趙艷芳，吳繼法，翟毓秀，寧勁松，盛曉風，丁海燕，尚德榮,*

1. 中國水產科學研究院黃海水產研究所，青島266071 2. 青島市黃島區(qū)海洋與漁業(yè)局，青島 266400

鎘脅迫對不同鎘富集能力海水養(yǎng)殖貝類抗氧化能力的影響
——以扇貝和菲律賓蛤仔為例

趙艷芳1，吳繼法2，翟毓秀1，寧勁松1，盛曉風1，丁海燕1，尚德榮1,*

1. 中國水產科學研究院黃海水產研究所，青島266071 2. 青島市黃島區(qū)海洋與漁業(yè)局，青島 266400

為研究具有不同鎘(Cd)富集能力的扇貝和菲律賓蛤仔在相同鎘脅迫環(huán)境下的抗氧化能力反應的差異，將2種貝類于0.05 mg·L-1Cd環(huán)境中暴露10 d，分別于第0天、2天、4天、6天、8天、10天分別取樣檢測內臟團中SOD、CAT、GPx、GST酶活性和GSH含量，同時分析內臟團中Cd的含量。結果表明，對于Cd脅迫組，扇貝和菲律賓蛤仔內臟團中SOD和CAT酶活反應相似，均呈先被誘導后被抑制的規(guī)律，且2種貝類的SOD和CAT活性差異較小。2種貝類內臟團中GSH含量、GST和GPx活性變化差異較大：扇貝內臟團中GSH含量顯著降低(p<0.05)，GST和GPx活性均在第2天和第4天時處于顯著誘導狀態(tài)(p<0.05)，從第6天時處于抑制狀態(tài)，而菲律賓蛤仔內臟團中GSH含量、GST和GPx活性在Cd暴露期間無顯著變化，且2種貝類間比較，扇貝內臟團中GSH含量和GST活性在整個實驗期間始終顯著高于菲律賓蛤仔(p<0.05)，GPx活性從第4天開始高于菲律賓蛤仔；對于無鎘污染的對照組，扇貝和菲律賓蛤仔內臟團中SOD、CAT和GPx活性無顯著差異，但扇貝內臟團中GSH含量和GST活性顯著高于菲律賓蛤仔，其中前者GSH含量約為后者的22倍。研究同時表明在相同鎘環(huán)境下扇貝內臟團對Cd的富集濃度和富集速率均遠高于菲律賓蛤仔。本研究明確了2種貝類在相同鎘環(huán)境下的抗氧化反應的差異，推斷出扇貝內臟團中高含量的GSH以及較高的GST和GPx活性可能在扇貝高富集、高耐受Cd方面起重要作用。

鎘；扇貝；菲律賓蛤仔；抗氧化能力；鎘富集能力

鎘(cadmium, Cd)是一種易在生物體內蓄積且難代謝的有害元素，被美國毒物管理委員會(ATSDR)列為第6位危及人類健康的有毒物質。鎘廣泛存在于自然環(huán)境中，也可通過食物鏈傳遞，對消費者的身體健康造成威脅。大洋中鎘的濃度很低(0.01～0.25 μg·L-1)，近岸海域鎘的濃度可達5.38 μg·L-1[1]。雙殼貝類能夠從環(huán)境中富集高濃度的鎘。但是不同貝類具有不同的富集能力，如扇貝對鎘的富集能力約是蛤仔的10倍甚至更高[2]，而且扇貝在正常環(huán)境中也能積累高濃度的鎘[3-5]。相同環(huán)境中雙殼貝類對重金屬的富集能力不同可能是由于其對鎘具有不同的富集能力和解毒策略。目前已有研究指出，扇貝能夠富集高濃度的鎘，可能是由于扇貝對鎘具有較高的消化吸收率、同化利用率和釋放速率[6-8]，以及具有有效的解毒策略包括溶酶體的區(qū)隔化作用、與磷酸鹽顆粒的共沉淀及與金屬硫蛋白(metallothioneins, MT)結合等[3]。

重金屬鎘對水生生物的毒性作用機制之一是造成生物體內的過氧化脅迫，在長期進化中，需氧生物發(fā)展了防御過氧化損害的酶系統，在生理狀態(tài)下，由代謝產生的活性氧可為抗氧化防御系統所控制，機體抗氧化防御系統中的一些成分會改變，從而使機體免受氧化傷害[9]。由自由基介導的生物體內的氧化損傷是鎘離子毒性效應的主要體現。其過氧化脅迫主要有2種方式：直接誘導生物體內產生活性氧(ROS)、自由基代謝物；間接降低生物體清除氧自由基的能力。超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化氫酶(CAT)、谷胱甘肽過氧化物酶(GPx)、谷胱甘肽S-轉移酶(GST)等抗氧化物酶能夠清除ROS和多種自由基，在生物體解毒機制中發(fā)揮著至關重要的作用[10-11]。因此，筆者推測2種具有不同鎘富集能力的貝類的抗氧化反應肯定存在重要差異。本實驗試圖通過比較研究扇貝和菲律賓蛤仔在相同鎘脅迫環(huán)境下的抗氧化反應差異，從抗氧化能力角度解釋2種貝類對鎘的蓄積和耐受能力差異。本研究選擇的抗氧化反應指標包括SOD、CAT、GPx、GST活性以及谷胱甘肽(GSH)含量。

