陳孔茂，唐小千，繩秀珍，邢 婧，戰(zhàn)文斌

（中國海洋大學(xué)水產(chǎn)動(dòng)物病害與免疫實(shí)驗(yàn)室，山東 青島266003）

免疫球蛋白（Immunoglobulin，Ig）是脊椎動(dòng)物B淋巴細(xì)胞在受到抗原刺激后活化、增殖、成熟后所分泌的效應(yīng)性應(yīng)答分子，在體液免疫防御中發(fā)揮重要作用。哺乳動(dòng)物免疫球蛋白重鏈根據(jù)其恒定區(qū)氨基酸組成及抗原性差異，可分為γ，α，ε，μ和δ5種類型，分別相應(yīng)構(gòu)成IgG，IgA，IgE，IgM 和IgD［1］。相比于哺乳動(dòng)物，魚類免疫球蛋白研究起步較晚，且在很長一段時(shí)間內(nèi)人們認(rèn)為魚類只存在IgM一種免疫球蛋白，隨著分子生物學(xué)研究的發(fā)展，近年在魚體上發(fā)現(xiàn)了IgD、IgT及IgNAR等免疫球蛋白類型［2－4］。其中，單體結(jié)構(gòu)的IgD被視為最神秘的免疫球蛋白，它在機(jī)體內(nèi)含量很低，抗體活性很難被檢測(cè)到，其基因與蛋白結(jié)構(gòu)在不同物種之間變異較大，相比其他幾種免疫球蛋白而言，有關(guān)它的免疫學(xué)功能特性研究十分欠缺［5］。

魚類IgD重鏈編碼基因首次在斑點(diǎn)叉尾鮰（Ictalurus punctatus）中被發(fā)現(xiàn)，其轉(zhuǎn)錄本為嵌合體結(jié)構(gòu)，以IgM的μ1區(qū)作為第一個(gè)恒定區(qū)，在基因組上的位置緊接位于IgM下游，在部分B細(xì)胞中通過選擇性剪切與IgM發(fā)生共表達(dá)［6］。該發(fā)現(xiàn)打破了IgD僅存在于高等靈長類及嚙齒類動(dòng)物中的認(rèn)識(shí)束縛，預(yù)示著IgD在脊椎動(dòng)物免疫系統(tǒng)進(jìn)化中起著不可預(yù)知的重要作用，使得IgD相關(guān)研究得到了廣泛重視和關(guān)注［5］。近年來，多種重要經(jīng)濟(jì)魚類的IgD重鏈基因被克隆鑒定，如鱖（Siniperca chuatsi）［7］、紅 鰭 東 方 鲀 （Takifugu rubripes）［8］、庸鰈（Hippoglossus hippoglossus）［9］、大西洋鮭（Salmo salar）［10］、大西洋鱈（Gadus morhua）［11］等。通過對(duì)比研究發(fā)現(xiàn)，不同魚類IgD重鏈的恒定區(qū)數(shù)目和重復(fù)串聯(lián)方式存在較大的差異，從而使IgD分子量大小及抗原特性具有多樣化［12］。盡管目前IgD在除了鳥類以外的其它物種中都有報(bào)道，但對(duì)于IgD的免疫學(xué)功能特性研究仍很欠缺，最近研究顯示其可能在魚類系統(tǒng)免疫監(jiān)視以及免疫應(yīng)答調(diào)節(jié)中起著重要作用，且其免疫應(yīng)答表現(xiàn)出一定的組織特異性［13－14］。

大菱鲆（Scophthalmus maximus）是我國重要的海水養(yǎng)殖經(jīng)濟(jì)魚類［15］，開展其IgD的結(jié)構(gòu)與免疫應(yīng)答特性研究，有助于全面了解大菱鲆免疫系統(tǒng)防御特點(diǎn)，對(duì)魚類疾病免疫防治具有一定的理論和指導(dǎo)意義。本研究克隆并分析了大菱鲆mIgD重鏈基因，利用RT－PCR檢測(cè)其在各個(gè)組織器官中的表達(dá)情況，并通過實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)了大菱鲆在注射滅活細(xì)菌后IgD的應(yīng)答表達(dá)。

