(shù)據(jù)基礎(chǔ)。
1.1.1 實(shí)驗(yàn)動物 6個月齡雄性新西蘭大白兔,購自吉林大學(xué)白求恩醫(yī)學(xué)部實(shí)驗(yàn)動物中心。
1.1.2 試劑 L-BMSCs(GIBCO BRL,USA)、胎牛血清(GIBCO公司,USA)、Percoll細(xì)胞分離液(Pharmacia,Biotec,USA) 、抗 CD29、CD44、VEGF、HIF-1α 和 p-MNK 單 抗 (Santa Cruz Biotech,USA),HRP-羊抗兔IgG購于鼎國生物技術(shù)有限公司。
1.2.1 骨髓間充質(zhì)細(xì)胞(BMSCs)分離與培養(yǎng) 取新西蘭大白兔3%戊巴比妥鈉(30mg/1ml/kg)耳緣靜脈緩慢注射麻醉,無菌下暴露雙側(cè)股骨,牙科鉆鉆孔,用含有0.1ml肝素的10ml注射器負(fù)壓吸取骨髓血2-5ml與等量L-BMSCs混合,800rpm/min,離心8min;棄上清,制成細(xì)胞懸液;再將細(xì)胞懸液輕輕加到離心管內(nèi)的Percoll淋巴細(xì)胞分離液面上2 500rpm/min,離心30min,抽取培養(yǎng)液與分離液液面之間的單個核細(xì)胞層細(xì)胞,加入L-BMSCs沖洗,1 000r/min,離心8min,反復(fù)兩次;用含10%胎牛血清的重懸細(xì)胞并計數(shù),調(diào)細(xì)胞濃度為5×106個細(xì)胞/ml,接種于50ml塑料培養(yǎng)瓶中,每瓶接種3ml。將細(xì)胞置于37℃下5%CO2、95%濕度孵箱中培養(yǎng),接種1天后半量換液,其后每2天換液1次。待細(xì)胞80%~90%融合時,棄去培養(yǎng)液,加入0.25%胰酶,37℃消化細(xì)胞。吸取細(xì)胞懸液離心洗滌,培養(yǎng)液重懸細(xì)胞,以1∶2在培養(yǎng)瓶中進(jìn)行傳代培養(yǎng),此為第1代細(xì)胞。同上方法,細(xì)胞依次傳代為第2代、第3代,直至第5代。
1.2.2 細(xì)胞鑒定 取培養(yǎng)的5代細(xì)胞,消化制成密度為1.0×106/mL的單細(xì)胞懸液,接種到含有蓋片的6孔培養(yǎng)板孔內(nèi),每孔接種細(xì)胞2ml,37℃下5%CO2孵箱培養(yǎng)過夜。取出蓋片,用PBS洗3次,加入CD29單克隆抗體,室溫下孵育60min;用PBST洗3次,加入HRP標(biāo)記的二抗,繼續(xù)孵育60min,用PBST洗3次,加底物顯色后,顯微鏡下觀察,記錄結(jié)果。
1.2.3 實(shí)驗(yàn)分組 實(shí)驗(yàn)分4組進(jìn)行:取第5代細(xì)胞繼續(xù)傳代培養(yǎng),同樣濃度接種4瓶,培養(yǎng)4h后,按下列分組加入培養(yǎng)液,進(jìn)行條件培養(yǎng)。
①每瓶加3ml含3%FCS的BMSCs溶液培養(yǎng);
②每瓶加3ml含50ng/ml的IGF-1和3%小牛血清的BMSCs培養(yǎng)液;
③每瓶加3ml含5ng/ml CGP 57380、50ng/ml的IGF-1和3%小牛血清的BMSCs培養(yǎng)液;
④每瓶加3ml含5ng/ml YC-1、50ng/ml的IGF-1和3%小牛血清的BMSCs培養(yǎng)液。
條件培養(yǎng)24h后收集細(xì)胞用于免疫印跡分析。
1.2.4 免疫印跡分析
1.2.4.1 樣品制備 將條件培養(yǎng)的細(xì)胞,棄去培養(yǎng)上清,用預(yù)冷的PBS洗滌細(xì)胞2次。每孔加入含各種蛋白酶抑制劑的RIPA裂解液1ml,于冰上裂解15min。裂解完后,將裂解液和細(xì)胞碎片移至1.5 ml離心管中。用超聲裂解儀5KHz,每次裂解1-2 s,重復(fù)10次。4℃下,1 2000rpm/min,離心30 min。將離心所得上清轉(zhuǎn)移至新的1ml的離心管中。采用BCA試劑盒進(jìn)行蛋白定量后,加入等體積2×上樣緩沖液后沸水浴煮蛋白10min,用于免疫印跡分析。
