占美曉, 李 勇, 胡寶山, 何 旭, 黃建文, 陸驪工
近年來,以射頻消融術(shù)(RFA)為主的微創(chuàng)治療在早期肝癌治療中的療效越來越得到認(rèn)可。然而研究發(fā)現(xiàn)RFA術(shù)后的5年復(fù)發(fā)率卻可高達(dá)70%,術(shù)后高復(fù)發(fā)率已成為影響患者RFA術(shù)后遠(yuǎn)期療效的重要因素[1-2]。 對于血清甲胎蛋白(AFP)升高的肝癌患者,AFP常作為腫瘤標(biāo)記物以預(yù)測腫瘤復(fù)發(fā)或預(yù)后。臨床上仍然有30%~40%患者AFP陰性(≤20 ng/ml),對此類患者,目前尚無理想的腫瘤標(biāo)記物[3]。 microRNA(miRNA)是一類進(jìn)化上高度保守的非編碼單鏈RNA,可影響細(xì)胞發(fā)育、分化、干細(xì)胞功能等多種病理生理過程,在腫瘤發(fā)生和轉(zhuǎn)移過程中亦發(fā)揮重要作用。近年,諸多研究已經(jīng)證實腫瘤組織中高表達(dá)的miRNAs可以釋放到循環(huán)血液中,且表達(dá)穩(wěn)定,循環(huán)miRNAs(血清或血漿等)被廣泛用于理想的腫瘤標(biāo)記物[4-5]。本研究選擇的轉(zhuǎn)移相關(guān)miR-18b在肝癌組織中高表達(dá)且與腫瘤復(fù)發(fā)預(yù)后密切相關(guān)[6],本研究重點探索miR-18b是否可以作為腫瘤標(biāo)記物去監(jiān)測AFP陰性肝癌患者RFA術(shù)后復(fù)發(fā)。
2007年1月—2011年1月,我科診治的接受RFA治療的AFP陰性肝癌患者131例,收集患者RFA治療前1~2 d的血清標(biāo)本。肝癌診斷標(biāo)準(zhǔn)根據(jù)衛(wèi)生部制定的原發(fā)性肝癌診療規(guī)范(2011年版),所有患者均行肝穿刺活檢病理確診為肝細(xì)胞癌。RFA治療儀器采用RITA射頻治療系統(tǒng)(美國)。納入的患者中男98例,女33例,平均年齡57.6歲;87例患者單病灶,44例患者多病灶 (2個或3個);腫瘤平均直徑3.2 cm。我們選取43例健康體檢者的血清標(biāo)本作為對照組,包括男31例,女12例。本研究獲得醫(yī)院倫理委員會的批準(zhǔn)且所有納入的研究者均獲得知情同意。
1.2.1 標(biāo)本的采集 本組患者在RFA術(shù)前1~2 d采集靜脈血標(biāo)本約8 ml,室溫下靜置30 min,靜置后于4℃1 500 r/min離心10 min。將上層血清吸出移至新的1.5 ml EP管,放置于-80℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.2 血清miR-18b的檢測 所有血清樣本放置于冰上,每個樣本取300 μl轉(zhuǎn)移至含有750 μl TRI Reagent BD的新EP管中,依據(jù)TRIzol試劑(Invitrogen公司,美國)說明書抽提總 RNA,所有RNA通過分光光度計檢測并定量,提取好的RNA保存于-80℃冰箱內(nèi)。采用實時定量PCR技術(shù)檢測miR-18b 表達(dá)量[7], 反轉(zhuǎn)錄總反應(yīng)體系為 18 μl,PCR總反應(yīng)體系為 19 μl。選擇 U6作為內(nèi)參基因,miR-18b的相對表達(dá)量用 2-ΔΔCT表示, 其中ΔCT肝癌患者/健康正常人= CTmiRNAs- CTU6;ΔΔCT =ΔCT肝癌患者- ΔCT健康正常人。
1.2.3 隨訪 隨訪截止時間為2012年5月。所有患者術(shù)后1個月行腹部增強(qiáng)CT觀察消融效果,RFA術(shù)后未能達(dá)到腫瘤完全消融的患者被排除于本研究。其后每3個月行腹部增強(qiáng)CT檢查及血清檢測AFP及肝功能指標(biāo)以判斷有無出現(xiàn)復(fù)發(fā)或轉(zhuǎn)移。RFA術(shù)后復(fù)發(fā)形式主要有腫瘤局部進(jìn)展、肝內(nèi)遠(yuǎn)處復(fù)發(fā)及肝外轉(zhuǎn)移。