1 材料與方法

1.1 實(shí)驗(yàn)材料

實(shí)驗(yàn)用大菱鲆購自青島市膠南某大菱鲆養(yǎng)殖場，體長為15～18cm，實(shí)驗(yàn)前于連續(xù)充氣的大體積水槽中暫養(yǎng)1周。RRI、pMD－19T、Ex－Taq酶均購自 Takara公司；High Capacity cDNA Reverse Transcription Kit購于 Applied Biosystems公司；SMART cDNA Synthesis Kit購于 Clontech公司；SYBR Green Realtime PCR Master Mix試劑盒購于TOYOBO公司；瓊脂糖凝膠回收試劑盒、PCR產(chǎn)物回收試劑盒均購自北京百泰克公司；引物由上海生工公司合成。鰻弧菌（Vibrio anguillarum）及大腸桿菌DH5α由本實(shí)驗(yàn)室保存。

1.2 總RNA提取及cDNA合成

取健康大菱鲆的脾組織，按照Trizol（Invitrogen）說明書抽提總RNA，通過瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行檢測(cè)總RNA的完整度和純度，RNA濃度在吸光值260nm處定量后用于反轉(zhuǎn)錄合成cDNA的第一鏈。

1.3 大菱鲆IgD cDNA全長克隆

根據(jù)GenBank獲得已知魚類IgD的序列，設(shè)計(jì)簡并引物IgD Ft1和IgD Rt1（見表1）擴(kuò)增IgD保守序列，根據(jù)獲得的IgD保守基因片段設(shè)計(jì)3′和5′RACE特異性引物（見表1），分別與SMART cDNA Synthesis Kit內(nèi)的引物UPM聯(lián)合使用擴(kuò)增大菱鲆IgD cDNA的3′和5′端序列。PCR反應(yīng)條件為：94℃變性5min，1個(gè)循環(huán)；94℃變性30s，60℃退火30s，72℃延伸50 s，35個(gè)循環(huán)；72℃延伸10min，1個(gè)循環(huán)；4℃保存。PCR產(chǎn)物均用含0.5%EB的1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)片段大小，凝膠成像儀觀察結(jié)果。擴(kuò)增的PCR產(chǎn)物使用北京百泰克公司生產(chǎn)的凝膠回收試劑盒純化后，克隆到pMD－19T載體，轉(zhuǎn)化到大腸桿菌DH5α菌株，PCR檢測(cè)陽性克隆后進(jìn)行測(cè)序確認(rèn)。

1.4 序列的生物信息學(xué)分析

利用 NCBI在線軟件 ORF Finder（http：／／www.ncbi.nlm.nih.gov／gorf／gorf.html）對(duì)大菱鲆IgD cDNA序列的開放閱讀框進(jìn)行分析，并對(duì)由cDNA序列推導(dǎo)獲得的氨基酸序列進(jìn)行蛋白質(zhì)相對(duì)分子質(zhì)量及理論等電點(diǎn)預(yù)測(cè)（http：／／web.expasy.org／compute＿pi／），通過Smart在線軟件（http：／／smart.embl－h(huán)eidelberg.de／）預(yù)測(cè)功能結(jié)構(gòu)域。使用NCBI的BLAST程序（http：／／www.ncbi.nlm.nih.gov／）對(duì)大菱鲆IgD 重鏈恒定區(qū)δ1～δ7進(jìn)行同源性比對(duì)分析，并選取不同魚類免疫球蛋白重鏈氨基酸序列，采用Clustal X 2.0軟件進(jìn)行多序列比對(duì)分析，用MEGA 4.0軟件進(jìn)行系統(tǒng)發(fā)生和進(jìn)化分析，采用鄰位相連法（Neighbor－joining）構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹。