1 材料與方法(Materials and methods)

1.1 實驗材料

扇貝(Chlamys farreri)和菲律賓蛤仔(Ruditapes philippinarum)于2012年10月取自青島一貝類養(yǎng)殖廠。扇貝平均殼高(5.8±0.34) cm，殼長(5.5±0.26) cm，菲律賓蛤仔平均殼高(2.1±0.26) cm，殼長(3.0±0.28) cm，在60 L玻璃缸中用自然海水暫養(yǎng)1周，保持水體連續(xù)充氣，每日換水1次，水溫(20.0±1.0) ℃，pH=8.0，自然光照。

1.2 實驗設計

鎘脅迫實驗養(yǎng)殖容器為無毒白色塑料周轉箱565 mm×420 mm×300 mm，將每個實驗容器中加入30 L自然海水，根據實驗生物個體大小差異，分別隨機放入扇貝和菲律賓蛤仔各30和150只。

CdCl2(CdCl2·2.5H2O)為分析純，購自國藥集團化學試劑有限公司。首先將其配制成1 g·L-1母液，再稀釋至實驗所需濃度。鎘的實驗濃度為0.05 mg·L-1。取樣時間分別為0、2、4、6、8和10 d。各處理組每個實驗容器分別取櫛孔扇貝6只個體，菲律賓蛤仔30只個體?？瞻讓φ战M為在不添加鎘離子的正常自然海水，實驗期間不投餌，每天定時換水，實驗養(yǎng)殖條件同暫養(yǎng)條件，并每天檢查貝的存活情況。

1.3 樣品制備

隨機從Cd脅迫處理組和空白對照組中取出活貝進行解剖。迅速取出內臟團，用濾紙吸凈表面水分，稱取5.000 g組織即刻放入-80 ℃冰箱冷凍保存。

1.4 指標測定方法

SOD、CAT、GPX、GST活性和GSH含量測定采用南京建成生物工程研究所試劑盒方法測定。蛋白質含量測定采用南京建成生物工程研究所試劑盒測定方法-考馬斯亮藍法(Bradford法)測定。

1.5 鎘含量分析

稱取2.000 g內臟團試樣于100 mL玻璃消化管中，加入混合酸(V(硝酸)∶V(高氯酸)= 4∶1)浸泡過夜后，用控溫消化爐消化，同時做試劑空白對照。試樣中Cd含量采用石墨爐原子吸收(Perkin Elmer, AA600)測定。

1.6 數據處理

試驗結果用平均值±標準差(Mean±SD)表示，實驗數據用Duncan' s多重比較法將各處理組進行比較，并利用SPSS 16.0統計分析軟件，采用單因素方差分析(One-Way ANOVA)進行統計，當p<0.05時，認為差異顯著。

2 結果(Results)

2.1 扇貝和菲律賓蛤仔內臟團中Cd含量

在0.05 mg·L-1Cd脅迫下，扇貝和菲律賓蛤仔內臟團中Cd含量變化趨勢見表1。從表中可見，2種貝類內臟團均對Cd有顯著富集作用。對于空白對照組，扇貝內臟團中Cd含量為6.89 μg·g-1(濕重)，約為菲律賓蛤仔內臟團中含量的43倍。在Cd暴露實驗期間內，2種貝類內臟團中Cd的含量一直呈上升趨勢，并且鎘含量相對于暴露時間呈強正相關關系(扇貝組：R2=0.9868，p<0.01；菲律賓蛤仔組：R2=0.9663，p<0.01)。暴露2、4、6、8和10 d后，扇貝內臟團對Cd的富集速率分別為1.46、1.74、1.52、1.42、1.49 μg·(g·d)-1，菲律賓蛤仔內臟團對Cd的富集速率分別為0.037、0.059、0.12、0.17、0.19 μg·(g·d)-1。因此，在相同Cd濃度環(huán)境下，扇貝內臟團對Cd的富集速率遠大于菲律賓蛤仔。

2.2 Cd對扇貝和菲律賓蛤仔SOD活性的影響

2種貝類內臟團SOD的活性變化趨勢相似，均呈先誘導后抑制的規(guī)律，并且在脅迫4 d后達到最高。另外，空白對照組中，2種貝類內臟團SOD的活性相似(p>0.05)。第4天和第8天，扇貝中SOD活性顯著高于菲律賓蛤仔(p<0.05)，其余時間點2種貝類內臟團的SOD活性均相似(p>0.05)。