計量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,兩組血清miR-18b的表達(dá)差異及其同臨床病理資料間的關(guān)系用t檢驗或秩和檢驗。Kaplan-Meier生存分析和log-rank檢驗分析miR-18b表達(dá)量同患者總生存率及無復(fù)發(fā)生存率的關(guān)系。數(shù)據(jù)分析采用SPSS13.0統(tǒng)計軟件,P<0.05表示差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
miR-18b在AFP陰性肝癌患者血清中表達(dá)水平顯著高于健康正常人(2.93±1.33對1.08±0.45,P<0.01,圖1)。超過85%患者miR-18b表達(dá)上調(diào)的倍數(shù)在2倍以上。所有131例患者中,血清miR-18b表達(dá)水平上調(diào)的中位倍數(shù)為2.7倍。以3倍為分界點,我們將131例肝癌患者分為高表達(dá)組(66例)和低表達(dá)組(65例)。研究結(jié)果顯示:miR-18b表達(dá)水平差異與肝硬化、腫瘤直徑及腫瘤分化程度密切相關(guān),而與性別、乙肝表面抗原、腫瘤數(shù)目等無明顯相關(guān)性(表1)。
截止至末次隨訪日,共有79例患者(60.3%)出現(xiàn)復(fù)發(fā)。肝內(nèi)復(fù)發(fā)70例,包括13例肝內(nèi)腫瘤局部進(jìn)展和57例肝內(nèi)遠(yuǎn)處復(fù)發(fā)。16例出現(xiàn)肝外轉(zhuǎn)移,其中7例合并肝內(nèi)遠(yuǎn)處和肝外轉(zhuǎn)移。結(jié)果顯示出現(xiàn)復(fù)發(fā)患者血清miR-18b的表達(dá)水平顯著高于無復(fù)發(fā)患者(3.26± 1.28比 2.42±0.86,P <0.01,圖 1)。根據(jù)復(fù)發(fā)的不同形式,進(jìn)一步分析兩組血清miR-18b表達(dá)水平與復(fù)發(fā)率之間的關(guān)系顯示:miR-18b高表達(dá)組患者RFA術(shù)后肝內(nèi)遠(yuǎn)處復(fù)發(fā)率 (P=0.018)和肝外轉(zhuǎn)移發(fā)生率(P=0.102)均高于低表達(dá)組(表2),而兩組在腫瘤局部進(jìn)展發(fā)生率上無差異 (P=0.792)。
圖1 肝癌患者及健康正常人血清中miR-18b的表達(dá)水平
表1 血清miR-18b表達(dá)高低同肝癌患者臨床病理因素間的關(guān)系
表2 血清miR-18b同RFA術(shù)后不同復(fù)發(fā)形式發(fā)生率之間的關(guān)系 n(%)
肝癌患者 1、3、5年總生存率分別為 86.3%、63.4% 、43.5% ;1、3、5 年 無 復(fù) 發(fā) 生 存 率 分 別 為64.9%、41.7%、29.0%。Kaplan-Meier生存分析顯示miR-18b高表達(dá)組患者總生存率和無復(fù)發(fā)生存率均顯著低于低表達(dá)組患者,差異均具有統(tǒng)計學(xué)意義(見圖 2)。
圖2 miR-18b高低表達(dá)與RFA術(shù)后有無復(fù)發(fā)的比較
Kao 等[8]報道對于 AFP 升高的患者,RFA 術(shù)前術(shù)后AFP的變化可以預(yù)測肝癌患者的復(fù)發(fā)及總生存率。對于AFP陰性肝癌患者,有報道顯示血管內(nèi)皮生長因子(VEGF)、血小板衍生生長因子(PDGF)等腫瘤標(biāo)記物可以用來預(yù)測外科切除或肝動脈化療栓塞(TACE)術(shù)后腫瘤復(fù)發(fā)或轉(zhuǎn)移[9-10]。 本研究重點探索可以用于預(yù)測AFP陰性患者RFA術(shù)后腫瘤進(jìn)展、預(yù)后的標(biāo)記物,對判斷RFA術(shù)后患者的遠(yuǎn)期療效意義重大。