1.5 RT－PCR檢測(cè)IgD重鏈mRNA的組織分布

為了檢測(cè)IgD在不同組織和器官中的表達(dá)差異，隨機(jī)選取3條經(jīng)暫養(yǎng)后的健康大菱鲆，取其外周血白細(xì)胞、鰓、肌肉、前腎、中腎、肝臟、腸、脾臟。利用Trizol法分別提取各組織總RNA。檢測(cè)確認(rèn)RNA完整度及純度后，分別取1μg總RNA以 High Capacity cDNA Reverse Transcription Kit參照說明書反轉(zhuǎn)錄合成cDNA第一鏈。分別以IgD F和IgD R作為IgD目的基因的擴(kuò)增引物，以β－actin F和β－actin R作為內(nèi)參基因的擴(kuò)增引物，PCR反應(yīng)體系為25μL。PCR反應(yīng)條件為：94℃變性5min，1個(gè)循環(huán)；94℃變性30s，57℃退火30s，72℃延伸50s，33個(gè)循環(huán)（內(nèi)參基因?yàn)?0個(gè)循環(huán)）；72℃延伸10min，1個(gè)循環(huán)；4℃保存。PCR產(chǎn)物用含0.5%EB的1.0%瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行檢測(cè)。

1.6 熒光定量PCR檢測(cè)IgD對(duì)滅活鰻弧菌免疫的應(yīng)答表達(dá)

將暫養(yǎng)后的健康大菱鲆隨機(jī)分養(yǎng)于2個(gè)玻璃鋼水槽，每組25尾。以LB液體培養(yǎng)基增殖鰻弧菌，離心回收菌體后經(jīng)0.5%的福爾馬林滅活，調(diào)整濃度至1×107cfu／mL。采用腹腔注射方式，實(shí)驗(yàn)組每尾注射100μL鰻弧菌滅活菌液，對(duì)照組魚體注射等體積無菌PBS（0.01mol／L，pH＝7.4）。在注射前以及注射后4、8、12、24、48h分別隨機(jī)選取3尾大菱鲆，取前腎提取總RNA，檢測(cè)確認(rèn)RNA完整度及純度后，分別取1μg總RNA 以 High Capacity cDNA Reverse Transcription Kit合成cDNA第一鏈。分別取1μL反轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物作為模板，以qIgD F（δ7區(qū)）和qIgD R（TM 區(qū)）引物，利用SYBR Green Realtime PCR Master Mix 試 劑 盒 在Mastercycler ep Realplex（Eppendorf，Germany）PCR儀上進(jìn)行熒光定量檢測(cè)，每個(gè)樣品設(shè)置3個(gè)重復(fù)。選擇β－actin作為內(nèi)參基因，擴(kuò)增引物分別為β－actin F和β－actin R（見表1）。擴(kuò)增條件為：95℃30s，1個(gè)循環(huán)；95℃5s，60℃30s，40個(gè)循環(huán)；95℃15s，60℃30s，95℃15s，1個(gè)循環(huán)；4℃保存。按照2－ΔΔCt法計(jì)算魚體在免疫刺激后前腎組織中IgD基因相對(duì)表達(dá)量的變化情況，采用SPSS13.0進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析，采用單因子方差（one－way ANOVA）分析不同時(shí)間點(diǎn)基因表達(dá)量的差異，以P＜0.05作為差異顯著的標(biāo)準(zhǔn)。

2 結(jié)果

2.1 大菱鲆IgD重鏈全長cDNA的克隆

以健康大菱鲆脾臟組織的總RNA為模板，利用簡并引物擴(kuò)增得到1條240bp的目的片段，PCR產(chǎn)物經(jīng)TA克隆后，測(cè)序及同源比對(duì)分析顯示其與魚類IgD具有較高的同源性。根據(jù)該序列設(shè)計(jì)特異性RACE擴(kuò)增引物，分別經(jīng)3′和5′RACE擴(kuò)增獲得目的片段，經(jīng)測(cè)序與序列拼接獲得大菱鲆IgD cDNA全長序列（Gen－Bank登陸號(hào)：JX235360）。該基因全長3 357bp，5′非編碼區(qū)（Untranslated region，UTR）為28bp，3′UTR為332bp，包含一個(gè)2 997bp的開放閱讀框，編碼999個(gè)氨基酸（見圖1）。

圖1 大菱鲆mIgD重鏈基因cDNA序列與推測(cè)的氨基酸序列Fig.1 cDNA sequence and deduced amino acid sequence of mIgD heavy chain in S.maximus