2.3 Cd對扇貝和菲律賓蛤仔CAT活性的影響

Cd脅迫下扇貝和菲律賓蛤仔CAT活性的變化見圖2，可知2種貝類的CAT活性變化趨勢相同，且與SOD活性變化規(guī)律相似(見圖1)，均呈先誘導后抑制的趨勢，脅迫4 d后CAT活性達到最高?？瞻讓φ战M中，2種貝類內臟團CAT的活性無顯著差異(P>0.05)，且均是在第4天和第8天，扇貝中CAT活性顯著高于菲律賓蛤仔(p<0.05)，其余取樣時間點2種貝類的CAT活性相似(p>0.05)。

表1 扇貝和菲律賓蛤仔內臟團中Cd含量Table 1 Cd contents in visceral mass of Chlamys farreri and Ruditapes philippinarum

注：Cd含量單位為μg·g-1(濕重)。

Note: the unit of Cd content is μg·g-1, wet weight.

2.4 Cd對扇貝和菲律賓蛤仔GST活性的影響

Cd脅迫對2種貝類內臟團中GST活性的影響見圖3，從圖中可見，扇貝內臟團中GST活性在暴露4 d內處于顯著誘導狀態(tài)，第4天時達到最高為629.5 U·mg-1prot，約是空白對照組的2倍，隨后逐漸被抑制，10 d后，降至空白對照組水平(p>0.05)。而對于菲律賓蛤仔，在整個實驗期間，GST活性變化較小。

圖1 Cd脅迫對扇貝和菲律賓蛤仔內臟團SOD活性的影響注：圖中不同小寫字母表示p<0.05差異顯著。Fig. 1 SOD activity in the visceral mass of C. farreri and R. philippinarum under 0.05 mg·L-1 cadmium exposureNote: the different small letters indicate a significant difference at p<0.05.

圖2 Cd脅迫對扇貝和菲律賓蛤仔內 臟團CAT活性的影響注：圖中不同小寫字母表示p<0.05差異顯著。Fig. 2 CAT activity in visceral mass of C. farreri and R. philippinarum under 0.05 mg·L-1 cadmium exposureNote: the different small letters indicate a significant difference at p<0.05.

另外在整個暴露實驗期間，扇貝內臟團中GST的活性均顯著性高于菲律賓蛤仔(P<0.05)。扇貝空白對照組的GST活性(303 U·mg-1prot)約為菲律賓蛤仔對照組(157 U·mg-1prot)的2倍。

2.5 Cd對扇貝和菲律賓蛤仔GPx活性的影響 0.05 mg·L-1Cd脅迫下，扇貝內臟團GPx活性的活性變化規(guī)律(見圖4)與GST的活性變化規(guī)律相似，在第2天和第4天時處于顯著誘導狀態(tài)(p<0.05)，第4天時活性達到最高值為100 U·mg-1prot，約為空白對照組(30.2 U·mg-1prot)的3倍多。對于菲律賓蛤仔，整個暴露實驗期間，GPx活性變化較小，未達到差異顯著水平(p>0.05)。另外，不同于GST活性，空白對照組2種貝類內臟團GPx活性無顯著差異(p>0.05)。

圖3 Cd脅迫對扇貝和菲律賓蛤仔內臟團GST活性的影響注：圖中不同小寫字母表示p<0.05差異顯著。Fig. 3 GST activity in visceral mass of C. farreri and R. philippinarum under 0.05 mg·L-1 cadmium exposureNote: the different small letters indicate a significant difference at p<0.05.

圖4 Cd脅迫對扇貝和菲律賓蛤仔 內臟團GPx活性的影響注：圖中不同小寫字母表示p<0.05差異顯著。Fig. 4 GPx activity in visceral mass of C. farreri and R. philippinarum under 0.05 mg·L-1 cadmium exposureNote: the different small letters indicate a significant difference at p<0.05.

2.6 Cd對扇貝和菲律賓蛤仔GSH含量的影響

圖5顯示了Cd脅迫下，扇貝和菲律賓蛤仔內臟團GSH含量的變化。從圖中可見，2種貝類GSH含量變化存在很大差異。首先，對于空白對照組，扇貝內臟團中GSH含量為78 nmol·mg-1prot，而菲律賓蛤仔內臟團中GSH含量為3.5 nmol·mg-1prot，前者約為后者的22倍。且在暴露實驗期間，扇貝內臟團中的GSH含量始終顯著高于菲律賓蛤仔(p<0.05)。0.05 mg·L-1Cd脅迫下，扇貝中GSH含量急劇下降，2 d后降至24.5 nmol·mg-1prot，且6 d后降至最低點。而對于菲律賓蛤仔，空白對照組和Cd暴露組在實驗期間內臟團中GSH含量無顯著變化(p>0.05)。2.7 扇貝和菲律賓蛤仔抗氧化能力比較