血清miRNAs為腫瘤標(biāo)記物的探索提供了新的視角。相比腫瘤組織取材,血清取樣具有創(chuàng)傷小、操作簡便、可重復(fù)性等優(yōu)點。本研究結(jié)果顯示肝癌患者血清中miR-18b的普遍高表達(dá),且與肝硬化、腫瘤直徑及腫瘤分化程度相關(guān)。此研究結(jié)果與前期Murakami等[6]在腫瘤組織中觀察到 miR-18b的表達(dá)規(guī)律相一致。諸多證據(jù)已證實腫瘤組織或細(xì)胞內(nèi)特異的miRNAs在細(xì)胞破壞或病理損害的過程中會釋放到循環(huán)血液中,而在血清或血漿中穩(wěn)定表達(dá)[11-12]。肝癌RFA治療后腫瘤組織缺血、壞死,部分腫瘤細(xì)胞凋亡或停止增殖,因此我們有理由推測血清中高表達(dá)的miR-18b可能來自腫瘤組織熱消融過程中組織壞死釋放入血液中,血清miR-18b表達(dá)水平差異或可一定程度上反映腫瘤的消融壞死情況。
血清miRNAs除了可以用于腫瘤疾病的診斷外,如前列腺癌[13]、胃癌[5]等,還可以用于腫瘤患者不同方法治療后的療效評估。Zhao等[14]發(fā)現(xiàn)血漿miR-221可以預(yù)測乳腺癌患者新輔助化療的耐藥性的出現(xiàn);Jung等[15]研究提示乳腺癌患者血漿miR-210表達(dá)水平顯著升高,且和曲妥珠單抗藥物敏感性、淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移等密切相關(guān)。Murakami等[6]研究提示miR-18b通過調(diào)控靶基因TNRC6B的表達(dá),在肝癌細(xì)胞轉(zhuǎn)移、血管侵犯、腫瘤進(jìn)展等方面扮演重要角色,組織中高表達(dá)miR-18b或低表達(dá)TNRC6B的患者預(yù)后差,無復(fù)發(fā)生存率顯著降低。本研究通過結(jié)合特殊臨床特征的(AFP陰性)肝癌患者RFA術(shù)前血清miR-18b的表達(dá)水平和RFA術(shù)后復(fù)發(fā)轉(zhuǎn)移預(yù)后的情況進(jìn)行分析,發(fā)現(xiàn)血清中高表達(dá)的miR-18b與RFA術(shù)后高復(fù)發(fā)率之間密切相關(guān),且可以作為腫瘤標(biāo)記物去預(yù)測肝癌患者RFA術(shù)后無復(fù)發(fā)生存率。除無復(fù)發(fā)生存率外,本研究結(jié)果也提示血清中miR-18b高表達(dá)的患者預(yù)后差,總生存率顯著低于表達(dá)組患者。
綜上所述,本研究結(jié)果提示血清miR-18b具有成為肝癌理想腫瘤標(biāo)記物的優(yōu)勢,可用以監(jiān)測AFP陰性肝癌患者RFA術(shù)后復(fù)發(fā)和預(yù)測患者總生存率。miRNAs在腫瘤發(fā)生發(fā)展中調(diào)控的基因網(wǎng)絡(luò)復(fù)雜,常既充當(dāng)“癌基因”又可充當(dāng)“抑癌基因”的角色,因此在本研究的基礎(chǔ)上,以下問題后續(xù)仍需繼續(xù)探索:肝癌患者血清中其他轉(zhuǎn)移相關(guān)miRNAs(miR-151、miR-222、miR-30 d)的臨床價值的探索;能否聯(lián)合其他類型腫瘤標(biāo)記物 (VEGF、缺氧誘導(dǎo)因子-1a等)去判斷腫瘤進(jìn)展及預(yù)后;擴(kuò)大樣本量,進(jìn)一步驗證血清miR-18b的價值以便真正轉(zhuǎn)化臨床,使患者受益。
[1] Germani G, Pleguezuelo M, Gurusamy K, et al.Clinical outcomes of radiofrequency ablation,percutaneous alcohol and acetic acid injection for hepatocelullar carcinoma:a metaanalysis[J].J Hepatol, 2010, 52: 380-388.