2.2 大菱鲆IgD重鏈編碼氨基酸序列分析

通過大菱鲆IgD重鏈氨基酸組成序列分析得知，其理論等電點(diǎn)為5.73，理論分子量為110kDa，在成熟肽中絲氨酸所占比例最高（11.5%），其次為蘇氨酸（8.2%）和亮氨酸（7.8%）。通過對(duì)其氨基酸編碼的結(jié)構(gòu)域分析顯示，其由可變區(qū)和恒定區(qū)兩部分組成，可變區(qū)具有典型的 V－D－J基因結(jié)構(gòu)，恒定區(qū)先后由μ1、δ1－δ2－δ3－δ4－δ5－δ6－δ7和跨膜區(qū)（Transmembrane，TM）組成，由此確定該基因?yàn)槟そY(jié)合型免疫球蛋白D（Membrane－bounded Ig，mIgD）重鏈編碼基因（見圖1）。

利用大菱鲆mIgDδ1～δ7區(qū)氨基酸序列進(jìn)行同源搜索，結(jié)果顯示其與庸鰈 （78%）、鱖 （71%）、牙鲆（Paralichthys olivaceu）（68%）、斜 帶 石 斑 魚 （Epinephelus coioides）（62%）、紅鰭東方鲀（58%）IgD 重鏈相應(yīng)恒定區(qū)具有較高的同源性，并在此基礎(chǔ)上對(duì)各個(gè)δ區(qū)之間的相似度進(jìn)行了比較（見表2）。將大菱鲆mIgD的δ1～δ7區(qū)域與以上幾種魚類IgD相應(yīng)區(qū)域進(jìn)行多序列比對(duì)，結(jié)果顯示大菱鲆mIgD每個(gè)δ恒定區(qū)內(nèi)均具有高度保守的半胱氨酸與色氨酸位點(diǎn)（見圖2）。另外，利用鄰位相連法構(gòu)建了包括大菱鲆mIgD在內(nèi)的20不同硬骨魚類免疫球蛋白重鏈恒定區(qū)的系統(tǒng)發(fā)育樹，結(jié)果顯示IgM與IgD各自分別聚為一大支，IgZ與IgT聚為一大支，其中大菱鲆mIgD與庸鰈及牙鲆IgD聚為一小支（見圖3）。

表2 大菱鲆與其他魚類IgDδ恒定區(qū)氨基酸序列的相似性比較Table 2 Similarity comparisons of IgDδconstant regions between S.maximus and other fish species

2.3 IgD重鏈mRNA的組織分布

以β－actin基因作為內(nèi)參，利用RT－PCR方法檢測(cè)了IgD重鏈編碼mRNA在大菱鲆不同組織內(nèi)的表達(dá)豐度差異。結(jié)果顯示，其除了未在肌肉中檢測(cè)到之外，在外周血白細(xì)胞、脾臟、前腎、中腎、鰓、肝臟及腸道組織中均有不同程度的表達(dá)，其中在外周血白細(xì)胞、脾臟、前腎及中腎組織中表達(dá)量較高（見圖4）。

2.4 滅活鰻弧菌免疫大菱鲆后mIgD重鏈基因的應(yīng)答表達(dá)

以β－actin基因作為內(nèi)參，利用跨膜區(qū)特異性引物進(jìn)行熒光定量PCR，檢測(cè)了大菱鲆在免疫滅活鰻弧菌后前腎組織內(nèi)mIgD重鏈基因的相對(duì)表達(dá)量變化。結(jié)果顯示，在免疫鰻弧菌后mIgD重鏈基因呈現(xiàn)顯著表達(dá)下調(diào)，在免疫后8h時(shí)mIgD重鏈基因下調(diào)至最低水平（P＜0.05），相對(duì)表達(dá)量約為對(duì)照組的1／28，然后呈逐漸回復(fù)上調(diào)趨勢(shì)，在免疫后48h時(shí)免疫組mIgD相對(duì)表達(dá)量與對(duì)照組無顯著差異（P＞0.05）（見圖5）。