為了更清楚地表明扇貝和菲律賓蛤仔2種貝類，在相同濃度Cd脅迫下的抗氧化能力反應差異，將扇貝空白組的4種抗氧化酶(SOD、CAT、GST、GPx)酶活性和GSH含量定義為100%，比較扇貝Cd處理組不同時間點、菲律賓蛤仔空白和Cd處理組不同時間點的抗氧化酶活性和GSH含量的相對變化。結果見表2，從表中可見，對于SOD和CAT，扇貝和菲律賓蛤仔的酶活性高低和變化規(guī)律均相似；對于GST，相對于扇貝空白組，菲律賓蛤仔空白組僅占52%，并且在Cd脅迫下，菲律賓蛤仔的GST活性

最高升至73%，至暴露結束后，降至空白組水平(53%)，而扇貝在Cd脅迫下，GST活性于暴露4 d時升高了2倍(207.6%)，約為菲律賓蛤仔(73.3%)的3倍；對于GPx，在Cd脅迫4 d時，扇貝處理組最高為菲律賓蛤仔的2倍；對于GSH含量，相對于扇貝空白組，菲律賓蛤仔空白組的GSH含量僅占4.5%，在Cd脅迫下，扇貝內臟團中GSH含量急劇下降，脅迫2 d時即下降至空白組31.3%，脅迫6 d時，含量約占空白組的13.8%，而菲律賓蛤仔于Cd脅迫10 d后，GSH含量最高，占扇貝空白對照組的5.0%。

圖5 Cd脅迫對扇貝和菲律賓蛤仔內臟團GSH含量的影響注：圖中不同小寫字母表示P<0.05差異顯著。Fig. 5 GSH content in visceral mass of C. farreri and R. philippinarum under 0.05 mg·L-1 cadmium exposureNote: the different small letters indicate a significant difference at p<0.05.

表2 扇貝和菲律賓蛤仔4種抗氧化酶活性和GSH含量隨暴露時間的相對變化(%)Table 2 Comparative changes in activities of four antioxidant enzymes and GSH content for both C. farreri and R. philippinarum with the extension of exposure time (%)

3 討論(Discussion)

海水水質標準GB 3097—1997的漁業(yè)標準中，Cd≤0.005 mg·L-1，已有研究表明0.005 mg·L-1Cd脅迫下，貝類組織中抗氧化酶在實驗期間與對照組相比無顯著變化，當鎘濃度為標準濃度的10倍時，貝類產生抗氧化反應[12]。本研究目的是試圖通過比較2種貝類對鎘的抗氧化能力差異，來解釋2種貝類對鎘蓄積和耐受能力的差異，因此選擇0.05 mg·L-1Cd為脅迫實驗濃度。

實驗分析了空白對照組2種貝類中Cd的蓄積量，結果顯示扇貝整貝中Cd含量為9.7 mg·kg-1，約為菲律賓蛤仔整貝中Cd含量(0.27 mg·kg-1)的35倍(數據未展示)，再次證明了扇貝在相同無鎘污染的正常環(huán)境中能夠在體內積累高濃度的鎘，含量約為蛤仔的幾十倍[2-5]。扇貝內臟團中Cd含量為6.89 mg·kg-1，菲律賓蛤仔內臟團中Cd含量為0.16 mg·kg-1，因此，內臟團是扇貝和菲律賓蛤仔富集鎘的主要組織。0.05 mg·L-1Cd脅迫10 d，2種貝類內臟團中的鎘均沒有達到飽和，內臟團中鎘含量與暴露時間呈顯著正相關關系。這可能是由于在慢性鎘暴露初期，鎘進入貝類體內后首先進入內臟團，與MT、GSH、Cys等巰基化合物結合[13]，使其毒性降低，并蓄積在內臟團內，同時導致內臟團內SOD、CAT、GST、GPX等抗氧化系統指標發(fā)生變化。