1.2.4.2 免疫印跡 將條件培養(yǎng)的細(xì)胞裂解液經(jīng)SDS-PAGE垂直板電泳對蛋白進(jìn)行分離、采用半干燥轉(zhuǎn)膜儀將凝膠中的蛋白轉(zhuǎn)印到PVDF膜上、再通過用5%脫脂奶粉封閉、先后分別與第一抗體(β-Actin、VEGF、HIF-1α和p-MNK)、二抗孵育后,加ECL試劑顯色,凝膠成像系統(tǒng)拍照、記錄結(jié)果。
本實(shí)驗(yàn)原代培養(yǎng)的骨髓細(xì)胞傳代培養(yǎng)至第5代時,BMSCs呈梭型、漩渦狀貼壁生長。其表面標(biāo)志物CD29、CD44的免疫組化染色顯示細(xì)胞純度在90%以上,見圖1。
圖1 BMSCs的免疫組化鑒定
IGF-1下游 MAPK信號通路相關(guān)分子及VEGF的表達(dá)免疫印跡結(jié)果顯示,與對照組相比,VEGF的表達(dá)明顯上調(diào),其上游的 HIF-1α及MAPK相關(guān)的兩個信號蛋白表達(dá)明顯增高,如圖2。加入CGP 57380和YC-1后,VEGF表達(dá)減弱,外源性IGF-1的作用減弱,如圖3。
骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞是一類來源于中胚層的具有強(qiáng)大多向分化潛能的成體干細(xì)胞,因?yàn)椴皇軅惱硐拗瓶梢宰泽w移植并可以成骨、成脂、成神經(jīng)向組織分化而被視為移植首選種子細(xì)胞[4-9]。BMSCs在骨髓中含量極低,僅占骨髓有核細(xì)胞的0.001%,且隨著年齡增大數(shù)量逐漸減少,因此,獲得相當(dāng)數(shù)量的高純度的BMSCs是科學(xué)研究和臨床治療的應(yīng)用基礎(chǔ)[10]。
圖2 條件培養(yǎng)細(xì)胞內(nèi)VEGF、HIF-1α、p-MNK表達(dá)的免疫印跡分析
圖3 條件培養(yǎng)細(xì)胞內(nèi)VEGF表達(dá)的免疫印跡分析
IGF-1與VEGF的協(xié)同作用關(guān)系早有研究。Slomiany MG[11]通過向體外培養(yǎng)的人視網(wǎng)膜色素上皮細(xì)胞系中加入不同劑量的IGF-1發(fā)現(xiàn) HIF-1表達(dá)劑量依賴性增加,VEGF也相應(yīng)增加。Smith LE的研究表明,VEGF介導(dǎo)了IGF-1的新血管生成作用,IGF-1受體拮抗劑抑制VEGF的同時抑制視網(wǎng)膜新血管的形成[12]。Ryo Fukuda等[13]發(fā)現(xiàn)IGF-1能夠通過PI3K-AKT和MAPK兩條通路誘導(dǎo)HIF-1介導(dǎo)的VEGF的表達(dá)。本研究中,我們發(fā)現(xiàn)外源性上調(diào)p-ERK和p-MNK的表達(dá)進(jìn)而促進(jìn)了VEGF的表達(dá)上調(diào),用CGP 57380和YC-1分別阻斷p-MNK和 HIF-1α的作用后,外源性IGF-1誘導(dǎo)的VEGF表達(dá)上調(diào)的效應(yīng)減弱,這暗示IGF-1通過ERK-MNK信號通路誘導(dǎo)VEGF的表達(dá),但是并不意味著IGF-1與VEGF劑量與時間水平越高越好。多種腫瘤細(xì)胞中IGF-1與VE協(xié)同作用GF水平高于正常,例如和IGF-1和VEGF的雙重抑制會有效抑制卵巢癌生長[14]。最近的一項(xiàng)研究表明:IGF-1可以抗氧化應(yīng)激[15]。
綜上,尋找IGF-1信號通路相關(guān)蛋白并確定其特異性調(diào)節(jié)靶點(diǎn)更有益于相關(guān)疾病治療。
[1]Celiker R,Arslan S.Comparison of serum insulin–like growth factor-1and growth hormone levels in osteoporotic and non-osteporotic postmenopausal wonmen[J].Rheumatol Int,2000,19(6):205.