3 討論

不同魚類IgD的重鏈基因在結(jié)構(gòu)上存在很大的差異，但是根據(jù)目前對(duì)魚類IgD重鏈基因結(jié)構(gòu)研究發(fā)現(xiàn)，絕大多數(shù)魚體的IgD重鏈基因均包含VH、DJ區(qū)、μ1區(qū)和若干個(gè)δ恒定區(qū)，在此基礎(chǔ)上根據(jù)IgD存在形式的不同，在mIgD重鏈δ恒定區(qū)后接有TM區(qū)，而在sIgD重鏈δ恒定區(qū)后接有一小段分泌肽［12，16］。但是，最近也有研究發(fā)現(xiàn)在斑點(diǎn)叉尾鮰中存在VH區(qū)缺失型的sIgD分子，推測(cè)其可能行使著作為模式識(shí)別分子的一種較為原始的免疫功能，預(yù)示著IgD在特異性免疫和非特性免疫中均起著一定作用［16］。除了TM區(qū)和分泌肽的差異以外，魚類IgD重鏈的δ恒定區(qū)組成數(shù)目和重復(fù)串聯(lián)方式也存在很大的差異。例如，大西洋鮭、大西洋庸鰈、斑點(diǎn)叉尾鮰和草魚（Ctenopharyngodon idellus）的 mIgD 重 鏈 結(jié) 構(gòu) 均 為 VDJ－μ1－δ1－（δ2－δ3－δ4）2－δ5－δ6－δ7－TM，其中δ2－δ3－δ4存在一次復(fù)制［6，9，17］；紅鰭東方鲀 mIgD 重 鏈結(jié)構(gòu) 為 VDJ－μ1－（δ1－δ2－δ3－δ4－δ5－δ6）2－δ7－TM，其 中 δ1－δ2－δ3－δ4－δ5－δ6 存 在 一 次 復(fù)制［18］；虹鱒（Oncorhynchus mykiss）mIgD 重鏈結(jié)構(gòu)為VDJ－μ1－δ1－δ2a－δ3a－δ4a－δ2b－δ7－TM，δ4后存在一次 δ2復(fù)制，且出現(xiàn)δ5－δ6的缺失現(xiàn)象［19］；而大西洋鱈 mIgD基因結(jié)構(gòu)比較特殊，為 VDJ－μ1－δ1A－δ2A－δy－δ1B－δ2B－δ7－δM1－δM2，出現(xiàn)δy將δ1與δ2復(fù)制分開［11］。本文克隆獲得的大菱鲆mIgD重鏈基因結(jié)構(gòu)與牙鲆、鱖的mIgD結(jié)構(gòu)比較相似也相對(duì)簡單，不存在外顯子復(fù)制現(xiàn) 象，為 VDJ－μ1－δ1－δ2－δ3－δ4－δ5－δ6－δ7－TM［2，7］。通 過將大菱鲆mIgD與其它硬骨魚IgD重鏈恒定區(qū)氨基酸序列比對(duì)發(fā)現(xiàn)，恒定區(qū)中的每個(gè)δ區(qū)均存在多個(gè)色氨酸與半胱氨酸的保守位點(diǎn)，色氨酸對(duì)免疫球蛋白空間結(jié)構(gòu)的形成及功能起著重要作用，而半胱氨酸形成二硫鍵，對(duì)形成與維持免疫球蛋白的空間結(jié)構(gòu)起著決定性的作用［5］。

圖2 大菱鲆mIgD與其它硬骨魚IgD重鏈恒定區(qū)氨基酸序列的多序列比對(duì)Fig.2 Multiple alignment of the deduced amino acid sequence of mIgD heavy chain delta domain in S.maximus with those of the other teleosts

魚類IgD的表達(dá)具有一定的組織特異性，但是不同魚體之間仍表現(xiàn)出一定差異性。牙鲆IgD主要在外周血中表達(dá)，其含量顯著高于前腎、中腎及脾臟組織，而在肝臟與心臟內(nèi)未檢測(cè)到表達(dá)［2］；鱖IgD在外周血白細(xì)胞和前腎中的表達(dá)量較高，其次為胸腺、脾臟和中腎，而在心臟、腸、鰓、肝臟和腦中幾乎沒有檢測(cè)到表達(dá)［7］。本文結(jié)果顯示，大菱鲆IgD基因表達(dá)量在外周血白細(xì)胞中最高，其次是脾臟、前腎及中腎，且在鰓、腸道及肝臟組織內(nèi)也有IgD表達(dá)。上述研究IgD組織分布的RT－PCR擴(kuò)增目的片段均為IgD的δ恒定區(qū)，因此無法具體區(qū)分mIgD及sIgD的組織差異表達(dá)情況。然而，根據(jù)IgD跨膜區(qū)及分泌肽尾編碼序列設(shè)計(jì)特異性引物對(duì)虹鱒mIgD和sIgD分別進(jìn)行的組織分布研究，顯示虹鱒mIgD和sIgD除了在脾臟、外周血及腎臟內(nèi)具有較高的表達(dá)以外，在鰓組織內(nèi)檢測(cè)到sIgD具有較高的表達(dá)量，推測(cè)魚類IgD在鰓組織免疫防御中起著重要作用［14］。本研究在大菱鲆鰓組織內(nèi)檢測(cè)到較高的IgD表達(dá)量，但在大菱鲆體內(nèi)是否存在sIgD仍需進(jìn)一步研究。