3.1 扇貝和菲律賓蛤仔在相同Cd環(huán)境下抗氧化反應相同之處

在0.05 mg·L-1Cd脅迫下，2種貝類內臟團中SOD和CAT活性變化趨勢相似，均呈先誘導后抑制的變化規(guī)律。已有研究表明，Cd2+能夠誘導機體產生大量的自由基和活性氧(ROS)，引起脂質、蛋白質和DNA的氧化變性，誘發(fā)組織損傷[14]。SOD是生物體內唯一一種以自由基為底物的抗氧化酶，它可將超氧陰離子自由基歧化為H2O2和O2，以達到清除體內活性氧自由基的作用，避免細胞受到氧自由基的損害[15-16]。CAT是機體抗氧化體系中又一關鍵非特異抗氧化酶，能夠清除SOD催化活性氧自由基所產生的H2O2，使其轉化為對機體無毒的H2O和O2，它們的作用都是使機體免受氧自由基的攻擊[17]。本實驗中，0.05 mg·L-1Cd脅迫下，扇貝和菲律賓蛤仔內臟團中SOD活性均先升高后降低，在暴露4 d后，SOD活性達到最高值，顯示其被顯著誘導，之后呈下降的趨勢，但是相對于空白組仍然被顯著誘導。隨著SOD活性增加，CAT活性也有增加的趨勢，并在暴露4 d后達到最大值，之后逐漸降低。這說明，扇貝與菲律賓蛤仔在Cd的脅迫下，機體會產生適應性誘導效應，當較少的鎘離子進入機體并誘導其產生活性氧自由基時，SOD的活性升高以清除氧自由基，從而促使機體內H2O2含量升高。H2O2的升高誘導了機體內CAT的基因表達及活力，提高了H2O2的分解速率。但是如果暴露時間增加，扇貝和菲律賓蛤仔體內鎘離子含量升高，大量的不能被及時清除的氧自由基被誘發(fā)產生，SOD、CAT的合成途徑被阻礙或者其亞單位間的裝配發(fā)生了改變，從而導致其活力開始下降，這種低濃度時的“毒物興奮效應”與在真鯛、長江華溪蟹、褶紋冠蚌、尖紫蛤、泥蚶等生物中觀察到的結果類似[12,18-21]。另外，在無鎘污染的正常環(huán)境中，扇貝和菲律賓蛤仔內臟團中2種酶的活性無顯著差異，本研究結果可以推斷出SOD、CAT酶可能不是影響2種貝類具有不同積累和耐受鎘能力差異的主要因素。

3.2 扇貝和菲律賓蛤仔在相同Cd環(huán)境下抗氧化反應不同之處

在0.05 mg·L-1Cd環(huán)境下，扇貝和菲律賓蛤仔內臟團中的GSH含量、GST和GPx活性變化存在一定差異。在整個實驗期間，扇貝內臟團中GSH含量和GST酶活均顯著高于菲律賓蛤仔(p<0.05)。而且在無鎘污染的正常環(huán)境下，扇貝內臟團中的GSH含量和GST酶活性顯著高于菲律賓蛤仔(p<0.05)。其中差異最大的是GSH含量，前者約為后者的22倍。GSH是細胞內含巰基最豐富的物質，參與物質代謝和轉運過程，對各種外源(如重金屬)和內源性物質(如活性氧)對細胞的損害都有保護作用[22]。GSH可在GST的催化下與細胞內的有害物質結合，生成無毒或毒性小的GSH硫結合物，具有消除體內脂質過氧化物和解毒的雙重作用。有研究表明生物體由于污染的暴露產生適應性誘導反應而使GSH含量升高，也可以由于污染的毒性作用產生中毒反應而使GSH含量降低[23]。如比薩茶蝸牛(Theba pisana)受到以Cu2+為主要成分的農藥刺激后，消化腺中的GSH含量出現了明顯下降，并且刺激的Cu2+濃度越高，GSH含量下降越明顯[24]。在鎘脅迫下，扇貝內臟團中GSH含量先下降后上升，暴露開始GSH含量下降說明大量的GSH與Cd結合，以降低Cd對生物體的毒性，隨著暴露時間的延長，GSH含量逐漸升高，說明扇貝產生可適應性誘導效應。而GST酶活性則呈現與GSH相反的變化趨勢，這是由于GSH是GST的自然底物，Cd脅迫初期，大量GST酶被激活，催化GSH與Cd2+及過氧化物結合，使生物體內還原性的GSH消耗增加。而對于菲律賓蛤仔，Cd暴露組的蛤仔內臟團中GSH含量、GST酶活性無論是與空白對照組比較，還是不同暴露時間點之間比較，變化均較小，且均顯著低于扇貝。

GPx也是生物體普遍存在的一種抗氧化物酶。在GST的催化下，GPx作為親電子集團的結合靶位點，可以降低內、外源毒物對機體產生的毒性作用，也可以分解過氧化氫和過氧化物，清除細胞內脂質和有機過氧化反應的產物，阻斷脂質過氧化連鎖反應，達到保護細胞膜機構和功能完整的作用，與CAT酶在細胞內具有相似的作用[25]。本實驗也證明了扇貝中GPx活性變化趨勢與CAT變化趨勢相似，均于4 d后活性達到最高，約為空白對照組的3倍，并且顯著高于菲律賓蛤仔。Cd2+還可以與GPx分子中的Se形成Cd-Se復合物，破壞GPx活性中心Se代半胱氨酸的機構，一方面降低了鎘離子對機體的毒性影響，達到解除重金屬鎘毒性的目的；另一方面使GPx分子活性中心的Se代半胱氨酸結構被破壞而使GPx活性降低[26]。因此，隨著暴露鎘時間的增加，扇貝中GPx活性逐漸降低。但是菲律賓蛤仔內臟團中GPx活性在Cd暴露期間變化不顯著，并且空白對照組中2種貝類GPx活性無顯著差異。