[2] 陳世晞,尹國文,徐衛(wèi)東,等.超聲引導(dǎo)下經(jīng)皮射頻消融治療中晚期肝癌的臨床研究[J].介入放射學(xué)雜志,2008,17:37-40.
[3] Daniele B,Bencivenga A,Megna AS,et al.Alpha-fetoprotein and ultrasonography screening for hepatocellular carcinoma [J].Gastroenterology, 2004, 127: S108-S112.
[4] 張 毅,李京玉,廖永暉,等.血清miRNA:一種新的疾病檢測標(biāo)記物[J].中華實驗外科雜志, 2011, 28: 479-480.
[5] 張文輝,桂俊豪,王昌正,等.血清miR-375水平可能是胃遠(yuǎn)端腺癌的標(biāo)志物 [J].中華保健醫(yī)學(xué)雜志,2011,13:370-372.
[6] Murakami Y,Tamori A,Itami S,et al.The expression level of miR-18b in hepatocellular carcinoma is associated with the grade of malignancy and prognosis[J].BMC Cancer, 2013, 13:99.
[7] 占美曉,李 勇,胡寶山,等.肝癌患者血清中微小RNA的表達(dá)及其臨床意義 [J].中華醫(yī)學(xué)雜志,2013,93:1830-1832.
[8] Kao WY,Chiou YY,Hung HH,et al.Serum alpha-fetoprotein response can predict prognosis in hepatocellular carcinoma patients undergoing radiofrequency ablation therapy [J].Clin Radiol, 2012, 67: 429-436.
[9] Hu J, Xu Y, Shen ZZ, et al.High expressions of vascular endothelial growth factor and platelet-derived endothelial cell growth factor predict poor prognosis in alpha-fetoprotein-negative hepatocellular carcinoma patients after curative resection [J].J Cancer Res Clin Oncol, 2009, 135: 1359-1367.
[10] Lee YK, Kim SU, Kim do Y, et al.Prognostic value of αfetoprotein and des-γ-carboxy prothrombin responses in patients with hepatocellular carcinoma treated with transarterial chemoembolization[J].BMC Cancer, 2013, 13: 5.
[11] Gui J,Tian Y,Wen X,et al.Serum microRNA characterization identifies miR-885-5p as a potential marker for detecting liver pathologies[J].Clin Sci(Lond), 2011, 120: 183-193.
[12] Ji X, Takahashi R, Hiura Y, et al.Plasma miR-208 as a biomarker of myocardial injury[J].Clin Chem, 2009, 55: 1944-1949.
[13] Mitchell PS,Parkin RK,Kroh EM,et al.Circulating microRNAs as stable blood-based markers for Cancer detection[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2008,105:10513-10518.
[14] Zhao R, Wu J, Jia W, et al.Plasma miR-221 as a predictive biomarker for chemoresistance in breast Cancer patients who previously received neoadjuvant chemotherapy [J].Onkologie,2011,34:675-680.
[15] Jung EJ, Santarpia L, Kim J, et al.Plasma microRNA 210 levelscorrelate with sensitivity to trastuzumab and tumor presence in breast Cancer patients [J].Cancer, 2012, 118:2603-2614.