[2]李 彥,牛忠英,湯楚華,司少艷.三維培養(yǎng)條件下胰島素樣生長因子-1對人牙周膜細(xì)胞增殖及早期成骨向分化的影響[J].中華口腔醫(yī)學(xué)雜志,2011,3(46):3.
[3]Frerich B,Linde mann N,Kurtz-Hoffmann J,et al.In vitro model of a vascular stroma for the engineering of vascularized tissues[J].Int J Oral Maxillofac Surg,2001,30(5):414.
[4]Bi Y,Gong M,Zhang X,et al.Pre-activation of retinoid signaling facitates neuronal differention of mesenchymal stem cells[J].Dev Growth Differ,2010,52(5):419.
[5]Zhang XQ,Li X,Wu T,et al.Isolation,culture and chondrogenic differentiation of goat bone marrow mesenchymal stem cells[J].Nan Fang Yi Ke Da xue xue Bao,2009,29(3):419.
[6]Shi ZB,Wang KZ.Effects of recombinant adeno-associated viral vectors on angiopoiesis and osteogenesis in cultured rabbit bone marrow stem cells via co-expressing HVEGF and HBMP genes:apreliminary study in vitro[J].Tissue Cell,2010,42(5):314.
[7]Sotiropoulou PA,Perez SA,Salagianni M,et al.Characterization of the optimal culture conditions for clinical.scale production of human mesenchymal stem cells[J].Stem Cells,2006,24(2):462-471.
[8]Li Y,Chopp M.Marrow stromal cell transpiantation in stoke and traumatic brain injury[J].Neurosci lett,2009,456(3):120.
[9]Saulnier N,Lattanzi W,Puglisi MA,et al.Messenchymal stromal cells multipotency and plasticity:induction toward the hepat ic lineage[J].Eur Rev Med Pharmacol Sci,2009,13,suppl 1:71.
[10]Abdallah BM,Kassem M.Human mesenchymal stem cells:from basic biology to clinical applications[J].Gene Ther,2008,15(2):109.
[11]Slomiany MG,Rosenzweig SA.IGF-1-induced VEGF and IGFBP-3secretion correlates with increased HIF-1alpha expression and activity in retinal pigment epithelial cell line D407[J].Invest Ophthalmol Vis Sci,2004,45(8):2838.
[12]Smith LE et al.Regulation of vascular endothelial growth factor-dependent retinal neovascularization by insulin-like growth factor-1receptor[J].Nat Med,1999,5(12):1390.
[13]Fukuda R,Hirota K,F(xiàn)an F,Jung YD,Ellis LM,Semenza GL.Insulin-like growth factor 1induces hypoxia-inducible factor 1-mediated vascular endothelial growth factor expression,which is dependent on MAP kinase and phosphatidylinositol 3-kinase signaling in colon cancer cells[J].J Biol Chem,2002,277(41):38205.
[14]Shao M,et al.Targeting the insulin growth factor and the vascular endothelial growth factor pathways in ovarian cancer[J].Mol Cancer Ther,2012,11(7):1576.
[15]Chen C,Xu Y,Song Y.IGF-1gene-modified muscle-derived stem cells are resistant to oxidative stress via enhanced activation of IGF-1R/PI3K/AKT signaling and secretion of VEGF[J].Mol Cell Biochem,2013Oct 15.[Epub ahead of print]