生物體對逆境反應存在的差異與抗氧化系統的整體活力相關。重金屬污染地區(qū)的貝類、魚、沙蠶等的抗氧化能力遠遠強于未污染地區(qū)的個體[27-29]，重金屬污染地區(qū)的植物的抗氧化反應強于非污染地區(qū)的植物[30]。如砷/鎘超富集植物比非砷/鎘超富集植物具有更強的抗氧化能力，且較強的抗氧化能力在超富集植物解毒、蓄積重金屬的機制中起關鍵作用[31-33]。本研究結果明確顯示，在相同Cd暴露環(huán)境下，扇貝的抗氧化能力比菲律賓蛤仔強，主要表現在扇貝內臟團具有較高的GSH含量、GST活性和GPx活性，且扇貝對鎘的富集量和富集速率遠高于菲律賓蛤仔。因此可以推斷扇貝中較高的GSH含量、GST和GPx活性可能使扇貝具有較高的Cd解毒能力，也可能是其具有高富集Cd能力的一個主要原因。

[1] Ferreira A C, Costa A C S, Korn M G A. Preliminary evaluation of the cadmium concentration in seawater of the Salvador city, Brazil [J]. Microchemical Journal, 2004, 78(1): 77-83

[2] Pigeot J, Miramand P, Guyot T, et al. Cadmium pathways in an exploited intertidal ecosystem with chronic cadmium inputs (Marennes-Oleron, Atlantic coast, France) [J]. Marine Ecology Progress Series, 2006, 307: 101-114

[3] Bustamante P, Miramand P. Subcellular and body distributions of 17 trace elements in the variegated scallop Chlamys varia from the French coast of the Bay of Biscay [J]. Science of the Total Environment, 2005, 337(1-3): 59-73

[4] Bustamante P, Miramand P. Interspecific and geographical variations of trace element concentrations in Pectinidae from European waters [J]. Chemosphere, 2004, 57(10): 1355-1362

[5] Pan K, Wang W X. The subcellular fate of cadmium and zinc in the scallop Chlamys nobilis during waterborne and dietary metal exposure [J]. Aquatic Toxicology, 2008, 90(4): 253-260

[6] Metian M, Warnau M, Oberh?nsli F, et al. Interspecific comparison of Cd bioaccumulation in European Pectinidae (Chlamys varia and Pecten maximus) [J]. Journal of Experimental Marine and Ecology, 2007, 353(1): 58-67

[7] Wang W X, Rainbow P S. Comparative approaches to understand metal bioaccumulation in aquatic animals [J]. Comparative Biochemistry and Physiology - Part C, 2008, 148(4): 315-323

[8] Ng T Y T, Wang W X. Detoxification and effects of Ag, Cd and Zn pre-exposure on metal uptake kinetics in the clam Ruditapes philippinarum [J]. Marine Ecology Progress Series, 2004, 268: 161-172

[9] 劉慧, 王曉蓉, 張景飛, 等. 銅及其EDTA配合物對彭澤鯽魚肝臟抗氧化系統的影響[J]. 環(huán)境化學, 2004, 23(3): 263-267

Liu H, Wang X R, Zhang J F, et al. Effects of copper and complex (Cu-EDTA) on the antioxidant system of Carassius auratos liver [J]. Environmental Chemistry, 2004, 23(3): 263-267 (in Chinese)

[10] Zikic R V, Stajn A S, Saicic Z S, et al. The activities of superoxide dismutase, catalase and ascorbic acid content in the liver of goldfish (Carassius auratus gibelio Bloch) exposed to cadmium [J]. Physiological Research, 1996, 45(6): 479-481

[11] Almeidaa J A, DinizbY S, Marquesa S F G, et al. The use of the oxidative stress responses as biomarkers in Nile tilapia (Oreochromis niloticus) exposed to in vivo cadmium contamination [J]. Environment International, 2002, 27(8): 673-679

[12] 鄧思平, 趙云濤, 朱春華, 等. 鎘對尖紫蛤抗氧化酶活性及脂質過氧化的影響[J]. 水生生物學報, 2012, 36(4): 689-695

Deng S P, Zhao Y T, Zhu C H, et al. Effect of cadmium on the antioxidant enzyme activity and lipid perosidation in Sanguinolaria acuta [J]. Acta Hydrobiologica Sinica, 2012, 36(4): 689-695 (in Chinese)

[13] 趙艷芳, 尚德榮, 寧勁松, 等. 體積排阻高效液相色譜-電感耦合等離子體質譜法測定海產貝類中鎘的形態(tài)[J]. 分析化學, 2012, 40(5): 681-686

Zhao Y F, Shang D R, Ning J C, et al. Speciation analysis of cadmium in marine bivalves by size exclusion chromatography-high performance liquid chromatography-inductively coupled plasma mass spectrometry [J]. Chinese Journal of Analytical Chemistry, 2012, 40(5): 681 -686 (in Chinese)

[14] Hegedus A, Erdei S, Horvath G. Comparative studies of H2O2detoxifying enzymes in green and greening barley seedlings under cadmium stress [J]. Plant Science, 2001, 160(6): l085-l093