圖3 硬骨魚類免疫球蛋白序列進(jìn)化樹Fig.3 Phylogenetic tree constructed based on 20 different immunoglobulins of teleost fish

圖4 大菱鲆IgD重鏈mRNA在各組織中分布情況Fig.4 Distribution of mRNA of IgD heavy chain in different tissues of S.maximus

圖5 大菱鲆在免疫滅活鰻弧菌后前腎組織中mIgD重鏈基因應(yīng)答表達(dá)分析Fig.5 Time－course expression analysis of mIgD heavy chain in pronephros in response to the immunization with formalin inactivated V.anguillarum

目前，有關(guān)魚體IgD對(duì)免疫刺激的應(yīng)答研究較少，僅在鱖中開展了免疫滅活柱狀黃桿菌（Flavobacterium columnare）后的IgD應(yīng)答研究，結(jié)果顯示鱖IgD重鏈基因在免疫后第3周在前腎和脾臟內(nèi)表達(dá)量顯著上調(diào)，該表達(dá)調(diào)控類似于魚體分泌性IgM對(duì)抗原免疫刺激后的應(yīng)答［20］。然而，在人體和小鼠研究中發(fā)現(xiàn)，mIgD與mIgM共表達(dá)于成熟的幼稚B細(xì)胞表面，當(dāng)幼稚B細(xì)胞受到免疫原刺激，mIgD表達(dá)會(huì)發(fā)生快速下調(diào)［21－22］。最近研究也表明，IgD作為B細(xì)胞受體在B細(xì)胞發(fā)育、細(xì)胞間信號(hào)傳遞及刺激誘導(dǎo)其他免疫細(xì)胞分泌細(xì)胞因子中起著重要作用［23－24］。本研究發(fā)現(xiàn)，大菱鲆在免疫滅活鰻弧菌后，前腎組織中mIgD表達(dá)出現(xiàn)了快速顯著下調(diào)，在免疫后8h時(shí)表達(dá)量下降至最低水平，僅為對(duì)照組的1／28，然后逐漸恢復(fù)至正常水平。另外，通過對(duì)虹鱒魚B細(xì)胞表面mIgD豐度研究發(fā)現(xiàn)，在外周B淋巴細(xì)胞表面mIgD豐度存在高低差異分布［14］。因此，推測(cè)魚類IgD在免疫信號(hào)傳導(dǎo)及體液免疫防御中可能起著重要作用。

［1］ Roitt I，Brostoff J，Male D.Immunology ［M］.Fifth Edition.London：Mosby，1998：71－78.

［2］ Hirono I，Nam B H，Enomoto J，et al.Cloning and characterisation of a cDNA encoding Japanese flounder IgD ［J］.Fish and Shellfish Immunology，2003，15：63－70.

［3］ Zhang Y A，Salinas I，Sunyer J O.Recent findings on the structure and function of teleost IgT ［J］.Fish and Shellfish Immunolo－gy，2011，31：627－634.

［4］ Diaz M，Stanfield R L，Greenberg A S，et al.Structural analysis，selection，and ontogeny of the shark new antigen receptor （Ig－NAR）：identification of a new locus preferentially expressed in early development［J］.Immunogenetics，2002，54：501－512.

［5］ Preud’homme J L，Petit I，Barra A，et al.Structural and functional properties of membrane and secreted IgD ［J］.Molecular Immunology，2000，37：871－887.