[15] Pastor A, Medina J, Delramo J. Determination of lead in treated crayfish Procambarus clarkia: Accumulation in different tissues [J]. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology, 1988, 41(3): 412-418

[16] Papadimitriou E, Loumbourdis N S. Exposure of the frog Rana ridibunda to copper impact on two biomarkers, lipid peroxidation, and glutathione [J] . Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology, 2002, 69(6): 885-891

[17] Sarkar S, Yadav P, Trivedi R. Cadmium induced lipid peroxidation and the status of the antioxidant system in rat tissues [J]. Journal of Trace Elements in Medicine and Biology, 1995, 9(3): 144-149

[18] Mourente G, Diaz-Salvago E, Bell J G. Increased activities of hepatic antioxidant defense enzymes in juvenile gilthead sea bream (Sparus aurata L.) fed dietary oxidized oil: Attenuation by dietary vitamin E [J]. Aquaculture, 2002, 214 (1-4): 343-361

[19] 李琰, 吳丹, 文春根, 等. 鎘對褶紋冠蚌抗氧化因子的影響[J]. 農業(yè)環(huán)境科學學報, 2012, 31(11): 2108-2113

Li Y, Wu D, Wen C G, et al. Effects of cadmium on the antioxidant factors of Cristaria plicata [J]. Journal of Agro-Environment Science, 2012, 31(11): 2108-2113 (in Chinese)

[20] 金芬芬, 徐團, 秦圣娟, 等. 鎘對長江華溪蟹肝胰腺線粒體抗氧化酶活力和脂質過氧化水平的影響[J]. 水生生物學報, 2011, 35(6): 1019-1024

Jin F F, Xu T, Qin S J, et al. Effects of cadmium on hepatopancreas mitochondrial antioxidant enzyme activity and lipid peroxidation level in freshwater carb Sinopotamon yangtsekiense [J]. Acta Hydrobilogica Sinica, 2011, 35(6): 1019-1024 (in Chinese)

[21] 孫彬, 葛奇?zhèn)? 陸慧賢, 等. 鎘對泥蚶抗氧化酶系統的影響[J]. 生態(tài)科學, 2011, 30(4): 383-388

Sun B, Ge Q W, Lu H X, et al. Effects of cadmium exposure on antioxidant enzyme system of Tegillarca granosa [J]. Ecological Science, 2011, 30(4): 383-388 (in Chinese)

[22] 惠天朝, 王家剛, 朱蔭湄. 鎘對羅非魚肝組織中GSH代謝的影響[J]. 浙江大學學報: 農業(yè)與生命科學版, 2001, 27(5): 575-578

Hui T C, Wang J G, Zhu Y M. Effects of Cd on hepatic GSH metabolism in Tilapia nilotica [J]. Journal of Zhejiang University: Agriculture and Life Science, 2001, 27(5): 575-578 (in Chinese)

[23] Stebbing A R. Hormesis-the stimulation of growth by low levels of inhibitors [J]. Science of the Total Environment, 1982, 22(3): 213-234

[24] EI-Gendy K S, Radwan M A, Gad A F. In vivo evaluation of oxidative stress biomarkers in the land snail, Theba pisana exposed to copper based pesticides [J]. Chemosphere, 2009, 77(3): 339-344

[25] 閆博, 王蘭, 李涌泉, 等. 鎘對長江華溪蟹肝胰腺抗氧化酶活性的影響[J]. 動物學報, 2007, 53(6): 1121-1128

Yan B, Wang L, Li Y Q, et al. Effects of cadmium on hepatopancreatic antioxidant enzyme activity in a freshwater crab Sinopotamon yangtsekiense [J]. Acta Zoologica Sinica, 2007, 53(6): 1121-1128 (in Chinese)

[26] Iszard M B, Liu J, Klaassen C D. Effect of several metallothionein inducers on oxidative stress defense mechanisms in rats [J]. Toxicology, 1995, 104(1-3): 25-33

[27] Yildirim N C, Benzer F, Danabas D. Evaluation of environmental pollution at Munzur river of Tunceli applying oxidative stress biomarkers in Capoeta trutta (Heckel, 1843) [J]. The Journal of Animal and Plant Sciences, 2011, 21(1): 66-71

[28] Box A A, Sureda F, Galgani A, et al. Assessment of environmental pollution at Balearic Islands applying oxidative stress biomarkers in the mussel Mytilus galloprovincialis [J]. Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Toxicology and Pharmacology, 2007, 146(4): 531-539

[29] Geracitano L A, Bocchetti R, Monserrat J M, et al. Oxidative stress responses in two population of Laeonereis acuta (Polychaeta, Nereididae) after acute and chronic exposure to copper [J]. Marine Environmental Research, 2004, 58(1): 1-17

[30] Kandziora C M, Nadgorska S A, Barczyk G. A comparative study of heavy metal accumulation and antioxidant responses in Vaccinium myrtillus L. leaves in polluted and non-polluted areas [J]. Environmental Science and Pollution Research, 2013, 20(7): 4920-4932

[31] Srivastava M, Ma L Q, Singh N, et al. Antioxidant responses of hyper-accumulator and sensitive fern species to arsenic [J]. Journal of Experimental Botany, 2005, 56(415): 1335-1342

[32] 謝飛, 王宏鑌, 王海娟, 等. 砷脅迫對不同砷富集能力植物葉片抗氧化酶活性的影響[J]. 農業(yè)環(huán)境科學學報, 2009, 28(7): 1379-1385

Xie F, Wang H B, Wang H J, et al. Effects of arsenic stress on activities of antioxidant enzymes in the fronds of plants with different abilities to accumulate arsenic [J]. Journal of Agro-Environment Science, 2009, 28(7): 1379-1385 (in Chinese)

[33] 張軍, 束文圣. 植物對重金屬鎘的耐受機制[J]. 植物生理與分子生物學學報, 2006, 32(1): 1-8

Zhang J, Shu W S. Mechanisms of heavy metal cadmium tolerance in plants [J]. Journal of Plant Physiology and Molecular Biology, 2006, 32(1): 1-8 (in Chinese)

◆

EffectsofCadmiumStressontheAntioxidantResponsesinTwoBiovalveswithDifferentAccumulationAbilitiesforCadmium:ACaseStudyontheScallopChlamysfarreriandtheClamRuditapesphilippinarum

Zhao Yanfang1, Wu Jifa2, Zhai Yuxiu1, Ning Jinsong1, Sheng Xiaofeng1, Ding Haiyan1, Shang Derong1,*

1. Yellow Sea Fishery Research Institute, Chinese Academy of Fishery Sciences, Qingdao 266071, China 2. Ocean and Fishery Bureau of Huangdao District of Qingdao City, Qingdao 266400, China

8 March 2013accepted25 June 2013

In order to find out the difference in the antioxidant responses in two bivalves (the scallop Chlamys farreri and the clam Ruditapes philippinarum) which have different abilities for accumulating cadmium (Cd), two bivalves were exposed to 0.05 mg L-1Cd for 2, 4, 6, 8 and 10 days. The activities of SOD, CAT, GPx and GST, the content of GSH and the concentration of cadmium in the visceral mass of two bivalves were analyzed. Results showed that for the treated groups, the activities of SOD and CAT in the two bivalves displayed similar response variability, which were induced firstly and then were inhibited during the period of 10 days. In addition, the activities of SOD and CAT were similar in two bivalves. However, GSH content, GST and GPx activities had great differences in two bivalves. The GSH content in C. farreri significantly decreased (p<0.05), while the GST and GPx activities were significantly induced on the second and fourth day (p<0.05), and were inhibited from the sixth day. In contrast, the GST and GPx activities, and GSH content in R. philippinarum had no significant changes. In addition, GSH content and GST activity in C. farreri were significantly higher than those of R. philippinarum during the 10-day exposure. The GPx activity in C. farreri was also higher (p<0.05) than that of R. philippinarum from the fourth day. For the control groups, the activities of SOD, CAT and GPx had no significant differences between C. farreri and R. philippinarum, while the GSH content and GST activity in C. farreri were much higher than that of R. philippinarum. Specifically, the GSH content in C. farreri was almost 22 times of that of R. philippinarum in the control groups. Moreover, C. farreri had higher Cd accumulation rate and concentration than those of R. philippinarum. It is found that the two bivalves with different abilities for accumulating Cd did show different responses in antioxidant systems under the same Cd-stress conditions. High content of GSH, and higher GST and GPx activities may help to explain the scallop C. farreri have higher ability to defense and detoxify the Cd than the clam R. philippinarum.

cadmium; Chlamys farreri; Ruditapes philippinarum; antioxidant defenses: Cd accumulation abilities

國家自然科學基金(41206101)

趙艷芳(1979-)，女，博士，研究方向為有害重金屬生物化學，E-mail: yanfang_z1979@163.com;

*通訊作者(Corresponding author)，E-mail: shangdr@ysfri.ac.cn

10.7524/AJE.1673-5897.20130308004

趙艷芳，吳繼法，翟毓秀，等. 鎘脅迫對不同鎘富集能力海水養(yǎng)殖貝類(扇貝和菲律賓蛤仔)抗氧化能力的影響[J]. 生態(tài)毒理學報, 2014, 9(2): 224-232

Zhao Y F, Wu J F, Zhai Y X, et al. Effects of cadmium stress on the antioxidant responses in two biovalves (the scallop Chlamys farreri and the clam Ruditapes philippinarum) with different abilities to accumulate cadmium [J]. Asian Journal of Ecotoxicology, 2014, 9(2): 224-232 (in Chinese)

2013-03-08錄用日期2013-06-25

1673-5897(2014)2-224-09

X171.5

A

尚德榮(1960—)，女，副研究員，主要研究方向為污染生物化學，發(fā)表學術論文20余篇。