［6］ Wilson M，Bengten E，Miller N W，et al.A novel chimeric Ig heavy chain from a teleost fish shares similarities to IgD ［J］.Proceedings of the National Academy of Sciences USA，1997，94：4593－4597.

［7］ 王改玲，駱彥萍，孫寶劍，等.鱖免疫球蛋白D重鏈基因的克隆與表達(dá)分析 ［J］.中國水產(chǎn)科學(xué)，2011，17：11－20.

［8］ Saha N R，Suetake H，Kikuchi K，et al.Fugu immunoglobulin D：a highly unusual gene with unprecedented duplications in its constant region［J］.Immunogenetics，2004，56：438－447.

［9］ Hordvik I.Identification of a novel immunoglobulinδtranscript and comparative analysis of the genes encoding IgD in Atlantic salmon and Atlantic halibut［J］.Molecular Immunology，2002，39：85－91.

［10］ Hordvik I，Thevarajan J，Samdal I N，et al.Molecular Cloning and Phylogenetic Analysis of the Atlantic Salmon Immunoglobulin D Gene［J］.Scandinavian Journal of Immunology，1999，50：202－210.

［11］ Stenvik J，J rgensen T.Immunoglobulin D （IgD）of Atlantic cod has a unique structure［J］.Immunogenetics，2000，51：452－461.

［12］ Edholm E S，Bengten E，Wilson M.Insights into the function of IgD ［J］.Developmental and Comparative Immunology，2011，35：1309－1316.

［13］ Sun Y Z，Wei L，Zhao Y，et al.The immunoglobulin gene in jawed vertebrates：a comparative overview ［J］.Developmental and Comparative Immunology，2011，35：975－981.

［14］ Francisco R G，Greene W，Rego K，et al.Discovery and characterization of secretory IgD in rainbow trout：secretory IgD is produced through a novel splicing mechanism ［J］.The Journal of Immunology，2012，188：1341－1349.

［15］ 雷霽霖，劉新富，孟振.發(fā)揮產(chǎn)業(yè)技術(shù)體系優(yōu)勢(shì)做強(qiáng)鲆鰈類工廠化養(yǎng)殖 ［J］.中國水產(chǎn)，2010（6）：11－13.

［16］ Bengtén E，Quiniou S M，Stuge T B，et al.The IgH Locus of the channel catfish，Ictalurus punctatus，contains multiple constant region gene sequences：different genes encode heavy chains of membrane and secreted IgD ［J］.The Journal of Immunology，2002，169：2488－2497.

［17］ Xiao F S，Wang Y P，Yan W.Ig heavy chain genes and their locus in grass carp Ctenopharyngodon idella［J］.Fish and Shellfish Immunology，2010，29：594－599.

［18］ Saha N R，Suetake H，Kikuchi K，et al.Fugu immunoglobulin D：a highly unusual gene with unprecedented duplications in its constant region［J］.Immunogenetics，2004，56：438－447.

［19］ Hansen J D，Landis E D，Ruth B P.Discovery of a unique Ig heavy－chain isotype （IgT）in rainbow trout：Implications for a distinctive B cell developmental pathway in teleost fish［J］.Proceedings of the National Academy of Sciences USA，2005，102：6919－6924.

［20］ Tian J Y，Sun B J，Luo Y P.Distribution of IgM，IgD and IgZ in mandarin fish，Siniperca chuatsi lymphoid tissues and their transcriptional changes after Flavobacterium columnare stimulation［J］.Aquaculture，2009，288：14－21.

［21］ Paul W E.Fundamental Immunology［M］.Sixth Edition.Philadelphia：Lippincott Williams and Wilkins，2008：270－289.

［22］ Monroe J G，Havran W L，Cambier J C.B lymphocyte activation：Entry into cell cycle is accompanied by decrease expression of IgD but not IgM ［J］.European Journal of Immunology，1983，13：208－213.

［23］ Lutz C，Ledermann B，Kosco－V M H，et al.IgD can largely substitute for loss of IgM function in B cells［J］.Nature，1998，393：797－801.

［24］ Chen K，Xu W，Wilson M，et al.Immunoglobulin D enhances immune surveillance by activating antimicrobial，proinflammatory and B cell－stimulating programs in basophils［J］.Nature Immunology，2009，10：889－898.